干扰素制备的工艺流程

所配成的溶液对钾是３mol/L，对乙酸根是5mol/L。 封住瓶口，摇动离心瓶数次以混匀内容物，此时应不再出现 分明的两个液相。置冰上放10分钟，应形成一白色絮状沉淀。 于0℃放置后所形成的沉淀应包括染体DNA、 高分子量RNA和 钾－SDS－蛋白质－膜复合物 ５）用合适转头于4℃以4000转/分离心15分钟，不开刹车而 使转头自然停转。如果细菌碎片贴壁不紧，可以5000转/分 再度离心20分钟， 然后尽可能将上清全部转到另一瓶中， 弃去残留在离心管内的粘稠状液体。未能形成致密沉淀块的 原因通常是由于溶液Ⅲ与细菌裂解物混合不充分
七、对重组质粒的检测与目的基因提取


目的基因获取 对获得的质粒进行双酶切，获得目的基因与PBR322质粒片 段，通过琼脂糖凝胶电泳，由于目的基因与PBR322质粒片 段相对分子量不同，在电泳过程中产生不同的条带，通过与 已知基因长度的对比，我们可以选出相应的目的基因，接着 利用Qiagen纯化柱回收纯化DNA。具体：用3倍体积的特殊 高盐溶液于55°融化带有目的基因的DNA片段的琼脂糖凝胶 块，将DNA释放到水溶液中。然后将其通过Qiagen纯化柱， 经过如图结合—洗涤—洗脱步骤，直接得到纯化的DNA样品。 利用核酸探针杂交法鉴定目的基因
半成品检定






（1）效价测定 用细胞病变抑制法，以Wish细胞、VSV病毒为基本检测 系统，测定中必须用国家或国际参考品校准为国际单位。 （2）蛋白质含量测定 福林-酚法，以中国药品生物制品检定所提供的标准蛋 白为标准。 （3）比活性 效价的国际单位与蛋白质含量的毫克数之比。 （4）纯度 电泳纯度用非还原型SDS-PAGE法，银染显色应为单一 区带，经扫描仪测定纯度应在95%以上。
八、目的基因与表达载体的组合与导入

表达载体：PBV220,，将PBV220和目的基因用双酶切法处理， 退火后连接，构建重组质粒，利用CaCl2法导入到宿主大肠 杆菌中，构建工程菌，在培养基中培养，利用干扰素性质鉴 定目的工程菌，分离工程菌，扩大培养，提取出质粒，分析 质粒稳定性。
干扰素的发酵工艺过程
干扰素发酵过程控制

在假单孢杆菌的发酵生产中，菌体在培养1.5小时分裂 速度最快，到3.5小时开始下降。而干扰素的迅速合成出现 在3.5小时之后，在4小时达到最大，然后由于降解而迅速下 降。可见在发酵生产工艺中，假单孢杆菌的生长和干扰素的 生产基本处于不相关状态，可采用两段培养的策略进行过程 控制。
→ 重组体导入大肠杆菌K12
重组质粒
→
受体菌的培养及筛选
→
从受体菌中获取目的基因
表达载体
导入大肠杆菌
受体菌的筛选，表达性、稳定性等检测
→
工程菌
一、目的基因的分离与获得


1. 设计合成干Βιβλιοθήκη 素基因的两端引物（完全的），每条引物 内或5`-端最好有内切酶酶切位点。 2. 药物诱导细胞，如佛波酯，使细胞表达干扰素升高。 3. 破碎细胞，提取细胞总mRNA. 4. 用逆转录试剂盒逆转录，把总mRNA逆转录成cDNA 5. 以cDNA为模板、干扰素引物为引物，PCR，得到完全的干 扰素基因的PCR产物



６）上清过滤至一250ml离心瓶中，加0.6体积的异丙醇，充 分混匀，于室温放置10分钟。 ７）用合适转头于室温以500转/分离心15分钟，回收核酸。 如于4℃离心，盐也会了生沉淀。 ８）小心倒掉上清，敞开瓶口倒置离心瓶使残余上清液流尽， 于室温用70％乙醇洗涤沉积管壁。倒出乙醇，用与真空装置 相联的巴期德吸出附于瓶壁的所有液滴，于室温将瓶倒置放 在纸巾上，使最后残余的痕量乙醇挥殆尽。 ９）用3ml TE(pH8.0)溶解核酸沉淀。 10）纯化。

五、提取重组质粒


1、对上一步获得含目的基因的大肠杆菌在含有氯霉素的培 养基中扩大培养15h。培养时间：前人实验证实大肠杆菌K12 生长前6h为迟缓期, 6~15. 5h为对数增时期, 15. 5~ 19. 5h为稳定期, 19. 5h后为衰亡期。氯霉素：氯霉素可抑制宿 主的蛋白质合成，结果阻止了细菌染色体的复制，然而，松 弛型质粒仍可继续复制。 2、细菌的收获和裂解 １）用合适转头于4℃以4000转/分离心15分钟，弃上清，敞 开离心管口并倒置离心管使上清全部流尽。
干扰素制备的工艺流程
生命科学学院 生物技术 2011级4班 龚建平
什么是干扰素？

概念(interferon,IFN)：机体免 疫细胞产生的一类细胞因子，是 机体受到病毒感染时，免疫细胞 通过抗病毒应答反应而产生的一 组结构类似、功能接近的生物调 节蛋白。 根据分子结构和抗原性的差异分 为α 、β 、γ 、ω 等4个类型。


3.发酵罐培养 将种子液通入300L培养基的发酵罐中，接 种量10%，培养温度30℃，pH7.0。级联调节通气量和搅拌转 速，控制溶解氧30%，培养4小时。然后控制培养温度20℃， pH6.0，溶解氧60%，继续培养5～6.5小时。同时进行发酵液 杂菌检查，当OD值达9.0±1.0后，用5℃冷却水快速降温至 15℃以下，以减缓细胞衰老。或者将发酵液转入收集罐中， 加入冰块使温度迅速降至10℃以下。 4. 菌体收集 将已降温的发酵液转入连续流离心机， 16000 r/min离心收集。进行干扰素含量、菌体蛋白含量、 菌体干燥失重、质粒结构一致性、质粒稳定性等项目的检测。 菌体于－20℃冰柜中保存时，不得超过12个月。每保存3个 月，检查一次活性。



(1)．溶解氧控制 分别在生长阶段和生产阶段采用各自 最佳溶解氧浓度，以期提高干扰素的发酵水平。通过级联调 节通气量和搅拌转速得以实现。 (2). 温度控制 假单孢杆菌生长最适温度与产物形成 最适温度是不同的。产物合成温度控制在20℃可以有效防止 干扰素-α 2b的降解，而其最佳生长温度则为30℃。质粒的 稳定性随温度的升高而迅速下降，因此在培养后期降温可以 减少目标产物的降解，增加质粒的稳定性。 (3)．pH值 发酵过程中，pH的变化由工程菌的代 谢、培养基的组成和发酵条件所决定。干扰素-α 的等电点 在pH 6.0附近，在低酸性条件下稳定，能耐受pH 2.5的酸性 环境。因此可在发酵后期降低pH，从而造成大量蛋白酶失活， 减少干扰素-α 的水解，提高干扰素的积累量。
５）加500μ
l含13％（w/v)聚乙二醇（PEG 8000）的 1.6mol/L NaCl,充分混合，用微量离心机于４℃以 12000g离心５分钟，以回收质粒ＤＮＡ。 ６）吸出上清，用400μ l TE(pH8.0)溶解质粒DNA沉淀。 用酚、酚：氯仿、氯仿各抽１次。 ７）将水相转到另一微量离心管中，加100μ l 10mol/L乙醇铵，充分混匀，加２倍体积（约1ml）乙 醇，于室温放置10分钟，于4℃以12 000g离心5分钟， 以回收沉淀的质粒ＤＮＡ。 ８）吸去上清，加200μ l处于4℃以12 000g离心2分钟。 ９）吸去上清，敞开管口，将管置于实验桌上直到最 后可见的痕量乙醇蒸发殆尽。 10）用500μ l TE（pH8.0）溶解沉淀1:100稀释[用TE （pH8.0)] 后测量OD 260，计算质粒DNA的浓度 （1OD260＝50μ g质粒DNA/ml）， 然后将DNA贮于－ 20℃。





（5）相对分子量测定 还原型SDS-PAGE，加样量不地域微克，同时用已知相 对分子量的蛋白标准系列做对照，以迁移率为横坐标，相对 分子量的对数为纵坐标作图，计算相对分子量。与理论值比 较，误差不得高于10%。 （6）残余外源性DNA含量测定 用放射性核素或生物素探针法测定，每剂量中残余外 源性DNA应低于100pg。 （7）残余血清IgG含量测定 在应用抗体亲和层析法作为纯化方法时必须进行此项 检定。 （8）残余抗生素活性测定 半成品中不应有抗生素活性存在。
将cDNA克隆到含有四环素、氨苄青霉素抗性基因的质 粒pBR322中，转化到大肠杆菌，重组的载体 DNA 分子在一 定条件下转化入大肠杆菌，形成携带质粒的菌株。
四、从大肠杆菌k12获取目的基因
由于质粒重组时有3种基本方式，即：目的基因与克隆载体 重组，目的基因片段与目的基因片段重组，克隆载体与克隆 载体重组；另外重组过程可能会发生基因突变情况 流程：步骤一：将细菌涂布到含氨苄青霉素的培养基上培养， 就可得到质粒PBR322或重组质粒的细菌单菌落。 步骤二：步骤一获得的每一个细菌单菌落标记为a、b、 c、d等，在每一个单菌落中挑取部分细菌转涂到含有四环素 的培养基上，不能生长的是绝大部分含有重组质粒的细菌及 少量可能发生突变的非重组质粒的细菌单菌落。原因：因为 PBR322含有抗四环素基因，重组质粒中目的基因插在抗四环 素基因中，使其结构破坏，失去抗四环素作用。
启开种子 制备种子液 发酵培养 粗提
精提
冻干
半成品制备
成品检定
半成品检定
成品包装
分装


1．菌种制备 取－70℃下保存的甘油管菌种（工作种 子批），于室温下融化。然后，接入摇瓶，培养温度30℃， pH7.0，250 r/min活化培养18±2小时后，进行吸光值测定 和发酵液杂菌检查。 2．种子罐培养 将已活化的菌种接入装有30L培养基的 种子罐中，接种量10%，培养温度30℃，pH7.0，级联调节通 气量和搅拌转速，控制溶解氧为30%，培养3～4小时，转入 发酵罐中，同时取样发酵液进行显微镜检查和LB培养基划线 检查，控制杂菌
二、目的基因与克隆载体进行体外重组

1. 提取载体（质粒、病毒等），双酶切，再把干扰素基因 的PCR产物用相应的酶酶切，用连接酶连接 EcoR I BamH I
EcoR I
BamH I
2.连接完成后分离纯化，测序，与原干扰素序列比对。 3.鉴定序列无误后（无义突变也行），导入受体细胞，筛选
三、重组体引入宿主细胞