昆虫杆状病毒载体研究
昆虫杆状病毒表达载体系统的应用与展望
昆虫杆状病毒表达载体系统的应用与展望作者:宋姗姗来源:《中国科技纵横》2017年第22期摘要:昆虫杆状病毒表达载体系统具有生物安全性高、能容纳较大外源基因片段并实现多基因共表达、有完备的翻译后加工修饰系统等特点,因而得到广泛的应用。
近年来,随着重组杆状病毒构建技术、昆虫细胞培养技术的不断发展和改进,加大了昆虫杆状病毒表达载体系统在疫苗制备、治疗性抗体、药物研发和基因治疗中的应用力度。
本文综述了杆状病毒表达载体的研究现状和应用范围,讨论了目前杆状病毒表达载体重组蛋白易降解的问题。
随着科技的进步,对杆状病毒载体的研究与优化会更加深入,昆虫杆状病毒表达载体系统的应用研究尤为重要。
关键词:杆状病毒;疫苗;治疗性抗体;基因治疗中图分类号:Q789 文献标识码:A 文章编号:1671-2064(2017)22-0209-01昆虫杆状病毒表达载体系统(Baculovirus expression vector system,BEVS)是当今基因工程四大表达系统之一,具有生物安全性高、能容纳较大外源基因片段、可实现多基因共表达、具有完备的翻译后加工修饰系统、无内毒素污染等优点[1-3]。
同时,由于宿主细胞系的建立和优化、细胞培养基成分的不断改进,使得细胞生存率达到95%,基本可实现大规模培养[1]。
因此,昆虫杆状病毒表达系统越来越广泛的应用于疫苗制备、药物研发、农林牧渔等领域。
1 昆虫杆状病毒表达载体系统的研究进展Kitts等在1990年提出了线性技术,并设计了重组-救活方法,提高了杆状病毒基因组同源重组能力,将其设计的BacPAK6的重组效率提到80%以上,有较强的应用价值[4]。
但由于DNA酶切消化效率影响,重组病毒的获得仍需通过噬斑纯化过程。
Bac-to-Bac技术的出现避免了噬斑纯化步骤,缩短了重组杆状病毒的周期,同时,此方法在大肠杆菌中进行,非常便捷,不需要空斑纯化,较为节省时间。
但由于鳞翅目昆虫细胞系缺乏功能性糖基转移酶和唾液酸生物合成与利用途径,其产生的糖基化修饰缺乏末端唾液酸化,影响糖蛋白的整体性质,因此研究人员设计出转基因昆虫细胞系,使昆虫细胞对重组蛋白的糖基化修饰更加接近哺乳动物细胞,更利于昆虫杆状病毒表达载体系统的研究。
昆虫杆状病毒表达系统的研究与应用进展_刘高强
收稿日期: 2004-02- 23 修回日期: 2004- 04- 29 * 国家自然科学基金资助项目(30070627) * * 电子信箱: gqliugq@ sohu. com
第7 期
刘高强 等: 昆虫杆状病毒表达系统的研究与应用进展
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表 1 一些代表性的杆状病毒基因及其功能
基因
polh p10 gp64 p619 gp41 vp39 hel dnapol lef- 1 lef- 2 lef- 3 ie- 1 ie- 2 p35 pe38
表达产物和功能
多角体蛋白; 构成蛋白质晶体起保护作用 10 k 蛋白; 与多角体膜形成、病毒多角体聚集、细胞核解体有关 BV 包膜结构蛋白; 与病毒入侵细胞有关 核心蛋白, 使病毒基因组 DNA 浓缩 PDV 结构糖蛋白 壳体主要结构蛋白 解螺旋酶, 病毒 DNA 复制和晚期表达因子, 也与 AcMNPV 的宿主域扩大有一定关系 DNA 聚合酶; 病毒 DNA 复制必需 31k; DNA 复制和晚期表达因子 24k; DNA 复制和晚期表达因子 DNA 复制和晚期表达因子 67k 蛋白; 早期转录、病毒 DNA 复制和晚期表达因子, 刺激增强子活性 47k 蛋白; 早期转录、病毒 DNA 复制和晚期表达因子, 刺激增强子活性, 也与杆状病毒宿主范围有关。 35k 蛋白; 抗细胞凋亡, DNA 复制和早、晚期表达因子 38k; 参与病毒 DNA 复制的调节, 能激活解旋酶基因的表达, 也与杆状病毒宿主范围有关。
昆虫杆状病毒表达系统具有安全性高, 对外源 基因克隆容量大, 重组病毒易于筛选, 具有完备的 翻译后加工修饰系统和高效表达外源基因的能力 等特点[1 ] , 现已成为基因工程四大表达系统( 即杆 状病毒、大肠杆菌、酵母、哺乳动物细胞表达系统) 之一。近 年来, 昆 虫杆状病毒表 达系统的 发展很 快, 本文综述了它的最新研究进展, 并在此基础上 分析其存在的主要问题和应用前景。
昆虫杆状病毒表达系统(BEVS)
姓名:宋志瑞 专业:生物工程 学号: 2015304120207
NO.1
BEVS 简介
BEVS简介
昆虫杆状病毒表达载体系统(BEVS)是基于昆虫杆状病 毒及其宿主细胞建立起来的表达体系;是继大肠杆菌, 酵母,哺乳动物细胞表达系统建立起来的,始于上世纪 80年代。
NO.2
BEVS 优点
2
Bac-to-Bac
3
BaculoDirect源自BacPAKBac-to-Bac
BaculoDirect
三大体系的区别
NO.5
BEVS常用宿主
常用宿主
Thanks
√
√ √ Sometimes Sometimes
Glycosylation
Acylation
√
√
表达高
加工 修饰
安全
B E VS
高效
容量大
NO.3
BEVS 原件
BEVS原件
1. 转移载体 2. 杆状病毒(AcNPV) 3. 宿主(培养细胞或虫体)
NO.4
BEVS三大系统
BEVS三大系统
1
BacPAK
BEVS优点
Features Simple to use Protein size Multiple gene expression Signal peptide cleavage BEVS √ unlimited √ √ Bacterial √ <100kD
Intron splicing
Functional protein Phosphorylation
昆虫杆状病毒表达系统研究进展
昆虫杆状病毒表达系统研究进展昆虫杆状病毒表达系统研究进展摘要:昆虫杆状病毒表达载体系统具有安全性好、重组蛋白表达量高、能同时表达多个基因、重组蛋白翻译后加工完整等特点,因而得到了广泛的应用。
随着重组杆状病毒构建技术的不断发展,昆虫杆状病毒表达载体系统的操作在逐渐简化,重组杆状病毒获得的效率也在不断提高。
昆虫细胞培养技术的改进和转基因昆虫细胞系的发展,进一步推动了昆虫杆状病毒表达载体系统在商品化药物、治疗性抗体、生物农药研发和基因治疗中的应用。
尽管仍存在着重组蛋白降解的问题,但随着分子生物学技术的发展,对杆状病毒载体的研究与改造也会更加深入,未来昆虫杆状病毒表达载体系统的应用将更为广泛。
关键词:杆状病毒;多角体启动子;转基因昆虫细胞系;疫苗;治疗性抗体。
前言作为当今基因工程四大表达系统之一,昆虫细胞杆状病毒表达载体系统(Insect cell baculovirus ex. pression vector system,IC-BEVS)的应用变得越来越广泛。
它不仅具有真核表达系统所具有的传统优势,同时兼具原核表达系统重组蛋白表达量高的特点,且能同时在一个载体上表达多种蛋白。
由于昆虫细胞易于悬浮培养,细胞培养基的改进也使得悬浮培养的细胞活率不断提高,最终得以实现昆虫细胞的大规模培养,这使得其在商业领域如生物医药、农业、疫苗研发等方面均获得了广泛的应用[1]。
1 杆状病毒的分类与分子生物学杆状病毒属于杆状病毒科(Baculoviridae),分为核多角体病毒属和颗粒体病毒属,病毒粒子呈杆状,是一类专一性感染节肢动物并具有囊膜的DNA病毒。
基因组DNA以超螺旋形式压缩包装在杆状衣壳内,大小在90~180 kb之间。
杆状病毒基因组可在昆虫细胞核复制和转录,DNA复制后组装在杆状病毒的核衣壳内,因其具有较大的柔韧性,可容纳较大片段的外源DNA插入而成为表达大片段DNA的理想载体。
其中,目前用作外源基因表达载体的杆状病毒主要为核型多角体病毒(Nuclear polyhedrosis virus,NPV)。
昆虫杆状病毒表达系统的研究进展与应用
凌 同 综述; 余黎 , 白慕群 审校
兰州生物制 品研究所有 限责任公司 甘肃省疫苗工程技术研究 中心 , 甘肃 兰州 7 3 0 0 4 6
摘要 : 昆虫杆 状病 毒表达载体系统具有安全性好 、 重组 蛋 白表 达量高 、 能同时表 达多个基 因 、 重组 蛋 白翻译 后加工 完整等特点 , 因而得到了广 泛的应用 。随着重组杆状病毒构 建技术 的不断发展 , 昆虫 杆状病毒表 达载 体系统 的操
C o r r e s p o n d i n g a u t h o r : Y U L i , E— ma i l : 4 7 9 0 1 6 5 2 @q q . c o m ;B A I Mu — q u n, E — ma i l : 8 4 0 7 9 1 0 5 1 @q q . c o n r Ab s t r a c t :I n s e c t - b a c u l o v i r u s e x p r e s s i o n v e c t o r s y s t e ms a r e b e c o mi n g w i d e l y u s e d d u e t o i t s s a f e t y ,h i g h q u a n t i t y e x p r e s s i o n o f r e c o mb i n a n t p r o t e i n,e x p r e s s i o n o f mo r e t h a n o n e p r o t e i n a t t h e s a me t i me a n d c o mp l e t i o n p o s t — t r a n s l a t e mo d i i f c a t i o n .As t h e c o n s t r u c t i o n t e c h n o l o g y o f r e c o mb i n a n t b a c u l o v i r u s h a s b e e n d e v e l o p e d,t h e o p e r a t i o n o f i n s e c t — b a c u l o v i r u s e x p r e s s i o n
昆虫杆状病毒载体
3.昆虫杆状病毒表达系统的应用
昆虫杆状病毒表达系统广泛应用于药物研发、疫苗生产、重组病毒杀虫剂等 众多领域中。其中,在生物分子研究中,具有代表性的是重组蛋白的表达, 是目前杆状病毒表达系统应用最多的领域。成功表达出具有药用价值的蛋白 质又可用于药物研发和疫苗生产。
产业
应用 基础研究
医用疫苗 和药物
昆虫杆状病毒表达系统
高遄 生物化学与分子生物 2120422
前言 体外基因 表达系统
原核细胞系统
大肠杆菌细胞
•操作简便 •周期短、收益大 •表达产物稳定 •相对分子质量有限 •不能对表达产物进行一 些翻译后加工 、修饰
真核细胞系统
高表达 低成本 安全性高 大规模生产 哺乳动物细胞 酵母细胞 昆虫细胞(杆状 病毒表达系统)
3.1 基础研究
功能基因组学(functional genomics)的重要内容是研究 基因组内各种蛋白质的结构和功能,蛋白质之间以及蛋白质和核 酸之间的相互关系。 实现这一计划的前提是要生产几万种蛋白质 ,这就要求蛋白质 表达系统提供新的技术,诸如:通过简单的操作,生产各种活性 形式的蛋白质简化操作过程,缩短从基因生产蛋白质的时间以简 便的操作,同时生产许多种蛋白质。 最新的研究和技术发展业已表明,昆虫杆状病毒表达系统是解决 上述问题的优良系统,以昆虫虫体为宿主是十分有魅力的。
理想的外源 基因插入位 点
1.1 杆状病毒载体
载体重组原理:原理是人为将杆状病毒多角体蛋白两翼序列 的同源序列引入含外源基因的质粒载体中,通过同源重组方 式来实现外源基因对病毒多角体蛋白基因的替换。 由于杆状病毒分子质量约为134kb,不能利用多克隆位点 (酶切连接)进行基因重组,只能利用杆状病毒和带有外源 基因的质粒载体进行共转染(转移载体的介导)性高:由于杆状病毒的天然宿主是昆虫,不能在哺乳动物 细胞内复制病毒DNA 以及增殖病毒,杆状病毒不会感染人。因 此对细胞的生理影响较哺乳类病毒载体要小,同时实验操作者的 自身安全也比较有保障。
昆虫杆状病毒基因组学研究进展
河南农业科学ꎬ2018ꎬ47(9):1 ̄7JournalofHenanAgriculturalSciencesdoi:10.15933/j.cnki.1004 ̄3268.2018.09.001收稿日期:2018-03-29基金项目:国家自然科学基金项目(31570151ꎬ31272094)ꎻ河南省高校科技创新人才支持计划项目(17HASTIT039)ꎻ河南省高等学校重点科研项目(15A210039)作者简介:梁振普(1976-)ꎬ男ꎬ河南濮阳人ꎬ副教授ꎬ博士ꎬ主要从事病毒分子生物学研究ꎮE-mail:lzpbio@126.com∗通讯作者:张小霞(1973-)ꎬ女ꎬ河南济源人ꎬ教授ꎬ博士ꎬ主要从事病毒分子生物学研究ꎮE-mail:lzpzxx@126.com昆虫杆状病毒基因组学研究进展梁振普ꎬ刘雅静ꎬ张小霞∗ꎬ李鹏娟ꎬ王㊀亮ꎬ张俊庆(河南农业大学生命科学学院ꎬ河南郑州450002)摘要:杆状病毒(Baculoviruses)是一类在自然界中专一性感染节肢动物的共价闭合双链环状DNA病原微生物ꎮ由于杆状病毒的宿主特异性高ꎬ其作为无公害生物杀虫剂在生物防治方面发挥重大作用ꎮ此外ꎬ杆状病毒已被开发成为高效的真核表达载体ꎬ广泛应用于药物研发㊁疫苗生产等领域ꎬ并作为基因治疗载体用于疾病的基因治疗ꎮ综述了获得全基因组序列的昆虫杆状病毒类别及其序列特征ꎬ以及昆虫杆状病毒基因组中的主要功能基因ꎬ包括RNA转录相关基因㊁DNA复制相关基因㊁结构蛋白基因等ꎬ也对其应用做了较为详尽的阐述ꎮ关键词:昆虫杆状病毒ꎻ基因组学ꎻ功能基因ꎻ应用中图分类号:S476.13㊀㊀文献标志码:A㊀㊀文章编号:1004-3268(2018)09-0001-07AdvancesinGenomicsResearchofInsectBaculovirusLIANGZhenpuꎬLIUYajingꎬZHANGXiaoxia∗ꎬLIPengjuanꎬWANGLiangꎬZHANGJunqing(CollegeofLifeSciencesꎬHenanAgriculturalUniversityꎬZhengzhou450002ꎬChina)Abstract:BaculovirusisakindofcovalentlycloseddoublestrandedcircularDNAinsectvirus.Becauseofthehostspecificityofbaculovirusꎬitplaysamajorroleinbiologicalcontrolasapollution ̄freebiologicalinsecticide.Inadditionꎬbaculovirushasbeendevelopedasanefficienteukaryoticexpressionvectorandiswidelyusedindrugdevelopmentꎬvaccineproductionandsoonꎬmeanwhileusedingenetherapyofdis ̄easeasagenetherapyvector.Thispaperreviewsrecentresearchprogressonthegenomicsofinsectbacu ̄lovirusꎬincludingitssequencecharacteristicsandmainfunctionalgenessuchastranscriptionrelatedgenesꎬDNAreplicationrelatedgenesꎬandstructurerelatedgenesꎬandalsogivesadetaileddescriptionofitsapplication.Keywords:BaculovirusꎻGenomicsꎻFunctionalgenesꎻApplication㊀㊀杆状病毒属于杆状病毒科(Baculoviridae)ꎬ是一类寄生于节肢动物(Arthropoda)的专一性病原微生物ꎬ其宿主主要是鳞翅目(Lepidoptera)㊁膜翅目(Hymenoptera)和双翅目(Diptera)的昆虫ꎮ已经完成测序的基因组大小为80~180kb不等ꎬ编码89~181个开放阅读框(ORF)[1]ꎬ被包裹在长度为230~385nm㊁直径为40~60nm的杆状核衣壳中[2 ̄3]ꎮ目前已从800多种昆虫中分离鉴定出600多种杆状病毒[4]ꎮ杆状病毒在其复杂的复制周期中产生2种不同类型的病毒粒子:出芽型病毒(BuddedvirusꎬBV)和包涵体型病毒(Occlusion ̄derivedvirusꎬODV)[5]ꎮ2种病毒粒子在病毒感染过程中的作用存在明显差异ꎬBV是杆状病毒在昆虫体内传播或在培养细胞中传播所必需的ꎬ而ODV在杆状病毒经口感染宿主过程中发挥重要作用[6]ꎮ杆状病毒可根据包涵体的形态特征分为2类:多角体病毒(Nucleopolyhedro ̄virusꎬNPV)和颗粒体病毒(GranulovirusꎬGV)[7]ꎮNPV和GV形态存在明显差异ꎬNPV包涵体包埋多个病毒粒子ꎬ呈不规则多角体形状ꎬ而GV仅仅包埋1个病毒粒子ꎬ呈圆形或卵圆形ꎮ其中ꎬNPV根据病河南农业科学第47卷毒粒子囊膜内核衣壳的数目又划分为单粒包埋型核型多角体病毒(SNPV)和多粒包埋型核型多角体病毒(MNPV)ꎮ感染鳞翅目昆虫的NPV又根据BV中是否含有GP64蛋白分为2类:GroupⅠ和GroupⅡ[8]ꎮGroupⅠ的NPV利用GP64作为BV的融合蛋白ꎬ而GroupⅡ的NPV由于缺少gp64基因ꎬ由F蛋白代替作为BV的融合蛋白ꎮ2006年Jehle等[9]基于基因组特征将杆状病毒分为4个属:α杆状病毒属(Alphabaculovirusꎬ感染鳞翅目昆虫的NPV)㊁β杆状病毒属(Betabaculovirusꎬ感染鳞翅目昆虫的GV)㊁γ杆状病毒属(Gammabaculovirusꎬ感染膜翅目昆虫的NPV)㊁δ杆状病毒属(Deltabaculovirusꎬ感染双翅目昆虫的NPV)ꎮ杆状病毒杀虫剂与传统农药相比ꎬ有着宿主专一性强㊁环境兼容性好㊁对人畜无害㊁同时在环境中存活时间长等优势ꎬ是未来农药理想的发展方向[10]ꎮ除了在生物农药中的应用ꎬ昆虫杆状病毒表达系统已经被广泛应用于外源基因的表达ꎬ相对于原核表达系统和真核表达系统具有产物后加工好㊁成本低廉等优点ꎬ因而广泛应用于商业领域如生物医药㊁疫苗研发等方面ꎮ杆状病毒除了以上2个方面的应用ꎬ还可以应用于哺乳动物基因转移载体㊁表面展示系统以及病毒样颗粒疫苗制备ꎮ鉴于此ꎬ综述了杆状病毒基因组学研究进展ꎬ以促进对杆状病毒结构和功能的了解ꎬ为更好地开发和利用杆状病毒提供借鉴ꎮ1㊀杆状病毒基因组1.1㊀基因组特征自从1994年Ayres等[11]报道苜蓿银纹夜蛾核型多角体病毒(Autographacalifornicamultiplenucle ̄opolyhedrovirusꎬAcMNPV)C6株的全基因组序列以来ꎬ随着分子生物学技术手段的飞速发展ꎬ已有73种杆状病毒全基因组被测定ꎬ包括45种α杆状病毒㊁22种β杆状病毒㊁1种δ杆状病毒㊁3种γ杆状病毒和2种未分类病毒(表1)ꎮ通过对不同杆状病毒基因组比较发现ꎬ其基因组大小介于80~180kbꎬG+C含量在29%~58%ꎬ全长大于50个氨基酸的ORF有89~181个ꎮ这些ORF几乎均匀地分布在基因组DNA的2条链上ꎬ转录方向没有偏好性ꎬ基因之间的基因间序列非常短ꎬ甚至基因之间有重叠ꎮ非编码区占10%左右ꎬ主要由基因启动子序列㊁基因上游或下游非编码区和同源重复区(Homologousregionsꎬhrs)组成ꎮ表1㊀GenBank数据库中已注册的杆状病毒基因组信息病毒属病毒GenBank登录号大小/bpORF数量/个G+C含量/%年份AlphabaculovirusAdhoNPVNC_00469011322012535.62003AdorNPVNC_01142311172412135.02008AgipNPVNC_01134515512216348.62008AgseNPV-ANC_00792114754415345.72006AgseNPV-BNC_02596014898115045.62014AnpeNPVNC_00803512662914753.42006AgMNPV-37NC_03176113185515644.52016AgMNPV-2DNC_00852013223915844.52015ApciNPVNC_01850412387611733.42012AcMNPVNC_00162313389415440.71994BmNPVNC_00196212841313640.41996BusuNPVNC_02344212042012736.82014CapoNPVNC_03024012805813039.72016ChfuDEFMNPVNC_00513713116014945.82003ChfuMNPVNC_00477812959314650.12003ChmuNPVNC_02317712468814850.02014ChroNPVNC_02192412905214948.62013ChchNPVNC_00715114962215139.12005ClbiNPVNC_00829313545413937.72006CoveMNPVNC_02643012576713842.92015EcobNPVNC_00858613120412637.62006EppoNPVNC_00308311858413640.72001EupsNPVNC_01263914129113940.42009HearNPVNC_00309413075913738.92001HespNPVNC_02192314063313738.12013HycuNPVNC_00776713295914845.120062㊀第9期梁振普等:昆虫杆状病毒基因组学研究进展续表1㊀GenBank数据库中已注册的杆状病毒基因组信息病毒属病毒GenBank登录号大小/bpORF数量/个G+C含量/%年份LafiNPVNC_02692215798913543.72015LeseNPVNC_00834816804114948.62006LydiMNPVNC_00197316104616357.51998LyxyMNPVNC_01395315634415753.42010MbMNPVNC_02368115271015939.92014MacoNPV-ANC_00352915506016941.71997MacoNPV-BNC_00411715848216840.02002MaviMNPVNC_00872511195312638.62006OrleNPVNC_01027615617913539.92008OrpsMNPVNC_00187513199515255.11997PespNPVNC_02462515111013853.32014PsinSNPVNC_02626813913214139.32015SpexMNPVNC_00216913561113943.71999SpfrMNPVNC_00901113133014340.22007SpliNPVNC_00310213934214142.72001SpliNPV-ⅡNC_01161614863414745.02008SujuNPVNC_02863613595213138.72015ThorNPVNC_01994513297814537.92013TrniSNPVNC_00738313439414539.02005BetabaculovirusAdorGVNC_0050389965711934.52003AgseGVNC_00583913168013237.22004ChocGVNC_00816810471011632.72006ClanGVNC_01539810148712344.42011CaLGVNC_02264610181812246.72013CnmeGVNC_02930411124611835.22016CrleGVNC_00506811090712932.42003CypoGVNC_00281612350014343.22001DisaGVNC_0284919839212529.72015EpapGVNC_01887511908213241.52012ErelGVNC_02525710275913038.72014HearGVNC_01024016979417940.82008MospGVNC_02999613427214438.32016MyunGVNC_03378014451015349.92017PhopGVNC_00406211921713035.72002PiraGVNC_01379710859212033.22010PlinGVNC_03225511253612344.22016PlxyGVNC_00259310099912040.72000PsunGVNC_01377217667718339.82010SpfrGVNC_02651114091314646.22015SpliGVNC_00950312412113638.82007XecnGVNC_00233117873318140.72000DeltabaculovirusCuniNPVNC_00308410825210950.92001GammabaculovirusNeabNPVNC_008252842649333.52006NeleNPVNC_005906817559333.32004NeseNPVNC_005905864629033.72004UnclassifiedPeluSNPVNC_02792313283114539.62015BaculoviridaeUrprNPVNC_02999710566712434.82016㊀注:所有数据均来自https://www.ncbi.nlm.nih.gov/genomes/GenomesGroup.cgi?taxid=10442ꎮ1.2㊀核心基因尽管不同种杆状病毒基因组存在基因组成的多样性ꎬ但研究发现ꎬ有1套相对保守的基因存在于目前已测序的杆状病毒基因组中ꎮ2012年Garavaglia等[12]研究发现37个杆状病毒核心基因ꎮ2017年Javed等[13]报道了第38个核心基因pif7(ac110)ꎮ目前ꎬ杆状病毒的核心基因数目为38个ꎬ具体分类和名称见表2ꎮ按照核心基因的功能可以分为五大类:复制ꎬ转录ꎬ包装㊁装配和释放ꎬ口服感染ꎬ与宿主细胞相互作用ꎮ在核心基因编码产物中ꎬ大约1/2是参与衣壳和ODV囊膜组成以及感染幼虫所必须3河南农业科学第47卷的蛋白质ꎮ其他大部分参与DNA的复制或加工ꎬ或者与晚期或极晚期转录有关ꎮ这些核心基因因其重要性在长期进化中得以保留ꎬ并成为杆状病毒的重要标志[14]ꎮ随着研究的深入也许会发现更多的核心基因ꎬ因为病毒许多共有的基因在进化过程中发生了突变而没有被分析出来ꎮ表2㊀杆状病毒核心基因及分类基因功能㊀㊀㊀㊀㊀㊀㊀㊀㊀㊀核心基因复制lef-2(Ac6)㊁lef-1(Ac14)㊁dna-pol(Ac65)㊁heli ̄case(Ac95)转录p47(Ac40)㊁lef-8(Ac50)㊁lef-9(Ac62)㊁lef-4(Ac90)㊁lef-5(Ac99)口服感染pif-0/P74(Ac138)㊁pif-1(Ac119)㊁pif-2(Ac22)㊁pif-3(Ac115)㊁pif-4(Ac96)㊁pif-5(Ac148)㊁pif-6(Ac68)㊁pif7(ac110)包装㊁装配和释放Ac53㊁vp1054(Ac54)㊁Ac66㊁vlf-1(Ac77)㊁Ac78㊁gp41(Ac80)㊁vp91/p95(Ac83)㊁vp39(Ac89)㊁p33(Ac92)㊁Ac93㊁p25(Ac94)㊁38k(Ac98)㊁p6.9(Ac100)㊁bv/odv-c42(Ac101)㊁p45(Ac103)㊁odv-ec43(Ac109)㊁alk-exo(Ac133)㊁p49(Ac142)㊁odv-e18(Ac143)与宿主相互作用Ac81㊁odv-ev27(Ac144)2㊀杆状病毒功能基因组学2.1㊀RNA转录相关基因杆状病毒基因组的转录表达是按时序进行的ꎮ根据杆状病毒基因在病毒复制过程中的表达时间可分为极早期㊁早期㊁晚期和极晚期[15]ꎮ早期基因的合成依赖宿主RNA聚合酶Ⅱ识别和转录ꎬ而晚期基因则是病毒编码的RNA聚合酶转录[16]ꎮ转录活化因子IE-1与杆状病毒基因组中的hrs相互作用形成二聚体ꎬ该二聚体可与宿主的转录系统相互作用从而促进早期基因的转录ꎮ杆状病毒晚期基因利用的RNA聚合酶ꎬ由4个转录晚期和极晚期基因的亚基构成(LEF-4㊁LEF-8㊁LEF-9和P47)[16]ꎮLEF-4是一种参与RNA加帽的酶ꎮ在LEF-8的C端发现很多物种RNA聚合酶的保守基序ꎬ它编码RNA聚合酶的催化位点[17]ꎮLEF-9存在与RNA聚合酶β亚基同源的基序ꎬ编码酶活化中心Mg2+结合位点[18]ꎮP47是RNA聚合酶中较小的亚基ꎬ与其他RNA聚合酶没有同源性[19]ꎮLEF-5和VLF-1也和晚期基因的转录相关ꎮ研究发现ꎬLEF-5可与自身相互作用且C端含有一段与RNA聚合酶Ⅱ延长因子TFIIS类似的结构域ꎮ通过对LEF-5进行纯化分析表明ꎬLEF-5的功能是起始转录ꎬ而非延伸因子[20]ꎮVLF-1与多角体蛋白和P10的转录相关ꎮVLF-1与多角体和P10基因启动子下游的 爆发序列 结合引发它们的大量表达[21]ꎮ其他与晚期基因表达有关的基因为lef-6㊁lef-10㊁lef-12和39kꎮ此外ꎬ甲基转移酶(Ac69)㊁ADP-核糖焦磷酸水解酶㊁LEF-2和PK1也可能参与了晚期基因的表达ꎮ2.2㊀DNA复制相关基因病毒DNA复制相关基因在病毒生命周期中起着关键的作用ꎮ杆状病毒DNA的复制是由顺式作用元件㊁反式作用因子及其宿主细胞提供的复制因子共同作用而完成的ꎮ顺式作用元件是指病毒DNA复制起点ꎬ它包括同源重复序列和非同源重复序列2类ꎮ反式作用因子是病毒表达产物ꎬ该产物是病毒DNA复制所必需的ꎮ瞬时复制试验证明ꎬdna-pol㊁helicase(p143)㊁ie-1㊁lef-1㊁lef-2和lef-3是DNA复制的必需基因ꎮIE-1是一种多功能调节蛋白ꎬ它能够反式激活多个早期基因和晚期基因的启动子ꎬ且其酸性激活区是病毒DNA复制所必需的[22]ꎮLEF-1具有DNA引物酶活性ꎬ可与LEF-2相互作用[23]ꎮLEF-2是一种DNA引物酶协助因子ꎬ也是DNA复制所必需的[24]ꎮLEF-3是一种单链结合蛋白(SSB)ꎬ也可运送病毒DNA解旋酶进入宿主细胞核中[25]ꎮP143是病毒编码的DNA解旋酶ꎬ具有ATP酶和解旋酶的活性ꎮdna-pol编码了病毒的DNA聚合酶ꎬ具有3ᶄ 5ᶄ外切核酸酶活性ꎮP35㊁IE-2㊁PE38㊁LEF-7㊁VLF-1作为激活因子刺激病毒DNA的复制ꎮAN具有5ᶄ 3ᶄ核酸外切酶和核酸内切酶的活性ꎬ参与DNA的重组[26]ꎮ2.3㊀主要结构蛋白基因将杆状病毒DNA转染至相应细胞可以正常产生有感染性的子代病毒ꎬ病毒的复制和增殖并不受影响ꎮ因此ꎬ推测病毒结构蛋白对早期基因转录和病毒DNA复制并不是必需的[27]ꎮ杆状病毒结构蛋白组成的复杂结构相当于一个将病毒基因组转入宿主细胞中的运载系统ꎬ是通过对宿主昆虫的长期适应进化演变而成的ꎮ有些结构蛋白还具有其他酶活性ꎬ能够促进和帮助病毒在细胞内的复制ꎮ杆状病毒产生的2种不同类型的病毒粒子BV和ODVꎬ具有相同的核衣壳结构但囊膜组分不同(图1)ꎮ表3详细列出了杆状病毒的主要结构蛋白基因ꎬ其主要编码包涵体蛋白㊁BV和ODV的囊膜蛋白及核衣壳相关蛋白组分ꎬ其中后者大部分是BV和ODV共有的ꎮ4㊀第9期梁振普等:昆虫杆状病毒基因组学研究进展图1㊀BV和ODV的结构与主要蛋白质构成表3㊀杆状病毒的主要结构蛋白基因蛋白质分类基因名称敲除后的影响包涵体蛋白polyhedrin可稳定存在pe可稳定存在enhancin可稳定存在P10可稳定存在alkalineproteasesBV囊膜蛋白gp64无法稳定存在F-Protein可稳定存在ꎬ但杀死幼虫的时间延长V-ubiquitin可稳定存在ꎬ但BV产量减少e26可稳定存在ODV囊膜蛋白e26可稳定存在e25无法稳定存在ec43无法稳定存在e18无法稳定存在e66可稳定存在vp91可稳定存在ac145可稳定存在ꎬ但经口感染能力降低p74可稳定存在ꎬ没有经口感染能力pif-1可稳定存在ꎬ没有经口感染能力pif-2可稳定存在ꎬ没有经口感染能力pif-3可稳定存在ꎬ没有经口感染能力pif-4可稳定存在ꎬ没有经口感染能力pif-5可稳定存在ꎬ没有经口感染能力pif-6可稳定存在ꎬ没有经口感染能力核衣壳相关蛋白p6.9无法稳定存在vp39无法稳定存在gp41无法稳定存在38k无法稳定存在p49无法稳定存在ec27无法稳定存在ac66受到严重影响p33无法稳定存在vp1054无法稳定存在vlf-1无法稳定存在vp80无法稳定存在pp78/83无法稳定存在p24可稳定存在3㊀杆状病毒的应用杆状病毒的分子生物学研究促进了对病毒组装及感染周期的认识ꎬ具有重要的理论意义ꎬ同时也具有重要的实践意义ꎮ目前ꎬ杆状病毒已广泛用作生物杀虫剂和外源蛋白表达载体ꎮ此外ꎬ杆状病毒作为基因治疗载体也越来越受到重视ꎮ3.1㊀杀虫剂昆虫杆状病毒杀虫剂的研究始于19世纪ꎮ目前ꎬ已在20多个国家登记㊁生产和应用了近40种病毒杀虫剂[28]ꎮ野生型杆状病毒杀虫剂具有对人畜和天敌无害㊁宿主特异性高㊁无化学残留㊁对环境安全㊁可自然传播等优点ꎮ然而ꎬ杆状病毒的杀虫速度慢㊁杀虫谱窄等缺点限制了其推广ꎮ为了克服杆状病毒的缺点ꎬ科学家开始尝试用各种分子生物学手段进行改造以获得重组杆状病毒ꎮ近年来ꎬ该方面的研究主要集中在以下几个方面:(1)缺失内源基因增加杀虫效果ꎮ如将AcMNPV中的egt基因缺失ꎬ重组病毒会减少昆虫的摄食ꎬ从而提高感染昆虫的死亡率[29]ꎮ(2)插入外源基因提高杀虫速度㊁降低害虫对病毒的抗性ꎮ如插入昆虫专性神经毒素基因㊁昆虫保幼激素酯酶基因㊁增效蛋白基因㊁蛋白酶基因㊁利尿激素基因等构建的重组病毒ꎬ大大缩短了害虫的发病时间ꎮ(3)内源基因过量表达ꎮ如过量表达vfgf基因的重组AcMNPV明显加速了寄主死亡[30]ꎮ(4)对宿主范围基因操作来拓宽杆状病毒宿主域ꎮ如将源自舞毒蛾核型多角体病毒(Lymant ̄riadisparmultiplenucleopolyhedrovirusꎬLdMNPV)的hrf-1基因插入AcMNPV中ꎬ重组AcMNPV病毒可以在舞毒蛾细胞中复制[31]ꎮ随着对重组病毒的深入研究ꎬ克服了杆状病毒的缺点ꎬ也为增强病毒的杀虫功能提供了可能ꎮ3.2㊀表达载体昆虫杆状病毒表达载体系统(Baculovirusex ̄pressionsystemꎬBEVS)是基因工程四大表达系统之一ꎬ目前市场上商业化的杆状病毒载体有Ac-Bac ̄mid(来源于苜蓿银纹夜蛾核型多角体病毒基因组)和Bm-Bacmid(来源于家蚕核型多角体病毒基因组)[32 ̄33]ꎮ它们在实际应用过程中具有产物表达水平高ꎬ表达产物可进行翻译后加工ꎬ外源蛋白的免疫原性㊁抗原性和功能等生物活性与天然蛋白质相似ꎬ大规模生产基因工程产品成本低等优点ꎮ自1983年人们利用该表达系统首次成功表达人干扰素-β后ꎬ相继成功表达了人生长因子㊁人2ꎬ6-唾液酸转移酶㊁人粒-巨噬细胞集落刺激因子和人抗白蛋白免疫蛋白G1等蛋白[34 ̄37]ꎮ目前ꎬ美国FDA(食品和药物管理局)已经授权上市9种BEVS来源的产品ꎬ其中Cervarix®㊁Provenge®㊁Glybera®和Flublok®疫苗分别用于预防和治疗子宫颈癌㊁前列腺癌㊁脂蛋白酶缺乏遗传病和流感ꎻPorcilis®Pesti㊁BAYOVAC5河南农业科学第47卷CSFE2®㊁Circumvent®PCV㊁IngelvacCircoFLEX®和Porcilis®PVC主要用于预防猪疫病[38]ꎮ昆虫杆状病毒表达载体系统可广泛应用于生物学㊁医学㊁农业等不同领域表达蛋白质ꎬ为人类服务ꎮ3.3㊀基因治疗基因治疗是一种通过基因转移载体将外源正常基因导入靶细胞以纠正基因的缺陷或者发挥治疗作用ꎬ从而达到治疗疾病目的的生物医学技术ꎮ杆状病毒相比于其他病毒转移载体具以下优点:(1)基因容量大ꎬ可容纳1个或多个外源基因ꎮ(2)安全性高ꎮ由于杆状病毒的天然宿主昆虫是节肢动物ꎬ与人及其他哺乳动物的亲缘关系较远ꎬ即使它进入哺乳动物细胞ꎬ其基因组也不能在细胞中复制ꎮ(3)表达蛋白质效率高ꎮ杆状病毒表达载体可同时携带多个启动子ꎬ这些启动子能各自驱动下游基因的高水平表达ꎮ(4)翻译后修饰能力与哺乳动物细胞相似ꎮ因此ꎬ杆状病毒在基因治疗中具有广阔的应用前景ꎬ开辟了杆状病毒应用的新领域ꎮ目前杆状病毒可用于治疗多种疾病ꎬ包括癌症㊁感染性疾病㊁遗传性疾病㊁心血管疾病和自身免疫性疾病等ꎬ其中癌症治疗是该技术的主要研究和应用领域[39]ꎮ4㊀小结随着生态环保概念深入人心ꎬ昆虫杆状病毒将具有更大的发展前景ꎬ不仅为农林生产提供新的生物农药ꎬ而且为研究宿主功能基因提供重要的基因工程载体[40]ꎮ杆状病毒作为杀虫剂ꎬ杀虫速度慢和宿主域窄是其缺点ꎬ同时也是其优点ꎮ杀虫速度慢是因为病毒是一种简单生命ꎬ要在虫体内完成其复制周期ꎬ害虫难以对其产生抗性ꎻ正是因为宿主域窄ꎬ所以它们对非靶标生物是安全的ꎮ在应用基础研究上ꎬ可以针对具体情况构建重组型病毒或者添加杀虫增效剂[41]ꎮ作为表达系统ꎬ其外源蛋白表达量低和蛋白质表达后修饰存在差异ꎬ也可以通过优化表达系统进行完善ꎮ越来越多杆状病毒基因组测序和功能基因研究的完成ꎬ为病毒杀虫剂的开发提供了理论支持ꎬ也为深入了解杆状病毒的侵染机制㊁分子进化和病毒与宿主的特异性互作关系提供重要的理论依据ꎮ参考文献:[1]㊀vanOersMMꎬVlakJM.Baculovirusgenomics[J].Cur 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昆虫杆状病毒的研究与应用
Ab ta t sr c :Ba uo i ssa ea t r p d s e icvr sst a a eln e n u d a ilgc la e t O c lvr e r rh o o p cf iu e h th v o g b e s sboo i g n st u i e a c n r l h n e t ta kn r p pa t.Th y aeas h e mp n n so n c—a uo i se o to eis csa tc ig co ln s t e r l t ek y c o o o e t fis t c lvr x— e b u
pes ns s m ( E ) whc a e n f h o rma x rsi y t e ee gne— rsi yt o e B VS , i h sb no eo efu i ep es n sse i gn n ier h e t n o ms n
ig.Ad iin l n dt al o y.b c lvr sh sb e e g n r se e true ng n h rp u O i d a uo i a e n an w e eta frv co sd i e et ea y d et t d — u n s v n a e ft ee te l ih e p es n o o eg e e n en o —e rd c et r a tg so h x rmey hg x rsi ff rin g n sa d b i n nr po u e v co .Th d o g ea — v n e p l aino a uo i ssa erve d i hsp p r a c i a pi t fB c lvr e e iwe n t i a . s n c o u r e
昆虫杆状病毒表达系统的研究进展综述
基因工程制药综述昆虫杆状病毒表达系统的研究进展综述体外基因表达系统包括原核细胞系统和真核细胞系统。
原核细胞系统主要是大肠杆菌细胞, 它操作简便、周期短、收益大及表达产物稳定, 但是表达基因的相对分子质量 (Mr)有限, 不宜过大, 且不能对表达产物进行一些翻译后加工、修饰。
真核细胞系统包括 CHO 等哺乳动物细胞、酵母细胞和昆虫细胞等。
昆虫细胞表达系统(即杆状病毒表达系统)具有独特的生物学特性, 日益受到人们的重视。
1 杆状病毒的生物学特性杆状病毒只来源于无脊椎动物, 虽然已发现 600 多种杆状病毒, 但进行分子生物学研究的不到 20 种。
杆状病毒的基因组为单一闭合环状双链 DNA 分子, 大小为 80~ 160 kb, 其基因组可在昆虫细胞核复制和转录[1]。
DNA 复制后组装在杆状病毒的核衣内, 后者具有较大的柔韧性, 可容纳较大片段的外源 DNA 插入, 因此是表达大片段 DNA 的理想载体。
其中, 用作外源基因表达载体的杆状病毒, 目前仅限于核型多角体病毒( nuclear polyhedrosis virus, NPV)。
该病毒颗粒在细胞内可由多角体蛋白包裹形成长度约 1~ 5 μm 的包含体病毒 , 呈多角体形状[2]。
核型多角体病毒有两种形式[2] :一种为包含体病毒( occluded virus, OV) , 另一种则为细胞外芽生病毒( budded virus, BV)。
它们在病毒感染中扮演的角色不同, 包含体病毒是昆虫间水平感染的病毒形式, 昆虫往往是食入污染OV 的食物后引起感染。
包含体病毒外层裹了一层蛋白晶体, 即 Mr 为 29 000 的多角体蛋白, 它对病毒的水平感染起以下作用:①保护病毒颗粒在外界传播过程中免遭环境因素的破坏而失活。
②保证病毒颗粒在适当的位置释放, 引起感染。
昆虫中肠上皮局部的强碱性环境( pH=10. 5) , 可使病毒颗粒释放蛋白酶溶解多角体[3] 。
昆虫杆状病毒表达系统研究进展及其在疫苗中的应用
体 B a c P A K 6的重组 效 率 较高 , 高 达
8 0 % 以 上 具有 重要 的应 用 价 值 。
杆状 病 毒 载体 系统 另 一 关 键 性 的
关键 词 杆状病毒表达 系统
疫苗
蛋 白表达
改进 是杆状 病毒 穿梭 载体 b a c mi d的 构 建 。 使得 杆状 病 毒 基 因可 以 修 饰 并
中 图分 类 号 : ¥ 8 5 2 . 4
ห้องสมุดไป่ตู้
文 献标 志 码 : B
文章 编号 : 1 0 0 8 - 0 4 1 4 ( 2 0 1 4 ) 1 0 — 0 0 4 2 - 0 2
摘 要 昆虫杆状病毒载体表迭 系统作为四 大表达 系统之 一,已广泛应用于
重组 蛋 白的 合 成 。 综 述 了该 病 毒 的基 本 特 性 、 杆 状 病 毒 表 达 载 体 系统 、 该 系统 表 达 的 病 毒 疫 苗等 应 用前 景 。
一
是 通 过 亲 本 病 毒 的 线 性 化 大 大 提 高
( 四川 省 动 物 疫 病预 防控 制 中心 , 四川 成 都 6 1 0 0 4 1 )
重 组 病 毒 筛 选 效率 。如 P o s s e e等 设 计
的重 组 一 救 活 可 线性 化 A c N P V 病 毒 载
现该 V L P还 可 以 作 为 多 重 抗 原 表 位 的载体 , 产 生 佐 剂 的 效用 ㈣。
杆状 病 毒 粒 子 由杆 状 核 衣 壳 和 包 被其 的二 层 脂 蛋 白囊 膜 组 成 ,而 核 衣
壳 则 是 由 衣 壳 蛋 白和 由 病 毒 D N A 分
子 与碱 性 蛋 白构 成 的髓 核 组 成 。杆 状
昆虫杆状病毒及其杀虫剂的研究
Insect Baculovirus
FangYang
花生苜蓿银纹夜蛾
萝卜银纹夜蛾
棉花银纹夜蛾
菠菜银纹夜蛾
大豆银纹夜蛾
昆虫是地球上最庞大的生物类群,被命名 发现的有100万种,可能有1000万种
迄今发现有1600多种昆虫能被病毒感染
已经报道的昆虫病毒超过1300多种
已经被测基因组全序列的昆虫杆状病毒有36种
信息示踪的白蚁防治
引诱白蚁的人工 示踪信息素
+
灭杀白蚁的微生 物真菌
• 武大绿洲 杨康为菜青虫颗粒体病毒和苏云金杆菌复配 秀田蛾克为AcMNPV和苏云金杆菌复配 茶园为茶尺蠖核型多角体病毒、苏云金杆菌和病 毒增效因子复配 菜园为甜菜夜蛾核型多角体病毒和高效氯氰菊酯 复配 来瘟死为甜菜夜蛾多角体病毒和苏云金杆菌复配 美林为松毛虫质型多角体病毒和苏云金杆菌复配, • 安徽绩溪奥绿公司的攻蛾为AcMNPV和甲氨阿维 复配, 茶喜为油桐尺蠖核型多角体病毒和苏云金杆菌复 配 • 天罡公司小菜蛾病毒生物杀虫剂
改进途经:
1.制剂选择(悬浮 剂、可湿性粉剂 、水分散粒剂) 2.复配(BT,昆虫 信息素,氟啶脲 ,甲氨阿维, ) 3.防紫外(光增白 剂) 4.施药时间
高效氯氰菊酯
应用举例
• 新型生物灭蟑饵剂(武大绿洲“毒力岛” )是一种新概念的控制城市卫生害虫蟑螂 的高新技术产品。已经获得国家颁发 的三 证产品,已批量上市。 • 特点;结合了蟑螂引诱信息素和蟑螂病毒
杆状病毒杀虫剂前景分析
1. 优点
2. 限制因素 3. 工程杆状病毒的杀虫剂研究战略 4. 杆状病毒杀虫剂的剂型加工和应用
优点
杆状病毒之所以备受关注,主要原因有以下 几点: 1. 毒力高,能在自然环境中形成流行病, 具有持久控制虫害的能力; 2. 宿主的专一性,不会造成生态失衡,能 获得较大的生态效益; 3. 可造性好,特别是随着EBVs的研究深入 ,重组病毒杀虫剂的研发前景光明。
昆虫杆状病毒egt基因研究进展
昆虫杆状病毒egt基因研究进展王海萍;吴小锋【摘要】杆状病毒是一类大分子的双链环状DNA病毒,其编码的蜕皮甾体尿苷二磷酸葡萄糖基转移酶基因(egt)在感染昆虫后表达产生EGT酶.EGT酶的催化使宿主体内的蜕皮激素失活,阻止幼虫蜕皮,从而利于病毒自身的繁殖.已有研究发现,敲除egt基因的杆状病毒感染的昆虫,死亡时间缩短,向上攀爬行为减弱.最近的研究还表明转egt基因的家蚕蚕蛹发育迟缓.从分子水平对EGT酶作用机制及其与宿主蛋白互作关系进行探索,将加深我们对杆状病毒调控宿主生长发育和行为变化策略的认识,有利于农业生产应用(特别是蚕丝业,如鲜茧缫丝),且为新型高效生物杀虫剂的研发提供新思路.【期刊名称】《蚕桑通报》【年(卷),期】2017(048)001【总页数】4页(P10-13)【关键词】杆状病毒;egt基因;宿主昆虫;生长发育;行为【作者】王海萍;吴小锋【作者单位】浙江大学动物科学学院,浙江杭州 310058;浙江大学动物科学学院,浙江杭州 310058【正文语种】中文【中图分类】Q786杆状病毒是一类具有双链、环状、超螺旋基因组的病毒,被包裹在杆状核衣壳中,也是已知昆虫病毒中的最大类群,宿主域仅限于无脊椎动物,特别是鳞翅目昆虫。
杆状病毒分为α、β、γ和δ四个属,其中根据病毒表面囊膜蛋白GP64或F蛋白的差异,进一步将α属分为GroupⅠ和GroupⅡ两个不同的类别。
杆状病毒的复制周期十分复杂,产生两种类型的病毒粒子:一种是包涵体衍生型病毒粒子(oc⁃clusion-derived virus,ODV),保证病毒在昆虫宿主体外的稳定及对中肠细胞的感染,引起病毒原发性感染周期;另一种是出芽型病毒粒子(budded virus,BV),在昆虫体内细胞与细胞之间传播,引起全身性感染[1]。
杆状病毒egt基因是非必需的早期基因,同时也是最早被发现的在个体水平调控感染宿主的基因。
egt基因编码的蜕皮甾体尿苷二磷酸葡萄糖基转移酶(ecdysteroid UDP-glucosyltransferase,EGT),能够催化葡萄糖基从UDP-葡萄糖转移到蜕皮激素上,使蜕皮激素失活,阻止幼虫的蜕皮,从而使幼虫继续摄食,导致昆虫体重增加,最终使病毒产量提高[2]。
利用昆虫杆状病毒载体表达人碱性成纤维细胞生长因子
值 8 。重组病毒在感染后 4 8 h开始 出现一相对分子质量 为 2 3 0 0 0大小的特异带 , 感染 后 7 2 h 蛋 白量 明显增加 , 9 6 h蛋 白量 达 到最 大 , 1 2 0 h蛋 白量开始减少 。在正常 昆虫 S f 2 1细胞 的对 照中未见该蛋 白带 。We s t e r n b l o t i n g 显示 目的蛋 白条带 与人 b F G F抗
【 摘要】 目的 利用 B a c — t o - B a t 杆状病毒表达系统 , 将人碱性成纤维细胞生长因子( h u m a n b a s i c i f b r o b l st a g r o w t h f a c t o r , h b F G F )
基 因进行 表达 , 并检测重组蛋 白的特异性 及生物学活性。方法 将人 b F G F的 c D N A克隆至杆状病毒 转座载体 p F st a B a c H T b中, 并转化 到含穿 梭载体 B a c m i d的感受 态细菌 D H1 0 B a c中, 获得 重组 B a c m i d / b F G F ; 纯化 D N A后 , 转染 昆虫 细胞 S f 2 1 , P C R鉴定重
f i b r o b l st a g r o w t h f a c t o r ( h b F G F )i n i n s e c t c e H s .M e t h o d s T h e h u m n a b F G F c D N A W s a c l o n e d i n t o t h e t r a n s f e r v e c t o r p F st a B a c H r I 1 ) . r h e r e c o m b i n a n t p 1 sm a i d W s a i n t r o d u c d e i n t o E . c o l i D HI O B a e w h i c h i n c l u d e d a s h u t t l e v e c t o r . B a c m i d . e c u l t u r e d S f 2 l i n s ct e c e l l s
《昆虫杆状病毒载体》课件
成本。
02
CATALOGUE
昆虫杆状病毒载体的构建与改造
杆状病毒基因组的组成与结构
杆状病毒基因组由一个环状双 链DNA分子组成,大小通常在
80-180kb之间。
基因组染所需的蛋白。
杆状病毒基因组结构复杂,具 有多个转录单位和调节序列。
杆状病毒基因的克隆与表达
局限性
杆状病毒载体也存在一些局限性,例如可能会引起宿主免疫反应、潜在的基因突变和重组风险等。此外,杆状病 毒载体的制备和纯化过程较为复杂,成本较高,限制了其在临床上的广泛应用。
杆状病毒载体在基因治疗中的临床试验与案例分析
临床试验
目前,杆状病毒载体已经在多种疾病的治疗中进行了临床试验,包括遗传性疾病、肿瘤 和病毒感染等。其中,一些试验已经取得了较好的治疗效果,但仍需要进一步的研究和
特性
具有宿主范围窄、对宿主细胞毒 性低、易于操作等优点,是研究 昆虫生理和疾病控制的重要工具 。
昆虫杆状病毒载体的应用领域
01
02
03
基因表达
利用昆虫杆状病毒载体将 外源基因导入昆虫细胞, 实现目的基因的高效表达 。
基因治疗
通过昆虫杆状病毒载体将 正常基因导入病变昆虫, 纠正基因缺陷,达到治疗 目的。
验证。
案例分析
以遗传性疾病为例,杆状病毒载体被用于治疗囊性纤维化、血友病和镰状细胞贫血等疾 病。通过将正常基因导入患者细胞,可以改善患者的症状和生活质量。此外,在肿瘤治
疗方面,杆状病毒载体也被用于抑制肿瘤生长和扩散,以及提高肿瘤免疫治疗效果。
04
CATALOGUE
昆虫杆状病毒载体在疫苗研发中的应用
安全性评价标准
评价杆状病毒载体的安全性,需 要制定相应的标准,如病毒的毒 力等级、免疫反应程度等,以确 保使用安全。
杆状病毒表达系统(昆虫细胞的培养及杆状病毒滴度测定)
昆虫细胞的培养
Atmosphere:air, 100%
Temperature:27.0—28.0 ℃
Primer-Forward(IFN-γ/IL-4/β-actin)
Primer-Reverse(IFN-γ/IL-4/β-actin) 2×SYBR Green Real-time PCR Master Mix cDNA ROX H2O
1µ l(10 µ M)
1µ l(10 µ M) 12.5 µ l 1µ l 0.05 µ l 9.45 µ l 总25 µ L
Subculturing:
pipetting across the monolayer scraping cell scrapers hitting the flask against the palm of your hand
Preservation:
90% serum, 10% DMSO 严格程序降温,-80 ℃过夜后转移液氮保存。
每次包被板子条件一致, 4 ℃ 16-18h。 方阵滴度确定最佳抗原包被浓度。
2. 血清样品不溶血,防止干扰结果。
3. 设置空白孔(不加血清),统计结果时,所有实验组的 OD值先减掉背景值,再计算比值和滴度。
中和抗体
微量中和实验技术
中和实验 固定血清—稀释病毒法(用的很少)
获得重组杆状病毒——转染Sf9 cells
1. 小提好的Bacmid DNA,置4 ℃不超过1周 2. 转染试剂:Cellfectin® ⅡReagent 3. 转染后细胞的形态变化
昆虫杆状病毒表达载体、构建方法及其应用[发明专利]
(19)中华人民共和国国家知识产权局(12)发明专利申请(10)申请公布号 (43)申请公布日 (21)申请号 201610334911.7(22)申请日 2016.05.19(71)申请人 武汉金开瑞生物工程有限公司地址 430206 湖北省武汉市东湖开发区高新大道818号高科医疗器械园B11号(72)发明人 沈鹤霄 华权高 马峰 徐春雷 (74)专利代理机构 北京华沛德权律师事务所11302代理人 房德权(51)Int.Cl.C12N 15/866(2006.01)C12N 15/66(2006.01)C12N 15/13(2006.01)C12N 15/12(2006.01)C12N 5/10(2006.01)(54)发明名称昆虫杆状病毒表达载体、构建方法及其应用(57)摘要本发明提供了昆虫杆状病毒表达载体、构建方法及其应用,所述昆虫杆状病毒表达载体包括含人抗体轻链Kappa保守区序列的昆虫杆状病毒表达载体I以及含人抗体重链IgG1保守区的昆虫杆状病毒表达载体II,所述表达载体I的序列如序列表SEQ ID 1所示,所述表达载体II的序列如序列表SEQ ID 2所示;还包括含α-2,3-唾液酸糖基转移酶ST3的昆虫杆状病毒表达载体III,所述表达载体III的序列如序列表SEQ ID 3所示。
所述昆虫杆状病毒表达载体可高效表达含重链和轻链的人源化抗体。
权利要求书2页 说明书7页序列表19页 附图1页CN 105925610 A 2016.09.07C N 105925610A1.昆虫杆状病毒表达载体,其特征在于:包括含人抗体轻链Kappa保守区序列的昆虫杆状病毒表达载体I以及含人抗体重链IgG1保守区的昆虫杆状病毒表达载体II,所述表达载体I的序列如序列表SEQ ID 1所示,所述表达载体II的序列如序列表SEQ ID 2所示;还包括含α-2,3-唾液酸糖基转移酶ST3的昆虫杆状病毒表达载体III,所述表达载体III的序列如序列表SEQ ID 3所示。
昆虫杆状病毒表达系统在动物疫苗研究的应用
试验研究LIVESTOCKANDPOULTRYINDUSTRYNo.6,2018昆虫杆状病毒表达系统在动物疫苗研究的应用杨旭东,朱庆贺,王 刚,王 爽,陈 曦,王观悦(黑龙江省兽医科学研究所,黑龙江齐齐哈尔161005)摘 要:昆虫杆状病毒表达系统(Insrctcellbaculovirusexpressionvectorsystem,IC-BEVS)是基因工程四大表达系统之一,它具有重组蛋白表达量高,能够在一个载体上表达多种蛋白,容纳较大片段的外源DNA插入,细胞培养易于大规模获得蛋白等特点。
在很多领域都有广泛的应用,文章旨在介绍其在动物疾病方面的研究进展。
关键词:昆虫;杆状病毒;表达系统;动物疾病中图分类号:S852.4 文献标识码:B DOI:10.19567/j.cnki.1008-0414.2018.06.005收稿日期:2018-05-18 引言杆状病毒表达系统自建立以来广泛应用于生物检测、疫苗生产、基因治疗等方面。
昆虫细胞-重组杆状病毒系统提供了一种蛋白质生产系统,生产可溶形式的重组蛋白,并能高效表达。
表达的蛋白质具有大多数的翻译后修饰的功能,因此产生的膜蛋白具有正确的折叠构象,这是该方法优于原核表达系统的主要特点[1]。
昆虫杆状病毒表达系统主要是针对杆状病毒构建载体,与哺乳动物细胞表达系统相比大大缩短了从基因克隆到蛋白表达的时间。
杆状病毒基因组较大,能够克隆大的DNA片段,从而能够表达复杂的蛋白质聚集体。
杆状病毒不能感染非昆虫来源的细胞,因此表达系统表达的重组蛋白对人和动物无害。
杆状病毒表达系统生物学杆状病毒(Baculovirus)因病毒呈杆状而得名,是一种有囊膜包裹的闭合环状双链DNA病毒。
杆状病毒主要包括核多角体病毒属和颗粒体病毒属,其中核多角体应用较广泛[2]。
目前报道杆状病毒能够感染600多种昆虫细胞,无脊椎动物的细胞是其宿主细胞。
在Genbank上,可以检索到多条完整的杆状病毒基因组序列,虽然不同种类杆状病毒基因组差别很大,但有近30个参与DNA复制、表达、病毒入侵及装配等基因编码有关的核心基因,在所有杆状病毒的基因组中高度保守。
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前言
昆虫杆状病毒表达系统是目前国内外十分推崇的真核表达 系统。利用杆状病毒结构基因中多角体蛋白的强启动子构 建的表达载体,可使很多真核目的基因得到有效甚至高水 平的表达。 具有高效表达、基因克隆容量大、重组病毒易于筛选、安 全性高、且有完备的翻译后加工修饰系统等特点,现已成 为基因工程四大表达系统之一。 利用该表达系统获得重组蛋白可用于药物开发、疫苗生产、 生物杀虫剂等多个领域。据文献统计,已有1000 余种 外源基因在昆虫杆状病毒表达系统中得到了成功地表达, 其中约有95% 的外源重组蛋白能够被正确的转译后加工 修饰,具有与天然蛋白相同的生物活性。
2.杆状病毒载体表达系统的特点
⑤安全性高:由于杆状病毒的天然宿主是昆虫,不能在哺乳动物 细胞内复制病毒DNA 以及增殖病毒,杆状病毒不会感染人。因 此对细胞的生理影响较哺乳类病毒载体要小,同时实验操作者的 自身安全也比较有保障。
现有研究也表明其启动子在哺乳动物细胞中没有活性,因此在表 达癌基因或有潜在毒性的蛋白质时可能优于其他表达系统。最新 研究发现,AcMNPV 病毒作为哺乳动物细胞基因转移载体,也 可以将外源基因导入哺乳动物的细胞,如人的肝细胞。这意味 AcMNPV 病毒可能成为哺乳动物基因治疗的媒介体,因此杆状 病毒有望在未来人类的基因治疗中得到应用。
2.杆状病毒载体表达系统的特点
②能进行翻译后的加工修饰:杆状病毒表达系统具有对蛋白质 完整的翻译后加工能力,包括糖基化、磷酸化、酰基化、信号 肽切除及肽段的切割和分解等,修饰的位点与天然蛋白在细胞 内的情况完全一致。
对比实验证明,在昆虫细胞发生的糖基化位点与哺乳动物细胞 中完全一致,但修饰的寡糖种类却不完全一样。这种不一致对 不同目的蛋白的活性影响不同,所以昆虫表达系统还可作为一 个研究糖基化对蛋白质结构与功能影响方面的理想模型。
1.2 昆虫细胞宿主
昆虫细胞在生物学、医学、农业等领域中被作为非常重要的 研究工具。 目前全世界建立的昆虫细胞系有800 多株,分别来源于鳞翅 目、双翅目、鞘翅目、蜚蠊目、直翅目、膜翅目、同翅目和 半翅目8 个目的170 余种昆虫,其中具有实际应用的细胞系 大部分来自鳞翅目和双翅目。 以昆虫杆状病毒为载体的昆虫细胞可成功、高效地表达外源 基因,生产具有重要药用价值和具备天然活性的重组蛋白。 因此,在众多昆虫细胞系中鳞翅目昆虫细胞系应用最为广泛。
多克隆位点:DNA载体序列上人工合成的一段序列,含有多个限制内切酶识别 位点。能为外源DNA提供多种可插入的位置或插入方案。 共转染:物理上不相连的基因被整合到同一整合序列并在同一转染细胞内表达 的现象。
1.1 杆状病毒载体
1.1.2杆状病毒载体的重组 ① 将极晚期基因( 如多角体基因及其边界区) 克隆入细菌的质粒 中 ② 消除其编码区和不合适的酶切位点 ③ 保留其5c端对高效表达必需的调控区 ④ 在下游引入合适的酶切位点供外源基因的插入,即得到转移载 体。 ⑤ 将要表达的外源基因插入其启动子下游 ⑥ 与野生型AcNPV DNA 共转染昆虫细胞 ⑦ 通过两侧同源边界区在体内发生同源重组,使多角体蛋白基因 被外源基因取代。
2.杆状病毒载体表达系统的特点
④基因容量大:昆虫杆状病毒的基因组为单一闭合环状双链 DNA分子,大小为80 ~ 200kb,其基因组可在昆虫细胞核中 复制和转录。DNA 复制后组装在杆状病毒的毒粒内,由于毒粒 具有较大的柔韧性,能包装较大的基因片段,可表达非常大 ( 100kb) 的外源性基因。因此是表达大片段DNA 的理想载体。 但目前尚无实验得知杆状病毒所能容纳的外源基因长度的上限。 我们感兴趣的另外一个特点是在昆虫杆状病毒载体内还可多基因 同时表达,具有在同一个感染昆虫细胞内同时表达多个外源基因 的能力。根据设计需要既可采用不同的重组杆状病毒同时感染细 胞的形式,也可在同一杆状病毒载体上同时克隆多个外源基因, 其表达产物之间可有蛋白质的相互作用或加工形成具有活性的异 源二聚体或多聚体。
1.1.3杆状病毒载体的筛选 为此,经过不断探索,在重组杆状病毒的筛选与鉴定方面取 得了半乳糖苷酶的蓝白筛选 2. 体外酶促定位重组 3.Bacmid 基因 5.Neo 基因
Bacmid
Luckow 等开发。快速、高效产生重组AcMNPV 病毒。取 杆状病毒( baculovirus) 和质粒( plasmid) 的英文字头 字尾命名为Bacmid,即杆状病毒质粒之意。 根据F因子载体原理,用类似于酵母体内重组的方法,构建了 一种新杆状病毒穿梭载体Bacmid。该载体可像质粒一样在 大肠杆菌中生长,又对鳞翅目昆虫细胞具有感染性。 Bacmid 含有F因子复制子( 可在大肠杆菌中复制) 、卡那 霉素抗性基因及Tn7 转座位点attTn7。 转移载体中,外源基因置于杆状病毒启动子之下, 两端分别为 Tn7的左右端。以其转化含Bacmid的E.coli菌株,由辅助 质粒提供反式作用发生转座,而将外源基因转到Bacmid的 attTn7位置。
1.1 杆状病毒载体
1.1.1杆状病毒简介 杆状病毒是研究细胞分子生物学的重要工具,同时也是外源基 因在昆虫细胞中表达的载体。杆状病毒只来源于无脊椎动物, 已发现600多种杆状病毒,其中仅有不到20 种进行了分子生 物学研究。 杆状病毒的基因组为单一闭合环状双链DNA 分子, 大小为 80~ 160kb,其基因组可在昆虫细胞核复制和转录。DNA 复制后组装在杆状病毒的核衣内,后者具有较大的柔韧性,可 容纳较大片段的外源DNA 插入,因此是表达大片段DNA 的 理想载体。其中, 用作外源基因表达载体的杆状病毒,目前仅 限于核型多角体病毒( nuclear poly hedrosis virus, NPV) 。
昆虫杆状病毒表达系统
1.昆虫杆状病毒表达系统的构成 2.杆状病毒载体表达系统的特点 3.昆虫杆状病毒表达系统的应用 4. 参考文献
1.昆虫杆状病毒表达系统的构成
1.1 杆状病毒载体
1.2 昆虫细胞宿主
表达体系
1.昆虫杆状病毒表达系统的构成
表达过程 1. 将外源目的基因插入到启动子下游 2. 与杆状病毒重组,获得重组病毒 3. 将重组的病毒纯化 4. 感染昆虫细胞或虫体 5. 外源基因随着病毒的复制而获得表达
理想的外源 基因插入位 点
1.1 杆状病毒载体
载体重组原理:原理是人为将杆状病毒多角体蛋白两翼序列 的同源序列引入含外源基因的质粒载体中,通过同源重组方 式来实现外源基因对病毒多角体蛋白基因的替换。 由于杆状病毒分子质量约为134kb,不能利用多克隆位点 (酶切连接)进行基因重组,只能利用杆状病毒和带有外源 基因的质粒载体进行共转染(转移载体的介导)。
3.1 基础研究
功能基因组学(functional genomics)的重要内容是研究 基因组内各种蛋白质的结构和功能,蛋白质之间以及蛋白质和核 酸之间的相互关系。 实现这一计划的前提是要生产几万种蛋白质 ,这就要求蛋白质 表达系统提供新的技术,诸如:通过简单的操作,生产各种活性 形式的蛋白质简化操作过程,缩短从基因生产蛋白质的时间以简 便的操作,同时生产许多种蛋白质。 最新的研究和技术发展业已表明,昆虫杆状病毒表达系统是解决 上述问题的优良系统,以昆虫虫体为宿主是十分有魅力的。
昆虫杆状病毒表达系统
高遄 生物化学与分子生物 2120422
前言
体外基因 表达系统
原核细胞系统
大肠杆菌细胞
•操作简便 •周期短、收益大 •表达产物稳定 •相对分子质量有限 •不能对表达产物进行一 些翻译后加工 、修饰
真核细胞系统
高表达 低成本 安全性高 大规模生产 哺乳动物细胞 酵母细胞 昆虫细胞(杆状 病毒表达系统)
1.1 杆状病毒载体
AcMNPV 是昆虫杆状病毒表达系统中最常用的载体,基因表达分为4 个 阶段: 立即早期基因表达、早期基因表达、晚期基因表达和极晚期基因表 达。 早于DNA 复制 病毒DNA 合成 多角体蛋白是形成包含体的主要成分,感染后期在细胞中的积累可高达 30% ~ 50%,是病毒复制非必需成分,但对病毒粒子却有保护作用, 可使之保持稳定和感染能力。 P10 蛋白为另一类高效表达的极晚期蛋白,也是一类病毒复制非必需成 分,可在细胞中形成纤维状物质,可能与细胞溶解有关。
由于我国有养蚕业,还可在AcMNPV Bac-to-Bac表达 系统的基础上进行改造,构建能够应用于家蚕的BmNPV Bac-to-Bac 表达系统,这将大大减少传统昆虫杆状病毒 表达系统表达外源重组蛋白所需时间,极大地提高了工作效 率。还能够解决培养昆虫细胞成本高,难于规模化生产等问 题。 重组率100%、操作简便、1 周完成重组、全部操作都在 细菌中进行,取名为Bac-to-Bac 表达系统
1.1 杆状病毒载体
现已知基因组全序列的杆状病毒仅有7 种:
苜蓿丫纹夜蛾核型多角体病毒( AcMNPV ) 家蚕核多角体病毒( BmNPV ) 黄杉毒蛾多核衣壳核多角体病毒( OpMNPV ) 舞毒蛾多核衣壳核多角体病毒( LdMNPV ) 甜菜夜蛾多核衣壳核多角体病毒( SeMNPV) 棉铃虫核型多角体病毒( HaNPV) 斜纹夜蛾核型多角体病毒( SpltMNPV)
2.杆状病毒载体表达系统的特点
③表达水平高:与其它真核表达系统相比较,此系统最突出的特 点就是能获得重组蛋白高水平的表达,最高可使目的蛋白的量达 到细胞总蛋白的50%。
虽然目前科研工作者大都是在细胞培养条件下进行表达外源基因,当条件成熟时需要 大量制备某类外源蛋白时,最好采用昆虫幼虫或蛹。因为培养昆虫幼虫和蛹远比培养 细胞简单、廉价,而且利用昆虫幼虫或蛹能够显著提高外源基因的表达水平。 利用BmNPV 载体在家蚕幼虫中成功表达出重组蜘蛛牵引丝蛋白,表达量高达每个昆 虫活体6mg。一般在幼虫体内的淋巴液中,蛋白质表达量较在细胞培养基中高10倍以 上。因此,通过昆虫杆状病毒表达系统可利用昆虫活体大规模生产各种重组蛋白。
1.1 杆状病毒载体