PrimerBLAST 操作说明

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Blast软件的详细使用方法

Blast软件的详细使用方法

Blast软件的详细使用方法

blastall -p blastn -i myRNA.fasta -d humanRNA.fasta -o myresult.blastout -a 2 -F F -T T -e 1e-10

解释如下:

blastall: 这是本地化/命令行执行blast时的程序名字!(Tips:blastall直接回车就会给出你所有的参数帮助,但是英文的)

-p: p 是program的简写,program在计算机领域中是程序的意思。此参数是指定要使用何种子程序,所谓子程序,就是针对不同的需要,如核酸序列和核酸序列进行比对、蛋白质序列和蛋白质序列进行比对、假设翻译后核酸序列于蛋白质序列进行比对,选择相应的子程序: blastn 是用于核酸对核酸blastp 是蛋白质对蛋白质序列等等,一共5个自程序。

-i: i 是input的简写,意思是输入文件,就是你自己的要进行比对的序列文件(fasta格式)-d: d是database的简写,意思是要比对的目标数据库,在例子中就是humanRNA.fasta (别忘了要formatdb)

-o: o是output的简写,意思是结果文件名字,这个根据你自己的习惯起名字,可以带路径,(上边两个参数-i -d 也都可以带路径)

*注意以上4个参数是必须的,缺一不可,下面的参数是为了得到更好的结果自己可调的参数,如果你不加也没有关系,blastall程序本身会给一个默认值!

-a: 是指计算时要用的CPU个数,我的机器有两个CPU,所以用-a 2,这样可以并行化进行计算,提高速度,当然你的计算机就一个CPU,可以不用这个参数,系统默认值为1,就是一个CPU

primer操作流程

primer操作流程

一、引物设计step by step

1、在NCBI上搜索到目的基因,找到该基因的mRNA,在CDS选项中,找到编码区所在位置,在下面的origin中,Copy该编码序列作为软件查询序列的候选对象。

2、用Primer Premier5搜索引物

①打开Primer Premier5,点击File-New-DNA sequence, 出现输入序列窗口,Copy 目的序列在输入框内(选择As),此窗口内,序列也可以直接翻译成蛋白。点击Primer,进入引物窗口。

②此窗口可以链接到“引物搜索”、“引物编辑”以及“搜索结果”选项,点击Search按钮,进入引物搜索框,选择“PCR primers”,“Pairs”,设定搜索区域和引物长度和产物长度。在Search Parameters里面,可以设定相应参数。一般若无特殊需要,参数选择默认即可,但产物长度可以适当变化,因为100~200bp的产物电泳跑得较散,所以可以选择300~5 00bp.

③点击OK,软件即开始自动搜索引物,搜索完成后,会自动跳出结果窗口,搜索结果默认按照评分(Rating)排序,点击其中任一个搜索结果,可以在“引物窗口”中,显示出该引物的综合情况,包括上游引物和下游引物的序列和位置,引物的各种信息等。

④对于引物的序列,可以简单查看一下,避免出现下列情况:3’不要出现连续的3个碱基相连的情况,比如GGG或CCC,否则容易引起错配。此窗口中需要着重查看的包括:T m应该在55~70度之间,GC%应该在45%~55%间,上游引物和下游引物的T m值最好不要相差太多,大概在2度以下较好。该窗口的最下面列出了两条引物的二级结构信息,包括,发卡,二聚体,引物间交叉二聚体和错误引发位置。若按钮显示为红色,表示存在该二级结构,点击该红色按钮,即可看到相应二级结构位置图示。最理想的引物,应该都不存在这些二级结构,即这几个按钮都显示为“None”为好。但有时很难找到各个条件都满足的引物,所以要求可以适当放宽,比如引物存在错配的话,可以就具体情况考察该错配的效率如何,是否会明显影响产物。对于引物具体详细的评价需要借助于Oligo来完成,Oligo自身虽然带有引物搜索功能,但其搜索出的引物质量感觉不如Primer5.

BLAST使用方法

BLAST使用方法

BLAST使用方法

BLAST(Basic Local Alignment Search Tool)是一种用于比较生物

学序列的工具,可以在数据库中查找类似序列,并计算它们之间的相似度。BLAST可用于寻找相似的基因、蛋白质序列、DNA序列等,以及用于确定

序列的功能和进化关系。本文将介绍BLAST的使用方法。

2. 准备序列:在使用BLAST之前,你需要准备你想要比较的序列。

可以是DNA序列、蛋白质序列或其他生物学序列。可以从公共数据库如NCBI的GenBank中获取序列,也可以使用你自己的实验数据。

3.选择数据库:BLAST使用数据库来存储和检索序列。常见的数据库

包括NCBI的NT数据库(核苷酸数据库),NR数据库(非冗余蛋白质数

据库)等。根据你的研究需要,选择适合你的数据库。你也可以建立自己

的数据库,将实验室内部的数据添加到其中。

4.运行BLAST:使用BLAST的命令行接口或网页界面,输入你的序列

和数据库信息,运行BLAST。下面是使用命令行接口运行BLAST的示例:`$ blastn -query sequence.fasta -db nt -out result.txt`

在这个命令中,`blastn`是BLAST程序的名称,`sequence.fasta`是

包含你的序列的FASTA文件,`nt`是数据库的名称,`result.txt`是结果

输出的文件。

如果使用网页版BLAST,你只需将序列和数据库信息输入网页表单,

点击运行即可。

5.解析结果:BLAST运行完成后,会生成一个结果文件,其中包含比

blast用法

blast用法

blast用法

BLAST(Basic Local Alignment Search Tool)是一种常用的生物信息学工具,用于在数据库中搜索和比对生物序列(如DNA、RNA、蛋白质等)。以下是使用BLAST的基本步骤和用法:

1. 准备输入序列:首先,准备待查询的序列数据。可以是DNA序列、蛋白质序列或其他类型的生物序列。

2. 选择BLAST程序:根据要比对的序列类型,选择合适的BLAST程序。常见的BLAST程序包括blastn(用于DNA比对)、blastp(用于蛋白质比对)、blastx(用于DNA与蛋白质相互比对)等。

3. 选择数据库:确定要在哪个数据库中进行比对。BLAST提供了多个数据库选项,如NCBI提供的nr数据库(非冗余蛋白质序列数据库)。

4. 运行BLAST:使用命令行或图形界面工具,输入BLAST命令或设置相应的参数进行比对。例如,可以使用以下命令运行blastp程序进行蛋白质比对:

```

blastp -query input.fasta -db database -out output.txt

```

其中,`input.fasta`是输入序列文件,`database`是要比对的数据库,`output.txt`是输出结果文件。

5. 解析和分析结果:BLAST运行完成后,会生成比对结果文件。可以使用相应的工具或脚本来解析、过滤和分析结果,以获取所需信息(如相似性、E值、比对长度等)。

6. 结果解释和进一步分析:根据比对结果,可以进一步解释和分析序列的功能、同源性等信息。可以使用其他生物信息学工具和数据库来进一步研究和验证结果。

NCBI Primer-BLAST使用方法

NCBI Primer-BLAST使用方法

Primer-BLAST是NCBI的引物设计和特异性检验工具。

Primer-Blast介绍

Primer-BLAST,在线设计用于聚合酶链反应(PCR)的特异性寡核苷酸引物。Primer-BLAST可以直接从Blast主页(/)找到,或是直接用下面的链接进入:

/tools/primer-blast/

这个工具整合了目前流行的Primer3软件,再加上NCBI的 Blast进行引物特异性的验证。Primer-BLAST免除了用另一个站点或工具设计引物的步骤,设计好的引物程序直接用Blast进行引物特异性验证。并且,Primer-BLAST能设计出只扩增某一特定剪接变异体基因的引物–an important feature for PCR protocols measuring tissue specific expression(注:没办法准确的翻译,只好作罢,汗!)。Primer-BLAST有许多改进的功能,这样在选择引物方面比单个的用 Primer3和NCBI BLAST更加准确。

Primer-BLAST的输入

Primer-BLAST界面包括了Primer3和BLAST的功能。提交的界面主要包括三个部分:target template(模板区), the primers(引物区), 和specificity check(特异性验证区)。跟其它的BLAST一样,点击底部的“Advanced parameters”有更多的参数设置。

在“PCR Template”下面的文本框,输入目标模板的序列,FASTA格式或直接用Accession Number。如果你在这里输入了序列,是用于引物的设计。Primer-BLAST 就会根据你输入的序列设计特异性引物,并且在目标数据库(在specificity check区选择)是唯一的。

BLAST使用方法

BLAST使用方法

BLAST使用方法

一、BLAST的安装和准备工作

2.获取待比对的序列文件,可以是FASTA格式的DNA或蛋白质序列。

二、BLAST的常用参数和选项

1. Program:指定使用哪种BLAST程序(如BLASTn、BLASTp等)。

2. Database:指定使用哪个数据库进行比对。

3. Query:指定待比对的序列文件。

4. E-value:期望值。一种描述比对结果误差率的指标,值越小表示

结果越可信。通常情况下,E-value小于0.01被认为是显著结果。

5. Word size:BLAST在比对时使用的核心词的长度。长度越大表示

查全率(sensitivity)越高,但速度会减慢。

6. Gap open:允许在比对过程中插入空位(如插入一个碱基)。Gap open参数定义了开放一个空位的惩罚分数。

7. Gap extension:允许空位的延伸。Gap extension参数定义了延

伸一个空位的惩罚分数。

三、使用BLAST进行比对

1.命令行方式:

-打开命令行界面,并定位到BLAST软件的安装目录。

- 输入命令,指定BLAST程序、数据库、查询文件和其他参数。例如:blastn -db nt -query query.fasta -out output.txt -evalue 0.01

-运行命令,BLAST将开始进行比对并生成结果文件。

2.网页方式(以NCBIBLAST为例):

- 打开NCBI网站的BLAST页面()。

-选择需要使用的BLAST程序(如BLASTn、BLASTp等)。

如何用Primer-Blast设计和验证引物

如何用Primer-Blast设计和验证引物

如何用Primer-Blast设计和验证引物

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今天老谈给大家推荐NCBI的一款在线工具Primer-BLAST,用于PCR的特异性引物设计和特异性检验。

推荐的指数:5颗星。

理由:操作简单,使用方便,不需要安装程序,而且和NCBI数据库已比对,不用担心特异性问题。

一、Primer-BLAST介绍

Primer-BLAST可以直接从Blast主页(/)找到,或是直接用下面的链接进入:/tools/primer-blast/,这个工具整合了目前流行的Primer3软件,再加上NCBI的Blast进行引物特异性的验证。Primer-BLAST免除了用另一个站点或工具设计引物的步骤,设计好的引物程序直接用Blast进行引物特异性验证。更强大的是Primer-BLAST能设计出只扩增某一特定剪接变异体基因的引物。Primer-BLAST有许多改进的功能,比单个的用Primer3和NCBI BLAST更加准确。

二、Primer-BLAST的输入

Primer-BLAST界面包括了Primer3和BLAST的功能。提交的界面主要包括4部分:PCR Template(模板区), Primer Parameters (引物区), Exon/intron selection(外显子内含子设置)和specificity check(特异性验证区)。

blast使用指南

blast使用指南

blast使用指南

Blast使用指南

Blast(Basic Local Alignment Search Tool)是一种常用于生物信息学研究中的序列比对分析工具。它可以根据输入的查询序列,在数据库中搜索相似序列,并给出比对结果。本文将为大家提供一份Blast使用指南,帮助大家更好地使用Blast进行序列比对分析。

一、什么是Blast?

Blast是一种基于局部比对算法的工具,它可以在大规模的数据库中快速搜索相似的序列。通过比对查询序列和数据库中的序列,Blast 可以找到相似度较高的序列,从而推测它们之间的功能和结构的相似性。

二、Blast的使用步骤

1. 准备查询序列

在使用Blast之前,首先需要准备查询序列。查询序列可以是DNA 序列或蛋白质序列,可以通过实验测序或从已有的数据库中获取。确保查询序列的准确性和完整性非常重要,因为查询序列的质量将直接影响到Blast的结果。

2. 选择合适的Blast程序和数据库

Blast有多个版本和程序可供选择,根据具体的研究目的和需求,选择合适的Blast程序和数据库非常重要。常用的Blast程序包括Blastn(用于DNA序列比对)、Blastp(用于蛋白质序列比对)等。数据库则可以选择NCBI的nr数据库、UniProt数据库等。

3. 运行Blast程序

在选择好Blast程序和数据库后,可以通过命令行或图形界面来运行Blast程序。对于初学者来说,推荐使用图形界面,因为图形界面更直观、易于操作。在运行Blast程序时,需要输入查询序列文件和选择合适的参数设置,如比对算法、期望阈值、返回结果的数量等。

Primer-Blast介绍

Primer-Blast介绍

Primer-Blast介绍

Primer-BLAST,在线设计用于聚合酶链反应(PCR)的特异性寡核苷酸引物。Primer-BLAST可以直接从Blast主页(/)找到,或是直接用下面的链接进入:

/tools/primer-blast/

这个工具整合了目前流行的Primer3软件,再加上NCBI的Blast进行引物特异性的验证。Primer-BLAST免除了用另一个站点或工具设计引物的步骤,设计好的引物程序直接用Blast进行引物特异性验证。并且,Primer-BLAST能设计出只扩增某一特定剪接变异体基因的引物–an important feature for PCR protocols measuring tissue specific expression(注:没办法准确的翻译,只好作罢,汗!)。Primer-BLAST有许多改进的功能,这样在选择引物方面比单个的用Primer3和NCBI BLAST更加准确。

Primer-BLAST的输入

Primer-BLAST界面包括了Primer3和BLAST的功能。提交的界面主要包括三个部分:target template(模板区), the primers(引物区), 和specificity check(特异性验证区)。跟其它的BLAST一样,点击底部的“Advanced parameters”有更多的参数设置。

模板(Template)

在“PCR Template”下面的文本框,输入目标模板的序列,FASTA格式或直接用Accession Number。如果你在这里输入了序列,是用于引物的设计。Primer-BLAST 就会根据你输入的序列设计特异性引物,并且在目标数据库(在specificity check区选择)是唯一的。

用NCBI中PrimerBlast快速设计探针引物

用NCBI中PrimerBlast快速设计探针引物

用NCBI中PrimerBlast快速设计探针引物

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引物和探针的设计是qPCR实验中最开始环节。

桌面——Primer Premier,Primer Express(下载破解版)

在线——Prime3Plus(/cgi-bin/dev/primer3plus.cgi)

QuantPrime(/)

Primer Blast(/tools/primer-blast/index.cgi)

原则:

1、引物长度常用为18-27bp,

2、引物GC含量45-55%为宜。上下游引物GC含量和Tm值要保持接近;

3、Tm值最好72℃左右。

4、引物3’端的碱基一般不用A。A在错误引发位点的引发效率相对比较高。引物3’端出现3个以上的连续碱基,如GGG或CCC,或者引物3’端的互补、二聚体或发夹结构也可能导致PCR反应失败。

5、碱基要随机分布,且引物自身和引物之间不能有连续4个碱基的互补。

6、尽量在Exon junction上设计引物,限制基因组DNA扩增。

7、使用BLAST检索,确认引物特异性。

案列:以SARS-CoV-2的N基因,介绍引物和探针的设计。

进入NCBI官网(/),选择在“Nucleotide”数据库中搜索“SARS-CoV-2”的核酸序列。

Ø可看到SARS-CoV-2的详细信息,包括所有注释的蛋白读码框,点击条目进入。

Ø基因组序列信息展示在页面最下面,可以将其复制粘贴到文本文档中加以保存;点击页面右边“Analyze this sequence”功能中的“Pick Primers”选项。

Ø可以看到在模板区域已经显示出SARS-CoV-2的Reference Sequence No.,另外的两种上传模板信息的方法是将完整序列粘贴过来或者上传文本文档。由于我们要在N基因(CDS区域从28274到29533)上设计引物探针,因此需要在右边规定上下游引物的起始终止范围。

blast 用法

blast 用法

BLAST的使用方法与参数选项调整

BLAST(Basic Local Alignment Search Tool)是一种在生物信息学中广泛使用的序列比对工具,可以用于搜索数据库中的序列,并找到与之相似的序列。以下是BLAST的基本用法:

1.选择BLAST软件:BLAST包括多种算法,如BLASTN、BLASTP、BLASTX、

TBLASTN和TBLASTX等。根据需要搜索的序列类型,选择相应的BLAST 算法。

2.准备查询序列:将要搜索的序列准备妥当,可以是DNA、蛋白质或RNA

序列。

3.选择数据库:选择将要搜索的数据库,可以是核酸数据库或蛋白质数据库

等。

4.运行BLAST:在相应的BLAST软件中输入查询序列和选择数据库,运行

BLAST程序。

5.结果解析:解析BLAST结果,包括匹配的序列、匹配的位置、匹配的得分

和E值等。需要根据E值和得分来判断匹配的可靠性和相似性。

在BLAST的使用过程中,还有一些参数和选项可以调整,例如设置期望值阈值、最大目标序列数目等。这些参数和选项可以通过查阅BLAST的官方文档或相关教程来了解和使用。

Primer-BLAST:NCBI的引物设计和特异性检验工具

Primer-BLAST:NCBI的引物设计和特异性检验工具

Primer-BLAST:NCBI的引物设计和特异性检验工具

Primer-Blast介绍

Primer-BLAST,在线设计用于聚合酶链反应(PCR)的特异性寡核苷酸引物。Primer-BLAST可以直接从Blast主页(/)找到,或是直接用下面的链接进入:

/tools/primer-blast/

这个工具整合了目前流行的Primer3软件,再加上NCBI的Blast进行引物特异性的验证。Primer-BLAST免除了用另一个站点或工具设计引物的步骤,设计好的引物程序直接用Blast进行引物特异性验证。并且,Primer-BLAST能设计出只扩增某一特定剪接变异体基因的引物–an important feature for PCR protocols measuring tissue specific expression(注:没办法准确的翻译,只好作罢,汗!)。Primer-BLAST有许多改进的功能,这样在选择引物方面比单个的用Primer3和NCBI BLAST更加准确。

Primer-BLAST的输入

Primer-BLAST界面包括了Primer3和BLAST的功能。提交的界面主要包括三个部分:target template(模板区), the primers(引物区), 和specificity check(特异性验证区)。跟其它的BLAST一样,点击底部的“Adva nced parameters”有更多的参数设置。

模板(Template)

在“PCR Template”下面的文本框,输入目标模板的序列,FASTA格式或直接用Accession Number。如果你在这里输入了序列,是用于引物的设计。Primer-BLAST 就会根据你输入的序列设计特异性引物,并且在目标数据库(在specificity check区选择)是唯一的。

NCBI工具_Primer-BLAST——NCBI的引物设计和特异性检验工具

NCBI工具_Primer-BLAST——NCBI的引物设计和特异性检验工具

引物(Primers)

如果你已经设计好了引物,要拿来验证引物的好坏。可以在Primer Parameters区填入你的一条或一对引物。并且选择好验证的目标数据库(在specificity check区选择)。根据需要可设置产物的大小,Tm值等。

特异性(Specificity)

在specificity check区,选择设计引物或验证引物时的目标数据库和物种。这一步是比较重要的。这里提供了4种数据库:RefSeq mRNA, Genome (selected reference assemblies), Genome (all chromosomes), and nr (the standard non-redundant database)。前两个数据库是经过专家注释的数据,这样可以给出更准确的结果。特别是,当你用NCBI的参考序列作为模板和参考序列数据库作为标准来设计引物时,Primer-

BLAST可以设计出只扩增某一特定剪接变异体基因的特异引物。selected reference assemblies 包括以下的物种: human, chimpanzee, mouse, rat, cow, dog, chicken, zebrafish, fruit fly, honeybee, Arabidopsis, 和rice。Nr数据库覆盖NCBI所有的物种。

实例分析

用人尿嘧啶DNA糖基化酶(uracil-DNA glycosylase genes, UNG, GeneID: 7374)的两个转录本序列作为一个例子来分析。UNG1的序列长一点(NM_003362),UNG2的序列短一点(NM_080911,注:拿这两个基因的序列ClustalW一下就可以了)。这里用UNG2的序列设计引物,选择RefSeq mRNA database,物种

NCBI引物设计方法

NCBI引物设计方法

Primer-Blast介绍

Primer-BLAST,在线设计用于聚合酶链反应(PCR)的特异性寡核苷酸引物。Primer-BLAST 可以直接从Blast主页(/)找到,或是直接用下面的链接进入:

/tools/primer-blast/

这个工具整合了目前流行的Primer3软件,再加上NCBI的Blast进行引物特异性的验证。Primer-BLAST免除了用另一个站点或工具设计引物的步骤,设计好的引物程序直接用Blast进行引物特异性验证。并且,Primer-BLAST能设计出只扩增某一特定剪接变异体基因的引物–an important feature for PCR protocols measuring tissue specific expression(注:没办法准确的翻译,只好作罢,汗!)。Primer-BLAST有许多改进的功能,这样在选择引物方面比单个的用Primer3和NCBI BLAST更加准确。

Primer-BLAST的输入

Primer-BLAST界面包括了Primer3和BLAST的功能。提交的界面主要包括三个部分:target template(模板区), the primers(引物区), 和specificity check(特异性验证区)。跟

其它的BLAST一样,点击底部的“Advanced parameters”有更多的参数设置。

模板(Template)

在“PCR Template”下面的文本框,输入目标模板的序列,FASTA格式或直接用Accession Number。如果你在这里输入了序列,是用于引物的设计。Primer-BLAST就会根据你输入的序列设计特异性引物,并且在目标数据库(在specificity check区选择)是唯一的。

blast引物设计流程

blast引物设计流程

blast引物设计流程

Blast引物设计是基因组、转录组和蛋白质组研究中不可或缺的一环。BLAST(基本局部序列比对工具)是用于在数据库中相似序列的一种工具。它能够在数据库中找到一条或多条与查询序列相似的序列,并计算相似度

分数。利用BLAST工具进行引物设计可以帮助研究人员快速鉴定和选择目

标基因、转录本或蛋白质,并进行后续实验。下面将详细介绍BLAST引物

设计的流程。

1.确定目标序列:确定要设计引物的目标序列,可以是基因组、转录

组或蛋白质组中的一个特定基因、转录本或蛋白质。

2. 数据库选择:选择适当的数据库进行BLAST。根据实际需要,可

以选择不同的数据库,包括NCBI的GenBank、RefSeq、EST、非冗余蛋白

质数据库等。

3.引物设计参数:根据实验需求和目标序列的特点,设置合适的引物

设计参数。参数包括引物长度、引物Tm值、引物GC含量、引物之间的距

离等。

4. 引物设计工具选择:选择合适的引物设计工具进行设计。目前有

许多在线工具和软件可以进行BLAST引物设计,例如Primer-BLAST、Primer3、Geneious等。

5.引物设计:根据设置的参数和目标序列,使用选择的引物设计工具

进行引物设计。工具通常会生成多个潜在的引物序列,根据设计要求和实

验条件进行筛选。

6.引物特性分析:对设计的引物进行分析,包括引物的Tm值、互补性、二聚体形成、酶切位点等。高Tm值可增加引物与目标序列的稳定性,互补性较低可以避免二聚体的形成,酶切位点可能会影响后续实验的结果。

7.引物合成:选择合适的引物合成厂商进行引物合成。根据实验需求,可以选择合成标记有荧光染料或其他分子的引物。

Primer Premier中文使用说明

Primer Premier中文使用说明

Primer Premier 4.10

Primer Premier4.0是由加拿大的Premier公司开发的专业用于PCR或测序引物以及杂交探针的设计,评估的软件,和Plasmid Premier2.02一起是该公司推出的最新的软件产品。其主要界面同样也是分为序列编辑窗口(Genetank),引物设计窗口(Primer Design),酶切分析窗口(Restriction Sites)和纹基分析窗口(Motif)。这里我们主要介绍其引物设计功能,其他功能的介绍请参看Plasmid Premier2.02。

打开程序首先进入的是序列编辑参看,与Plasmid Premier相比,其多了一个语音校正的功能,即在输入序列的时候,程序自动将碱基读出,以便用户进行校正,保证输入的正确和快速。

点击该界面的按钮即可进入到程序的引物设计窗口。

该界面共分为四层,最上面一层左面是5个控制按钮,用于实现引物设计中的各种功能,包括引物自动寻找,寻找结果查看和引物编辑;右边是观察两个引物在模板上结合位置的直观图以及对正链还是负链引物进行选择;第二层是显示模板和引物序列及二者间的配对情况的显示;第三层是显示两个引物的各种参数,包括给引物的打分,引物以及产物的起始位置、长度、Tm值、GC%消光系数、简并性;最后一层是给出的有关于引物的二聚体结构、发卡结构、错配情况

和引物间二聚体结构的预测,左边是显示是否存在以上各种对PCR扩增有影响的结构,右边显示的是这些结构的位置,结构细节和稳定能,利用这些参数可以对引物作出可靠的评价。

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NM_018255
Black hash marks indicate exon-exon boundaries
Only one hit, there’s no high homologous region or pseudogenes.
Click on the link to go to the map view and intron-exon information.
Pre-design considerations
NCBI Primer-BLAST design
Order primers with universal tags and evaluate primers in vitro
Strategic Approach
• Pre-design considerations
1. Enter accession number or FASTA sequence (mandatory)
Check gene for transcript variants, pseudogenes and intron information: Entrez Gene (See Specific Design Considerations)
Determine the desired length of amplicon
Enter the accession # here
Select “reference only” database Click “Begin Search”
Click View Report to view gene information
Click “View Report”
Report view page
Two Design Strategies
Use Accession Numbers or Proprietary Genes to create genespecific primers for amplicons 105-350 nucleotides in length
1 2
The strategic approach is recommended when a model organism is used and/or there is sufficient genomic data available in NCBI for PrimerBLAST to scan primers for:
– This allows for variation in migration to meet the minimum peak separation distance of 3 nucleotides.

Design amplicons between 105 – 350 nt (without universal tags)
• Homology and/or transcript variants • SNP • Intron/exon boundaries are known
Biblioteka Baidu
The shotgun approach is an efficient method to use when little or no genome information is available for the organism of interest.
(without universal tags)
Design primers using Primer BLAST
Pre-Design Considerations
1. Choosing an Accession Number
• A single gene can be represented in the NCBI database by multiple accession numbers – mRNA » Always use reference sequence (RefSeq) (NM_XXXXXX) from the Database » Use caution with other mRNA accession numbers - partial sequences - mutations - ESTs
• Little or no homology, pseudogene or transcript variant information • No SNP information • No intron/exon boundaries
Strategic Approach
Accession Numbers
Example: NM_01825
View the transcripts and reference sequences
ELP2 contains a single transcript with 22 exons Each green bar represent an exon.
ELP2 located at the Chromosome 18
• Do not use an accession number for genomic sequences
2. Ensure the following for each accession number that is chosen:
• Correct gene is chosen
– – – – Multiple names and aliases Different genes can have similar names Species of interest If non-RefSeq accession number is used Verify that the sequence contains only the letters A, T, G, C or N
Step3: Design Gene-Specific Primers
Go to http://blast.ncbi.nlm.nih.gov/Blast.cgi
Scroll down to find the Specialized BLAST, click Primer BLAST
NCBI Primer-BLAST
Advanced Primer Design Workflow
Obtain mRNA accession numbers or use gene sequence Enter primer name, fragment size, gene name into multiplex TDF file template
Step 2: Checking for homology and pseudogenes
Go to http://blast.ncbi.nlm.nih.gov/Blast.cgi
Perform a species-specific query
Blast human genome if it is a human gene
– 142 – 387 nt with universal tags – Start with small fragment size and work toward larger fragment size
Note: For FFPE samples, design amplicons between 105-160 nt (without universal tags), the recommended total number of fragments in a panel is twenty or less.
GeXP Gene Expression Multiplex Design:
Using NCBI Primer-BLAST to design high performance, gene-specific primers for an XP-PCR multiplex
Updated: March 07, 2011
NCBI web or directly go to http://www.ncbi.nlm.nih.gov/gene/
1. Choose the
Gene database
2. Enter gene
name or accession number
3. Click Search
Get the alias(es) and a summary
• This program does NOT:
– Check for repeat sequences within the amplicon which may lead to stutter – Check for pseudogenes
Design Gene-Specific Primers with NCBI Primer-BLAST
– Choosing the gene and accession number
• Use only mRNA accession numbers
– Amplicon length and space between peaks
• Design using NCBI Primer-BLAST
– Amplicon lengths – Design primers to detect all transcript variants (if not specified) or a unique transcript variant (if specified) – Design primers to avoid amplifying transcribed pseudogenes – Design intron-spanning primers when possible – Exclude SNPs from primers
Pre-Design Considerations-Continue
Amplicon Length
• Design amplicons such that each fragment is no less than 5 nucleotides apart from its nearest neighbor.
• This program will accomplish the following when the parameters are set properly:
– Check for specificity both within a species and between species (must add species) – Include or exclude transcript variants – Exclude SNPs from the primer binding sites – Create intron-spanning primers and/or exon-junction primers – Allows for design to specific regions within the gene or using a pre-designed primer sequences – Avoids low complexity primer binding regions – Note: Generally the more restrictions that are placed on the primer selection program, the fewer primers binding sites will be available
Pre-Design Considerations-Continue
• Gene Information • Intron and Exon Information • Transcript Variants Information • Pseudogenes Information
Step1: Getting Gene Information
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