标本采集运送标准操作规程PPT课件
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检验标本采集与运送PPT课件
黄色
3.8％枸橼酸钠 2ml
EDTA—K2 2ml
肝素钠
3ml
3.8％枸橼酸钠 2ml
无抗凝剂
4ml
无抗凝剂
4ml
凝血检查
血常规、血型 血液流变学
血沉
生化类、PCR定 量等 免疫类
条码的使用
条码统一张贴样式: 名字向上、管盖平行、张贴平整、打印清楚、一管一码
条码的使用
条码统一张贴样式:尿液、大便、分泌物、CSF、血沉等条码统一张贴在医 技单，血气分析张贴在外包装管体；
条码的使用
错误张贴条码引发的标本不合格、作废条码应重新打印
痰标本
❖ 痰液常规+找真菌 ❖ 痰找抗酸杆菌（抗酸染色） ❖ 痰革兰氏染色 ❖ 痰细胞学检查 ❖ 痰细菌培养+真菌培养+药敏分析 ❖ 痰结核杆菌DNA检测
痰标本采集
能自理的患者：
—晨起后用清水漱口 —以清晨第一口痰为宜 —深吸气后用力咳出气管深处的痰液 —不可混入漱口液、唾液、鼻涕等
无法咳痰或不合作者：
—用吸痰法收集（集痰器）
痰标本采集注意事项
1、如查癌细胞，应立即送检或用95%乙醇或用 10%甲醛固定后送检；
2、不可将唾液、漱口水、鼻涕等混入痰液中；
标本采集的原则
❖ 遵照医嘱： ❖ 充分准备：患者准备、用物准备、护士自身
准备 ❖ 严格查对：检查项目、患者姓名、床号、住
院号等（查对制度） ❖ 正确采集：方法、时间、量、容器（标本采
集手册） ❖ 及时送检：
注：
❖ 明确检验项目、检验目的及注意事项； ❖ 标本的容器贴好条码（唯一标识），附上申
请单：患者的姓名、科室、床号、住院号、 送检目的、送检日期和时间等,详细进行“查 对制度”； ❖ 每次采集血标本时应做到“三个一”：一患 者、一化验单、一容器
3.8％枸橼酸钠 2ml
EDTA—K2 2ml
肝素钠
3ml
3.8％枸橼酸钠 2ml
无抗凝剂
4ml
无抗凝剂
4ml
凝血检查
血常规、血型 血液流变学
血沉
生化类、PCR定 量等 免疫类
条码的使用
条码统一张贴样式: 名字向上、管盖平行、张贴平整、打印清楚、一管一码
条码的使用
条码统一张贴样式:尿液、大便、分泌物、CSF、血沉等条码统一张贴在医 技单，血气分析张贴在外包装管体；
条码的使用
错误张贴条码引发的标本不合格、作废条码应重新打印
痰标本
❖ 痰液常规+找真菌 ❖ 痰找抗酸杆菌（抗酸染色） ❖ 痰革兰氏染色 ❖ 痰细胞学检查 ❖ 痰细菌培养+真菌培养+药敏分析 ❖ 痰结核杆菌DNA检测
痰标本采集
能自理的患者：
—晨起后用清水漱口 —以清晨第一口痰为宜 —深吸气后用力咳出气管深处的痰液 —不可混入漱口液、唾液、鼻涕等
无法咳痰或不合作者：
—用吸痰法收集（集痰器）
痰标本采集注意事项
1、如查癌细胞，应立即送检或用95%乙醇或用 10%甲醛固定后送检；
2、不可将唾液、漱口水、鼻涕等混入痰液中；
标本采集的原则
❖ 遵照医嘱： ❖ 充分准备：患者准备、用物准备、护士自身
准备 ❖ 严格查对：检查项目、患者姓名、床号、住
院号等（查对制度） ❖ 正确采集：方法、时间、量、容器（标本采
集手册） ❖ 及时送检：
注：
❖ 明确检验项目、检验目的及注意事项； ❖ 标本的容器贴好条码（唯一标识），附上申
请单：患者的姓名、科室、床号、住院号、 送检目的、送检日期和时间等,详细进行“查 对制度”； ❖ 每次采集血标本时应做到“三个一”：一患 者、一化验单、一容器
检验标本的采集及运送ppt课件
4、检验人员：必须等收到临床医生书面或电子打印的检验申请单
时，才可接收标本进行检验。
5、检验申请单及检验结果记录：保存2年。
5/22/2024
4
四、标本采集方法：
收取检验申请单——审核合格后，检查真空管标识和检验 申请单一致——做好患者准备工作——找好采血静脉并消毒—— 采集致标本容器——送至检验科。
2：血液标本的运送应由患者（除血交叉标本外） 或临床卫生员运送。运送过程中必须保证安全， 防止容器破裂、遗漏等现象。
5/22/2024
3
三、检验的申请：
1、临床医生：应完整填写申请单各项内容，字迹必须清楚，包
括患者姓名、性别、年龄、科别、床号、病案号、住院号、申请序
号、标本类型、临床诊断、采集标本日期和时间、申请检查的实验
3.5 溶血标本拒收 3.6 血糖标本 3.6.1 要注意：患者的饮食，高糖饮食、剧烈运动、情
绪激动等，都会引起血糖生理性增高。 血清管抽血后，尽快送检验科检测，因为葡萄糖
在空气中，在血细胞的作用下，很容易孝解。 全血标本室温放置1小时，血糖值下降。3-6% 全血标本室温放置4小时，血糖值下降。10-30%
↓
阻断葡萄糖的分解
5/22/2024
2
二、采集血液标本的职责：
1：住院病人血液由临床医护人员采集。临床医 护人员必须明确告知病人标本采集前的准备条 件，要求及注意事项（如禁食、禁水、特殊标 本采集前的准备等）；医护人员有义雾向患者 解释标本采集中的各种问题，标本采集的类型、 血量、保存条件、注意事项、生物参考区间、 临床意义等，指导患者进行正确的准备。
介绍
检验标本的采集及运送是保证检验结果 准确与否首要的、重要环节。包括适当的患 者准备、检验申请，适当的标本收集、标记、 保存、运送和处理。
现场样品采集、保存与运输PPT课件( 28页)
（6）脑脊液
无菌条件下由腰椎穿刺抽取3-5ml，放于无菌试管。 注意：用于细菌培养时标本采集后应立即送检，用于病毒培养时在4-
8C最多可维持48h，否则在-70C保存。
2、用于病原体抗体检测的标本（血液和脑脊液）
血清标本：将10ml静脉血移入无抗凝剂的无菌螺口管，室温静 置30min使之凝集，然后置4-8C至少1-2h，离心收集血清；脑 脊液的采集方法同前所述，一般于出现神经症状时采集。
悲心，饶益众生为他人。
•
14、梦想总是跑在我的前面。努力追寻它们，为了那一瞬间的同步，这就是动人的生命奇迹。
•
15、懒惰不会让你一下子跌倒，但会在不知不觉中减少你的收获;勤奋也不会让你一夜成功，但会在不知不觉中积累你的成果。人生需要挑战，更需要坚持和勤奋!
•
16、人生在世：可以缺钱，但不能缺德;可以失言，但不能失信;可以倒下，但不能跪下;可以求名，但不能盗名;可以低落，但不能堕落;可以放松，但不能放纵;可以虚荣，
•
11、人生的某些障碍，你是逃不掉的。与其费尽周折绕过去，不如勇敢地攀登，或许这会铸就你人生的高点。
•
12、有些压力总是得自己扛过去，说出来就成了充满负能量的抱怨。寻求安慰也无济于事，还徒增了别人的烦恼。
•
13、认识到我们的所见所闻都是假象，认识到此生都是虚幻，我们才能真正认识到佛法的真相。钱多了会压死你，你承受得了吗?带，带不走，放，放不下。时时刻刻发
3、水样采集（饮用水）
类型：水源水、出厂水和管网水的采集 要求：同一水源、同一时间采集几类检测指
标水样时，应分类采集、分类保存 注意：采集测定溶解氧、生化需氧量和有机
物的水样时，应将水样注满容器，上 部不留空间，并采用水封
标本采集与运送ppt课件
湖南省肿瘤医院
HUNAN PROVINCIAL TUMOR HOSPITAL
标本的采集与运送
检验科 黄宏君
.
1
主要内容
➢ 如何看待检验工作 ➢ 标本采集前准备 ➢ 标本采集
➢ 意义和原则 ➢ 常见检验项目试管选择 ➢ 常用标本采集方法和注意事项
➢ 标本的运送与拒收 ➢ 常见问题反馈和处理 ➢ 小结
.
19
血常规管
• 适用于血常规、血型鉴定、交叉 配血试验及临床血液学检查等
• 抗凝剂：EDTA-K2、 EDTA-K3
• 血液标本量不小于1ml
• 采血后立即颠倒180度摇匀5-8次
.
20
血沉管
• 适用于血沉（ESR)检测 • 抗凝剂：柠檬酸0.129mol/L • 抗凝剂与血样的体积比(1：4 ) • 采血后立即颠倒180度摇匀5-8次
• 必须空腹的项目 – 1.肝功能 – 2.血糖 – 3.血脂 – 4.真菌 D葡聚糖（血脂高患者） – 5.凝血功能（血脂高患者） – 6.血液流变的检查如全血粘度、血清粘度 、血浆粘度等 – 7.甲胎蛋白、血清免疫球蛋白、粘蛋白
.
12
标本采集
.
13
明确疾病诊断
推测病程进展
制定治疗措施
.
观察病情
.
21
血凝管
• 适用于PT、APTT、PT、D-二聚体 、凝血因子检测等。
• 2. 在采血的前一天晚上不应有剧烈的运动，采血当 日早晨应避免剧烈运动和劳动，采血前应有10分钟 的休息。采血时，患者要保持相对安静和情绪稳定 。冬季采血时应要求患者暖和后保持血液循环通畅 并休息10分钟后采血。
.
7
血液样品采集前患者的准备
HUNAN PROVINCIAL TUMOR HOSPITAL
标本的采集与运送
检验科 黄宏君
.
1
主要内容
➢ 如何看待检验工作 ➢ 标本采集前准备 ➢ 标本采集
➢ 意义和原则 ➢ 常见检验项目试管选择 ➢ 常用标本采集方法和注意事项
➢ 标本的运送与拒收 ➢ 常见问题反馈和处理 ➢ 小结
.
19
血常规管
• 适用于血常规、血型鉴定、交叉 配血试验及临床血液学检查等
• 抗凝剂：EDTA-K2、 EDTA-K3
• 血液标本量不小于1ml
• 采血后立即颠倒180度摇匀5-8次
.
20
血沉管
• 适用于血沉（ESR)检测 • 抗凝剂：柠檬酸0.129mol/L • 抗凝剂与血样的体积比(1：4 ) • 采血后立即颠倒180度摇匀5-8次
• 必须空腹的项目 – 1.肝功能 – 2.血糖 – 3.血脂 – 4.真菌 D葡聚糖（血脂高患者） – 5.凝血功能（血脂高患者） – 6.血液流变的检查如全血粘度、血清粘度 、血浆粘度等 – 7.甲胎蛋白、血清免疫球蛋白、粘蛋白
.
12
标本采集
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13
明确疾病诊断
推测病程进展
制定治疗措施
.
观察病情
.
21
血凝管
• 适用于PT、APTT、PT、D-二聚体 、凝血因子检测等。
• 2. 在采血的前一天晚上不应有剧烈的运动，采血当 日早晨应避免剧烈运动和劳动，采血前应有10分钟 的休息。采血时，患者要保持相对安静和情绪稳定 。冬季采血时应要求患者暖和后保持血液循环通畅 并休息10分钟后采血。
.
7
血液样品采集前患者的准备
临床常见微生物标本的采集和运送 PPT
咽拭子
其他
无菌体液
血液
脑脊液 关节腔积液
胸腹水 其他
微 （D生i物rty实、验D室um常p被、称D为an3gDe实ro验us室）
血液培养标本的采集
采血次数：对于成年患者，应该同时分别不同部位采集 2-3套血标本（一套为一瓶需氧一瓶厌氧），在不同部位 分离到同样菌种才能确定是病原菌。儿童由厌氧菌引起的 血流感染非常罕见，一般无需常规做厌氧培养。
引器至适宜负压(成人：40.0—53.3kPa；小儿：<40.0kPa)。
⑤将一次性吸痰管外包装去除，戴手套持吸痰管试吸生理盐水，
检查管道是否通畅。
⑥折叠一次性吸痰管末端，插人口腔或鼻腔或人工气道至适宜深
度，放开吸痰管末端，轻柔、灵活、迅速地左右旋转上提吸痰管吸痰。
见吸痰管内有痰液吸出，即折叠一次性吸痰管退出，将一次性吸痰管
注：除婴儿和活动性腹泻患者外不推荐用拭子做常规病原 检查
微生物标本存在问题
感谢您的聆听！
临床常见微生物标本的采集和运送
微生物培养标本采集送检的基本原则
1.及时采集微生物标本作病原学检查 2.在抗菌药物使用前采集标本 3.采样时严格执行无菌操作 4.采样后立即送检 5.标本容器须灭菌处理，但不得使用消毒剂。 6.送检标本应注明来源和检验目的
临床微生物标本的种类
带菌体液 痰
尿液 粪便
与吸引器分离(使用人工呼吸机者，一次吸痰时间不超过15s，吸痰前 后需吸入高浓度氧气1—2min)。
⑦将痰液注入无菌容器(试管)内，如痰液黏稠可用一次性针筒向
吸痰管末端注入少量生理盐水，将痰液冲人无菌容器(试管)内。
而无色透明、有灰白片状物或黑色小点，有明显食物渣滓、 纸屑灰尘的为不合格标本。
其他
无菌体液
血液
脑脊液 关节腔积液
胸腹水 其他
微 （D生i物rty实、验D室um常p被、称D为an3gDe实ro验us室）
血液培养标本的采集
采血次数：对于成年患者，应该同时分别不同部位采集 2-3套血标本（一套为一瓶需氧一瓶厌氧），在不同部位 分离到同样菌种才能确定是病原菌。儿童由厌氧菌引起的 血流感染非常罕见，一般无需常规做厌氧培养。
引器至适宜负压(成人：40.0—53.3kPa；小儿：<40.0kPa)。
⑤将一次性吸痰管外包装去除，戴手套持吸痰管试吸生理盐水，
检查管道是否通畅。
⑥折叠一次性吸痰管末端，插人口腔或鼻腔或人工气道至适宜深
度，放开吸痰管末端，轻柔、灵活、迅速地左右旋转上提吸痰管吸痰。
见吸痰管内有痰液吸出，即折叠一次性吸痰管退出，将一次性吸痰管
注：除婴儿和活动性腹泻患者外不推荐用拭子做常规病原 检查
微生物标本存在问题
感谢您的聆听！
临床常见微生物标本的采集和运送
微生物培养标本采集送检的基本原则
1.及时采集微生物标本作病原学检查 2.在抗菌药物使用前采集标本 3.采样时严格执行无菌操作 4.采样后立即送检 5.标本容器须灭菌处理，但不得使用消毒剂。 6.送检标本应注明来源和检验目的
临床微生物标本的种类
带菌体液 痰
尿液 粪便
与吸引器分离(使用人工呼吸机者，一次吸痰时间不超过15s，吸痰前 后需吸入高浓度氧气1—2min)。
⑦将痰液注入无菌容器(试管)内，如痰液黏稠可用一次性针筒向
吸痰管末端注入少量生理盐水，将痰液冲人无菌容器(试管)内。
而无色透明、有灰白片状物或黑色小点，有明显食物渣滓、 纸屑灰尘的为不合格标本。
标本的采集和运送PPT课件
标本的采集和运送
正确规范的采集和运送标本， 通过实验室检查，结合病史、 症状或体疾病的病程确 定标本采集的时间、部位和种类。 所有采集的标本均应置于无菌或清洁容器 中，不能接触消毒剂和抗菌药物。 标本采集后应按要求处理，立即送往实验 室；对于烈性传染病标本的运送还需专人 送检。
创伤、组织和脓肿标本
损伤范围较大的创伤：应从不同部位采集多份标本。 采集部位应首先清除污物，以碘酒、酒精消毒皮肤， 防止杂菌混入标本。 开放性脓肿：用无菌棉拭采取脓液及病灶深部分泌 物。 封闭性脓肿：以无菌干燥注射器穿刺抽取；疑为厌 氧菌感染者，取脓液后立即排净注射器内空气，针 头塞入无菌橡皮塞并送检。
脑脊液与其它无菌体液
引起脑膜炎的病原体因其抵抗力弱，不耐 冷，容易死亡，故采集的脑脊液应立即保 温送检或床边接种。 浆膜腔积液因含菌量少，宜采集较大量标 本以保证检出率。
泌尿生殖道标本
根据不同疾病的特征及检验目的采集不同 标本：性传播疾病－尿道口分泌物、外阴 糜烂面分泌物、阴道宫颈口分泌物、前列 腺液；生殖道疱疹－穿刺疱疹液；盆腔脓 肿－于直肠子宫陷凹处穿刺脓液。 除淋球菌保温送检外，所有标本收集后4℃ 保存。
血清
用于检测患者特异性抗体效价以辅助诊 断感染性疾病。 采集血液置于无菌试管中，自然凝固、 血块收缩后吸取血清，56℃加热30分钟 以灭活补体成分。 灭活血清保存于－20℃。
粪便
取含脓、血或粘液粪便置于清洁容器中送 检，排便困难者可用直肠拭子采集。 根据细菌种类不同选用合适运送培养液以 提高阳性检出率（如霍乱）。 一次粪便培养阴性不能完全排除胃肠道病 原菌的存在，对于传染性腹泻患者需三次 送检粪便进行细菌培养。
正确规范的采集和运送标本， 通过实验室检查，结合病史、 症状或体疾病的病程确 定标本采集的时间、部位和种类。 所有采集的标本均应置于无菌或清洁容器 中，不能接触消毒剂和抗菌药物。 标本采集后应按要求处理，立即送往实验 室；对于烈性传染病标本的运送还需专人 送检。
创伤、组织和脓肿标本
损伤范围较大的创伤：应从不同部位采集多份标本。 采集部位应首先清除污物，以碘酒、酒精消毒皮肤， 防止杂菌混入标本。 开放性脓肿：用无菌棉拭采取脓液及病灶深部分泌 物。 封闭性脓肿：以无菌干燥注射器穿刺抽取；疑为厌 氧菌感染者，取脓液后立即排净注射器内空气，针 头塞入无菌橡皮塞并送检。
脑脊液与其它无菌体液
引起脑膜炎的病原体因其抵抗力弱，不耐 冷，容易死亡，故采集的脑脊液应立即保 温送检或床边接种。 浆膜腔积液因含菌量少，宜采集较大量标 本以保证检出率。
泌尿生殖道标本
根据不同疾病的特征及检验目的采集不同 标本：性传播疾病－尿道口分泌物、外阴 糜烂面分泌物、阴道宫颈口分泌物、前列 腺液；生殖道疱疹－穿刺疱疹液；盆腔脓 肿－于直肠子宫陷凹处穿刺脓液。 除淋球菌保温送检外，所有标本收集后4℃ 保存。
血清
用于检测患者特异性抗体效价以辅助诊 断感染性疾病。 采集血液置于无菌试管中，自然凝固、 血块收缩后吸取血清，56℃加热30分钟 以灭活补体成分。 灭活血清保存于－20℃。
粪便
取含脓、血或粘液粪便置于清洁容器中送 检，排便困难者可用直肠拭子采集。 根据细菌种类不同选用合适运送培养液以 提高阳性检出率（如霍乱）。 一次粪便培养阴性不能完全排除胃肠道病 原菌的存在，对于传染性腹泻患者需三次 送检粪便进行细菌培养。
标本采集ppt演示课件
标本采集
1
标本采集、运送是分析前质量控制的
01
重要部分。
分析前程序包括：从临床医生开出医 嘱开始,到分析检验程序时终止的步
骤, 包括检验申请、患者的准备、原
始样品的采集、运送到实验室并在实 验室进行传输。
2
02
为什么要留取标本？
重视病原学检查，尽可能在使用抗生素之前留取标 本送检，提高病原学诊断，为选药和调整药物提供
02
04
塑料瓶” ————病理科
年度工作概述
呼吸道标本
上呼吸道样本 和 下呼吸道样本
年度工作概述
呼吸道标 本
呼
吸 道
咽拭子标本采集方法
取患者咽部及扁桃体分泌物做细菌培养。 让患者用清水漱口，然后让患者张口发“啊”音， 必要时使用压舌板。 取出培养管中的拭子轻柔、迅速地擦拭两腭弓、 咽及扁桃体。 将拭子插入试管中，塞紧瓶塞
单击此处输入标题 标本采集 年度工作概述
检验科送检
细菌培养
8-10ML注入“刻度带盖塑 料瓶” ————综合楼检验科
结核相关项目
50-60ML注入“注射器”
01
03
————结核楼检验科
生化免疫项目
8-10ML注入“真空抗凝采 血管”（即T-SPOT绿管子2 根） ————综合楼检验科
细胞学检查
15-20ML注入“刻度带盖
1、血液标本
2、胸水标本 3、呼吸道标本 4、小便标本 5、大便标本
年度工作概述
4℃冰箱 ：痰、尿液、粪便、活检组织、 气管冲洗物、导尿管、心包积液、脓和 伤口分泌物等。 室温（25℃）： 脑脊液、泌尿生殖道、 眼、耳、鼻、喉、血液培养、血管导管 尖、厌氧菌培养标本。
年度工作概述 血液
1
标本采集、运送是分析前质量控制的
01
重要部分。
分析前程序包括：从临床医生开出医 嘱开始,到分析检验程序时终止的步
骤, 包括检验申请、患者的准备、原
始样品的采集、运送到实验室并在实 验室进行传输。
2
02
为什么要留取标本？
重视病原学检查，尽可能在使用抗生素之前留取标 本送检，提高病原学诊断，为选药和调整药物提供
02
04
塑料瓶” ————病理科
年度工作概述
呼吸道标本
上呼吸道样本 和 下呼吸道样本
年度工作概述
呼吸道标 本
呼
吸 道
咽拭子标本采集方法
取患者咽部及扁桃体分泌物做细菌培养。 让患者用清水漱口，然后让患者张口发“啊”音， 必要时使用压舌板。 取出培养管中的拭子轻柔、迅速地擦拭两腭弓、 咽及扁桃体。 将拭子插入试管中，塞紧瓶塞
单击此处输入标题 标本采集 年度工作概述
检验科送检
细菌培养
8-10ML注入“刻度带盖塑 料瓶” ————综合楼检验科
结核相关项目
50-60ML注入“注射器”
01
03
————结核楼检验科
生化免疫项目
8-10ML注入“真空抗凝采 血管”（即T-SPOT绿管子2 根） ————综合楼检验科
细胞学检查
15-20ML注入“刻度带盖
1、血液标本
2、胸水标本 3、呼吸道标本 4、小便标本 5、大便标本
年度工作概述
4℃冰箱 ：痰、尿液、粪便、活检组织、 气管冲洗物、导尿管、心包积液、脓和 伤口分泌物等。 室温（25℃）： 脑脊液、泌尿生殖道、 眼、耳、鼻、喉、血液培养、血管导管 尖、厌氧菌培养标本。
年度工作概述 血液
标本采集运送标准操作规程PPT课件
【标准操作程序】
（4）粒细胞减少（成熟时我多核白细胞小于1000×109/L）。 （5）血小板减少。 （6）皮肤黏膜出血。 （7）昏迷. （8）多器官衰竭 （9）血压降低 （10）呼吸加快 （11）降钙素原升高（PCT）
【标准操作程序】
在评估可疑新生儿败血症时，除发热或低烧外，很少培养出细菌，应该补充尿液和脑脊液培养。肺炎链球菌与流感嗜血杆菌菌血症的患儿（特别是2岁或以下的幼儿）一般出现于门诊，常伴有明显的发热（≥38.5℃）和白细胞增多（总数≥ 20,000×109/L）。老年菌血症患者，可能不发热或低体温，如伴有身体不适，肌痛或中风可能是感染心内膜炎的重要信号。
【标准操作程序】
5.3采集方法： 自然排便采集标本时，取有脓血，黏液，组织碎片部分的粪便1—3g（花生米大小）。水样粪便则取絮状物，一般取1—3ml，直接装入运送培养基中送检。 直肠拭子采集粪便标本：先以肥皂和水，将肛门周围洗净，然后用经无菌盐水湿润的棉式子插入肛门超越肛门括约肌约2～3cm，与直肠黏膜表面接触，轻轻旋转，必须将棉式子置于运送培养基中送检。 5.4 采集量： 成形粪便花生米大小1—3 g，水样便1—3 ml。 5.5容器： 粪便标本装于无菌加盖螺旋广口塑料杯；直肠肛拭置于Cary-Bair运送培养基。 5.6 标本容器标识 应包括病人姓名、病员号、标本种类、检验项目、采集时间。
【标准操作程序】
2.3 采集量 5～10ml。 2.4 容器 无菌、带螺旋盖、透明塑料容器。 2.5 标本容器标识 标识内容应包括病人姓名、病员号、标本种类。 2.6 标本运送 标本采集后立即盖紧防止泄漏或容器外部留有残留物。及时送检，室温保存下不得超过2小时，否则应置于 4℃冰箱保存，保存时间不得超过24h。 2.7 注 直接导尿可能导致尿道菌落进入膀胱，增加医源性感染的危险。 8生物安全防护参见《HS-JY-GL-XJ-302生物防护的安全程序》。
（4）粒细胞减少（成熟时我多核白细胞小于1000×109/L）。 （5）血小板减少。 （6）皮肤黏膜出血。 （7）昏迷. （8）多器官衰竭 （9）血压降低 （10）呼吸加快 （11）降钙素原升高（PCT）
【标准操作程序】
在评估可疑新生儿败血症时，除发热或低烧外，很少培养出细菌，应该补充尿液和脑脊液培养。肺炎链球菌与流感嗜血杆菌菌血症的患儿（特别是2岁或以下的幼儿）一般出现于门诊，常伴有明显的发热（≥38.5℃）和白细胞增多（总数≥ 20,000×109/L）。老年菌血症患者，可能不发热或低体温，如伴有身体不适，肌痛或中风可能是感染心内膜炎的重要信号。
【标准操作程序】
5.3采集方法： 自然排便采集标本时，取有脓血，黏液，组织碎片部分的粪便1—3g（花生米大小）。水样粪便则取絮状物，一般取1—3ml，直接装入运送培养基中送检。 直肠拭子采集粪便标本：先以肥皂和水，将肛门周围洗净，然后用经无菌盐水湿润的棉式子插入肛门超越肛门括约肌约2～3cm，与直肠黏膜表面接触，轻轻旋转，必须将棉式子置于运送培养基中送检。 5.4 采集量： 成形粪便花生米大小1—3 g，水样便1—3 ml。 5.5容器： 粪便标本装于无菌加盖螺旋广口塑料杯；直肠肛拭置于Cary-Bair运送培养基。 5.6 标本容器标识 应包括病人姓名、病员号、标本种类、检验项目、采集时间。
【标准操作程序】
2.3 采集量 5～10ml。 2.4 容器 无菌、带螺旋盖、透明塑料容器。 2.5 标本容器标识 标识内容应包括病人姓名、病员号、标本种类。 2.6 标本运送 标本采集后立即盖紧防止泄漏或容器外部留有残留物。及时送检，室温保存下不得超过2小时，否则应置于 4℃冰箱保存，保存时间不得超过24h。 2.7 注 直接导尿可能导致尿道菌落进入膀胱，增加医源性感染的危险。 8生物安全防护参见《HS-JY-GL-XJ-302生物防护的安全程序》。
完整微生物标本的正确采集运送ppt课件
05 微生物标本采集的常见问 题及解决方案
采集方法不当导致的问题
采集量不足
采集的微生物标本量过 少，可能导致检测结果
不准确或无法检测。
采集部位不准确
采集的部位与感染病灶 不符，导致检测结果不
准确。
采集时机不当
在感染病灶未形成或已 消退时采集，可能导致
检测结果为阴性。
采集工具污染
采集工具未经过严格消毒 或污染，可能导致交叉感 染或检测结果不准确。
防止污染
在保存和运输过程中要防 止标本受到污染，确保其 无菌性。
03 微生物标本的运送
运送工具的选择
密封容器
冷藏设备
选择密封性好的容器，以防止微生物 泄漏和交叉污染。
如果需要冷藏，应使用适当的冷藏设 备，以确保微生物活性。
防漏容器
使用防漏容器，以避免在运送过程中 发生泄漏。
运送过程中的温度控制
完整微生物标本的正确采集运送 ppt课件
目录
• 引言 • 微生物标本采集的方法和步骤 • 微生物标本的运送 • 微生物标本的质量保证 • 微生物标本采集的常见问题及解决方案 • 结论
01 引言
Байду номын сангаас 目的和背景
微生物标本采集是诊断和治疗感染性 疾病的关键步骤，正确的采集和运送 方法对于确保实验室检测结果的准确 性和可靠性至关重要。
运送过程中出现的问题
运送时间过长
微生物标本在运送过程中停留时 间过长，可能导致微生物死亡或
繁殖，影响检测结果。
温度控制不当
微生物标本需要在一定的温度条件 下保存和运送，温度过高或过低都 可能影响检测结果。
保护措施不当
微生物标本在运送过程中未得到适 当的保护，可能导致标本受到污染 或损坏。
完整 微生物标本的正确采集运送ppt课件
︕
极易由表皮葡萄球菌造成污染
标本采集步骤
血培养标本的运送要求和拒收标准
采血量
• 成年人采血量为10～20ml, 婴幼儿为1～2ml，儿童3～5ml
血液标本与培养基之比1:5 -1:10为宜
成人血液中含有的菌量 <=10cfu/ml 儿童血液中含有的菌量 100～1000cfu/ml
• 需氧瓶和厌氧瓶
– 对常规血培养，建议采需氧和厌氧的一套血培养瓶 – 当采血量不能满足推荐的血量时，需氧培养优先
先注入哪个瓶？
影响阳性标本检测的因素
绝对需氧菌
苛养菌？
生长因子X，V 维生素B6，K3
1.细菌
兼性厌氧菌 微需氧菌 绝对厌氧菌
影响阳性标本检测的因素
高？
２. 血中细菌的浓度
低？ - 成人：血中细菌1～30 CFU/ml - 儿童：血中细菌高于成人 （100～1000 CFU/ml或更高）
为何要多次采血？
• 血循环中的细菌有“暂时性”、“持 续性” • 一过性的菌血症，细菌仅在外周血中 持续数秒 • 共生菌、复数菌 • 提高检出率、减少漏检，判断病原
采血部位
• 多次采血时，应在不同部位进行 消 毒 剂 的 作 用 时 间 • 切忌在静滴抗菌药物的静脉处采取血标本
避免由插管或导管取标本
4. 标本的采集次数和采集量
采 血 量 与 检 出 率 的 关 系
每增加 1 毫升血 = 增加 3% 的敏感度 （由0.6%至4.7%)
每天1、2、或3次血培养对敏感度的影响
100% 95% 90% 85% 80% 75% 70% 1 2 3
96% 89%
99%
所以一般要求血培养一天做3次
血培养的阳性检出率低原因：