家兔急性失血性休克-家兔失血性休克
医学课件家兔急性失血性休克
对家兔进行病理学检查，观察 组织器官的病理变化，进一步 了解失血性休克对机体的影响
。
04
家兔急性失血性休克的症 状与体征
症状
精神状态改变
家兔出现精神萎靡、反 应迟钝或兴奋不安等症
状。
呼吸急促
呼吸频率加快，呼吸幅 度变浅，甚至出现张口
呼吸。
心跳加速
心率明显增快，心音微 弱。
体温下降
由于大量失血导致体温 下降，甚至出现寒战。
严重影响。
总结词：心率加快
详细描述：为了维持基本的生理功能， 家兔的心率会加快，以增加心输出量。
总结词：血管收缩
详细描述：在休克状态下，家兔的血 管会发生收缩，以减少血液流失，但 这也可能导致器官缺血。
呼吸系统的变化
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总结词：呼吸急促
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详细描述：为了满足机体对氧的需求，家兔的呼吸频率会 增加，出现呼吸急促的现象。
体征
01
02
03
04
皮肤苍白
由于血液大量流失，皮肤呈现 明显的苍白或发绀。
血压下降
收缩压和舒张压均明显降低， 甚至无法测得。
尿量减少
由于肾脏灌注不足，尿量显著 减少或无尿。
肢体厥冷
四肢厥冷，耳部温度下降。
05
家兔急性失血性休克的实 验结果
循环系统的变化
总结词：血压下降 详细描述：由于大量失血，家兔的血 压迅速下降，导致血液循环系统受到
详细描述：由于循环血量减少 ，肾脏的灌注不足，导致尿量
明显减少。
总结词：尿液浓缩
详细描述：在休克状态下，家 兔的肾脏会加强尿液的浓缩， 以减少尿量，从而减少水分的
流失。
家兔失血性休克及其抢救实验报告
家兔失血性休克及其抢救实验报告
实验一：家兔失血性休克模型的建立
实验目的：本实验旨在建立家兔失血性休克模型，以便探究该病情的发生机制及抢救
措施。
实验材料和方法：本次实验材料均来自成年雄性家兔，共有15只，体质量均为2.5
kg左右，每只家兔体内取得150 ml鲜血，并以此构建失血休克模型，放置于恒温器中保
持恒温，监测家兔体温、血氧饱和度、心率等生理指标。
实验结果：按照实验设定，放血完毕后，家兔的体表温比刚开始实验时期降低了 1.2℃以上，血氧饱和度下降到80-90%以下，而心率却急剧上升到160-170次/分钟之外，家兔
还出现了瘙痒、抽搐、呕吐等典型症状，明显发现其已经进入失血性休克状态。
结论：本实验成功建立了家兔失血性休克模型，可供今后失血性休克研究及抢救策略
研究使用。
实验目的：本实验旨在考察用于家兔失血性休克的抢救策略的有效性，并找出最佳的
抢救方案。
实验材料和方法：经过安置好各个参数后，按照实验设计，将15只家兔随机分成3组，每组5只：对照组、抗血清组、血液制品组，分别给予相应的抢救治疗，比较形成失
血性休克的家兔休克恢复情况。
实验结果：经过1个小时的抢救，家兔失血性休克模型的生理指标有显著改善。
其中，血液制品组的体表温降幅最低，血氧饱和度下降最小，心率最低，可见血液制品组的抢救
措施最为有效。
结论：本次实验证实，在家兔失血性休克抢救中，最佳抢救方案应该采用血液制品抢救，并取得良好治疗效果。
家兔失血性休克实验报告范文家兔失血性休克及抢救
家兔失血性休克实验报告范文家兔失血性休克及抢救实验报告实验题目：家兔失血性休克模型的制作及治疗实验目的：制作家兔失血性休克模型，观察家兔血压、心率、呼吸和微循环的变化，进一步理解休克发生的病理生理机制，并了解失血性休克的治疗措施实验对象：家兔，体重1.92kg实验器材与药品：1、器材：兔用手术器械一套、兔手术台、静脉输液装置、动脉和静脉插管各一、三通管、注射器（20,5,1ml）、显微镜、手术线、纱布2、药品：20%乌拉坦、1%肝素、去甲肾上腺素、生理盐水实验步骤：1、抓取家兔并称重，取20%乌拉坦9.6ml经耳缘静脉缓慢推注2、待家兔四肢张力降低，无抵抗，角膜反射消失后，在兔手术台进行牢靠固定并备皮，备皮部位：颈部与腹部3、做颈部正中切口5cm，分层剪开，分离右侧颈外静脉和左侧颈总动脉，小心游离血管3-4cm，在血管的两端穿线备用4、经耳缘静脉注入1%肝素2ml抗凝5、颈外静脉插管：先夹闭近心端，再结扎远心端，用眼科剪向近心端作V形切口，向近心端插管3-4cm,NS维持，5-10滴/min6、颈总动脉插管：先结扎远心端，再夹闭近心端，用眼科剪向近心端作V形切口，向近心端插管3-4cm7、腹部正中切口6-8cm，拉出一段肠系膜（不取盲肠肠系膜），固定于显微镜下观察微循环8稳定5min,记录此状态下BP、HR、R、微循环；然后静脉推注NEO.Iml，观察此时BP、HR、R、微循环的变化并记录9、颈总动脉放血10%（约13ml）,稳定约5min,观察此时BP、HR、R、微循环的变化并记录；继续放血至25%（约35ml），稳定约5min，观察此时BP、HR、R、微循环的变化并记录；然后静脉推注NEO.Iml，观察此时BP、HR、R、微循环的变化并记录10、NE0.25ml，用NS稀释至20ml，静脉滴注，并全血回输，观察此时BP、HR、R、微循环的变化并记录实验结果:状态r、参数BP（mmHg）HR（次/min）R（次/min）微循环变化正常状态106190血流量及流速正常推注NE0.1ml11723254血管收缩，血流加速放血10%9222056血流量及流速变化不明显放血25%4617046血管收缩，血流量减少推注NE0.1ml56176血管进一步收缩，流速加快，流量减少全血回输6015844血管舒张，开始充盈分析讨论:正常状态下，推注NEO.Iml后，与心脏的（31受体结合，使心肌收缩力增强，心率加快，血压升高；与肠系膜血管a受体结合，使肠系膜血管收缩，血流速度加快。
家兔失血性休克及抢救
家兔失血性休克及抢救（一）实验目的1.观察休克发展过程中机体的变化。
2.掌握急性失血性休克模型复制方法。
3.分析讨论急性失血性休克发病机制。
（二）实验原理抗休克治疗的原则：纠酸、扩容、应用血管活性药物防治细胞损伤。
实验中所采用的药物主要的作用是：●山莨菪碱大剂量时可解除小血管痉挛增加组织血流灌注量，改善微循环。
●异丙肾上腺素主要作用有：①心输出量增强②血管舒张，外周阻力下降。
③使收缩压升高，舒张压降低，从而使脉压差升高，但大剂量时会使血压下降明显。
在治疗休克的过程中，在补足血容量的基础上，异丙肾上腺素对中心静脉压高和心输出量低的休克有一定疗效。
●去甲肾上腺素属于α受体激动药，①主要作用有激动血管α1受体，收缩血管，使小动脉、小静脉收缩。
②小剂量时兴奋心脏，使收缩压显著上升，舒张压上升，脉压差增大产生抗休克作用。
大剂量时，会产生缩血管作用，使收缩压、舒张压均升高，但脉压差会下降，引起组织灌流量减少。
●此外，生理盐水、中分子右旋糖酐、全血均用于扩充血容量。
可以逐一试加看动脉升高情况比较扩容升压效果。
（三）实验材料1.实验对象：家兔。
2.实验器材及药品静脉输液装置一套，三通开关，50 ml、20 ml、10 ml注射器各一个，肝素（500μ/ ml），1％普鲁卡因，生理盐水，动物手术器械一套，呼吸血压描记装置，低分子右旋糖苷，20％乌拉坦溶液、台氏液、去甲肾上腺素、山莨菪碱（654-2）。
（四）实验方法1.家兔称重后，以25％乌拉坦4ml/kg，经耳缘静脉注射。
麻醉后，将家兔仰卧背位固定于手术台上。
2.颈部手术：颈部剪毛，正中切口5～6cm，分离气管、左侧颈总动脉及右侧颈外静脉（表浅、色深，较粗，刺激时可见血管收缩变细）。
穿两线，备用。
3.股部手术：一侧股三角区剪毛，触及股动脉搏动，辨明股动脉走向，沿动脉走向做长约3～5cm切口，在股三角区即可见股动脉、股静脉和股神经，分离股动脉。
穿两线备用。
4.肠系膜微循环标本的制备（示教）：腹正中切口，沿左腹直肌旁作约6cm长的纵行切口，钝性分离。
家兔失血性休克实验报告
家兔失血性休克实验报告
实验目的：探究家兔在不同程度失血后对身体机能的影响及失血性休克的发生。
实验方法：
1.实验前令家兔空腹24小时，保证实验数据更精确。
2.选取5只体重相近的家兔，用异丙酚进行麻醉。
3.将家兔置于手术台上，消毒操作后进行切腹手术，暴露血管并取血。
4.分别在实验一组、实验二组、实验三组、对照组分别取血量为7ml，10ml，13ml，无取血。
5.在实验过程中检查家兔的心率及呼吸率，并记录实验数据，如血压，心率等数据。
实验结果：
1.实验一组：取血量为7ml，失血后家兔发生心悸、呼吸急促、体温下降等症状，心率加快，下降到了96次/分钟。
4.对照组：没有进行任何失血处理，心率平稳，保持在120次/分钟左右。
1.家兔失血量较小时，如7ml左右，心率下降速度较慢，家兔出现的症状也较轻。
2.家兔失血量逐渐增大，呼吸急促、体温下降等症状逐渐显露，瞳孔扩大等症状也逐渐出现。
3.家兔失血量逐渐增大，心脏功能逐渐下降，最终可能导致失血性休克，甚至死亡。
4.对照组的数据表明，不进行失血处理的家兔的心率较稳定，生命体征不受任何影响。
通过本次实验，我们深刻认识到失血性休克对家兔身体的严重危害。
家兔失血量逐渐增大，症状逐渐加重，甚至会导致失血性休克、甚至死亡。
因此，在医学实践中，我们应当全面掌握失血性休克的处理方法，以保障患者生命安全。
实验四家兔失血性休克
实验四家兔失血性休克【实验目的】复制家兔失血性休克模型；观察失血性休克时的相关生理指标改变及输血救治过程中各项指标的变化；探讨失血性休克的发病机制。
【实验原理】采用动脉放血的方法，造成家兔失血，使其组织血液灌流量急剧减少，导致微循环障碍，复制失血性休克。
通过及时输血、补液，补充血容量，抢救休克。
【实验对象】家兔。
【实验药品和器材】2%的普鲁卡因，生理盐水，肝素，动脉插管，BL-410生物机能实验系统等。
【实验步骤】1. 选取健康家兔一只，称重，固定于兔台上，剪去颈部、腿部的兔毛，进行基础局部麻醉。
2. 分离颈动脉，穿线以备插管。
3. 分离股动脉，穿线以备插管。
4. 从耳缘静脉注射1%肝素1ml/kg。
5. 插管生理盐水排气，选择通道，进行电脑调零。
6. 结扎颈动脉和股动脉的远心端，止血夹夹住近心端，进行颈动脉插管，股动脉插管。
7. 从股动脉取5ml血液，标记为①，以待测HCT8. 观察血压、心率、呼吸、角膜反射，球结膜血管充盈度，HCT9. 继续从股动脉放血（约30-40ml，加入混有生理盐水和肝素的杯子中），直到血压下1/2。
记录下此时的血压。
10. 10-15min之后，观察血压、呼吸、心率、角膜反射、球结膜充盈度，取5ml血液标记为②，待测HCT11. 将①②4000转离心五分钟，记录HCT勺数据。
12. 静脉快速回输血液救治，血压回升后再次观察上述各项指标，记录下观察结果。
【实验结果】放血量：30ml【实验讨论】1. 机体一般失血多少可以引起休克？答：机体短时间内若失血超过总血量的25%-30%超出机体代偿的能力，即可引起心排出量和平均动脉压下降而发生休克。
2. 机体失血后为何导致相关生理指标的变化？答：①失血性休克时，刚开始血压降低，失血休克代偿期，血压有所恢复,心率加快。
失血休克使得循环血量减少，中心静脉压降低，心排出量降低，平均动脉压降低，弓I起心血管反射，迷走神经抑制，交感神经兴奋，释放大量去甲肾上腺素，作用于心脏B1受体，兴奋心脏，使心肌收缩力增强，心率加快；作用于血管a 1受体使血管平滑肌收缩。
家兔急性失血性休
【实验步骤】 实验步骤】
治疗分组 失血性休克30min后，各组按下列方案开始进行治疗： 失血性休克 后 各组按下列方案开始进行治疗： 注射去甲肾上腺素组:从耳缘静脉缓慢注射去甲肾上腺素 ①注射去甲肾上腺素组 从耳缘静脉缓慢注射去甲肾上腺素 2mg/只；②补液 输血 山莨菪碱组：将失血全血，加山莨菪 补液+输血 山莨菪碱组：将失血全血， 输血+山莨菪碱组 只 倍失血量的生理盐水， 碱1mg/kg，加2倍失血量的生理盐水，从耳缘静脉缓慢推注； ， 倍失血量的生理盐水 从耳缘静脉缓慢推注； 补液组：将与失血量等量的生理盐水，从耳缘静脉缓慢注； ③补液组：将与失血量等量的生理盐水，从耳缘静脉缓慢注； ④输血组：将从股动脉抽出的血，全部沿股动脉会输到家兔体 输血组：将从股动脉抽出的血， 内;⑤灌药组：将汤药从家兔食道灌入；⑥对照组：不抢救。 ⑤灌药组：将汤药从家兔食道灌入； 对照组：不抢救。 从治疗开始后10min、20min、30min、1h，观察记录此 从治疗开始后 、 、 、 ， 时间段内各项指标的变化。 时间段内各项指标的变化。
家兔急性失血性休克的治疗
【实验目的】 实验目的】
壹 采用颈动脉快速放 血法复制兔失血性 休克模型。 休克模型。
贰 比较各组治疗方法 对失血性休克的疗 效。
【实验原理】 实验原理
传统经典失血性休克实验， 传统经典失血性休克实验，在有限的时间内难以区 分出输液、输血、灌药、去肾上腺素、补液+输血 输血+山莨菪 分出输液、输血、灌药、去肾上腺素、补液 输血 山莨菪 碱五组治疗效果的时间差异， 碱五组治疗效果的时间差异，但微循环的复苏效果却存在明 显差异，本实验在传统经典失血性休克实验的基础上， 显差异，本实验在传统经典失血性休克实验的基础上，增加动 物肠系膜微循环的观测，可以清楚比较出四组治疗方案的效果 物肠系膜微循环的观测， 差异。 差异。
家兔失血性休克及抢救-TL
淤 血 缺 氧 期 ： 灌多于流，血液淤滞 组织灌流状态 组织细胞淤血性缺氧
二、休克难治期
微循环的改变
二、休克难治期（微循环衰竭期）
微循环衰竭期 ： 不灌不流，血液高凝 组织灌流状态 组织细胞无血供
【实验步骤】
• 一、术前准备 • 1、称重 • 2、麻醉 • 药品：25%乌拉坦溶液 • 用量：4ml/kg • 途径：耳缘静脉注射 • 3、固定 • 4、手术（颈部、腹部、左侧腹股沟）
乱及器官功能障碍的病理过程。
休克的病因和分类
一、休克的病因
失血与失液 hemorrhagic shock
创伤 traumatic shock 过敏 anaphylactic shock 心脏和大血管病变 cardiogenic shock
烧伤 burn shock
感染 infectious shock 强烈神经刺激 neurogenic shock
正常
6---10
早期加 深加快， 35---45 放血后 晚期呼 吸抑制 回升， 未达到 正常水 平
减少
减慢
减少(0-4)
抢救后
减慢
增加
减小， 未恢复 有所增 但未恢 到正常， 加，但 复至正 仍然很 未恢复 常 慢 到正常
思考题目
• • 急性大量失血是如何引起休克发生的？ 为什么输回所失的全部血液后家兔血压仍 未能恢复至原来的水平？
以失血性休克为例，按照休克的发展过程分为三期： Ⅰ期： 休克的代偿期
Ⅱ期： 休克的进展期 Ⅲ期： 休克的难治期
一、休克的代偿期
微循环的改变
一、休克的代偿期（缺血性缺氧期）
缺 血 缺 氧 期 ： 少灌少流，灌少于流 组织灌流状态 组织缺血、缺氧
实验三 家兔失血性休克
实验三家兔失血性休克【实验目的】1.复制失血性休克的动物模型。
2.观察失血性休克时和抢救休克时动物的功能代谢变化及微循环改变。
3.了解失血性休克的治疗。
【实验原理】休克是多种原因引起的，以机体急性微循环障碍为主要特征，并可导致器官功能衰竭等严重后果的全身性病理过程。
失血导致血容量减少，是休克常见的病因。
休克的发生与否取决于失血量和失血速度，当血量锐减（如外伤出血、胃十二指肠溃疡出血或食管静脉曲张出血）超过总血量的20%以上时，极易导致急性循环障碍，组织有效血液灌流量不足，即休克的发生。
根据休克过程中微循环的改变，将休克分为三期：休克早期（微循环缺血期或缺血性缺氧期）；休克期（微循环淤血期或淤血性缺氧期）；休克晚期（微循环衰竭期或DIC 期）。
但依失血程度及快慢的不同，各期持续时间、病理生理改变和临床表现均有所不同。
对失血性休克的治疗，首先强调的是止血和补充血容量，以提高有效循环血量、心排血量，改善组织灌流；其次根据休克的不同发展阶段合理应用血管活性药物，改善微循环状态。
【实验步骤】⒈麻醉和固定家兔称重后，25%乌拉坦按4ml/kg体重耳缘静脉注射麻醉，动物仰卧固定，剪去手术部位被毛。
⒉颈部手术从甲状软骨向下作5cm长的颈正中切口，分离气管、左侧颈总动脉和右侧颈外静脉。
⒊启动MedLad生物信号采集处理系统。
点击MedLad“文件”菜单“打开配置”，选择“失血性休克”。
⒋插管左侧颈总动脉插入与40kPa换能器相连的颈动脉导管，推入少量的0.3%肝素抗凝，保持动脉通畅；从右侧颈外静脉插入与10kPa换能器相连的静脉导管，深约5cm，推入少量的0.1%肝素抗凝，保持静脉通畅；气管插管，连接呼吸换能器，描记呼吸曲线。
5.放血前观察动物各项生理指标，包括一般情况、皮肤粘膜颜色、心率、血压、呼吸、肛温。
6.打开三通开关，使血液从颈总动脉流入含少量肝素抗凝的50ml注射器注射器内，注意观察血压变化，一直放血使血压（平均动脉压）降至45mmHg，并通过调节注射器内放出的血量，使血压稳定在45mmHg水平15～20min后，观察失血后动物各生理指标。
家兔失血性休克及其实验性治疗-实验报告
家兔失血性休克及其实验性治疗——《医学机能实验学》实验报告作者：Aspirin实验日期：2013年12月18日院系：第一临床医学院专业：临床医学【实验题目】家兔失血性休克及其实验性治疗【实验目的】1.复制失血性休克的动物模型2.观察失血性休克时和抢救过程中动物的功能代谢变化及微循环改变3.了解失血性休克的抢救治疗方案【实验原理】休克是多种原因引起的，包括大出血、创伤、中毒、烧伤、窒息、感染、过敏、心脏泵功能衰竭等，以机体微循环功能紊乱为主要特征，并可导致多器官功能衰竭等严重后果的全身性病理过程。
失血导致血容量减少，是休克常见的病因。
休克的发生与否取决于失血量和失血速度，当血量锐减，如外伤引起的出血、消化性溃疡出血、食管曲张静脉破裂、妇产科疾病所引起的出血等，超过总血量的25%~30%，超出机体代偿的能力，即可引起心排血量和平均动脉压下降而发生休克。
根据失血性休克过程中微循环的改变，将休克分为三期：休克早期（休克代偿期或微循环缺血性缺氧期）、休克中期（可逆性失代偿期或微循环瘀血性缺氧期）、休克晚期（不可逆性失代偿期或微循环衰竭期）。
但依失血程度及速度的不同，各期持续时间、机体的功能代谢变化及临床表现均有所不同。
对失血性休克的治疗，首先强调的是止血和补充血容量，以提高有效循环血量、心排血量，改善组织灌流；其次根据休克的不同发展阶段合理应用血管活性药物，改善微循环，必要是可予抗炎等治疗。
【材料与方法】1.实验动物家兔（体重2.0kg以上）2.器材与药品器材：兔手术台、婴儿秤、兔用器械1套、动脉导管、三通管、气管插管、体温计、注射器（1ml、10 ml 、50 ml）、输液装置、丝线（7#、1#）、纱布、生物信号采集与处理系统药品：25%乌拉坦溶液、肝素生理盐水、1%普鲁卡因3.方法与步骤①麻醉固定家兔称重后，25%乌拉坦溶液按4ml/kg剂量经耳缘静脉注射麻醉，仰卧位固定于兔手术台上，减去手术部位被毛。
实验四家兔失血性休克
实验四家兔失血性休克【实验目的】复制家兔失血性休克模型；观察失血性休克时的相关生理指标改变及输血救治过程中各项指标的变化；探讨失血性休克的发病机制。
【实验原理】采用动脉放血的方法，造成家兔失血，使其组织血液灌流量急剧减少，导致微循环障碍，复制失血性休克。
通过及时输血、补液，补充血容量，抢救休克。
【实验对象】家兔。
【实验药品和器材】2%的普鲁卡因，生理盐水，肝素，动脉插管，BL-410生物机能实验系统等。
【实验步骤】1.选取健康家兔一只，称重，固定于兔台上，剪去颈部、腿部的兔毛，进行基础局部麻醉。
2.分离颈动脉，穿线以备插管。
3.分离股动脉，穿线以备插管。
4.从耳缘静脉注射1%肝素1ml/kg。
5.插管生理盐水排气，选择通道，进行电脑调零。
6.结扎颈动脉和股动脉的远心端，止血夹夹住近心端，进行颈动脉插管，股动脉插管。
7.从股动脉取5ml血液，标记为①，以待测HCT。
8.观察血压、心率、呼吸、角膜反射，球结膜血管充盈度，HCT。
9.继续从股动脉放血（约30-40ml，加入混有生理盐水和肝素的杯子中），直到血压下1/2。
记录下此时的血压。
10.10-15min之后，观察血压、呼吸、心率、角膜反射、球结膜充盈度，取5ml血液标记为②，待测HCT。
11.将①②4000转离心五分钟，记录HCT的数据。
12.静脉快速回输血液救治，血压回升后再次观察上述各项指标，记录下观察结果。
【实验结果】放血量：30ml观察指标放血前（正常）放血后输血输液后（理论结果）角膜反射（+/-） + + +球结膜血管充盈度充盈充盈充盈心率（次/分）115 57 110呼吸正常加深加快逐渐恢复正常血压（详情见图）正常先下降后有所回升缓慢上升至正常HCT 44 32 43【实验讨论】1.机体一般失血多少可以引起休克？答：机体短时间内若失血超过总血量的25%-30%，超出机体代偿的能力，即可引起心排出量和平均动脉压下降而发生休克。
2.机体失血后为何导致相关生理指标的变化？答：①失血性休克时，刚开始血压降低，失血休克代偿期，血压有所恢复,心率加快。
家兔失血性休克实验报告
家兔失血性休克实验报告引言失血性休克是指由于大量失血导致血容量急剧减少，无法维持正常体循环而引起的一种严重病理状态。
该病理条件在临床上较为常见，但其发病机制尚未完全明确。
本实验旨在通过实验动物家兔模型，研究失血性休克的发生过程以及相关生理指标的变化。
材料与方法实验动物本实验选用3只健康雄性家兔（品系：新西兰白兔），体重均在2.5-3.0kg之间。
实验分组将3只家兔随机分为以下两组：1.实验组（n=2）：给予家兔产生失血性休克的处理2.对照组（n=1）：不进行任何处理，作为对照实验过程1.家兔饭前禁食12小时，但可以自由饮水。
2.每只家兔在实验前进行术前准备，包括固定家兔以及检查基础生理指标。
3.实验组的家兔进行1.5 mL/kg的大量出血处理，同时监测动脉血压、心率、血液氧饱和度和血红蛋白浓度的变化。
4.对照组的家兔不进行任何处理，只进行基础指标的监测。
数据处理与统计分析分析实验组与对照组中动脉血压、心率、血液氧饱和度和血红蛋白浓度的变化，并进行统计分析。
使用SPSS软件进行t检验，p值小于0.05视为统计学意义。
结果实验组中，家兔在大量出血后，动脉血压和心率明显下降，血液氧饱和度和血红蛋白浓度显著降低。
对照组中，这些指标变化不明显或无明显变化。
具体数据如下表所示：指标实验组（n=2）对照组（n=1）动脉血压（mmHg）78.5 95.2心率（次/min）110 92血液氧饱和度（%）86 95血红蛋白浓度（g/dL）7.2 9.5经过统计分析，实验组与对照组之间的动脉血压、心率、血液氧饱和度和血红蛋白浓度的差异具有统计学意义（p<0.05）。
讨论本实验以家兔模型进行失血性休克的研究，结果表明在大量出血后，家兔的动脉血压和心率会明显下降，血液氧饱和度和血红蛋白浓度也会显著降低。
这些结果与临床上的失血性休克表现一致，说明该模型具有较好的可行性和可靠性。
然而，实验结果仅仅是初步验证了家兔模型在失血性休克研究中的适用性，还需要进一步进行更加详细的研究。
家兔失血性休克实验设计
家兔失血性休克实验设计实验背景：失血性休克是由于大量失血导致循环血量减少、组织缺氧和血压下降的一种病理状态。
家兔是广泛应用于医学实验中的模型动物之一，因其相对容易操作、解剖方便以及结构与人类相近等特点而受到研究者的广泛青睐。
本实验旨在通过家兔建立失血性休克模型，在休克状态下观察生物学指标的变化，为进一步研究失血性休克的发病机制、病理变化以及相关治疗方法提供实验依据。
实验设计：1.动物选择和处理：选择健康的成年家兔作为实验对象，除毛洗净并寄生虫处理，随后进食禁食12小时，并限水制禁水12小时。
2.分组设计：将家兔随机分为实验组和对照组，每组10只家兔。
实验组：进行失血性休克模型制备，并观察指标变化。
对照组：未进行任何处理，作为对照。
3.失血性休克模型制备：3.1实验组家兔经过前期处理后，进行麻醉，使用无菌条件下的1%戊巴比妥钠溶液注射麻醉，麻醉控制在较浅的水平。
3.2每只家兔将其右侧颈部动脉用吸引管插入失血组中，通过微创方法控制失血量。
3.3失血量控制为总血量的30%，通过控制失血时间和抽取失血速度实现。
3.4控制失血后立即停止失血，并进行下一步观察。
4.实验观察指标：4.1血压测定：使用无菌条件下的血压计测定家兔麻醉前和失血后不同时间点的平均动脉血压。
测定方案：在颈部动脉上一根合适的动脉进行逐秒测量，记录测得的数据并计算平均值。
4.2血液生化指标测定：失血后不同时间点采集适量的静脉血样本，采用血液生化分析仪测定血红蛋白浓度、白细胞计数、血小板计数等指标。
4.3组织病理学观察：失血后不同时间点处死家兔，取出心脏、肝脏、肾脏等重要器官进行组织取样，固定、染色、制片并进行镜检。
5.数据处理和统计：将数据进行统计学分析，使用SPSS软件进行方差分析，结果以均值±标准差表示，并进行显著性检验。
实验预期结果：预计实验组家兔在失血后将出现血压下降、血液生化指标异常等现象，家兔组织病理学观察也将显示出失血所导致的病理变化。
家兔的失血性休克与抢救
家兔失血性休克及抢救实验目的：1.学习哺乳类动物动脉血压的直接描述方法，观察神经和某些体液因素对微循环机能的影响。
2.复制几种类型休克的动物模型，并通过电视录像，观察休克发生发展过程中血压和微循环血流等的变化，加深对于”休克发病的关键不在于血压，而在于血流“的理论认识。
3.设计抢救方案，加深对休克防治原则及所用药物药理作用的理解，培养独立分析问题，解决问题的能力。
实验原理：1. 动脉血压是动脉血管内的血液对于单位面积血管管壁产生的压力。
影响动脉血压的因素有心脏每搏输出量、心率、外周阻力、主动脉与大动脉的顺应性以及循环血量和血管系统的比例。
2. 动脉血压是心血管系统活动的的反映，影响心血管系统的神经与体液因素有交感神经、迷走神经、交感缩血管神经、肾上腺素与去甲肾上腺素。
减压反射是神经调节主要方式，减压反射的构成为感受器：颈动脉窦与主动脉弓传入神经：减压神经与迷走神经神经中枢：延髓传出神经：交感神经与迷走神经效应器：心肌细胞膜上的受体。
而血管舒缩功能及神经体液调节异常将导致循环系统功能紊乱，引起血压改变，甚至导致休克的发生。
4.休克：各种强烈的致病因子作用于机体引起的急性循环衰竭，其特点是微循环障碍、重要器官灌流不足和细胞功能代谢障碍，由此引起的全身危重的病理过程。
5.休克的分期：一期:缺血性缺氧期二期:淤血性缺氧期三期:微循环衰竭期6.休克的防治原则：快速输血并且大量补液，快速扩充血容量。
在快速扩充血容量的基础上，选择性的运用血管活性药物。
实验对象：家兔（1.15kg）实验步骤：1.动物称重，麻醉，仰卧固定。
2.颈部手术操作：切开皮肤→分离组织与肌肉→分离一侧颈总动脉→全身肝素化→动脉插管→描记动脉血压3.分离颈外静脉，向颈外静脉输入生理盐水。
4.分离股动脉向心方向插管。
5.少量放血开放股动脉上动脉夹，自股动脉少量放血，当放血量达全身血量10%时夹闭股动脉，观察各指标15分钟。
6.大量放血放血量约为全身血量的25%，观察各指标15分钟。
家兔失血性休克及其抢救
广东医学院生理学教研室 Depart. Of Physi. GDMC
右旋糖苷-40： 右旋糖苷-40： a.直接补充血容量， a.直接补充血容量，将组织中细胞外液引入 直接补充血容量 血管内，使血容量进一步扩大。 血管内，使血容量进一步扩大。 b.阻止RBC、Pt聚集、降低血液粘滞度， b.阻止RBC、Pt聚集、降低血液粘滞度， 阻止RBC 聚集 改善微循环，纠正血液流变学改变。 改善微循环，纠正血液流变学改变。 c.覆盖保护细胞、血管壁。 c.覆盖保护细胞、血管壁。 覆盖保护细胞
广东医学院生理学教研室 Depart. Of Physi. GDMC
参数设置
采样 显示方式 采样间隔 采样通道 处理名称 放大倍数 上限频率 时间常数 参数 记录仪 1ms 1 血压 100 30 直流
3 中心静脉压 500 30 直流
广东医学院生理学教研室 Depart. Of Physi. GDMC
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4.纠正酸中毒： 4.纠正酸中毒：5%NaHCO3 纠正酸中毒 可与Ca 竞争， H+可与Ca2+竞争，影响血管活性药物的疗 效，也影响心肌收缩力，导致高血钾，必 也影响心肌收缩力，导致高血钾， 须先纠酸 5.血管活性药物的应用：扩管药(山莨菪 5.血管活性药物的应用：扩管药( 血管活性药物的应用 碱），（在扩容基础上，以免一过性低血 ），（在扩容基础上， 在扩容基础上 压） 6.保护细胞， 6.保护细胞，改善细胞功能 保护细胞
第十次实验
家兔失血性休克及其抢救
刘古锋
TEL:22896333;QQ:287601184
广东医学院生理学教研室 Depart. Of Physi. GDMC
家兔失血性休克及抢救
实验目的
1. 掌握失血性休克动物模型的复制方法。 2. 观察失血性休克时机体的一般状态及呼
吸、血压、心率、中心静脉压、尿量的变 化，了解失血性休克的病理生理过程。 3. 了解失血性休克的抢救原则和抢救方法。 。
实验原理
失血性休克是临床上常见的急症，由于血容量减少， 机体有效循环血量降低，从而使机体重要脏器血液 灌流减少，而微血管的持续收缩与痉挛又加重了器 官的缺血，使器官功能进一步障碍。本实验采用颈 总动脉放血方法，造成机体有效循环血量减少，复 制失血性休克。通过实验进一步了解失血性休克时 心、肺、肾等器官的功能障碍，加深对失血性休克 的认识。由于微循环障碍是失血性休克的基础，治 疗的主要措施就是改善微循环灌流，因此，实验中 采用回输血液及输入生理盐水方法来改善微循环灌 流状态，对失血性休克进行抢救。
9. 停止放血，倒掉输液瓶中剩余的生理盐水，将注 射器内的血液加入到输液瓶中，快速从静脉输回放 出的血液和生理盐水，进行抢救，输血输液总量为 3倍失血量，速度为80-100滴/min。
10. 输完血液及生理盐水后，观察动物一般状态及 各项生理指标，评价抢救效果。
11. 若实验中实验小组较多，输液治疗组还可分为： 与失血量等量的生理盐水＋失血全血＋去甲肾上腺 素（0.75mg/kg.bw），2倍失血量生理盐水＋失血 全血＋654-2（1mg/kg. bw）。
4. 本实验中各管道内最易发生凝血，当 出现以上情况后应如何处理？
3. 自耳缘静脉输入1%肝素1ml/kg. bw抗凝后，用丝线结扎颈总 动脉远心端，动脉夹夹闭近心端，插入充满枸橼酸钠的动脉套管 结扎固定，将套管一端连于压力换能器，经记录仪记录血压，另 一端备放血用。
4. 输液装置内加入生理盐水200ml，排净输液管道及水检压计内 的气泡，结扎颈浅静脉远心端，插入与输液装置及水检压计相连 的静脉插管，检查通畅后以10~15滴/分速度缓慢输入较多，要减少手术性出血。对部分 项目（如输尿管插管），手术可少做或不做，以确 保实验的成功。
家兔失血性休克实验报告
病理生理实验报告——家兔失血性休克——【实验目的】1、了解失血性休克动物模型的复制方法并复制失血性休克的动物模型；2、观察失血性休克时和抢救休克时动物的功能代谢变化及微循环改变；3、了解失血性休克的治疗，探讨失血性休克的发病机理及救治措施。
【实验原理】休克是多种原因引起的，以机体急性微循环障碍为主要特征，并可导致器官功能衰竭等严重后果的全身性病理过程。
失血导致血容量减少，是休克常见的病因。
休克的发生与否取决于失血量和失血速度，当血量锐减（如外伤出血、胃十二指肠溃疡出血或食管静脉曲张出血）超过总血量的20%以上时，极易导致急性循环障碍，组织有效血液灌流量不足，即休克的发生。
根据休克过程中微循环的改变，将休克分为三期：休克早期（微循环缺血期或缺血性缺氧期）；休克期（微循环淤血期或淤血性缺氧期）；休克晚期（微循环衰竭期或DIC期）。
但依失血程度及快慢的不同，各期持续时间、病理生理改变和临床表现均有所不同。
对失血性休克的治疗，首先强调的是止血和补充血容量，以提高有效循环血量、心排血量，改善组织灌流；其次根据休克的不同发展阶段合理应用血管活性药物，改善微循环状态。
【实验对象】家兔【实验器材】BL-420生物机能实验系统手术器械、输液装置、尿量测定装置、量筒、注射器、针头、20%乌拉坦、1%肝素、1%NA、生理盐水。
【观察指标】动脉血压（BP） mmHg中心静脉压（CVP） cmH2O呼吸（R）频率、幅度尿量（U） ml/10min【实验步骤】1、称重麻醉:（乌拉坦5ml/kg）;2、固定备皮:仰卧固定，颈部和腹部剪毛备皮;3、血管分离:颈部正中切口，分离右侧颈外V和左侧颈总A ，穿双线备用;4、荷包缝合:切口部位：下腹部耻骨联合上方3-5cm内，正中切口;5、肝素抗凝:（耳缘V,1ml/kg）排净空气，尽量靠近远心端，回抽有血;了6、血管插管:结扎远心端，夹闭近心端，仅先后顺序不同;7、呼吸装置: 胸腹部正中皮肤呼吸最明显处，穿单线固定，并连于张力传感器;8、 0.01%AD（0.2ml）第一次记录9、复制休克（40mmHg,30min）第二次记录10、注射NA（耳缘注射,1ml/kg）第三次记录11、静脉补液（40～60滴/分）第四次记录【注意事项】1、麻醉深浅要适度，麻醉过浅，动物疼痛，可致神经源性休克；过深则抑制呼吸。
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高仁甫 卫生与健康系
烦躁不安
血压降低
大量出汗 四肢冰冷 脉搏细速
休克病人临床表现
休克的共同特征
机体微循环障碍
一．实验目的
掌握急性失血性休克模型复制方法
观察休克发展过程中机体的变化
分析讨论急性失血性休克发病机制
二．实验原理
休克(shock)的分期：
休克晚期微循环改变镜下视频
4.复制休克模型
少量放血（10% ） 大量放血（20%） 观察 观察 处死
模型复制成功
八．注意事项
麻醉 动脉插管 肠系膜的固定 分工协作培养团队精神
实验讨论
1.家兔发生休克过程中口唇颜色和 动脉血压有何变化并分析其机制？ 2.家兔发生休克过程中肠系膜微循 环有何变化并分析其机制？
一期:缺血性缺氧期
Ischemic anoxia phase
二期:淤血性缺氧期
Stagnant anoxia phase
三期:微循环衰竭期
Microcirculation failure phase
三．实验对象
雄性成年家兔（1.8-2.5kg）
四．实验药品
20%乌拉坦溶液
0.3%肝素生理盐水
分离气管 颈总动脉 动脉插管
气管插管
分离
动脉插管肝素化 全身肝素化
描记动脉血压
正常动脉血压曲线
3.腹部手术操作
腹部切口 出体外 探查小肠并牵拉 放入微循环灌流盒
显微镜下观察
固定肠系膜
4.复制休克模型
少量放血（10% ） 观察
休克早期微循环改变镜下视频
4.复制休克模型
少量放血（10%） 大量放血（20%） 观察 观察
九．实验报告
实验目的 实验原理 实验对象 实验药品与器材 观察项目 实验步骤 结果分析
珍惜每一天， 从现在开始！ Nhomakorabea台氏液
五．实验器材
兔实验台 动脉插管 恒温水浴箱
气管插管 微循环灌流盒
哺乳动物手术器械一套 BL-410生物信号采集系统
显微镜
注射器
六．观察项目
家兔口唇颜色的变化
家兔动脉血压的变化 家兔小肠肠系膜微循环变化
七．实验步骤
1.一般准备操作
2.颈部手术操作 3.腹部手术操作 4.复制休克模型
1.一般准备操作
抓取
称重 麻醉（20%
乌拉坦，5ml/kg)
固定
备皮
角 膜 反 射
夹 肢 反 射
2.颈部手术操作
切开皮肤 分离组织与肌肉 气管插管
分离气管
气管插管
2.颈部手术操作
切开皮肤 分离组织与肌肉
分离气管 颈总动脉 动脉插管
气管插管
分离
动脉插管肝素化
动脉插管
2.颈部手术操作
切开皮肤 分离组织与肌肉