PCR和RT-PCR(11-12章)

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rtpcr原理

rtpcr原理

rtpcr原理RT-PCR原理。

RT-PCR(Reverse Transcription Polymerase Chain Reaction)是一种将RNA转录成cDNA,然后再进行PCR扩增的技术。

它是PCR技术的一个变种,常用于检测RNA病毒、研究基因表达等领域。

下面将详细介绍RT-PCR的原理。

首先,RT-PCR的第一步是将RNA转录成cDNA。

这一步需要使用逆转录酶(Reverse Transcriptase)来完成。

逆转录酶能够将RNA模板上的核糖核酸序列转录成互补的DNA序列。

在这一步中,需要加入一条引物(primer),它会与RNA模板上的特定序列结合,作为逆转录酶合成cDNA的起始点。

接下来,转录生成的cDNA会作为PCR的模板进行扩增。

PCR扩增是通过DNA聚合酶(DNA Polymerase)在不断变换的温度下进行的。

首先是变性,将双链DNA变性为两条单链DNA。

然后是退火,引物与模板DNA结合。

最后是延伸,DNA聚合酶在引物的引导下合成新的DNA链。

这样,经过多轮循环,就可以将少量的RNA扩增成大量的DNA。

RT-PCR的原理可以通过以下几个关键步骤来概括,首先是逆转录,将RNA转录成cDNA。

然后是PCR扩增,通过多轮循环将cDNA扩增成大量的DNA。

最终,可以通过凝胶电泳、实时荧光定量PCR等方法来检测扩增产物。

RT-PCR的原理在实际应用中有着广泛的意义。

例如,在病毒检测中,可以通过RT-PCR来检测病毒RNA,从而进行病毒的早期诊断和监测。

在基因表达研究中,可以通过RT-PCR来检测特定基因的mRNA水平,从而了解基因的表达情况。

此外,RT-PCR还可以用于克隆特定基因、分析基因多态性等领域。

总的来说,RT-PCR是一种重要的分子生物学技术,其原理简单清晰,应用广泛。

通过将RNA转录成cDNA,然后再进行PCR扩增,可以快速、准确地检测目标RNA的存在,从而在医学诊断、基因表达研究等领域发挥重要作用。

pcr种类和原理

pcr种类和原理

PCR种类和原理引言聚合酶链反应(PCR)是一种基因分析技术,广泛应用于分子生物学领域。

通过PCR,可以在短时间内扩增一小段DNA序列,从而方便进行基因检测、DNA测序等相关操作。

本文将介绍PCR的种类和原理。

PCR的种类PCR根据特定的用途和反应条件的不同,可以分为以下几种不同类型:标准PCR标准PCR是PCR的最基本形式,包括三个步骤:变性、退火和延伸。

在变性步骤中,将PCR反应体系中的DNA序列加热至高温,使其两个链解开。

然后,降温至一定温度,使引物(寡核苷酸)与DNA序列的两个链的末端结合。

最后,在合适的温度下,通过DNA聚合酶,使DNA序列的两个链延伸。

逆转录PCR逆转录PCR(RT-PCR)是一种将RNA转录成DNA的反应。

通过使用逆转录酶将RNA转录成cDNA,然后进行PCR扩增,可以更方便地研究RNA的表达和变化。

定量PCR定量PCR(qPCR)是一种用于测量DNA序列数量的PCR技术。

通过引入荧光探针或染料,可以实时监测PCR反应的进行,并据此计算目标DNA序列的起始数量。

数字PCR数字PCR是一种通过将反应体系分成多个小区域,并进行单分子级别的PCR扩增,实现对DNA序列的精确计数的方法。

长PCR长PCR用于扩增较长的DNA序列。

通常,标准PCR技术在扩增1000个碱基以上的DNA序列时表现不佳,而长PCR通过优化反应条件,可以扩增数千个碱基以上的DNA 序列。

PCR的原理PCR的原理基于DNA的复制过程。

PCR反应体系主要包括DNA模板、引物、DNA 聚合酶和反应缓冲液。

下面是PCR反应的基本步骤:1.变性:将反应体系加热至95°C,使DNA模板的双链解开。

此步骤中,DNA模板上的两个链会分离开,形成两个单链模板。

2.退火:降温至较低的温度,使引物与模板DNA的单链序列互补结合。

每个引物在目标区域的两端结合。

3.延伸:在适当温度下,DNA聚合酶开始将引物作为起始点,向外延伸合成新的DNA链,形成与模板DNA互补的两条新的DNA链。

PCR技术原理ppt

PCR技术原理ppt
• PCR反应用耐高温的 Taq DNA聚合酶,一 次性地将反应液加好后,即在DNA 扩增液 和水浴锅上进行变性-退火-延伸反应,一般 在2~4 小时完成扩增反应。扩增产物一般用 电泳分析,不一定要用同位素,无放射性污 染、易推广
PCR基本原理
PCR(Polymerase Chain Reaction,聚合酶链反应)是一种选择性 体外扩增DNA或RNA的方法.它包括三个基本步骤: (1) 变性 (Denature):目的双链DNA片段在94℃下解链; (2) 退火(Anneal):两种 寡核苷酸引物在适当温度(50℃左右)下与模板上的目的序列通过氢键 配对;(3) 延伸(Extension): DNA模板—引物结合物在TaqDNA聚合酶 的作用下,以dNTP为反应原料,靶序列为模板,按碱基配对与半保 留复制原理,合成一条新的与模板DNA 链互补的半保留复制链重复 循环变性--退火--延伸三过程,就可获得更多的“半保留复制链”,而 且这种新链又可成为下次循环的模板。每完成一个循环需2~4分钟, 2~3小时就能将待扩目的基因扩增放大几百万倍。(Plateau)。 到达 平台期所需循环次数取决于样品中模板的拷贝。 。
聚合酶链式反应也可以当作一项极其重要的酶促合成 DNA技术。PCR又称为无细胞克隆系统或特异性DNA序列体 外引物定向酶促扩增法,是基因扩增技术的一次重大革新,它 可将极微量的靶DNA特异地扩增上百万倍。
70年代初,Kleppe等人就提出了PCR的工作原理。Saiki (1985)和Mullis(1986)两家研究室分别用改进的Kleppe 法获得了大量染色体DNA单拷贝基因。当时的PCR技术须在 每次变性和退火后,扩增反应前重新加入DNA聚合酶。1988 年,由于在PCR系统引入了热稳定的TaqDNA聚合酶,这是从 水生栖热菌(Thermusaquaticus)中提取的耐热DNA聚合酶, 简称Taq DNA聚合酶。多次循环后的Taq DNA聚合酶仍然具 有活性,因此反应体系自动往复多次地进行对所需的DNA的 片段的酶促合成,使反应产物按指数增长,所以命名为聚合酶 链式反应。

自己总结:透彻易懂pcr rt-pcr原理【最新】

自己总结:透彻易懂pcr rt-pcr原理【最新】

自己总结:透彻易懂pcr rt-pcr原理【最新】PCR原理聚合酶链式反应(Polymerase Chain Reaction),简称PCR,是一种分子生物学技术,用于放大特定的DNA片段。

可看作生物体外的特殊DNA复制。

PCR这项技术,被广泛地运用在医学和生物学的实验室,例如用于判断检体中是否会表现某遗传疾病的图谱、传染病的诊断、基因复制以及亲子鉴定。

DNA 变性DNA denaturation : 加热或用碱处理双链DNA,使氢链断裂,结果DNA变成为单链,此称为DNA的变性。

发生这种变化时的温度称为融解温度,鸟嘌呤和胞嘧啶含量高的DNA融解温度也高。

由于变性的结果DNA的紫外线吸收增加,比旋光度和粘度降低,密度也增加。

如果在加热后慢慢冷却,则DNA可以再次恢复成双螺旋结构。

另外,外部压力也能使DNA变性.PCR(聚合酶链式反应)是利用DNA在体外摄氏95?高温时变性会变成单链,低温(经常是60?C左右)时引物与单链按碱基互补配对的原则结合,再调温度至DNA聚合酶最适反应温度(72?C左右),DNA聚合酶沿着磷酸到五碳糖(5'-3')的方向合成互补链。

基于聚合酶制造的PCR仪实际就是一个温控设备,能在变性温度,复性温度,延伸温度之间很好地进行控制。

引物(primer),是一小段单链DNA或RNA,作为DNA复制的起始点,在核酸合成反应时,作为每个多核苷酸链进行延伸的出发点而起作用的多核苷酸链,在引物的3′-OH上,核苷酸以二酯链形式进行合成,因此引物的3′-OH,必须是游离的。

DNA聚合酶(DNApolymerase)是细胞复制DNA的重要作用酶。

DNA聚合酶,以DNA为复制模板,从将DNA由5'端点开始复制到3'端的酶。

DNA聚合酶的主要活性是催化DNA的合成(在具备模板、引物、dNTP等的情况下)及其相辅的活性。

dNTP: deoxy-ribonucleoside triphosphate(三磷酸脱氧核糖核苷)的缩写。

rt-pcr原理

rt-pcr原理

rt-pcr原理RT-PCR(Reverse Transcription Polymerase Chain Reaction)是一种常用的核酸检测技术,广泛应用于病毒检测、基因表达分析等领域。

本文将介绍RT-PCR的原理及其在实验室中的应用。

RT-PCR的原理主要包括逆转录(Reverse Transcription)和聚合酶链式反应(Polymerase Chain Reaction)两个步骤。

首先是逆转录,即将RNA转录成cDNA。

在这一步骤中,首先需要一种特殊的酶——逆转录酶,它能够将RNA模板上的信息转录成相应的cDNA。

逆转录过程中需要一段RNA引物(primer)作为起始序列,使逆转录酶能够在该位置开始合成cDNA链。

经过逆转录反应后,RNA被转录成了cDNA,为后续的PCR反应提供了模板。

接下来是聚合酶链式反应,即利用DNA聚合酶在适当的温度下,将cDNA模板进行扩增。

PCR反应需要两段DNA引物,它们分别位于所需扩增片段的起始和终止位置。

在PCR反应的循环中,先是将DNA双链解旋,然后引物与模板结合,随后DNA聚合酶开始在引物的引导下合成新的DNA链。

通过多次循环,可以在较短的时间内扩增出大量的目标DNA片段。

RT-PCR技术具有高灵敏度和高特异性的特点,适用于检测病毒、细菌等微生物的核酸。

在病毒检测中,RT-PCR能够对病毒RNA进行逆转录合成cDNA,然后通过PCR反应扩增出目标病毒基因片段,从而实现对病毒的快速检测。

此外,RT-PCR还可以用于分析基因的表达水平,通过检测特定基因的mRNA水平,可以了解该基因在不同组织、不同生理状态下的表达情况,为基因功能研究提供重要信息。

除了基本的RT-PCR技术外,还有一些衍生技术,如实时荧光定量PCR (qPCR)。

qPCR在PCR反应中加入荧光探针,可以实时监测PCR产物的扩增过程,从而获得准确的定量信息。

这种技术在基因表达分析、病毒定量检测等领域有着广泛的应用。

PCR及RT-PCR概述

PCR及RT-PCR概述

PCR及RT-PCR一、目的掌握聚合酶链式反应(PCR) 及逆转录-聚合酶链式反应(RT-PCR)的基本方法二、原理PCR用于扩增位于两段已知序列之间的DNA区段。

在由Taq DNA聚合酶催化的一系列合成反应中,使用两段寡核苷酸作为反应的引物。

一般情况下,这两段寡核苷酸引物的序列互不相同,并分别与模板DNA 两条链上的各一段序列互补,而这两段模板序列又分别位于待扩增的两侧。

反应时它包括三个基本步骤: (1) 变性(Denature):目的双链DNA 片段在94℃下解链; (2) 退火(Anneal):两种寡核苷酸引物在适当温度(50℃左右)下与模板上的目的序列通过氢键配对;(3) 延伸(Extension):在Taq DNA 聚合酶合成DNA 的最适温度下,以目的DNA 为模板进行合成.由这三个基本步骤组成一轮循环,理论上每一轮循环将使目的DNA 扩增一倍(图4),这些经合成产生的DNA 又可作为下一轮循环的模板,所以经25-35 轮循环就可使DNA 扩增达106倍。

RNA的多聚酶链式反应(RT-PCR)是以RNA为模板,联合逆转录反应(reverse transcrip-tion, RT)与PCR,可用于检测单个细胞或少数细胞中少于10个拷贝的特异DNA,为RNA病毒检测提供了方便;并为获得与扩增特定的RNA互补的cDNA提供了一条极为有利和有效的途径。

RNA扩增包括两个步骤:①在单引物的介导下和逆转录酶的催化下,合成RNA的互补链cDNA;②加热后cDNA与RNA链解离,然后与另一引物退火,并由DNA聚合酶催化引物延伸生成双链靶DNA,最后扩增靶DNA。

在RT-PCR中关键步骤是RNA的逆转录,cDNA的PCR与一般PCR条件一样。

由于引物的高度选择性,细胞总RNA无需进行分级分离,即可直接用于RNA的PCR。

但RT-PCR对RNA制品的要求极为严格,作为模板的RNA分子必须是完整的,并且不含DNA、蛋白质和其它杂质。

PCRqPCRRT-PCR的原理及应用

PCRqPCRRT-PCR的原理及应用

PCRqPCRRT-PCR的原理及应⽤⽣物的东西必须要主动去了解,否则视野容易受到限制,尤其是分⼦⽣物学的核⼼技术。

PCR - 聚合酶链式反应- YouTube⽬的:从DNA双链中扩增出感兴趣的区段,⽤于后续的研究。

原理:DNA结构,双螺旋,AT、GC配对;DNA双链在临界温度会解链,退⽕后⼜会恢复;引物,DNA复制的起点,之所以需要引物是因为在DNA合成中DNA聚合酶只能把新的核苷酸加到已有的DNA链上。

操作核⼼:1. 引物设计,会考虑GC含量,决定退⽕温度;2. 变性、退⽕和延伸;PCR的应⽤ -1. Gene expression2. Genotyping (detection)3. Cloning4. Mutagenesis5. Methylation analysis6. Sequencing7. Medical, forensic, and applied sciences问题:1.真核⽣物的组蛋⽩会影响PCR吗?2.为什么需要前后引物,前后引物是如何p出指定区段的?3.PCR、qPCR和RT-PCR之间的区别和联系?PCR - 任何核酸序列RT-PCR 逆转录聚合酶链式反应 - 分析的是RNA,⼤部分是基因表达逆转录PCR,就是PCR的⼀个常规应⽤,我也跑过,见过庞⼤的机器,也是先设计引物,然后提cDNA,定量。

⼀条RNA链被逆转录成为互补DNA,再以此为模板透过PCR进⾏DNA复制。

PCA我们是扩增DNA序列,⽽RT-PCR我们扩增的是反转录出来的cDNA序列,然后再做PCR,把量做上去来检测,通常会配上⼀些管家基因作为对照。

RT-PCR的数据分析可以参照Y数微信公众号,代码很详细。

qPCR (Quantitative Real-time PCR) 实时荧光定量PCR - 分析的是DNA实时荧光定量PCR (Quantitative Real-time PCR)是⼀种在DNA扩增反应中,以荧光化学物质测每次聚合酶链式反应(PCR)循环后产物总量的⽅法。

RT-PCR及其产物电泳分析ppt课件

RT-PCR及其产物电泳分析ppt课件
③ 延伸 延伸温度取决于DNA聚合酶的最适温度(70-75℃;延伸时间由扩增片段的长度 决定(<500bp 30s,500-1200bp 40s)。
④ 循环次数 PCR循环次数取决于模板DNA的浓度,一般为25-35次,PCR产物可达最大值 。
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PCR体系的优化
➢ PCR反应成分浓度的优化 ① Taq DNA聚合酶:1~2.5U/100μL反应液。 ② dNTP浓度:20~200μmol/L,且四种底物浓度相等,以减少错误掺入的机
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RT反应试剂 (1)引物: Oligo(dT)16,寡聚胸甘酸16个,要求mRNA有poly(A)尾巴(mRNA 1-4%) (2)逆转录酶 : 鼠白血病病毒莫洛尼株 (MMLV)、鸟类成髓细胞瘤病毒(AMV ) (3)RT反应缓冲液:常用5×浓度。 (4)底物:即四种dNTP的混合物溶液,常用10×浓度(2 mmol/L或2.5 mmol/L)。 (5)模板 (6)RNasin
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实验原理
RT反应:在逆转录酶作用下,以mRNA为模板合成cDNA(complementary DNA)分子 的过程。 PCR反应:PCR扩增是模拟天然DNA复制过程,利用DNA聚合酶在体外扩增一对引物 之间特异性DNA片段的方法。其主要热循环过程可分为三个步骤:(1)变性;(2)退 火;(3)延伸 。 RT-PCR: 以RT反应产物cDNA分子为模板进行特异性PCR扩增的过程,是检测基因表 达最常用的方法。
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结果分析
M
1 23
观察结果: ① 是否有扩增产物。 ②如有拖尾或有几条区带,说明有非特异性扩增 。 ③分子量标准电泳后区带是否分开。 ④与分子量标准比较,PCR产物的长度是否正确 。 ⑤PCR产物的产量。 ⑥引物二聚体。

rt pcr原理

rt pcr原理

Real-time PCR(实时荧光定量PCR)原理解析1. 什么是PCR?PCR(Polymerase Chain Reaction,聚合酶链反应)是一种在体外扩增DNA片段的技术。

PCR的发明者是美国生物化学家基里尔·米隆尼斯(Kary Mullis),于1983年提出了这一方法。

PCR通过不断重复三个步骤来扩增目标DNA片段:变性(Denaturation)、退火(Annealing)和延伸(Elongation)。

这些步骤在PCR仪中由多个温度循环来控制,因此PCR也被称为“温度循环扩增”。

PCR技术为科学家提供了一种快速、敏感、特异性极高的扩增目标DNA的方法。

然而,传统的PCR只能在反应结束后进行结果的检测,无法实时监测反应的过程。

为了解决这个问题,Real-time PCR技术应运而生。

2. 实时PCR概述实时PCR是在PCR扩增过程中,使用荧光信号实时监测反应的进行。

与传统PCR相比,实时PCR能够提供实时的、连续的照片剖析PCR的进展。

实时PCR有两种常用的检测方法:荧光染料法和探针法。

其中,探针法又分为TaqMan探针法和Molecular Beacon探针法。

这些探针和染料能够与PCR反应中的产物结合,并产生荧光信号,根据信号的增长情况可以推断目标DNA的含量。

实时PCR广泛应用于分子生物学、医学诊断、检测病原体等领域。

接下来,我们将重点介绍实时PCR的基本原理以及常用的探针法和荧光染料法。

3. 实时PCR基本原理实时PCR的基本原理和传统PCR类似,也是通过变性、退火和延伸三个步骤来扩增DNA片段。

然而,在实时PCR中,PCR反应是在热循环PCR仪中进行,并且扩增过程中的结果可以实时检测。

实时PCR一般需要使用一种独特的仪器,称为实时荧光PCR仪或荧光定量PCR仪。

这种仪器能够在不破坏试管密封的情况下,通过荧光信号实时检测PCR反应体系中的增长程度。

在实时PCR中,荧光信号通过专门的探测器(Detector)收集,并且荧光信号的强度会随着PCR反应进行的次数递增。

PCR与RT-PCR

PCR与RT-PCR
RNaseH 产生的障碍 RNaseH 对第一链 cDNA 的影响。RNaseH 在 cDNA 合成期间降解 RNA:DNA 复合体中的 RNA。红色箭头代表潜在的酶切位点。
提高逆转录保温温度
较高的保温温度有助于 RNA 二级结构的打开,增加了反应的产量。对于多数 RNA
模板,在没有缓冲液或盐的条件下,将 RNA 和引物在 65℃保温,然后迅速置于 冰上冷却,可以消除大多数二级结构,从而使引物可以结合。然而某些模板仍然 会存在二级结构,即使热变性后也是如此。对这些困难模板的扩增可以使用 ThermoScript 逆转录酶,并将逆转录反应置于较高温度下进行以改善扩增(图 6)。较高的保温温度也可以增加特异性,尤其是当使用基因特异性引物(GSP) 进行 cDNA 合成时(见第三章)。如果使用 GSP,确保引物的 Tm 值与预计的 保温温度相同。不要在高于 60℃时使用 oligo(dT)和随机引物。随机引物需要在 增加到 60℃前在 25℃保温 10 分钟。除了使用较高的逆转录温度外,还可以通 过直接将 RNA/引物混合物从 65℃变性温度转到逆转录保温温度,并加入预热的 2×的反应混合物提高特异性(cDNA 热启动合成)。这种方法有助于防止较低温 度时所发生的分子间碱基配对。使用 PCR 仪可以简化 RT-PCR 所需的多种温度 切换。
一般不必使用 oligo(dT)选择性分离 poly(A)+RNA。不管起始模板是总 RNA 还是 poly(A)+ RNA,都可以检测到扩增结果(图 2)。另外,分离 poly(A)+ RNA 会 导致样品间 mRNA 丰度的波动变化,从而使信息的检出和定量产生偏差。然而, 当分析稀有 mRNA 时,poly(A)+ RNA 会增加检测的灵敏度。

逆转录-聚合酶链反应(RT-PCR)

逆转录-聚合酶链反应(RT-PCR)

1. 随机六聚体引物:当特定 mRNA 由于含有使反转录酶终止的序列而难于拷贝其全长 序列时,可采用随机六聚体引物这一丌特异的引物来拷贝全长 mRNA。用此种方法时,体 系中所有 RNA 分子全部充当了 cDNA 第一链模板,PCR 引物在扩增过程中赋予所需要的 特异性。通常用此引物合成的 cDNA 中 96%来源于 rRNA。 2. Oligo(dT):是一种对 mRNA 特异的方法。因绝大多数真核细胞 mRNA 具有 3’端 Poly(A+)尾,此引物不其配对,仅 mRNA 可被转录。由于 Poly(A+)RNA 仅占总 RNA 的 1-4%,故此种引物合成的 cDNA 比随机六聚体作为引物和得到的 cDNA 在数量和复杂性 方面均要小。 3. 特异性引物:最特异的引发方法是用含目标 RNA 的互补序列的寡核苷酸作为引物, 若 PCR 反应用二种特异性引物,第一条链的合成可由不 mRNA 3’端最靠近的配对引物起 始。用此类引物仅产生所需要的 cDNA,导致更为特异的 PCR 扩增。 三、 试剂准备 1.RMA 提取试剂 2.第一链 cDNA 合成试剂盒 3.dNTPmix:含 dATP、dCTP、dGTP、dTTP 各 2mM 4.Taq DNA 聚合酶 四、操作步骤 1. 总 RNA 的提取:见相关内容。 2. cDNA 第一链的合成:目前试剂公司有多种 cDNA 第一链试剂盒出售,其原理基本相同, 但 操 作 步 骤 丌 一 。 现 以 GIBICOL 公 司 提 供 的 SuperScriptTM Preamplification System for First Strand cDNA Synthesis 试剂盒为例。
分子生物学实验技术共 6 个视频,包括:DNA 甲基化检测、分子克隆技术、高分辨溶解曲线 分析技术(HRM)、逆转录聚合酶链式反应(RT-PCR)、荧光定量 PCR(real time QPCR)、 原位杂交(ISH)。

rtpcr原理及应用

rtpcr原理及应用

rtpcr原理及应用RT-PCR原理及应用。

RT-PCR(Reverse Transcription Polymerase Chain Reaction)是一种基因分子生物学技术,它结合了逆转录和聚合酶链式反应两种方法,可以在研究中对RNA进行扩增,从而检测和分析特定基因的表达水平。

本文将介绍RT-PCR的原理和应用,以便更好地理解和运用这一技术。

RT-PCR的原理。

RT-PCR的原理主要包括逆转录和聚合酶链式反应两个步骤。

首先是逆转录,即将RNA转录为cDNA(complementary DNA),这是因为在常规的PCR反应中需要DNA作为模板,而RNA不能直接作为PCR的模板。

逆转录过程中,需要逆转录酶和RNA模板,通过逆转录酶的作用,RNA被逆转录为cDNA。

接着是聚合酶链式反应,即利用DNA聚合酶对cDNA进行扩增,通过PCR反应使特定基因的DNA序列得以扩增,从而进行后续的分析和检测。

RT-PCR的应用。

1. 基因表达分析。

RT-PCR可以用于研究特定基因在不同组织、细胞类型或生理状态下的表达水平。

通过逆转录和PCR扩增,可以定量检测特定基因的mRNA水平,从而了解其在生物体内的表达情况。

2. 病原体检测。

RT-PCR可以用于检测病原体,如病毒、细菌等的RNA或DNA,从而进行疾病的诊断和监测。

例如,在流感疫情监测中,RT-PCR可以快速、准确地检测流感病毒的存在,为疫情防控提供重要依据。

3. 肿瘤标志物检测。

RT-PCR可以用于检测肿瘤标志物的表达水平,帮助肿瘤的早期诊断和疗效监测。

通过检测肿瘤相关基因的表达水平,可以及早发现潜在的肿瘤病变,为临床治疗提供参考。

4. 药物研发。

RT-PCR可以用于药物研发中的基因表达分析和药效评价。

通过比较药物处理前后特定基因的表达水平变化,可以评估药物对基因表达的影响,为药物研发提供重要参考。

5. 遗传病检测。

RT-PCR可以用于遗传病的检测和分析,例如常见的遗传性疾病、基因突变等。

PCR,RT-PCR原理

PCR,RT-PCR原理

一、知识背景:1. 基因表达:DNA——RNA——Protein单拷贝基因表达存在逐步放大机制,如一个蚕丝心蛋白基因——104个丝心蛋白mRNA(每个mRNA存活4d,可以合成105个丝心蛋白)——共合成109个丝心蛋白。

因此单拷贝基因的mRNA表达水平对于其功能水平的调控是非常重要的。

2. PCR技术(Polymerase chain reaction):即聚合酶链式反应。

在模板、引物和四种脱氧核苷酸存在的条件下依赖于DNA聚合酶的酶促反应,其特异性由两个人工合成的引物序列决定。

反应分三步:A.变性:通过加热使DNA双螺旋的氢键断裂,形成单链DNA;B.退火:将反应混合液冷却至某一温度,使引物与模板结合。

C.延伸:在DNA聚合酶和dNTPs及Mg2+存在下,退火引物沿5‘ ——3’方向延伸。

以上三步为一个循环,如此反复。

3. 逆转录酶和RT-PCR逆转录酶(reverse transcriptase)是存在于RNA病毒体内的依赖RNA的DNA聚合酶,至少具有以下三种活性:(1)依赖RNA的DNA聚合酶活性:以RNA为模板合成cDNA第一条链;(2)Rnase水解活性:水解RNA:DNA杂合体中的RNA;(3)依赖DNA的DNA聚合酶活性:以第一条DNA链为模板合成互补的双链cDNA.二、RT-PCR的准备:1. 引物的设计及其原则:(1)引物的特异性决定PCR反应特异性。

因此引物设计是否合理对于整个实验有着至关重要的影响。

在引物设计时要充分考虑到可能存在的同源序列,同种蛋白的不同亚型,不同的mRNA剪切方式以及可能存在的hnRNA对引物的特异性的影响。

尽量选择覆盖相连两个内含子的引物,或者在目的蛋白表达过程中特异存在而在其他亚型中不存在的内含子。

(2)引物设计原则的把握:引物设计原则包括:a.引物长度:一般为15~30 bp,引物太短会影响PCR的特异性,引物太长PCR的最适延伸温度会超过Taq酶的最适温度,也影响反应的特异性。

实时荧光定量PCR(qPCR,RT-PCR)的原理及应用ppt课件

实时荧光定量PCR(qPCR,RT-PCR)的原理及应用ppt课件
内标(Endogenous Control) 通常是18S、28S、β-actin、GAPDH基因等看家基因
在细胞中的表达量或在基因组中的拷贝数恒定, 受环境因素影响小 内标定量结果代表了样本中所含细胞或基因组数 量
15
RT-PCR技术的数据分析
PCR分四个阶段
16
RT-PCR技术的数据分析如何定量?-ΔΔCt
实时荧光定量PCR技术 的原理及应用
(Real Time Quantitative PCR)
2013-11-26
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实时荧光定量PCR目录 Contents
一、实时荧光定量PCR的定义 二、RT-PCR技术的原理及试验流程 三、RT-PCR技术的数据分析
四、RT-PCR技术的应用
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实时荧光定量PCR的定义
RT-PCR技术的数据分析
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RT-PCR技术的数据分析
相对定量分析方法 -ΔΔCt
前提:目标序列和内参序列的扩增效率接近100% 且偏差在 5%以内 1、用目标基因的CT值减内参基因的CT值:
ΔCT(test)= CT (target, test) - CT (ref, test) ΔCT(control)= CT (target, control) - CT (ref, control)
2、用试验样本的ΔCT值减校准样本的ΔCT值:
ΔΔCT= ΔCT(test/control) - ΔCT(calibrator)
3、计算表达水平比率: 相对表达量RQ= 2 –ΔΔCT
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RT-PCR技术的数据分析
SYBR Green 熔解曲线分析
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RT-PCR技术的应用
• 临床疾病诊断:各型肝炎、艾滋病、禽流感等传染病诊断 和疗效评价;肿瘤标志物及瘤基因检测实现肿瘤病诊断; 遗传基因检测实现遗传病诊断。

pcr的分类及其原理

pcr的分类及其原理

PCR的分类及其原理PCR的主要类型包括:(1)反向PCR;(2)不对称PCR;(3)RT-PCR;(4)重组PCR(PCR体外诱变技术);(5)简并引物PCR;(6)定量PCR;(7)多重PCR;(8)锚定PCR;(9)原位PCR;(10)差异显示PCR;(11)巢式PCR;(12)共享引物PCR。

原理:(1)反向PCR:用于未知DNA片段的扩增。

先用连接酶将片段连接成环状,根据已知序列的碱基序列设计3’引物和5’引物扩增未知序列;(2)不对称PCR:原理是两端引物的浓度相差50~100倍,经PCR扩增得到单链DNA。

在PCR前25个循环中,主要生成双链产物,低浓度引物耗尽时,高浓度引物介导的PCR反应可产生大量单链DNA;(3)RT-PCR:先将mRNA逆转录成cDNA,接着以cDNA为模板进行PCR扩增。

合成cDNA第一链时,常用多聚(dT)引物进行。

后面的PCR扩增与普通PCR相同;(4)重组PCR:利用寡核苷酸引物在碱基不完全互补配对的情况下亦能同模板DNA退火的能力,设计引物时,人为地造成碱基取代、缺失或插入,从而通过PCR反应将突变引入靶DNA区段;(5)简并引物PCR:引物在未知DNA片段确切核苷酸序列的情况下,设计简并引物,从基因组(或cDNA)中把未知基因扩增出来;(6)定量PCR:以mRNA为模板合成cDNA后,再在同一反应管内同时加入参照基因和待测基因。

参照引物和待测基因引物进行PCR扩增,以参照基因扩增产物为基础,确定待测基因的相对量;(7)多重PCR:同一体系中加入多对引物,扩增同一模板的几个区域;(8)锚定PCR:通过DNA末端转移酶在cDNA 3’末端加上poly(dG)尾,设计相对应的锚定引物poly(dG),在锚定引物和基因特异引物作用下,扩增全序列的DNA片段;(9)原位PCR:以组织固定处理细胞内的核酸作为靶序列,进行PCR反应。

不必从组织细胞中分离模板DNA或RNA;(10)差异显示PCR:将两种mRNA的样品逆转录成cDNA第一链,后加入两种引物进行PCR扩增,一种为锚定引物,另一种为十碱基的随机引物。

PCR和RT-PCR

PCR和RT-PCR

PCR和RT-PCR兰州大学王映珍第一章PCR和RT-PCR基础第二章PCR基础聚合酶链式反应(PCR)过程利用模板变性,引物退火和引物延长的多个循环来扩增DNA序列。

这是一个指数增长的过程,因为上一轮的扩增产物又作为下一轮扩增的模板,使其成为检测核酸的一种非常灵敏的技术。

一般,经过20-30个循环得到的扩增产物就足够在溴化乙锭染色的凝胶上观察到。

反应包括几个成分(表1)。

模板可以为纯化的基因组或质粒DNA;由RNA转化得到的cDNA;或未经纯化的粗制生物样品,如细菌克隆或噬菌斑。

引物确定了扩增产物的序列和长度。

最常用的热稳定聚合酶是Taq DNA聚合酶。

这种酶适用于常规扩增,但是使用其他热稳定聚合酶会改善结果。

扩增反应还包括缓冲液,三磷酸脱氧核苷及镁离子。

镁离子浓度影响酶的活性、引物退火、模板和PCR产物的熔点(Tm),忠实性以及引物二聚体的形成等。

在随后的章节中将讨论这些成分、循环参数以及其他参与作用的因子相互间各种作用对于成功PCR的影响。

表1.反应成分Component Final ConcentrationTemplate 10^4-10^6 copies of DNA templatePrimer 1 0.1-0.5µMPrimer 2 0.1-0.5µM10X Reaction buffer 1XMagnesium 1.0-3.0mMdNTP mix 200 mM each dNTPThermostable DNA polymerase 1-4 units/100 ml reactionRT-PCR基础RT-PCR将以RNA为模板的cDNA合成同PCR结合在一起,提供了一种分析基因表达的快速灵敏的方法。

RT-PCR用于对表达信息进行检测或定量。

另外,这项技术还可以用来检测基因表达差异或不必构建cDNA文库克隆cDNA。

RT-PCR比其他包括Northern印迹、RNase 保护分析、原位杂交及S1核酸酶分析在内的RNA分析技术,更灵敏,更易于操作。

PCR及其衍生技术PPT课件

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2、循环次数
• 循环次数
– 决定PCR扩增程度
• 循环次数
– 主要取决于模板DNA的浓度
• 循环次数:选在30~40次之间 • 循环次数越多,非特异性产物的量亦随之
增多
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如何提高PCR中的DNA聚合酶的保真性?
•在PCR反应体系中,除使用Taq DNA聚合酶,掺入 少量的具有3′→5′外切酶活性的耐热DNA聚合酶,如 Pfu,Vent,Pwo等,错配率可降为原来的 1/10; •Mg2+浓度尽可能低,但不影响DNA合成; •减少高温反应时间,这样DNA热损伤将减少; •减少循环数。
实际扩增率:(1+X)n,X为PCR的实际扩 增率,平均约为75%。
由于引物和底物的消耗,酶活力的下降等因 素,扩增产物的增加,逐渐由指数形式变为
线性形式,所以实际上进行30个循环后,扩 增倍数一般可达106~107。
以上“变性、退火、延伸”三部曲为PCR一
轮循环。
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PCR扩增曲线
1958年,Meselson和Stahl用实验证实DNA 半保留复制模型。
70年代以来,人们采用两种思路去尝试建 立基因的无性繁殖体系,一是基因克隆技 术,二是体外扩增技术。
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1971 年 , Khorana ( 美 国 MIT 教 授 , 1968 年 诺贝尔医学奖得主):“经过DNA变性,与 合适引物杂交,用DNA聚合酶延伸引物,并 不断重复该过程便可克隆tRNA基因。”
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PCR每一步的转换通过温度的改变控制。 DNA模板解链(变性)、引物与模板结合 (退火)、DNA聚合酶催化新生DNA的合 成(延伸)三个步骤构成PCR反应的一个 循环。

RT-PCR详细图文解析

RT-PCR详细图文解析

一、实时荧光定量PCR原理(一)定义:在PCR反应体系中加入荧光基团,利用荧光信号累积实时监测整个PCR 进程,最后通过标准曲线对未知模板进行定量分析的方法。

(二)实时原理1、常规PCR技术:对PCR扩增反应的终点产物进行定量和定性分析无法对起始模板准确定量,无法对扩增反应实时检测。

2、实时定量PCR技术:利用荧光信号的变化实时检测PCR扩增反应中每一个循环扩增产物量的变化,通过Ct 值和标准曲线的分析对起始模板进行定量分析3、如何对起始模板定量?通过Ct值和标准曲线对起始模板进行定量分析.4、几个概念:(1)扩增曲线:(2)荧光阈值:(3)Ct值:CT值的重现性:5、定量原理:理想的PCR反应:X=X0*2n非理想的PCR反应:X=X0 (1+Ex)n n:扩增反应的循环次数X:第n次循环后的产物量X0:初始模板量Ex:扩增效率5、标准曲线6、绝对定量1)确定未知样品的C(t)值2)通过标准曲线由未知样品的C(t)值推算出其初始量7、DNA的荧光标记:二、实时荧光定量PCR的几种方法介绍方法一:SYBR Green法(一)工作原理1、SYBR Green 能结合到双链DNA的小沟部位2、SYBR Green 只有和双链DNA结合后才发荧光3、变性时,DNA双链分开,无荧光4、复性和延伸时,形成双链DNA,SYBR Green 发荧光,在此阶段采集荧光信号。

PCR反应体系的建立及优化:1、SYBR Green 使用浓度:太高抑制Taq酶活性,太低,荧光信号太弱,不易检测2、Primer:引物的特异性高,否则扩增有杂带,定量不准3、MgCl2的浓度:可以降低到1.5mM,以减少非特异性产物4、反应Buffer 体系的优化5、反应温度和时间参数:由酶和引物决定6、其他与常规PCR相同(二)应用范围1、起始模板的测定;2、基因型的分析;3、融解曲线分析:可以优化PCR反应的条件,对常规PCR有指导意义,如对primer 的评价;可以区分单一引物、引物二聚体、变异产物、多种产物。

PCR和RT-PCR

PCR和RT-PCR

产物的核苷酸错配比例;
二、逆转录酶PCR (Reverse Transcriptase PCR, RT-PCR)
以RNA样品为起始物的PCR。
三、DNA聚合酶 (DNA Polymerase)
〘定义〙以DNA为模板,dNTP为底物,沿5’3’方向催化 DNA合成反应的聚合酶。 〘常用酶〙 a. Taq酶:耐高温的DNA聚合酶; b. Klenow片段:不耐高温的DNA聚合酶; 〘注意事项〙 a. 热启动式聚合酶:加入聚合酶抗体使聚合酶在常温下失活, 当变性时抗体失效解聚,酶活性恢复;提高反应特异性; b. 外切酶活性(exonuclease activity):具备不同的5’3’外切酶 活性或3’5’外切酶活性;与PCR反应的忠实性有关; c. 扩增效率: 22oC 0.25 bp/秒; 55oC 24 bp/秒; 70oC 60 bp/秒;75~80oC 150 bp/秒; d. 二价阳离子辅基:以Mg2+最好, Mn2+次之,Ca2+无效;
>gi|5031766|ref|NM_005526.1 Homo sapiens heat shock transcription factor 1 (HSF1), mRNA, Length=2156
Score = 58.0 bits (29), Expect = 5e-07, Identities = 29/29 (100%), Gaps = 0/29 (0%), Strand=Plus/Plus
四、逆转录酶(Reverse Transcriptase)
〘定义〙以RNA为模板,dNTP为底物,沿5’3’方向催化DNA 合成反应的聚合酶。 〘常用酶〙 a. MMLV逆转录酶:来自野生型小鼠白血病病毒; b. AMV逆转录酶:来自鸟原始粒细胞病毒; 〘注意事项〙 a. RNA酶H活性(RNaseH activity):RNase H能降解RNA:DNA
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第十一章 PCR扩增产物表达的快速方法 使用 Directional TOPO 表达试剂盒把克隆基因转入到表达载体, 将节省你大量时 间。这些试剂盒具有快速,高效的特点,Directional TOPO 克隆技术结合高效的 pET 和 pcDNA3.1 载体中,使你从 PCR 中立即得到表达结果。 • 成熟的技术 Directional TOPO 克隆技术将平整末端的单向克隆的 PCR 产物转入 pET 或 pcDNA3.1 载体,使用 Directional TOPO 克隆表达试剂盒将使你: 节省时间——TOPO 克隆 PCR 产物只需要 5 分钟。 得到高质量的克隆结果——大于 90%的重组克隆表达出正确的排列。 完成高水平表达——载体携带强大的表达启动子。 • 节省工作时间 Directional TOPO 克隆试剂盒用拓朴异构酶Ⅰ代替了连接酶,传统的限制性内切 酶过夜孵育的克隆方法被只需 5 分钟的拓朴异构酶介质连接的方法代替, 这样大 缩短了你的工作时间。 pET 和 pcDNA3.1 试剂盒和 Directional TOPO 试剂盒提供 了线性的和无需介质就具有活性的拓朴异构酶 I 的载体。Directional TOPO 试剂 盒的全部克隆程序, 只有三步并且 90%以上的重组克隆表达出正确的排列。 省略 了克隆和筛选的步骤,大大加快了实验步伐。 附录B 测定PLATINUMTM pfx DNA聚合酶的保真度 PLATINUM™ pfx DNA 聚合酶是一种高保真 DNA 聚合酶, 特别适用于克隆和突 变。PLATINUM™ pfx DNA 聚合酶的保真性有两种分析来确定,rpsL 保真度分 析和 LacZ 保真度分析,并与其它聚合酶相比较。 当测定 DNA 聚合酶的保真度时,保真度数据的变化可能来自不同的分析过程, 由于目标中的潜在的突变热点。当评价保真度数据时,保持相似的不是绝对数值 而是相对比的酶之间的相对关系。这篇文章用两种分析来评价几种酶的保真度。 PLATINUM™ pfx DNA 聚合酶具有 3’到 5’的校正外切酶活性。与其它 Taq DNA 聚合酶相比具有最低的错误率。 方法: rpsL 保真度分析:pMOL21 质粒 DNA(4kb) ,包含氨苄青霉素抗性(Apr)和 rpsL 基因,用 ScaI 线性化(图 1) 。按照制造商的使用说明。进行 50 微升体积 的标准 PCR 反应,使用 2 单位 Taq DNA 聚合酶或 PLATINUM™ Taq DNA 聚合 酶, 2.5 单位 pfu DNA 聚合酶或 pfu Turbo™ DNA 聚合酶,和 1.25 单位 PLATINUM™ pfx DNA 聚合酶,使用生物素标记引物 AAA AAC GCG TCA CCA GTC ACA GAA AAG CAT CTT AC-3’(正向序列)和 AAA AAC GCG TCA ACC AAG TCA TTC TGA GAA TAG-3’(反向序列) 。使用 1ng 模板 DNA 时进行 25 个循环, 10ng 时进行 15 个 PCR 循环。 PCR 反应条件, 94℃, 2 分钟, 接 94℃ 15 秒,58℃ 30 秒,68℃ 5 分钟的 25 次或 15 次循环。百分之二十的反应物用于 0.5×TBE 的 0.8%琼脂糖凝胶电泳,并用 0.25μg/ml 的溴化乙锭溶液染色。
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性没有影响。 Enzyme Mutation Frequency(%) Template Doubling(for 25 cycles) Eorror Rate(×10^(-6)) Relative Fidelity Taq DNA Ploymerase 4.00±0.09 11 42±19 1 Platinum Taq DNA Polymerase 3.4±0.5 10 38±5 1.1 Pfu DNA Polymerase 0.3±0.1 10 3±1 14 Pfu Turbo DNA Polymerase 0.27±0.07 11 2.4±0.4 17 Platinum Pfx Polymerase 0.14±0.04 12 1.6±0.5 26 表 1:用 rpsL 分析测定 DNA 聚合酶的保真性。 结果是 5 次独立的 rpsL 分析 (2 次 25 个循环和 3 次 15 个循环) 结果的平均值±SD。 对不同酶的突变克隆和总克隆数分列如下,Taq DNA 聚合酶(1,892/56,455) , PLATINUMTM Taq DNA 聚 合 酶 ( 2,043/57,695 ), pfu DNA 聚 合 酶 (1,033/395,469) , pfu TurboTM DNA 聚合酶 (1,068/395,468) , PLATINUMTM pfx DNA 聚合酶(960/584,230) 。 用 LacZ 保真性分析获得了相同的保真性数据(表 2) 。在所研究的几种 DNA 聚 合酶中,PLATINUM™ pfx DNA 聚合酶有最低的错误率。 Enzyme Mutation Frequency(%) Template Doubling(for 25 cycles) Eorror Rate(×10^(-6)) Relative Fidelity Taq DNA Ploymerase 3.1±0.3 14 19±3 1 Pfu DNA Polymerase 0.18±0.03 11 1.1±0.4 15 Platinum Pfx Polymerase 0.09±0.01 11 0.67±0.06 29 表 2:用 LacZ 分析测定 DNA 聚合酶的保真性。 结果是 2 次独立的 LacZ 分析 (1 次 25 个循环和 1 次 15 个循环) 结果的平均值±SD。 对不同酶的突变克隆和总克隆数分列如下, Taq DNA 聚合酶 (2,975/93,688) , pfu DNA 聚合酶(185/109,289) ,PLATINUMTM pfx DNA 聚合酶(96/107,655) 。所 有突变克隆都重新涂布并在 37℃培养过夜以进行第二次真正突变体确定。 酶的 保真性会被缓冲液或其附加物所影响。PCRx 增强溶液,它是针对高 GC 含量的 模板的 PCR 反应的共溶剂,也在 rpsL 分析中进行了评价。PCRx 增强剂能提高 Taq DNA 聚合酶的保真性 2 倍(图 2) 。PLATINUM™ pfx DNA 聚合酶的保真性 不被 PCRx 增强剂所影响 (数据未显示) 。 另外, 在扩增反应中, 当多种不同 PCR 缓冲液应用于 pfu DNA 聚合酶或 PLATINUM™ pfx DNA 聚合酶时保真性没有明 显变化(数据未显示) 。
第十二章 疑难解答
问 题 可能原因 建议解决方法 RT-PCR 灵敏度:在琼脂糖凝胶分析中看到少量或没有 RT-PCR 产物 RNA 被降 解 在用来验证完整性之前先在变性胶上分析 RNA 使用良好的无污染技术分离 RNA 在将组织从动物体取出后立刻处理 在 100%甲酰胺中储存 RNA 如果使用胎盘 RNase 抑制剂,不要加热超过 45℃或 pH 超过 8.0,否则抑制剂或释放所有结合的 RNase。而且,在≥0.8mM DTT 时加 入 RNase 抑制剂,一定要存在 DTT。 RNA 中包含逆转录抑制剂 通过乙醇沉淀 RNA 除去抑制剂。 用 70% (v/v) 乙醇对 RNA 沉淀进行清洗。 可以加入糖元 (0.25μg 到 0.4μg/μl)以帮助小量样品 RNA 的恢复。 逆转录抑制剂包括:SDS,EDTA,甘油,焦磷酸钠,亚精胺,甲酰胺和胍盐。 将对照 RNA 同样品混合,同对照 RNA 反应比较产量以检验抑制剂。 多糖同 RNA 共沉淀 使用氯化锂沉淀 RNA 以除去多糖。 用于合成 cDNA 第一链合成的引物没有很好退火 确定退火温度适合您的引物。 对于随机六聚体,建议在反应温度保温之前先在 25℃保温 10 分钟。 对于基因特异性引物(GSP) ,可以试一下其他 GSP,或换用 oligo(dT)或随机六 聚体确定 GSP 是反义序列。 起始 RNA 量不够 增加 RNA 量。 对于<50ng 的 RNA 样品,可以在第一链 cDNA 合成中使用 0.1μg 到 0.5μg 乙酰 BSA。 RNA 模板二级结构太多 将 RNA 和引物在不含盐及缓冲液条件下变性/退火 提高逆转录反应温度,对 SuperScriptⅡ可以到 50℃,对 ThermoScript 可以到 65 ℃。 注意: 不要在>60℃时使用 oligo(dT)引物, 选择一个在反应温度可以退火的 GSP。

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图 2. PCRx 增强溶液对 Taq DNA 聚合酶的保真性的影响。 用 rpsL 分析来确定在扩增反应中含有或不含 PCRx 增强液时 Taq DNA 聚合酶的 错误率。数值是平均值±SD(N=2) 。 附录C 使用一步法RT-PCR从单一细胞中检测基因 方法: 分离单一细胞 在去除了细胞培养基后,COS-7 细胞用不含钙镁的 DPBS(0.20g/L KCl, 0.20g/L KH2PO4, 8.00g/L NaCl, 2.16g/L Na2HPO4·7H2O ) 清 洗 一 次 。 加 入 Trypsin-EDTA(0.25% tryspsin,1mM EDTA·4Na)到细胞中(3ml/75cm2 培养瓶)并 保温至最多 5 分钟。加入 20ml 生长培养基以终止胰蛋白酶的活性。离心收集细 胞。将细胞悬浮到 DPBS 中至大约 1000 个细胞/ml。取 10μl 悬浮液(大约 10 个 细胞)点到清洁的盖玻片表面。用微量移液管在相差显微镜(Nikon Diaphot 倒 置显微镜,200 倍放大)下收集细胞。分离的细胞(在少于 1μl 的 DPBS 中)转 移到 0.2ml 薄壁 PCR 管中。
图 1. 在显微镜下分离单个细胞 一步法 RT-PCR 使用 INVITROGEN 的 SUPERSCRIPT™ One-Step RT-PCR with PLATINUM® Taq System 进行 RT-PCR。
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图 2. 源自 COS-7 细胞的一步法 RT-PCR 产物。 1-3 泳道分别是从 1 个,2 个和 5 个细胞中扩增的人类肌动蛋白,使用的是有意 义引物(CCT CGC CTT TGC CGA TCC)和反义引物(GGA TCT TCA TGA GGT AGT CAG TC) 。C 泳道则是没有加入反转录酶的扩增结果。
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