常见病原菌采样分离过程
实验二植物病原菌的组织分离
实验二植物病原菌的组织分离实验二植物病原菌的组织分离、培养和纯化一、实验目的通过本次实验学习植物病原菌分离培养及纯化的原理和常用的方法。
二、材料和用具玉米大斑病叶、灰斑病叶、苹果果实轮纹病及霉心病、甘薯黑斑病等材料，5%次氯酸钠溶液（有效氯为5%，见光分解，尤其紫外光，现用现配），75%酒精，剪刀，镊子，无菌水，灭菌培养皿，保鲜膜封口膜，记号笔、解剖刀，75%酒精小喷壶、酒精灯，打火机、、无菌滤纸、酒精棉、培养皿三、分离材料的选择为减少腐生菌的污染，分离所用的病害材料应尽可能新鲜，并且最好在病、健交接处选材取样。
病、健交接处，除材料新鲜，污染的可能性小外，病原菌的生活力强、比较活跃，容易分离成功。
四、植物病原菌的分离方法病原菌分离的方法因材料不同而异，植病实验室最常见的方法有组织分离法和稀释分离法两种。
（一）.组织分离法：这种方法适用于大部分病菌的分离，此法又分为小块组织分离和大块组织分离两种方法。
1、病斑类病原菌的分离（玉米大斑病病、灰斑病及苹果果实轮纹病的分离、甘薯黑斑病）（1）将无菌培养皿、镊子、无菌水、无菌滤纸、75%酒精小喷壶等放入无菌操作台，开紫外灯15分钟。
期间融化培养基备用。
（2）在操作台外，用酒精消毒双手，晾干。
在操作台内再次消毒双手，晾干，将融化并冷却到50℃左右的PDA以无菌操作倒入培养皿8—10ml，在桌面上轻轻摇动，敞开盖，制成平，凝固后待用。
（3）在操作台外，取分离材料，在病、健交界处剪取2—3毫米长的病组织。
（4）在无菌条件下，用5%的次氯酸钠溶液消毒3-5min，（时间长短依病组织不同而异，处理种子约5—10分钟）。
（5）用经过三次火焰灭菌的镊子将消毒的病叶移至无菌水中，漂洗3次，在滤纸上吸干水分，移至PDA平板培养基上，每皿可放均匀放3~4片，使材料与培养基紧密接触。
倒置于25—28℃恒温箱内培养。
（6）3~4天后，待菌落长出后挑取前缘菌丝，回接于PDA培养基上，在25℃温箱中培养，待菌落颜色变深后，在无菌条件下镜检是否是玉米大斑病菌、灰斑病菌、黑斑病菌、轮纹病菌，若仅有这几种病原菌的分生孢子，则说明已获得了纯培养，否则，则需要继续转至斜面培养基上进行纯化，直至获得纯培养。
如何进行病原菌的分离
如何进行病原菌的分离如何进行病原菌的分离、纯培养材料用具菌种：米曲酶枯草芽孢杆菌大肠杆菌金黄色葡萄球白地霉蕈状芽孢杆菌（Bacillus mycoides）粘质沙雷氏菌（Serratia marcescens）巴氏芽孢梭菌（巴氏固氮梭状芽孢杆菌，Clostridum pasteurianum）荧光假单胞菌（Pseudomonas fluorescens）灰色链霉菌（Streptomyces griseus）酿酒酵母产黄霉菌（Penicillium chrysogenum）培养基：淀粉琼脂培养基牛肉膏蛋白胨培养基(斜面、液体、半固体) 马丁氏琼脂培养基查氏琼脂培养基庖肉培养基肉汤培养基马铃薯培养基麦芽汁酵母膏培养基溶液或试剂：10%酚，盛9ml无菌水的试管，盛90ml无菌水并带有玻璃珠的三角烧瓶，4%水琼脂，10%NaOH,灭菌的石蜡凡士林（1：1），焦性没食子酸，液体石蜡，甘油，五氧化二磷，河沙，瘦黄土或红土，95%乙醇，10%盐酸，无水氯化钙，食盐，干冰。
仪器或其他用具：无菌玻璃涂棒，无菌吸管，接种环，无菌培养皿，链霉素和土样，显微镜，血细胞计数板，接种针，酒精灯，棉花，厌氧罐，催化剂，产气袋，厌氧指示袋，无菌的带橡皮塞的大试管，无菌的玻璃板（直径比培养皿大3至4cm），滴管，烧瓶，小刀。
微生物的分离与纯化：一、基本原理从混杂的微生物群体中获得只含有某一种或某一株微生物的过程称为微生物的分离与纯化。
常用的方法有1.简易单细胞挑取法：它需要特制的显微操作器或其他显微技术，因而其使用受到限制。
简易单孢子分离法是一种不需显微单胞操作器，直接在普通显微镜下利用低倍镜分离单孢子的方法。
它采用很细的毛细管吸取较稀的萌发的孢子悬浮液滴在培养皿盖的内壁上，在低倍镜下逐个检查微滴。
将只含有一个萌发孢子的微滴放一小块营养琼脂片，使其发育成微菌落。
再将微菌落转移到培养基中，即可获得仅由单个孢子发育而成的纯培养。
2.平板分离法：该方法操作简便，普遍用于微生物的分离与纯化。
花卉病原菌分离与鉴定方法
花卉病原菌分离与鉴定方法花卉作为美化环境、增添生活情趣的重要组成部分，常常受到各种病原菌的威胁。
为了及时有效地控制花卉病害，研究人员开发了一系列花卉病原菌分离与鉴定方法。
本文将探讨几种常用的花卉病原菌分离与鉴定方法，并介绍其原理及操作步骤。
一、菌落分离法菌落分离法是一种常见的花卉病原菌分离与鉴定方法。
首先，我们需要准备一定量的花叶或茎秆样本，并将其在无菌条件下切割成适当大小的块状。
然后，将这些样本分别接种在含有适当培养基的培养皿上，并进行孵育。
在孵育过程中，病原菌会生长并形成单独的菌落。
最后，我们可以通过分离单个菌落并进行纯化培养，得到纯种病原菌。
二、生物学特性鉴定法生物学特性鉴定法是通过病原菌的生长特性、形态学特征、生理生化特性等进行鉴定。
例如，通过观察病原菌的生长速度、菌落形态、色素产生能力等特点，可以初步确定其属于某一类别的病原菌。
此外，对于一些常见的病原菌，还可以进行特定的检测，如利用氧化酶试验、酸碱反应等方法进行鉴定。
三、分子生物学鉴定法分子生物学鉴定法是一种基于病原菌的遗传信息进行鉴定的方法。
通过从病原菌中提取DNA，并利用PCR或其他分子生物学技术进行扩增和分析，可以确定病原菌的分类和亲缘关系。
例如，利用特异性引物扩增病原菌的保守基因片段，然后通过凝胶电泳等方法分析扩增产物的大小和形态，可以得到病原菌的分子生物学信息，进而进行鉴定。
四、免疫学鉴定法免疫学鉴定法是利用病原菌与宿主的免疫反应进行鉴定的方法。
通过检测植物对病原菌的抗体反应，可以确定病原菌的种类和数量。
这种方法主要包括血凝试验、免疫电镜等技术。
通过与已知病原菌的免疫反应进行比较，可以鉴定未知病原菌的种类。
综上所述，花卉病原菌分离与鉴定是花卉病害研究的重要内容。
我们可以利用菌落分离法、生物学特性鉴定法、分子生物学鉴定法和免疫学鉴定法等多种方法进行鉴定。
通过这些方法的应用，我们可以更好地了解花卉病原菌的种类、特性和病害发生规律，为花卉病害的防治提供科学依据和技术支持。
细菌分离流程
细菌分离流程细菌分离是微生物学研究中的一项重要技术，它可以将复杂的微生物群落中的细菌分离出来，从而研究和分析单个细菌的特性和功能。
下面将详细介绍细菌分离的流程和步骤。
1. 样品收集细菌分离的第一步是收集样品。
样品可以是环境样品（如土壤、水样、空气等）或生物样品（如血液、尿液、组织等）。
在收集样品时，需要采取无菌操作，以避免外源性细菌的污染。
同时，还需要注意样品的保存条件，避免细菌失活或繁殖。
2. 样品预处理样品收集后，需要进行预处理以去除杂质和非细菌微生物。
预处理的方法包括过滤、离心、稀释等。
过滤可以去除大颗粒的杂质，离心可以沉淀细菌，稀释可以减少样品中的微生物数量，使细菌单个分离更容易。
3. 细菌分离培养基的选择选择适合细菌生长的培养基是细菌分离的关键。
常用的培养基有富集培养基、选择性培养基和差异培养基。
富集培养基可以促进细菌生长，选择性培养基可以抑制非目标菌群的生长，差异培养基可以根据细菌的生理特性进行筛选。
4. 细菌分离细菌分离是将复杂的细菌群落中的单个细菌分离出来，使其单独生长。
常用的细菌分离方法有涂布法、液体稀释法和滴定法。
4.1 涂布法涂布法是将样品均匀涂布在固体培养基表面，使单个细菌形成单个菌落。
具体操作步骤如下：1.取一定量的样品，用无菌工具（如无菌棉签、无菌针头）均匀涂布在固体培养基表面。
2.使用无菌铲子或铅笔头轻轻拖曳样品，使其均匀涂布。
3.使用无菌铲子或铅笔头在培养基上进行菌落分离，每次分离都使用新的工具。
4.标记每个菌落，以便后续的鉴定和分析。
4.2 液体稀释法液体稀释法是将样品逐渐稀释并接种在液体培养基中，使单个细菌形成单个菌落。
具体操作步骤如下：1.取一定量的样品，加入无菌稀释液（如生理盐水）中，进行均匀悬浮。
2.取一定体积的悬浮液，加入无菌稀释液中，再次进行均匀悬浮。
3.重复上述步骤，逐渐稀释样品。
4.取一定体积的稀释液，接种在液体培养基中。
5.在培养过程中观察是否有单个细菌形成菌落。
植物病原菌分离方法
病原菌分离方法一、实验原理：植物患病组织内的真丝菌丝体，如果给予适宜的环境条件，除了个别种类外，一般都能恢复生长和繁殖。
植物病原菌的分离就是指通过人工培养，重染病植物组织中将病原真菌与其他杂菌相分开并从寄主植物中分离出来，再将分离得到的病原菌于适宜环境内纯化，这个过程总称植物病原的分离培养。
二、实验用具：酒精灯、手术剪、镊子、75%酒精、3%~5%次氯酸钠、灭菌水、培养皿、封口膜、乳酸等三、实验前的准备工作：1、煮培养基（PDA）：马铃薯200g,葡萄糖20g，琼脂粉(AGAR)20g（10:1:1）水1000ml（1）将去皮称量好的马铃薯切片后加水煮沸15~20min（水可以适量多加200ml 左右，因为在煮的过程中会蒸发一些），待土豆煮软即可。
（2）三层纱布滤去马铃薯后将过滤的水倒入洗净的锅中，加琼脂粉搅拌充分后再加热煮沸，小火使其充分融化。
（3）加入葡萄糖并不断搅拌，待其完全融化后双层纱布过滤，定容到1000ml，分装到500ml的玻璃瓶内，每个玻璃瓶最多装300ml，121℃湿热灭菌30min。
2、培养皿干热灭菌170℃1h;蒸馏水、枪头等湿热灭菌121℃30min。
四、实验步骤：1、用75%酒精擦拭超净工作台，所有器具用紫外灯灭菌30min,分离室要保持清洁。
2、取样，病斑大小约20个（含病缘线）3、分装培养基：（1）融PDA，松盖在微波炉中加热约3min（看量多少而定）（2）待冷却至50℃后在超净工作台指示灯显绿灯时分装(3) 分装时滴入一管乳酸约20滴（每10ml培养基中加3滴乳酸）（4）左手拿培养皿并将皿盖在火焰附近打开一缝，迅速倒入培养基约15m1(300ml一瓶的培养基倒20多个平板)，加盖后轻轻摇动培养皿，使培养基均匀分布在培养皿底部，然后平置于桌面上，待凝后即为平板。
4、表面消毒：（1）75%的酒精3ml~4ml没过样表面10s，快速吸掉酒精（2）3%~5%次氯酸钠（现配现用、避光）10ml消毒2~3min（3）无菌水冲洗2~3次5、转样：（1）器具经酒精灯消毒后无菌水水洗（2）培养皿上写明名称、分离时间后，在酒精灯旁转五点于培养基上。
医院常规细菌培养(1)
医院常规细菌培养(1)医院常规细菌培养是临床微生物学中不可或缺的一个环节，是诊断疾病和制订治疗方案的重要依据。
下面从常规细菌培养的方法、过程和意义三个方面进行阐述。
一、方法医院常规细菌培养是指采用一系列技术方法将病原微生物分离培养出来、明确其种类和数量的过程。
具体方法如下：1.取样。
体液如血、尿、脑脊液等通过无菌技术采样。
2.标本前处理。
主要包括清洁、消毒等步骤，以防止空气和表面微生物污染。
3.分离微生物。
采用无菌棉签或接种环将标本转移到培养基上，进行器械对每种菌株的分离。
4.接种培养基。
将制备好的培养基表面进行接种。
5.培养。
菌落在培养基上生长并繁殖，在一定时间内可通过肉眼或显微镜观察到。
6.鉴定。
通过菌落形态、色素、生长速度等方面的鉴定，对分离和培养出的微生物进行明确种类的鉴定。
二、过程医院常规细菌培养的过程是一个漫长而复杂的过程。
通常情况下，细菌培养会分为初步鉴定和决定鉴定两个阶段：初步鉴定通过菌落的大小、形态、产生气味等特征判断目标微生物的种类；而决定鉴定则是通过进一步的生化试验和特殊的染色技术等手段确认细菌的种类，为后续的治疗提供准确的依据。
三、意义医院常规细菌培养的意义在于：1.确定病原菌种类。
通过对分离出的病原菌进行鉴定，医生才能按照正确的药物敏感性数据和治疗建议进行个性化治疗。
2.预测病情变化。
通过观察菌落数量和菌群的变化，预测病情的发展趋势和变化，制定合理的治疗方案。
3.判断治疗效果。
随着治疗方案的调整，医院常规细菌培养也可以对治疗效果进行“实时监测”；4.预防疾病扩散。
通过对病原微生物的细菌培养，防止疾病的扩散和传播，保护公共健康。
总之，医院常规细菌培养作为临床诊断的重要环节，对于人们的健康和生命有着重要的作用。
因此，在临床实践中，应加强细菌培养技术的应用和熟练度提高，以提高临床诊断和个性化治疗水平。
桃腐烂病病原菌的分离鉴定
桃腐烂病病原菌的分离鉴定桃腐烂病是桃树上常见的一种严重病害，其发生和流行严重影响了桃树的生长和果实的品质。
该病害的病原菌主要是一种真菌，为了对其进行有效的防治，需进行病原菌的分离鉴定。
一、材料与方法1. 病株样品：从发病的桃腐烂病病株上切取均匀发病组织。
2. 培养基：PDA培养基（马铃薯葡萄糖琼脂培养基）。
3. 分离工具和器皿：无菌的医用手术刀、无菌的钳子、无菌的移液枪、无菌培养皿。
4. 消毒液：70%乙醇，1%次氯酸钠溶液。
5. 鉴定方法：观察菌落形态特征、孔菌丝形态特征、生理生化特性和分子生物学特性。
二、步骤1. 样品消毒：将采集样品放入70%乙醇中浸泡5分钟，再用1%次氯酸钠溶液浸泡5分钟，最后用无菌去离子水洗3次。
2. 分离过程：将经消毒的样品置于无菌台上，用无菌的医用手术刀在菌斑附近切取一小块组织，迅速悬浮于无菌蒸馏水中，得到悬浮液。
3. 分离培养：将悬浮液分装在培养皿中，加入适量的PDA培养基，均匀摇匀后培养。
4. 培养条件：将培养皿放置在恒温培养箱中，温度设定为25-28℃，光照强度4000-5000lx，相对湿度70-80%。
5. 菌落鉴定：观察培养皿中的菌落形态特征，如色素、形状、边缘、质地等。
6. 孔菌丝培养：将单一菌落挑选出来，再次进行分离培养得到纯种的菌丝，观察其形态特征。
7. 鉴定：对菌丝进行显微镜观察，观察菌丝的结构、分枝、生殖器官等特征。
8. 生理生化特性鉴定：进行菌株的喜好温度、酶活性、生长速率等方面的测定。
9. 分子生物学特性鉴定：通过PCR扩增和DNA测序，对菌株的基因序列进行比对和分析。
三、结果与讨论通过上述分离鉴定的步骤，可以得到桃腐烂病菌株的纯种培养，并进行其形态特征、生理生化特性和分子生物学特性的鉴定。
这些信息可以用于科学家们对病原菌进行进一步研究和防治措施的制定。
对不同的菌株进行比对和分析，还可以了解桃腐烂病病原菌的种类和变异情况，为病害的防治提供更加科学的依据。
常见病原菌采样分离过程
金黄色葡萄球菌采样分离过程1、样本采集及初步分离（1）奶样的采集：采集有乳房炎和隐形乳房炎症状较明显的奶牛，消毒挤奶人手、奶牛乳头，弃2-3把乳，以乳样收集管无菌收集每个乳区乳样10-30mL，编好编号，4个乳区按：左前LF、左后LH、右前RF、右后RH编号，采集后尽快返回实验室，如不能尽快返回，应放在低温环境中带回。
（2）乳房皮肤拭子用0.5mL肉汤润湿的消毒棉球拭子从乳房皮肤檫拭到乳头顶端，如果乳房土较多的话先檫掉土。
拭子放入5mL离心管中，再放入冰盒中，迅速带回实验室处理。
（3）鼻腔拭子用消毒棉球拭子插入动物鼻腔中，取出后放到盛有0.5mL肉汤的5mL离心管中，放入冰盒中，迅速带回实验室处理。
菌种的初步分离首次分离时，用接种环蘸取样品在科玛嘉金黄色葡萄球菌显色平板上涂布接种，37℃，16-18小时培养后，从显色平板上挑取红色的单菌落，用脑心浸液（BHI）肉汤35℃培养18小时左右。
需要注意的是金葡菌初次分离时，接种显色培养基后培养时间最好不超过18h进行观察，因为超过24h后所有的葡萄球菌属细菌皆会导致显色培养基变色，进而出现假阳性。
2、菌种的保存2mL灭菌离心管中加入400μL新鲜菌液+200μL60%灭菌甘油，-80 ℃（长期）或-20 ℃（临时）冻存。
3、菌种的复苏如需再次纯化，或进行进一步实验，可将甘油保种的菌液在显色平板或哥伦比亚血琼脂平板上划线培养，或者将保种的菌液直接接入液体培养基培养。
肠球菌采样分离过程1、样本采集及初步分离（1）肛门拭子以灭菌长棉签采集猪肛门拭子或蘸取新鲜粪便，棉拭子应以捻转方式插入肛门4-5厘米深，取出后放入1mL营养肉汤的灭菌离心管中，如不能立即接种，应放于低温环境中迅速带回实验室处理。
（2）泄殖腔拭子以灭菌短棉签采集鸡泄殖腔拭子或采集一段盲肠后蘸取新鲜粪便，棉拭子应以捻转方式插入泄殖腔2-3厘米深，取出后放入1mL营养肉汤的灭菌离心管中，如不能立即接种，应放于低温环境中迅速带回实验室处理。
春季传染病病原菌的采集、分离及纯培养
春季传染病病原菌的米集、分离和纯培养实验方案化药1104赵金金病原物的分离和纯化摘要：本实验主要通过用对辣椒炭疽病或柑橘炭疽病病菌的分离和在PDA培养基中对炭疽病菌消毒后做无菌培养然后转移到斜面培养的实验过程观察炭疽病菌的生长情况，了解分离与纯化病原物的基本原理与方法，掌握实验室常用的消毒灭菌方法，并掌握培养基的制作和无菌操作技术。
关键词：分离培养、炭疽病、PDA培养基、灭菌刖言柯赫氏法则(Koch ' s Rule)又称柯赫氏假设(Koch's postulates) 或柯赫氏证病律，是确定侵染性病害病原物的操作程序。
如发现一种不熟悉的或新的病害时，就应按柯赫氏法则的四个步骤来完成诊断与鉴定。
诊断是从症状等表型特征来判断其病因，确定病害种类。
鉴定则是将病原物的种类和病害种类同已知种类比较异同，确定其科学名称或分类上的地位。
有些病害特征明显，可直接诊断或鉴定，如霜霉病或秆锈病。
但在许多场合难以鉴定病原物的属、种。
如花叶症状易于识别，要判断由何种病原物引起，就必须经详细鉴定比较后才能确定。
柯赫氏法则表述为：“ (1)在病植物上常伴随有一种病原微生物存在；(2)该微生物可在离体的或人工培养基上分离纯化而得到纯培养；(3)将纯培养接种到相同品种的健株上，出现症状相同的病害；(4)从接种发病的植物上再分离到其纯培养，性状与接种物相同”【如果进行了上述四步鉴定工作得到确实的证据，就可以确认该微生物即为其病原物。
但有些专性寄生物如病毒、菌原体、霜霉菌、白粉菌和一些锈菌等，目前还不能在人工培养基上培养，可以采用其他实验方法来加以证明。
侵染性病害的诊断与病原物的鉴定都必须按照柯赫法则来验证，每个医学家和植物病理学家都应能熟练地运用。
柯赫氏法则同样也适用来对非侵染性病害的诊断，只是以某种怀疑因子来代替病原物的作用，例如当判断是否缺乏某种元素而引起病害时，可以补施某种元素来缓解或消除其症状，即可确认是某元素的作用。
细菌分离流程
细菌分离流程细菌分离是微生物学实验中的一项重要技术，它能够将混合菌群中的不同细菌种类分离出来，以便进行进一步的鉴定和研究。
下面将介绍一种常用的细菌分离流程。
1. 样品采集细菌分离的第一步是采集样品。
样品可以是土壤、水、食物、体液等。
在采集样品时，需要注意使用无菌的容器和工具，避免外界细菌的污染。
2. 稀释样品采集到的样品通常是混合菌群，含有大量的不同种类的细菌。
为了能够将不同的细菌分离出来，需要将样品进行稀释。
一般情况下，将样品连续稀释10倍，以获得合适的菌落形成数目。
3. 涂布培养基将稀释后的样品取出一定量，均匀涂布在含有适当营养成分的培养基上。
涂布可以使用铅笔头、棉花棒或移液管等工具。
涂布的目的是将细菌分散在培养基上，以便单个菌落的形成。
4. 培养涂布完成后，将培养皿倒置放置在恒温培养箱中，通常温度为37摄氏度。
细菌在适宜的温度和培养基条件下会生长和繁殖，形成可见的菌落。
5. 菌落分离菌落的形成需要一定的时间，通常为24-48小时。
在菌落形成后，可以观察到不同形态和颜色的菌落。
选择两个或更多个不同形态的菌落，使用无菌的铁环或移液管吸取菌落，并分别接种到含有相同培养基的培养皿上。
6. 重复培养将分离出的菌落重复培养，以确保菌落的单纯性。
重复培养的次数可以根据需要进行调整，通常建议进行3-4次重复培养。
7. 纯培养经过重复培养后，可以选择一到两个菌落进行纯培养。
将菌落接种到含有适当培养基的试管中，并进行液体培养。
经过液体培养后，可以获得纯种的细菌悬浮液。
8. 鉴定和保存通过形态观察、生理生化试验、分子生物学方法等手段，对分离出的细菌进行鉴定和分类。
鉴定结果可以帮助我们了解细菌的特性和功能。
同时，需要将分离出的细菌保存在适当的条件下，以备进一步研究和应用。
细菌分离流程的关键在于分离出单个菌落，并确保其单纯性。
通过上述流程，我们可以获得纯种的细菌，并进行进一步的研究和应用。
细菌分离技术在医学、环境、食品等领域具有广泛的应用价值，为我们深入了解和探索微生物世界提供了有力的工具。
植物病原菌分离方法
植物病原菌分离方法第四章植物病原菌分离与纯化植物病原菌一、植物病原菌分离流程二、分离的准备分离的准备工作无菌室操作前保持清洁无菌接种工作准备培养基的准备分离材料选择以收获的材料从病健交界处采样果实腐烂从开始腐烂处分离根腐和枯萎层可能从离土较远处分离有些枯萎如野火病被固定在局部，从病斑边缘分不到等有些材料污染严重时可先接种再分离：即将病组织接种到健康材料等发病后分离组织表面消毒⑴升汞：1‰◆升汞1g HCl(浓)25ml 水1000ml◆升汞先溶于盐酸中，加水后稀释，也可用NaCl 5g/L 代替盐酸，但易沉淀◆作用：盐酸，NaCl增加溶解度，HCl能增强杀菌能力。
◆处理时间：30’S-30min不等，常3－5min；所需时间因材料不同而异，消毒后灭菌水3－5次附在组织表皮的气泡，含使消毒剂不能与寄生表面直接通气影响消毒效果，除气泡抽气、70％酒精浸2－3秒⑵漂白粉◆常用表面消毒剂适用于病组织表面消毒，也可处理种子◆成分：漂白粉10g，水140ml，过滤后使用。
◆最好现配现用，放久失效，有效成分CaClO次氯酸钙◆好的消毒液易使有色纸褪色，且产生氯气有强烈臭味。
◆一般3－5min，时间长短因材料不同而不同。
处理种子5－10min，长的可达20－30min。
优点：杀菌能力强，具有挥发性，不会遗留在组织上影响分离结果，其杀菌能力小于升汞。
（3）酒精：70％，浸很短时间（几秒到1min）灭菌水洗。
◆较大的材料在酒精中浸或棉花擦，然后在火焰烧去。
◆幼嫩的病组织，表面用药剂消毒时可能会同时杀死其中的病原真菌，消毒时间应尽量缩短。
比较安全的方法是不用药剂消毒，而以灭菌水换洗八九次。
培养基的准备●分离失败的原因，有时是由于培养基不适宜。
寄生性细菌对培养基的要求要比腐生性细菌严格。
一种适宜于纯培养的培养基不一定适宜于分离（杂菌太多）●有时分离失败的原因不是培养基的成分不适宜，而是由于培养基的酸度不适当或存放的时间太长。
常见病原菌分离方法
常用的几种典型的病原菌分离方法1．斑点病原菌的分离从病斑部分切取每边3～5 mm的小块组织，在70％酒精中浸数秒钟后，移入0.1％的升汞水溶液中处理3～5 min，以灭菌水冲洗3次，移置培养皿的培养基中，然后培养。
2．维管束组织内病原菌的分离从根茎维管束组织分离病菌，可先将寄主病部表面用70％酒精擦拭消毒，将表皮组织用灭菌的解剖刀削去，然后切取其中小块变色的维管束组织，用升汞或漂白粉液消毒后。
，用灭菌水冲洗几次，移置培养基面上。
3．根腐病病原菌的分离根腐或基腐病的分离，由材料的大小决定。
材料小的可仿照斑点病的分离法，材料大的则可以用维管束组织内病原的分离法。
4．肉质组织中病原菌的分离多肉的根、茎及果实等，可以采用维管束组织内病菌分离法除去表面组织，切取小块病组织分离。
如有杂菌感染可采用“直接接种”法，待出现症状后，用此法再行分离。
5．种子内病原菌分离将整个种子或者种子的一部分进行表面消毒(升汞或漂白粉)，用灭菌水洗涤后，移置培养基上。
6．孢子分离法能产生大量孢子的病菌如青霉素、链格孢等，则可配制成孢子悬浮液以稀释法或划线法分离之。
7、土壤带菌分离法为了研究一些真菌在土壤中存活和分布的情形，从有病的土壤中分离它们是必要的。
分离方法是将土壤取出少许，配制成悬浮液，然后用稀释法或划线法分离。
附录2 真菌单孢子分离技术一、目的要求了解单孢分离技术的基本原理，掌握简便实用的单孢分离方法。
二、基本原理单孢分离的方法很多，如振落法、稀释法和直接挑取法。
振落法和稀释法的共同点都是采用某种方法，使真菌孢子较稀疏地分散在水琼脂平板上，然后在显微镜下检查寻找在水琼脂平板表面的单个孢子，一旦找到理想的单个孢子，就通过无菌操作将其(连同一部分培养基)移植到PDA斜面培养基上，置适温下培养，形成的菌落即为单孢系菌株。
直接挑取法是在实体解剖镜下直接挑取单个孢子进行分离纯化的方法。
三、材料、用具与仪器1．材料(依本地资源情况进行选择，下列材料供参考)(1) 稻瘟病叶、病节、病穗颈(Pyricolaria oryzae)。
病原菌实验报告
病原菌实验报告实验目的本实验旨在通过分离、培养和鉴定病原菌，探究其特性及对人类健康的潜在威胁。
实验原理病原菌是引起疾病的微生物，能够侵入宿主并繁殖，引起免疫系统的反应。
通过实验，我们可以采集病原菌样本并在合适的培养基上培养和观察它们的生长特性。
同时，鉴定病原菌的种类对于有效的治疗和预防疾病非常重要。
实验材料与方法实验材料：- 无菌采样棉签- 无菌培养基（如琼脂培养基）- 培养皿- 无菌培养瓶- 显微镜与镜片实验步骤：1. 使用无菌采样棉签采集病人体内分泌物、分泌物或皮肤创伤等潜在病原菌样本。
2. 将采样棉签轻轻滚动在无菌培养基上，确保将病原菌样本均匀地涂抹在培养基表面上。
3. 使用无菌技术将培养基放入无菌培养皿中，密封密实并倒扣。
4. 在恒温培养箱中以适当的温度（通常为37C）进行培养。
5. 培养24小时后，观察培养皿中是否有菌落的形成。
6. 使用无菌技术将菌落转接到新的培养皿中，继续培养。
7. 观察菌落的形态、颜色、大小以及其他特征，并记录下来。
8. 取一个菌落进行革兰染色和镜检，观察菌的结构特征。
9. 可参照鉴定手册或使用进一步鉴定技术来确定病原菌的种类。
实验结果与数据分析经过培养和观察，我们发现培养皿中出现了菌落的形成。
通过进一步的观察和鉴定，我们确定了该菌落为革兰氏阴性细菌，且菌落为白色，大小较小。
在镜检下，我们观察到该菌细胞呈杆状，具有纤毛结构。
根据鉴定手册的数据，结合我们观察到的特征，我们初步推测该病原菌可能属于大肠杆菌属。
结论与讨论通过本实验，我们成功地分离、培养和鉴定了一株病原菌。
病原菌的准确鉴定对于疾病的治疗和预防具有重要的意义。
在今后的实验中，我们可以进一步探究该菌株的生理特性、耐受性以及对人体的致病机制，以更好地了解和应对潜在的疾病威胁。
然而，本实验只是初步鉴定，还需要进一步的验证和精确的鉴定技术来确认该菌株的种属。
此外，由于实验条件的限制，实验过程中出现的污染可能对结果产生一定的影响。
菌种分离筛选的5个步骤
菌种分离筛选的5个步骤一、样品采集与处理菌种分离筛选的第一个步骤是样品采集与处理。
在进行菌种分离之前，我们需要选择合适的样品进行采集。
样品可以来自不同的环境，如土壤、水体、动植物等。
采集样品时，我们需要注意卫生和安全，避免污染和交叉感染。
采集后，样品需要进行处理，包括样品的细碎、过滤、稀释等步骤，以便于后续的菌种分离工作。
二、菌种分离菌种分离是菌种分离筛选的核心步骤。
在这一步骤中，我们需要将样品中的微生物菌种分离出来，并培养成单菌种。
常用的分离方法有稀释平板法、涂布平板法、过滤法等。
分离时，需要选择适当的培养基和培养条件，以促进菌种的生长和繁殖。
分离出的单菌种需要进行纯化，以确保其纯度和纯种性。
三、菌种鉴定菌种鉴定是确定分离出的菌种种属和种类的步骤。
鉴定菌种的方法有形态学观察、生理生化特性测定、分子生物学方法等。
通过对菌种的形态、生长特征、代谢产物等进行观察和分析，可以初步确定其分类地位。
而通过分子生物学方法，如16S rRNA基因序列分析，可以更准确地确定菌种的种属和种类。
四、菌种筛选菌种筛选是根据特定需求从众多菌种中选择出具有特殊功能或性质的菌株的步骤。
筛选的目标可以是抗菌活性、产酶能力、产生生物活性物质等。
常用的筛选方法有抗菌活性筛选、产酶能力筛选、生物活性物质筛选等。
在进行筛选时，需要设置合适的筛选条件和指标，并利用适当的方法进行评价和选择。
五、菌种保存与应用菌种保存与应用是菌种分离筛选的最后步骤。
在菌种分离筛选过程中，我们通常会得到很多有潜力的菌株。
为了保证这些菌株的长期保存和应用，我们需要采取相应的保存措施，如冷冻保存、冻干保存、液氮保存等。
同时，我们还可以将这些菌株应用于不同的领域，如农业、医药、环境等。
通过进一步的研究和开发，这些菌株可以发挥出更大的应用价值。
通过以上五个步骤，我们可以从自然环境中分离出具有特殊功能或性质的菌株，并进行进一步的研究和应用。
菌种分离筛选是微生物学研究中的重要工作，对于发现新的生物资源和开发新的生物产业具有重要意义。
感染病原微生物的分离和鉴定技术
感染病原微生物的分离和鉴定技术病原微生物是引起疾病的原因之一。
因此，当怀疑病人患有感染性疾病时，需要进行微生物分离和鉴定。
这项技术可以用于确定病原微生物的身份、了解病原微生物的潜在危险以及确定最佳治疗方案。
本文将介绍常见的微生物分离和鉴定技术。
1.细菌分离和鉴定细菌是最常见的病原体之一，因此需要进行细菌分离和鉴定。
一种常用的细菌分离技术是“血平板法”，该技术涉及到将病原体培养在含有富含营养物质的平板上。
之后，将血清添加到平板上，检测是否会有细菌菌落的形成。
如果有形成，则表明这个平板上有可能存在细菌。
鉴定细菌可以通过筛选一系列不同的培养基来实现，例如酸敏素、米斯敦抑制剂、麦康凯脱氧胆汁盐紫、以及气孔试验等。
这些试验基于细菌菌株的不同特征，根据这些特征，可以确定细菌的身份并提供最佳治疗方法。
2.真菌分离和鉴定真菌在感染中也扮演着关键角色，因此需要进行真菌的分离和鉴定。
真菌分离可以通过使用含有营养物质的试管培养基，以及空气稀释，将真菌放置在伏井玻璃中进行。
真菌会在此处生长，并形成真菌菌落。
然后，将这些菌落移动至可供鉴定的培养基上。
鉴定真菌通常涉及使用孢子分析、显微镜观察、以及通过生物技术方法应用基因测序等。
这些方法可以帮助确定真菌的身份，并提供治疗建议。
3.病毒分离和鉴定病毒分离是通过将病毒放入终端宿主细胞中，利用宿主细胞来复制病毒。
在病毒复制完成后，通过对复制物进行抽取和鉴定，可以确定病毒的身份。
病毒的鉴定可以通过许多方法来完成，包括免疫学方法、PCR、以及使用重组DNA技术等。
这些方法通常涉及到分析病毒抗原的特征，使用核酸杂交等技术来分析病毒的序列信息，以及将对病毒有抵抗力的DNA结合到相同的DNA中以产生抗体。
4.寄生虫的分离和鉴定寄生虫的分离通常涉及将其放置在带有试管中的培养基中，以便在培养基中生长和复制。
这提供了一种寄生虫的纯化方法，然后可以将其在不同的培养基上进行鉴定。
鉴定寄生虫方法包括孢子分析，通过显微镜观察寄生虫组织，以及使用PCR等技术。
常见病原性细菌的分离鉴定方法1
在载玻片两端滴加生理盐水一滴，用 接种环挑取待检菌(金葡菌、白葡菌)， 分别与它们研磨、混匀，滴加兔血浆1滴， 立即观察有无凝固颗粒，若有即为阳性。 此法用于测定结合型凝固酶。
二、链球菌属
葡萄球菌菌落观察（教师示教）
分别取金黄色葡萄球菌和表皮葡萄球 菌培养物，用分离划线方法接种血平板， 置37℃培养，18h～24h以后观察结果。
血琼脂平板中18h-24h后形成圆形隆 起、表面光滑、湿润、边缘整齐、不透明 的菌落，不同菌种可产生金黄色、白色或 柠檬色色素。某些菌种（株）有溶血现象。
血浆凝固酶试验（教师示教）
（学生操作 ）
小结
1.一般细菌的鉴定流程 2.化脓性球菌的鉴定方法
一般细菌的鉴定流程 细菌学检验Biblioteka 采集标本和注意事项的一般程序
分离与培养 1.培养基的选用
2.培养方法
3.无菌操作
细菌的鉴定 1.涂片，革兰染色，镜检
2.生化反应
3.血清学鉴定
化脓性球菌的生物学性状
葡萄球菌 链球菌（肺炎球菌） 奈瑟菌属
麦芽糖发酵试验：分别取脑膜炎球菌、 淋球菌接种于麦芽糖发酵管中，置 37℃24h～48h观察结果。
细菌学检验的一般程序
涂片染色
初步诊 断报告
增菌
快速诊 断试验
接种平板培养基，分离单个菌落
挑取可疑菌落
涂片染色
各种鉴定试验
生化试验 血清学实验 动物试验 药敏试验
明确诊断报告
血液标本
革兰染色 染色性 形状排列
血平板分离培养 溶血现象、革兰染色
初步诊断
病原菌的分离鉴定
竭诚为您提供优质文档/双击可除病原菌的分离鉴定篇一：常见病原菌采样分离过程金黄色葡萄球菌采样分离过程1、样本采集及初步分离（1）奶样的采集：采集有乳房炎和隐形乳房炎症状较明显的奶牛，消毒挤奶人手、奶牛乳头，弃2-3把乳，以乳样收集管无菌收集每个乳区乳样10-30mL，编好编号，4个乳区按：左前LF、左后Lh、右前RF、右后Rh编号，采集后尽快返回实验室，如不能尽快返回，应放在低温环境中带回。
（2）乳房皮肤拭子用0.5mL肉汤润湿的消毒棉球拭子从乳房皮肤檫拭到乳头顶端，如果乳房土较多的话先檫掉土。
拭子放入5mL离心管中，再放入冰盒中，迅速带回实验室处理。
（3）鼻腔拭子用消毒棉球拭子插入动物鼻腔中，取出后放到盛有0.5mL肉汤的5mL离心管中，放入冰盒中，迅速带回实验室处理。
菌种的初步分离首次分离时，用接种环蘸取样品在科玛嘉金黄色葡萄球菌显色平板上涂布接种，37℃，16-18小时培养后，从显色平板上挑取红色的单菌落，用脑心浸液（bhI）肉汤35℃培养18小时左右。
需要注意的是金葡菌初次分离时，接种显色培养基后培养时间最好不超过18h进行观察，因为超过24h后所有的葡萄球菌属细菌皆会导致显色培养基变色，进而出现假阳性。
2、菌种的保存2mL灭菌离心管中加入400μL新鲜菌液+200μL60%灭菌甘油，-80℃（长期）或-20℃（临时）冻存。
3、菌种的复苏如需再次纯化，或进行进一步实验，可将甘油保种的菌液在显色平板或哥伦比亚血琼脂平板上划线培养，或者将保种的菌液直接接入液体培养基培养。
肠球菌采样分离过程1、样本采集及初步分离（1）肛门拭子以灭菌长棉签采集猪肛门拭子或蘸取新鲜粪便，棉拭子应以捻转方式插入肛门4-5厘米深，取出后放入1mL营养肉汤的灭菌离心管中，如不能立即接种，应放于低温环境中迅速带回实验室处理。
（2）泄殖腔拭子以灭菌短棉签采集鸡泄殖腔拭子或采集一段盲肠后蘸取新鲜粪便，棉拭子应以捻转方式插入泄殖腔2-3厘米深，取出后放入1mL营养肉汤的灭菌离心管中，如不能立即接种，应放于低温环境中迅速带回实验室处理。
怎样进行病原菌的分离
如何进行病原菌的分离、纯培养材料用具菌种：米曲酶 枯草芽孢杆菌 大肠杆菌 金黄色葡萄球 白地霉 蕈状芽孢杆菌（Bacillus mycoides）粘质沙雷氏菌（Serratia marcescens）巴氏芽孢梭菌（巴氏固氮梭状芽孢杆菌，Clostridum pasteurianum）荧光假单胞菌（Pseudomonas fluorescens）灰色链霉菌（Streptomyces griseus）酿酒酵母产黄霉菌（Penicillium chrysogenum）培养基：淀粉琼脂培养基牛肉膏蛋白胨培养基(斜面、液体、半固体) 马丁氏琼脂培养基查氏琼脂培养基庖肉培养基肉汤培养基马铃薯培养基麦芽汁酵母膏培养基溶液或试剂：10%酚，盛9ml无菌水的试管，盛90ml无菌水并带有玻璃珠的三角烧瓶，4%水琼脂，10%NaOH,灭菌的石蜡凡士林（1：1），焦性没食子酸，液体石蜡，甘油，五氧化二磷，河沙，瘦黄土或红土，95%乙醇，10%盐酸，无水氯化钙，食盐，干冰。
仪器或其他用具：无菌玻璃涂棒，无菌吸管，接种环，无菌培养皿，链霉素和土样，显微镜，血细胞计数板，接种针，酒精灯，棉花，厌氧罐，催化剂，产气袋，厌氧指示袋，无菌的带橡皮塞的大试管，无菌的玻璃板（直径比培养皿大3至4cm），滴管，烧瓶，小刀。
微生物的分离与纯化：一、基本原理从混杂的微生物群体中获得只含有某一种或某一株微生物的过程称为微生物的分离与纯化。
常用的方法有1.简易单细胞挑取法：它需要特制的显微操作器或其他显微技术，因而其使用受到限制。
简易单孢子分离法是一种不需显微单胞操作器，直接在普通显微镜下利用低倍镜分离单孢子的方法。
它采用很细的毛细管吸取较稀的萌发的孢子悬浮液滴在培养皿盖的内壁上，在低倍镜下逐个检查微滴。
将只含有一个萌发孢子的微滴放一小块营养琼脂片，使其发育成微菌落。
再将微菌落转移到培养基中，即可获得仅由单个孢子发育而成的纯培养。
2.平板分离法：该方法操作简便，普遍用于微生物的分离与纯化。
植物病原菌分离方法
植物病原菌分离方法（综合版）植物病原细菌分离方法：分离培养基（NA）植物病原细菌的方法一般采用稀释分离法：1.取灭菌研钵加无菌水适量，切去4 mm大小病块组织，经过表面消毒和无菌水冲洗3次后放入研钵中研碎，静置10-15 min，使组织中的细菌进入水中制成悬浮液；2.配制不同稀释度的细菌悬浮液；准备3-5个灭菌培养皿，每个加200 µl无菌水；3.用灭菌移植环从第1个培养皿中移植1-2环细菌悬浮液到第2个培养皿中，充分混匀后再从第2个培养皿移植1-2环到第3个培养皿中，依次类推；4.平板划线分离，28℃培养2-3天；5.挑取单菌落划线再次纯化；菌落形态观察：1.形状和大小、颜色和光泽、表面是否隆起或凹陷、边缘的形状、透明度和粘度、培养基颜色的变化等；2.菌苔表面有光滑的、不平整的和皱褶的、易挑取、质地均匀3.菌苔颜色也不同，质地有粘质的、膜质的或蜡质的。
有透明的、半透明的或不透明的，表面有暗色或发亮的4.菌落正反面或边缘与中央部位颜色一致等特征注：1.若分离成功，平板上菌落形态和大小比较一致，即使出现几种不同形状的菌落，终有一种是主要的；2.如果菌落类型很多，且不分主次，很可能未分离到病原细菌，应考虑重新分离；3.如果不熟悉一种细菌菌落的性状，就应选择几种不同类型的菌落，分别培养后接种测定其致病性，最终确定病原菌；4.一种细菌病害一般由一种病原菌引起的，平板上出现几种不同类型的菌落实质上只有一种是真正的病原细菌；5.腐烂型的细菌病害即使是混合侵染的，但也有一种是主要的。
6.各种植物病原细菌生长快慢不同：假单胞菌属和欧文氏菌属1-2天土壤杆菌属细菌2-3天黄单胞菌属细菌3-4天棒杆菌属的细菌5-8天才出现明显的菌落植物病原细菌生长量测定法直接法测体积粗放的方法，将待测培养液放在刻度离心管中作自然沉降或进行一定时间的离心，然后观察沉降物的体积。
称干重采用离心法或过滤法测定，一般干重为湿重的10%~20%。
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金黄色葡萄球菌采样分离过程
1、样本采集及初步分离
（1）奶样的采集：
采集有乳房炎和隐形乳房炎症状较明显的奶牛，消毒挤奶人手、奶牛乳头，弃2-3把乳，以乳样收集管无菌收集每个乳区乳样10-30mL，编好编号，4个乳区按：左前LF、左后LH、右前RF、右后RH编号，采集后尽快返回实验室，如不能尽快返回，应放在低温环境中带回。
（2）乳房皮肤拭子
用0.5mL肉汤润湿的消毒棉球拭子从乳房皮肤檫拭到乳头顶端，如果乳房土较多的话先檫掉土。
拭子放入5mL离心管中，再放入冰盒中，迅速带回实验室处理。
（3）鼻腔拭子
用消毒棉球拭子插入动物鼻腔中，取出后放到盛有0.5mL肉汤的5mL离心管中，放入冰盒中，迅速带回实验室处理。
菌种的初步分离
首次分离时，用接种环蘸取样品在科玛嘉金黄色葡萄球菌显色平板上涂布接种，37℃，16-18小时培养后，从显色平板上挑取红色的单菌落，用脑心浸液（BHI）肉汤35℃培养18小时左右。
需要注意的是金葡菌初次分离时，接种显色培养基后培养时间最好不超过18h进行观察，因为超过24h后所有的葡萄球菌属细菌皆会导致显色培养基变色，进而出现假阳性。
2、菌种的保存
2mL灭菌离心管中加入400μL新鲜菌液+200μL60%灭菌甘油，-80 ℃（长期）或-20 ℃（临时）冻存。
3、菌种的复苏
如需再次纯化，或进行进一步实验，可将甘油保种的菌液在显色平板或哥伦比亚血琼脂平板上划线培养，或者将保种的菌液直接接入液体培养基培养。
肠球菌采样分离过程
1、样本采集及初步分离
（1）肛门拭子
以灭菌长棉签采集猪肛门拭子或蘸取新鲜粪便，棉拭子应以捻转方式插入肛门4-5厘米深，取出后放入1mL营养肉汤的灭菌离心管中，如不能立即接种，应放于低温环境中迅速带回实验室处理。
（2）泄殖腔拭子
以灭菌短棉签采集鸡泄殖腔拭子或采集一段盲肠后蘸取新鲜粪便，棉拭子应以捻转方式插入泄殖腔2-3厘米深，取出后放入1mL营养肉汤的灭菌离心管中，如不能立即接种，应放于低温环境中迅速带回实验室处理。
首次分离时，将样品在6.5%NaCl营养肉汤中，45℃，18-24小时预增菌进行选择性培养后，将上述培养物以划线方式接种在肠球菌选择性培养基（叠氮钠-结晶紫-七叶苷培养基，BEA）上，37℃，培养18-24小时，从选择性培养基上挑取灰色，半透明，1-2mm大小的单菌落，用脑心浸液（BHI）肉汤37℃培养18小时左右。
2、菌种的保存
2mL灭菌离心管中加入400μL新鲜菌液+200μL60%灭菌甘油，-80 ℃（长期）或-20 ℃（临时）冻存。
3、菌种的复苏
如需再次纯化，或进行进一步实验，可将甘油保种的菌液在BEA琼脂平板上划线培养，或者将保种的菌液直接接入液体培养基培养。
需要注意的是由于BEA琼脂颜色的变化导致假阳性的发生，因此，可以将肠球菌疑似菌株在BEA琼脂上进行二次筛选，提高分离准确率。
大肠杆菌采样分离过程
1、样本采集及初步分离
（1）肛门拭子
以灭菌长棉签采集猪肛门拭子或蘸取新鲜粪便，棉拭子应以捻转方式插入肛门4-5厘米深，取出后放入1mL营养肉汤的灭菌离心管中，如不能立即接种，应放于低温环境中迅速带回实验室处理。
（2）泄殖腔拭子
以灭菌短棉签采集鸡泄殖腔拭子或采集一段盲肠后蘸取新鲜粪便，棉拭子应以捻转方式插入泄殖腔2-3厘米深，取出后放入1mL营养肉汤的灭菌离心管中，如不能立即接种，应放于低温环境中迅速带回实验室处理。
首次分离时，用接种环蘸取样品在科玛嘉大肠杆菌显色平板上涂布接种，37℃，16-18小时培养后，从显色平板上挑取蓝色的单菌落，用营养肉汤37℃培养18小时左右。
2、菌种的保存
2mL灭菌离心管中加入400μL新鲜菌液+200μL60%灭菌甘油，-80 ℃（长期）或-20 ℃（临时）冻存。
3、菌种的复苏
如需再次纯化，或进行进一步实验，可将甘油保种的菌液在琼脂平板上划线培养，或者将保种的菌液直接接入液体培养基培养。
沙门氏菌采样分离过程
1、样本采集及初步分离
（1）肛门拭子
以灭菌长棉签采集猪肛门拭子或蘸取新鲜粪便，棉拭子应以捻转方式插入肛门4-5厘米深，取出后放入1mL营养肉汤的灭菌离心管中，如不能立即接种，应放于低温环境中迅速带回实验室处理。
（2）泄殖腔拭子
以灭菌短棉签采集鸡泄殖腔拭子或采集一段盲肠后蘸取新鲜粪便，棉拭子应以捻转方式插入泄殖腔2-3厘米深，取出后放入1mL营养肉汤的灭菌离心管中，如不能立即接种，应放于低温环境中迅速带回实验室处理。
需要注意的是成年动物沙门氏菌携带率非常低，因此对于沙门氏菌的采集应以弱雏为主要分离对象来提高分离率。
首次分离时，将样品在SC肉汤（亚硒酸盐-半胱氨酸肉汤）中，37℃，18-24小时预增菌进行选择性培养后，将上述培养物以划线方式接种在沙门氏菌选择性培养基上，37℃，培养18-24小时，从选择性培养基上挑取紫色的单菌落，用脑心浸液（BHI）肉汤37℃培养18小时左右。
2、菌种的保存
2mL灭菌离心管中加入400μL新鲜菌液+200μL60%灭菌甘油，-80 ℃（长期）或-20 ℃（临时）冻存。
3、菌种的复苏
如需再次纯化，或进行进一步实验，可将甘油保种的菌液在BEA琼脂平板上划线培养，或者将保种的菌液直接接入液体培养基培养。
弯曲杆菌采样分离过程
2、样本采集及初步分离
（1）肛门拭子
以灭菌长棉签采集猪肛门拭子或蘸取新鲜粪便，棉拭子应以捻转方式插入肛门4-5厘米深，取出后放入1mL营养肉汤的灭菌离心管中，如不能立即接种，应放于低温环境中迅速带回实验室处理。
（2）泄殖腔拭子
以灭菌短棉签采集鸡泄殖腔拭子或采集一段盲肠后蘸取新鲜粪便，棉拭子应以捻转方式
插入泄殖腔2-3厘米深，取出后放入1mL营养肉汤的灭菌离心管中，如不能立即接种，应放于低温环境中迅速带回实验室处理。
需要注意的是因此对于弯曲杆菌的采集应以成年鸡（大于20日龄）为主要分离对象来提高分离率，因为小于20日龄的鸡无法检测到弯曲杆菌。
首次分离时，用接种环直接勾取样品（盲肠内容物或粪便）在弯曲杆菌选择性培养基（skirrow培养基，由sigma公司生产加5%无菌脱纤绵羊全血及配套增补剂）平板划线接种，42℃，培养48h，初次分离有时可培养至72h。
从选择性培养基上挑取不溶血，灰黄色或灰白色，圆形凸起，边缘整齐，1-2mm大小，透明成水泡状的单菌落，直接在含有5%羊血的血琼脂培养基或哥伦比亚血琼脂培养基上进行进一步纯化。
2、菌种的保存
2mL灭菌离心管中加入400μL的BHI肉汤+200μL60%灭菌甘油，将血琼脂上的纯培养物直接用灭菌棉棒刮取到上述制备好的甘油肉汤中，-80 ℃长期冻存。
3、菌种的复苏
如需再次纯化，或进行进一步实验，可将甘油保种的菌液在血琼脂平板或MH琼脂上划线培养。
需要注意的是初次分离弯曲菌时，粪便样品要直接接种在弯曲菌选择性培养基中，不能增菌。
为了提高分离率，可以采用Skirrow（42℃）和CCDA培养基（37℃）（含有木炭-头孢哌酮-两性霉素B选择性培养基）同时接种的方法。
同时，弯曲菌在液体培养基中生长不良，保存菌种最好不要用液体培养基进行培养保种。
牛乳样品中常见病原菌采样分离过程
1、隐性乳房炎检测—乳汁体细胞间接计数法
隐性乳房炎快速诊断液
弃去前几把乳，再将乳分别挤在盘中；诊断盘倾斜45度，弃去多余乳汁，诊断盘中各皿中再约留2毫升乳样。
每个样品加2毫升诊断液，使诊断盘做水平同心圆摇动，上下倾斜摇动50秒作判定。
判定标准：
“-”0~20万/mL，均质，流动无异常，黄绿色或稍有绿色；
“±”20~50万/mL，薄絮，稍有绿色，可疑；
“+”50~150万/mL，明显絮状，黄绿色，隐性乳房炎；
“++”150~500万/mL，黏稠挂底，黄绿色；
“+++”> 500万/mL，胶冻样，深绿色。
3、乳样采集
消毒挤奶人手、奶牛乳头，弃2-3把乳，以乳样收集管无菌收集每个乳区乳样1-5ml，编好编号，4个乳区按：左前LF、左后LH、右前RF、右后RH编号，采集后尽快返回实验室，如不能尽快返回，应放在低温环境中带回。
将10-20μL乳样涂布于血琼脂培养基上，37℃培养18-24h后，挑取血琼脂培养基上各种不同菌落形态的单一菌落，直接在不同选择性培养基上进行划线培养进行进一步鉴定，或者将单一菌落置于BHI肉汤中扩大培养，进行保存备用。
4、菌种的保存
2mL灭菌离心管中加入400μL新鲜菌液+200μL60%灭菌甘油，-80 ℃（长期）或-20 ℃（临时）冻存。
5、菌种的复苏
如需再次纯化，或进行进一步实验，可将甘油保种的菌液在BEA琼脂平板上划线培养，或者将保种的菌液直接接入液体培养基培养。