醋酸纤维薄膜电泳法分离血清蛋白
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醋酸纤维薄膜电泳法分离血清蛋白
【实验目的】
掌握醋酸纤维薄膜电泳法分离血清蛋白的原理和方法。
【实验原理】
蛋白质是两性电解质。在pH值小于其等电点的溶液中,蛋白质为正离子,在电场中向阴极移动;在pH值大于其等电点的溶液中,蛋白质为负离子,在电场中向阳极移动。血清中含有数种蛋白质,它们所具有的可解离基团不同,在同一pH的溶液中,所带净电荷不同,故可利用电泳法将它们分离。
血清中含有清蛋白、α-球蛋白、β-球蛋白、γ-球蛋白等,各种蛋白质由于氨基酸祖坟、立体构象、相对分子质量、等电点及形状不同,在电场中迁移速度不同。由表可知,血清中5种蛋白质的等电点大部分低于pH值7.0,所以在pH8.6的缓冲液中,它们都电离成负离子,在电场中向阳极移动。
表1 人血清中各种蛋白质的等电点及相对分子质量
蛋白质名称等电点相对分子质量
白蛋白 4.88 69000
α1-球蛋白 5.06 200000
α2-球蛋白 5.06 300000
β-球蛋白 5.12 90000~150000
γ-球蛋白 6.85~7.50 156000~300000 在一定范围内,蛋白质的含量与结合的染料量成正比,故可将蛋白质区带剪下,分别用0.4mol/L NaOH 溶液浸洗下来,进行比色,测定其相对含量。也可以将染色后的薄膜直接用光密度计扫描,测定其相对含量。
肾病、弥漫性肝损害、肝硬化、原发性肝癌、多发性骨髓瘤、慢性炎症、妊娠等都可以使白蛋白下降。肾病时α1、α2、β球蛋白升高,γ-球蛋白降低。肝硬化时α2、β-球蛋白降低,而α1、γ-球蛋白升高。
【实验器材及试剂】
器材:醋酸纤维薄膜,人血清或牛血清,烧杯,培养皿,镊子,载玻片,盖玻片,电吹风,电泳槽,直流稳压电泳仪,剪刀,手套,滤纸;
试剂:巴比妥-巴比妥钠缓冲液(pH8.6,离子强度0.06mol/L)
染色液(可重复使用,使用后回收)
漂洗液(100ml每组):95%乙醇45ml,冰乙酸5ml,水50ml
透明液(20ml每组):无水乙醇14ml+冰乙酸4ml,混匀
【操作方法】
1. 薄膜浸泡:将醋酸纤维薄膜在缓冲液中浸透(30min),取出后用滤纸吸去多余缓冲液。
2. 调整电泳槽水平,加电极液,搭建滤纸桥。
3. 点样:用盖玻片蘸取少许血清,然后将其与距离薄膜一端1.5~2㎝处接触。血清投入后移去载玻片,将薄膜平贴于已放在电泳槽上并已浸透缓冲液的电桥上,点样端为阴极。
4. 电泳:先平衡10min,后90V预电泳10min,再调电压110V,电泳50min~1h左右,结束。(点样带不要接触滤纸条)
5. 染色:电泳完毕,将薄膜浸于染色液中5~10min。
6. 漂洗:取出薄膜,用漂洗液漂至背景无色(约4~5次)。
7. 透明:将薄膜平贴于干净的玻璃器皿壁上,用配制好的透明液滴在薄膜上,薄膜逐渐透明,待其完全透明后,用吹风机将薄膜吹干,然后小心将透明条带揭下。
【实验结果】
电泳结果:
【注意事项】
1. 取出薄膜吸取上面多余的缓冲液溶液时,注意不要长时间放置于滤纸上,防止渗于薄膜内的缓冲液被洗出来,而导致电泳时蛋白质不能完全分开,影响最后结果。
2. 在往电解槽中加入电极液时要注意电极液高度不能超过红色划线,且电极槽液面要保持一致,同时要漫过电桥,否则无法形成回路,不能进行电泳。
3. 连接电泳仪线路时要注意正负极,用前检查电泳仪是否可用,在打开电源之前一定要把电压旋钮调至零,否则一打开电源,瞬间电压过高会烧坏仪器。
4. 在把薄膜放到电桥上时,要注意点样区不能接触到电桥上的滤纸,且点样区放在阴极端,还有,薄膜必须要拉直,中间部分不能与电泳槽接触。
5. 撕条带必须在完全干燥后,判断是否干燥的方法为用手触摸一下薄膜,要是感觉不粘手,则说明可以揭下,否则不能揭;在干燥时要注意也不能过度,过度则不易揭下。
【思考与讨论】
本次实验得到的电泳带从效果来看不是太好,主要的问题有以下几个:
1.有些电泳带参差不齐;
2.个别电泳带的两条带之间界限不明显;
分析可能导致实验失败或误差的原因有以下几点:
1.将薄膜表面吸干时吸的太干或吸的不完全。因为点样时应将膜片表面多余的缓冲液用滤纸吸去,以免
缓冲液太多引起样品扩散。但也不能吸得太干,太干则样品不易进入薄膜的网孔内,而造成电泳起始点参差不齐,影响分离效果。吸水量以不干不湿为宜;
2.用镊子取薄膜并吸干、点样的过程中,薄膜可能受到了异物污染;
3.缓冲液选择浓度不合适。因为缓冲液浓度过低,则区带泳动速度快,并由于扩散变宽;缓冲液浓度过
高,则区带泳动速度慢,区带分布过于集中不易分辨;
4.电流强度控制的不好,因为电流强度高,尤其在温度较高的环境中,可引起蛋白质变性或由于热效应
引起缓冲液中水分蒸发,使缓冲液浓度增加,造成膜片干涸。电流过低,则样品泳动速度慢且易扩散;
醋酸纤维薄膜电泳法分离血清蛋白的试验中,如果区带的分离效果不好,可能存在的影响因素?
1.电泳时间不足
2.薄膜在染色或漂洗时重叠紧密且时间很长
3.薄膜在缓冲液中浸泡的时间不足
4.点样时薄膜上是否存在多余的水分
实验过程中哪些操作会影响到实验条带的完整性,应该如何改正?
1.点样没有点好,盖玻片要直直的压在薄膜上,否则血清不均匀,影响电泳条带形状;
2.血清不宜过多,若过多则条带过宽,分离不完全;
3.也不易过少,过少则条带分离不完全。