浮游生物调查方法
鱼类浮游生物调查
鱼类浮游生物调查
30m 以浅
海域
浅水Ⅰ型浮游生物网 垂直取样 30米以深
海区
大型浮游生物网 垂直取样 用双鼓网 倾斜取样
调查方式和网具 D 大型浮游生物网自海底至海面垂直采样 I
浅水Ι型浮游生物网自海底至海面垂直采样 B
双鼓 (Bongo)网自海底至海面垂直采样 S
采水
样品采集
定性采样 一般在海水表层（）或其它水层进行水平拖网，船速为。
所用网具、水层及拖网时间应分别根据调查的目的和调查区鱼卵和仔、稚鱼密度来决定。
定量样品 由海底至海面垂直或倾斜拖网。
落网速度为0.5m/s ；起网速度为。
并记录于表。
样品处理
样品用中性甲醛溶液固定，加入量为样品体积的5%。
海洋生物资源调查-第3章 鱼类浮游生物调查及评价(专业知识模板)
种类鉴定
主要鱼类浮游生物应鉴定到属或科。 2.2 调查要素
包括鱼卵和仔、稚鱼的种类组成和数量分布。 3 采样
3.1 采样设备
网具 30m以浅海域,应采用浅水Ι型浮游生物网垂直取样， 30m以深海区,应采用大型浮游生物网垂直取样或用双鼓网 倾斜取样。此外可根据海区位置或深度、调查的性质、目
Na——全网鱼卵或仔、稚鱼个体数，单位为粒(ind)或尾(ind)； S——网口面积,单位为平方米（m2）； L——流量计转数； C----流量计校正值。
海洋生物要素调查及评价
水平拖曳样品
以粒/网（ind/net）或尾/网(ind/net)计算。 6 填写报表
按本部分的有关规定填写报表； 7 7.1 分布图绘制
是衡量亲鱼资源量大小和预报补充资源量所必需的资料。
海洋生物要素调查及评价
2
2.1
技术要求和调查要素
技术要求
垂直或倾斜拖网深度
水深大于200m的海区拖网深度为200m至表垂直拖网或斜 拖，水深小于200m的则由底至表垂直拖网或斜拖。 水平拖网深度 水平拖网深度为0m3m层。
垂直或倾斜分段拖网水层
根据测站深度、调查性质和目的的不同来确定.
平面分布图一般用等值线或不同量级的圆圈符号表示。
等值线的取值标准如下：
a)鱼卵和仔、稚鱼总量（单位为 ind/m3或ind/100m3）：1， 5，10，25，50，100，250，500，1 000，5 000；
海洋生物要素调查及评价
b) 鱼 卵 和 仔 、 稚 鱼 主 要 科 、 属 或 种 ( 单 位 为 ind/m3 或
c) 数量小于上述等级时，可用“ +”标在测站上，以示出现。
浮游生物资源调查及水质评价
浮游生物资源调查及水质评价作者：张武敬来源：《山西农业科学》 2014年第11期张武敬（运城市水务局水产站，山西运城 044000）摘要：浮游生物的群落组成、现存量、优势种及多样性都可作为水质评价和营养水平的重要标志。
分别在太原市、清徐县和山西农业大学思想湖（太谷）中采取水样，通过在显微镜下检查浮游生物的群落组成、优势种，对水体的健康程度做出判断。
结果表明，清徐鱼苗育种场的水体中检测出浮游植物29种，隶属5个门，蓝藻门较多，有17种，浮游动物27种，以桡足为主，有10种；太原和思想湖池中浮游动物量很大，太原有25种，思想湖中有31种，均以轮虫和桡足类为主。
蓝藻对水质稳定的影响较大，且死后会释放大量藻毒素。
轮虫和桡足类对养殖主体都是很好的饵料生物，能为鱼虾提供较为充足的营养。
关键词：池塘养殖；水质评价；浮游生物中图分类号：Q179.1 文献标识码：A 文章编号：1002-2481（2014）11-1197-03池塘中的浮游动、植物，周丛生物、底栖动物和水生细菌等，是组成池塘渔业生态系统的重要饵料生物基础，也是物质和能量向养殖终极产品输送的生物通道。
浮游植物作为水体中的初级生产者，可向水体中提供氧气，参与水体中的物质循环和能量转化[1]，在水生态系统中发挥着重要的作用，同时也是鱼、虾的天然饵料[2-4]，其数量变化会直接影响渔业资源量[5-6]。
浮游生物是水域生态系统中重要的生物组成部分，其在物质转化、能量流动和信息传递等生态过程中起着至关重要的作用，浮游生物的种类变化情况是水体的一个重要表征指标[7-8]。
水体中过量的浮游植物会使水体透明度降低，水质恶化、缺氧，导致毒素形成[9]。
在渔业生态系统中，生物群落中的生物在种间保持着各种形式的相互联系，共同参与对环境的反应，组成一个具有相互独立的成分、结构和机能的“生物社会”[10]。
群落与环境之间互相依存、互相制约，共同发展，形成一个自然整体。
浮游生物与水质的关系非常密切，有很多种类对水体环境变化很敏感，水生生物已被广泛应用于水环境监测。
淡水水生态调查方法
淡水水生态调查方法一，浮游生物部分（一）浮游植物、原生动物与轮虫1，定性样品采集与保存25号浮游生物网在水面下约0.5 m内以适当的速度作“∞”字形来回拖动1-3min，获得的浓缩样（约30-50ml）即为定性样品。
甲醛（4%）或鲁哥氏液（适量）现场固定，或活体带回实验室及时镜检。
2，定量样品采集与保存（1）采集与保存：用有机玻璃定深采水器采集表层或混合水样。
水样量：一般1000ml（贫营养水体应酌情增加水量），加入鲁哥氏液（长期保存样品也可用甲醛溶液）现场固定，避光，避热，带回实验室。
鲁哥氏液：6g 碘化钾+4g 碘+100ml水，1L水样中加入10-15ml。
浓缩鲁哥：样品量大时野外采样用，60g 碘化钾+40g 碘+100ml水，1L水样中加入1-1.5ml。
（2）沉淀浓缩处理设备：浮游生物沉淀器、吸耳球、虹吸管。
沉淀时间：24~48 h（禁止任何形式的搅动）。
沉淀完成后用虹吸管将上层清液小心吸出，下层沉淀摇动后转入50ml样品瓶用上清液冲洗三次沉淀器并转入样品瓶。
浓缩注意事项：浓缩最终体积视藻类多寡而定，藻多则最终样品体积大于50ml，藻少则小于50毫升；可以用透明度做相对的参考指标，以镜检时每个视野（40倍物镜下）有十几个藻为宜。
保存注意事项：①瓶塞要拧紧；②长期保存时加入甲醛溶液（体积分数2-4%）（二）浮游甲壳动物1，定性样品采集与保存13号浮游生物网（孔径0.112mm），水面下约0.5 m内，“∞”字形来回拖动，1-3min，加入5%甲醛固定。
2，定量样品采集与保存采不同水层水样10-50L用25号（注意，与定性网不同）浮游生物网过滤（滤缩法）——个体大，密度较低。
过滤后的生物网放在水中洗2-3次，多余的水滤过之后，网底管中的液体也放入样品瓶中。
加入甲醛（5%）固定。
二，理化参数部分总磷TP、总氮TN、正磷酸盐PO4-P、硝酸盐氮NO3-N、亚硝态氮NO2-N、氨氮NH4-N、化学需氧量COD、生化需氧量BOD、总有机碳TOC、总无机碳TIC、溶解氧DO、pH、氧化还原电位ORP、电导率CoND、水温、透明度SD、水色等，可酌情选择部分或全部参数。
第三章 鱼类浮游生物调查及评价(海洋生物资源调查技术)
b) 鱼 卵 和 仔 、 稚 鱼 主 要 科 、 属 或 种 ( 单 位 为 ind/m3 或 ind/100m3)：1，5，10，25，50，100，200，300，400 ，500，1 000；
c) 数量小于上述等级时，可用“+”标在测站上，以示出现 。
d) 上述取值标准，可视具体情况酌情增减。 7.2 圆圈的取值标准如下： a) 鱼卵和仔、稚鱼总量(ind/m3或ind/100m3)为： ＞01，＞110，＞1025，＞2550，＞50100，＞100250， ＞250500，＞5001 000，＞1 0005 000，＞5 000；
2020/11/4
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鱼卵、仔稚鱼的研究工作的目的和意义
➢ 了解有关胚胎发育和仔鱼的形态、分类及其生长和死亡生理、生态习 性等；
➢ 从研究海洋水域的生态学出发，研究鱼卵、仔鱼作为被捕食者、捕食 者以及评价污染作用的指标；
➢ 作为养殖对象，从水产养殖的苗种需要出发，也要研究选育良种的鱼 卵和仔鱼；
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3）卵膜特征 海产鱼类的卵膜，通常较薄，表面光滑而透明。。 4).卵黄结构 由于卵黄含量的丰富程度不同，卵黄的构造
和形态也不相同。 5) 油球 卵内有无油球及其数量、大小、色泽和分布都是鉴 定卵子的重要依据，如牙鲆，只有1个大油球，而条鳎则有 几十个小油球。
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6) 卵黄间隙 卵黄间隙的大小在同种鱼或不同种鱼而有差异。 7).胚胎的特征 胚胎形成后，是鱼卵整个发育期中外部形态比
在鉴定计数过程中，遇到发育不好的坏卵均要计入总量。
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5 资料整理 5.1 丰度中鱼卵或仔、稚鱼个体数，单位为粒 每立方米或尾每立方米（ind/m3）； N——全网鱼卵或仔、稚鱼个体数，单位为粒或尾（ind）； V——滤水量，单位为立方米（m3）。
浮游动物的采样方法
浮游动物生物量的测量方法自赵文《水生生物学》现存量：单位面积或体积中所存在生物体的数量或质量。
现存量若以个体数表示则可称为丰度或（数量）密度，单位为个/L。
若以质量表示则可称为生物量，单位为mg/L。
采集方法：一采水器采水后沉淀分离（适用原生动物、轮虫等小型浮游动物）；二用网过滤（适用于枝角类、挠足类等甲壳动物）。
仪器：采水器，（25#）浮游生物网，显微镜，计数框（计数原生动物用0.1ml计数框，计数轮虫和甲壳动物用1ml计数框）解剖镜，毛细管，目测微尺一采集1 设站根据浮游动物的分布设站。
2 采水层次由水体的深度决定。
切不可之采一个表层或一个底层水样。
（据夏季调查，东湖B站（水深4m左右），在2m的水层区，甲壳动物的数量约占31%，而入2m一下的水层占69%左右。
同时还发现，在夏季，一般幼体喜欢在表层，成体在深层。
）分层方法：是每隔0.5m或1m,甚至2m取一个水样加以混合，然后取得一部分作为浮游动物定量之用。
许多水库或深水湖泊，水深20m以上，这种水体在夏季及冬季存在温跃层（或称变温层）。
由于在温跃层一下缺乏光照，浮游植物数量极少，依赖植物生存的浮游动物数量也相应减少。
如果从养殖角度而言，只取温水层以上的水层就足够了。
3 采水量浮游动物不但种类组成复杂，而且个体大小相差也极悬殊。
因此要根据它们在水体中的不同密度二采不同的水量。
（目前计数原生动物、轮虫的水样量以1L为宜，枝角类、桡足类则以10~50L较好。
）4 采集时间采样时间要尽量保持一致。
一般在上午8:00~10:00进行为好。
在长江中下游采集，如果采集四次，则春、夏、秋、冬各一次。
如果只采一次，则应在秋季（9、10月）进行为好。
（这是因为9~10月正是鱼类摄食旺季，为鱼类生长的最佳时期，如果此时有较高的现存量，则可认为该水体中有较大的供铒能力。
）浮游动物样品的固定，原生动物和轮虫可用碘液或福尔马林，加量同浮游植物（一般可与浮游植物合用同一样品）。
第三讲2-水生生物调查研究
成蜡叶标本，可用浸制液浸泡。 标本贴上标签。
四、种类鉴定 用新鲜标本进行鉴定。所有标本应鉴定到种。 五、称重 1、鲜重 按种类称重。称重前放干燥处阴干，在采样当天完成。 2、干重 称取子样品(不少于样品量的10％)，置105℃干燥箱中干燥48 h或直到恒
录表。
2、计算生物量
1）浮游植物生物量计算 2）浮游动物生物量计算 原生动物、轮虫可用体积法求得生物体积，比重取l，再根
据体积换算为重量和生物量。 甲壳动物可用体长一体重回归方程，由体长求得体重(湿重)。 无节幼体一个可按0.003 mg湿重计算。
大型水生植物调查
一、主要试剂与器具
值。 枝角类、桡足类：5 mL计数框分若干次全部计数。 无节幼体：数量不多，全部计数；数量很多，可稀释计数3～
5片取平均值。 注意： 计数前，样品摇匀，吸出迅速准确； 计数框内无气泡，也不应有水样溢出； 计数两片取平均值，但每片结果与均数之差不大于土15％，
否则应计数第三片。
样点的间距一般为100～200 m。没有大型水生植物 分布的区域可不设采样点。
2、定量采样 挺水植物：用l㎡采样方框采集。 沉水植物、浮叶植物和漂浮植物：用采样面积为
0.25㎡的水草定量夹采集。 注意： 每个采样点采集两个平行样品； 采集的样品除去杂质装入样品袋内，沉水植物放盛
集；每个点采样10～50L，用25号浮游生物网过滤浓缩； 定性样品用13号浮游生物网在表层缓慢拖曳采集。 原生动物、轮虫和无节幼体：定量可用浮游植物定量样品， 单独采集取样1L；定性样品用25号浮游生物网采集。
五、浮游动物定性定量分析
浮游动物和浮游植物调查方法
个视野有十几个时，数50个视野就够了，如果平
均每个视野有5-6个时，就需数100个视野；如果平 均每个视野不超过1-2个时，要数200个视野以上，
数横条，最少不少于5条具体可自行掌握。 总之不论数视野还是数横条，每片计数到 的溪流植物总数应达到200个（低浓度时）500个（高浓度时）以上。 同一样品的二片计数结果与其均数之差距 如果不大于其均数的10%，这两个相近的值 的均数即可视为计数结果。
在器壁的可能性，然后静置沉淀24-48小时候。再 用乳胶管或橡皮管利用虹吸原理小心地抽出上都
不含藻类的清液。一般约剩下20-40毫升沉淀物转
入30或50毫升的定量瓶中，用上述清液冲洗沉淀
器2-3次，洗液仍倒入定量瓶中使水量恰好达到30
或50毫升。然后贴上标签，标签上要记载采集时 间、地点、采水量、池号和样品号等。
例：计数第一个片为250个，计数第二片为 246个 则两片的均数为（250+246）/2=248 均数与第一片之差：248-250= -2 均数与第二片之差：248-246=2 则：-2/248= -0.0081即 -0.81% 2/248=+0.0081 即 0.81% 因为0.81%<10%，所以上述相近值的均数应 视为计数结果。
七、数量计算： 1、定性 2、定量结果 浮游植物定量：
使用的工具有：带有0.1毫升刻度的小吸管，容量 为0.1毫升的计数框（面积20ⅹ20毫米2）和具有移
动台的显微镜。
经0.1毫升吸管吸水0.1毫升于方框内，盖上盖玻片， 如果框内无气泡亦无水液溢出，即表示容量标准 适合，检查三次均适合，此半数框即可使用。每 次计数时用的盖玻片应用碱水或肥皂水洗净备用。
淡水浮游动物调查实验注意事项
淡水浮游动物调查实验注意事项淡水浮游动物是淡水生态系统中的重要组成部分，对于了解水体质量和生态环境具有重要意义。
为了进行淡水浮游动物的调查实验，我们需要注意以下几点。
一、实验前的准备工作1. 确定调查的淡水水体：选择具有代表性的淡水水域，如湖泊、河流或水库等，并了解该水体的基本情况，如水体类型、水质状况等。
2. 熟悉浮游动物的特征：了解淡水浮游动物的基本特征，包括大小、形态、生态习性等，以便于在实验中正确鉴定和记录。
二、实验设计与样本采集1. 设计合理的实验方案：根据研究目的和问题，设计实验方案，包括样本采集地点、时间、重复次数等。
确保实验设计科学可行，并考虑到实验的可重复性和可比性。
2. 样本采集方法：根据实验方案选择适当的样本采集方法，如网捕、浮游动物网采集器或测量水样中的浮游动物浓度等。
采集样本时要注意避免样本污染和损伤。
3. 采集样本数量：根据实验需要和样本的生活史特征，确定合适的样本数量。
一般情况下，样本数量越多，结果越可靠。
三、样本处理与分析1. 样本保存：采集到的浮游动物样本需要及时处理和保存。
可以使用适当的浮游动物保存液，如乙醇或甲醛溶液，并在样本瓶上标明采集时间、地点和样本编号等信息。
2. 样本分析方法：根据实验设计和研究目的，选择适当的样本分析方法。
常用的方法包括显微镜观察、DNA分析、化学分析等。
确保分析方法的准确性和可重复性。
3. 数据处理与统计分析：对于采集到的数据进行整理、处理和统计分析。
可以使用适当的统计软件进行数据分析，如Excel、SPSS等。
四、实验结果的解读与应用1. 结果的解读：对实验结果进行科学的解读和分析，得出结论并与研究目的和问题进行比较。
要注意避免主观臆断和错误的解读。
2. 结果的应用：根据实验结果，探讨其在生态环境管理、水质评价或生物多样性保护等方面的应用价值。
可以提出相关建议和措施，促进水体生态环境的改善和保护。
五、实验安全与伦理1. 实验安全：在进行实验过程中，要注意实验安全，遵循实验室操作规范，确保个人和他人的安全。
浮游动植物调查方法
浮游动植物调查方法1.方法与原理1.1采样点水体中浮游生物的分布不是很均匀的，通常因水体形态、深度、水源几出口、风、光照以及其他环境条件而差异，因此必须选择有代表性的地点进行采样。
在一般情况下，湖泊的湖湾和中心部分，沿岸有水草区和无水草区浮游生物的种类和数量都有不同。
当有风引起水流时，浮游生物多聚集在水流冲击的下风向一侧，总量较高。
此外，水源入口处，不同时间各水层的光照和温度条件下浮游生物的种类和数量都会有所不同。
采样点的数目根据水体的具体条件而定。
水体面积大的，条件复杂的，采样点要多些；要有较高人力、时间和经费等条件允许的，采样点也可以多些。
1.2采集采集工具主要有采集网和采水器。
当一般定性采集时，可站在船舱内或甲板上，将采集网系在竹竿或木棍前端，放入水中作∞形循回拖动（网口上端不要露出水面），拖动速度不要超过0.3米/秒。
如若拖动太快，水在网内会发生回流，将使网内的浮游生物冲到网外。
当一般定量采集时，各种类型的采水器均可使用，但一定要能分层采水。
在水深不超过10米的水体采样时，可用自制的采水器。
采水器可以采集到那些易从网孔中漏失的微小浮游生物。
但因采集水量有限，很难采到密度较稀和游动能力强的较大类型种类。
1.3固定和保存采到的样品必须在5分钟以内加以固定。
常用的固定液有福尔马林、刘哥氏液、甘油—福尔马林保存液、Rodhe碘固定液。
福尔马林为含有40%甲醛的药品。
一般按每100毫升水样加入约4毫升福尔马林（含1.6%甲醛），也就是说用4%福尔马林固定。
1.4浓缩化学沉淀法：所才水样用福尔马林加以固定静置1—2昼夜使之沉淀，用宏吸管吸去上面清夜，将下层包括沉淀物的浓液移入小容器中，再静置沉淀。
必要时可反复进行，直到浓缩到10—50毫升为止。
1.5观察与鉴定对所采到的浮游生物种类进行全面的种的鉴定，是一项难度和工作量都很大的工作，常常需要各方面的专家协同进行。
种类鉴定可采用检索表和图鉴相结合的方法。
浮游监测操作范文
浮游监测操作范文浮游监测操作是一种用于研究水体中浮游生物种群结构和多样性的方法。
浮游生物在水体中起着重要的生态作用，对水体的生态状况和水质状况有着显著的影响。
因此，进行浮游监测可以帮助我们了解水体的生态环境，及时发现并解决可能存在的问题。
浮游监测的操作主要包括采样、样品处理和数据分析三个环节。
以下是具体的操作步骤：1.采样选择合适的采样地点，通常在水体表层进行采样，尽量避免靠近水体底部或悬浮物较多的位置。
使用专业的浮标或者船只，将采样装置（一般为浮标式或水平式）放入水体中，确保采样装置在采样过程中尽量保持平稳。
根据需求，可以设置不同的采样深度。
2.样品处理将采样装置从水体中取出，注意避免样品与外界环境接触过多，以尽量减少样品中浮游生物的死亡和变质。
将样品放入透明的容器中，直接观察和记录其外部特征，如颜色、浊度等。
根据需要，可以进行样品的分层处理，将不同深度的样品分别处理。
样品中的悬浮颗粒可以通过过滤的方式进行去除，以便更好地观察和分析浮游生物。
可以使用滤膜或计数腔等工具进行处理。
3.镜检将经过处理的样品放置在显微镜下进行观察和分析。
将样品取出适量放置在显微镜载玻片上，加入适量透明液体，尽量避免样品过于密集，以免影响观察。
调整显微镜的放大倍数和焦距，观察样品中的浮游生物种群，并进行记录和分类。
可以根据需要进行物种鉴定或者数量计数。
4.数据分析将观察到的浮游生物数据整理和统计，可以使用电子表格或专业的数据软件进行处理。
根据需要，可以计算浮游生物的种类数、丰度、相对密度等指标。
对于不同深度的样品，可以进行垂直分布和水平分布的比较分析。
根据数据分析的结果，可以绘制相应的图表，如柱状图、散点图等，用于展示浮游生物的分布规律。
需要注意的是，在进行浮游监测操作时，需要注意标本保存和处理过程中的卫生和安全问题。
尽量避免交叉污染和样品损坏。
另外，根据实际需求，可以结合其他监测指标，如水体温度、溶解氧、pH值等，进行综合分析和综合评价。
浮游生物调查方法
沉淀器应置于平稳处，避免摇动。水样倾入二小 时后应将沉淀器轻轻旋转一会，以减少藻类附着 在器壁的可能性，然后静置沉淀24-48小时候。再 用乳胶管或橡皮管利用虹吸原理小心地抽出上都 不含藻类的清液。一般约剩下20-40毫升沉淀物转 入30或50毫升的定量瓶中，用上述清液冲洗沉淀 器2-3次，洗液仍倒入定量瓶中使水量恰好达到30 或50毫升。然后贴上标签，标签上要记载采集时 间、地点、采水量、池号和样品号等。
数横条，最少不少于5条具体可自行掌握。 总之不论数视野还是数横条，每片计数到
的溪流植物总数应达到200个（低浓度时）500个（高浓度时）以上。 同一样品的二片计数结果与其均数之差距 如果不大于其均数的10%，这两个相近的值 的均数即可视为计数结果。
例：计数第一个片为250个，计数第二片为 246个
三、调查工具
1、采水器
2、浮游生物网
3、透明度盘 4、标本瓶
5、固定液 鲁哥氏液 甲醛 3%-5% 6、其他：
四、采样点选择 五、样品采集： 1、定性样品采集 2、定量样处理 2、定量样品处理
浮游植物样品 浮游动物样品
浮游植物样品
所采水样摇匀后倒入沉淀器中静置，使浮 游植物完全沉淀。
用前可浸入70%的酒精中，用时取出，用细绢拭 净，计数框用前以薄绸布拭净，用毕以水弄湿后 轻拭或用水冲净。
首先将计算瓶用左右平移的方式摇动100-200次， 摇均匀后立即用0.1毫升吸管从中吸取0.1毫升置入 0.1毫升计数框内，在400-600倍的显微镜下观察计 数，每个水样标本计数两次（二片），取其平均 值，一每片计数100个视野，但具体观察的视野数 以样品中浮游植物多少而酌情增减，如果平均每 个视野有十几个时，数50个视野就够了，如果平 均每个视野有5-6个时，就需数100个视野；如果平 均每个视野不超过1-2个时，要数200个视野以上，
浮游动植物调查方法
浮游动植物调查方法1.方法与原理1.1采样点水体中浮游生物的分布不是很均匀的，通常因水体形态、深度、水源几出口、风、光照以及其他环境条件而差异，因此必须选择有代表性的地点进行采样。
在一般情况下，湖泊的湖湾和中心部分，沿岸有水草区和无水草区浮游生物的种类和数量都有不同。
当有风引起水流时，浮游生物多聚集在水流冲击的下风向一侧，总量较高。
此外，水源入口处，不同时间各水层的光照和温度条件下浮游生物的种类和数量都会有所不同。
采样点的数目根据水体的具体条件而定。
水体面积大的，条件复杂的，采样点要多些；要有较高人力、时间和经费等条件允许的，采样点也可以多些。
1.2采集采集工具主要有采集网和采水器。
当一般定性采集时，可站在船舱内或甲板上，将采集网系在竹竿或木棍前端，放入水中作∞形循回拖动（网口上端不要露出水面），拖动速度不要超过0.3米/秒。
如若拖动太快，水在网内会发生回流，将使网内的浮游生物冲到网外。
当一般定量采集时，各种类型的采水器均可使用，但一定要能分层采水。
在水深不超过10米的水体采样时，可用自制的采水器。
采水器可以采集到那些易从网孔中漏失的微小浮游生物。
但因采集水量有限，很难采到密度较稀和游动能力强的较大类型种类。
1.3固定和保存采到的样品必须在5分钟以内加以固定。
常用的固定液有福尔马林、刘哥氏液、甘油—福尔马林保存液、Rodhe碘固定液。
福尔马林为含有40%甲醛的药品。
一般按每100毫升水样加入约4毫升福尔马林（含1.6%甲醛），也就是说用4%福尔马林固定。
1.4浓缩化学沉淀法：所才水样用福尔马林加以固定静置1—2昼夜使之沉淀，用宏吸管吸去上面清夜，将下层包括沉淀物的浓液移入小容器中，再静置沉淀。
必要时可反复进行，直到浓缩到10—50毫升为止。
1.5观察与鉴定对所采到的浮游生物种类进行全面的种的鉴定，是一项难度和工作量都很大的工作，常常需要各方面的专家协同进行。
种类鉴定可采用检索表和图鉴相结合的方法。
浮游生物调查方法
浮游生物调查方法一、调查目的：浮游生物种类和数量与环境关系。
二、调查的主要内容：●定性调查●定量调查三、调查工具1、采水器2、浮游生物网3、透明度盘4、标本瓶5、固定液●鲁哥氏液●甲醛3%-5%6、其他：四、采样点选择五、样品采集：1、定性样品采集2、定量样品采集：浮游植物，浮游动物。
六、样品处理：1、定性样品处理2、定量样品处理●浮游植物样品●浮游动物样品浮游植物样品●所采水样摇匀后倒入沉淀器中静置，使浮游植物完全沉淀。
●沉淀是一种圆柱形分液漏斗（图2）。
如无沉淀器也可用甘杯、烧杯或在原水样瓶中静置沉淀。
●沉淀器应置于平稳处，避免摇动。
水样倾入二小时后应将沉淀器轻轻旋转一会，以减少藻类附着在器壁的可能性，然后静置沉淀24-48小时候。
再用乳胶管或橡皮管利用虹吸原理小心地抽出上都不含藻类的清液。
一般约剩下20-40毫升沉淀物转入30或50毫升的定量瓶中，用上述清液冲洗沉淀器2-3次，洗液仍倒入定量瓶中使水量恰好达到30或50毫升。
然后贴上标签，标签上要记载采集时间、地点、采水量、池号和样品号等。
●虹吸动作要十分仔细、小心。
开始时虹吸管一端放在沉淀器内约三分之二处，另一端套接在已经用手挤压出空气的橡皮球上，然后轻轻松手并移开橡皮球使清液流出，为了避免漂浮水面的一些微小藻类进入虹吸管而被吸走，管吕应始终低于水面。
虹吸管内清液的活动不宜过快，可用手指轻捏管壁以控制流量，当吸到原水样的3/5以上时，应使清淮一滴一滴地流下。
吸出的清液要用一洁净的器皿装盛，以便在浓缩过程在出故障时，可重新倒入沉淀器中浓缩，不必新采水。
七、数量计算：1、定性2、定量结果浮游植物定量：●使用的工具有：带有0.1毫升刻度的小吸管，容量为0.1毫升的计数框（面积20ⅹ20毫米2）和具有移动台的显微镜。
●经0.1毫升吸管吸水0.1毫升于方框内，盖上盖玻片，如果框内无气泡亦无水液溢出，即表示容量标准适合，检查三次均适合，此半数框即可使用。
淡水浮游生物的调查方法
8.3 淡水浮游生物的调查方法淡水浮游生物调查有定性调查和定量调查两种类型。
定性调查是指采集浮游生物进行属种鉴定的过程，其目的在于了解水体中浮游生物的种类组成、出现季节及其分布状况。
定量调查是指采集浮游生物，确定个体数目或重量的过程，其目的在于探明各种浮游生物在水体中的数量及其变化情况。
定性调查是定量调查的基础，定量调查则是定性调查的发展和补充，二者相辅相成，在实践中常相互结合进行。
一、调查用品用具(1)网具①浮游生物定性网：用于表层50厘米内各种浮游生物的定性采集。
由铜环、缝在环上的圆锥形筛绢网袋及连在网袋末端的集中杯（网头）三部分组成（其外形见本书图2-3）。
由于浮游生物大小各不相同，为了采全各种浮游生物，应使用25#、20#、13#三种规格。
其中25#网适于采集个体较小的浮游植物，其网孔大小为0.064毫米；20#网适于采集一般浮游植物及中小型浮游动物，其网孔大小为0.076毫米；13#网适于采集大型枝角类和桡足类等浮游动物，其网孔大小为0.112毫米。
中学生开展本项活动时，可以只用20#网进行采集。
定性网可以自己裁剪制作，裁剪时可按图8-1所示方法进行。
如网口直径为20厘米，其半径为10厘米，可依c=2rπ公式计算，从a到b的弧长为62.8厘米，a至c为网的长度即60厘米，这样就可按照图8－1中的1与2所示方法进行裁剪。
缝合时，应该用细针，以免网上留下针孔，造成浮游生物自针孔流失。
网衣应该用10厘米宽的白布条固定在铜环上，使筛绢不与铜环直接接触。
在网的末端装配集中杯。
为了使网衣坚固耐用，最好在缝合处加缝2厘米宽的白布条。
定性网各部分的尺寸规格，依型式不同而有差别，其尺寸规格见表8-1。
表8-1 浮游生物定性网规格单位：厘米②浮游生物定量网：用于表层50厘米内各种浮游生物的定量采集。
其组成、质地、规格尺寸和制作方法与定性网基本相同。
二者有两点区别。
一点是定量网前端有两个金属环（前小后大），两环间有一圈帆布，称为上锥部（附加套），用途在于减少由于曳网时浮游生物着逆流向外而流失；另一点是网身较定性网略长（图8-2）。
浮游生物样品采集与分析
浮游生物的种类与分布
浮游生物的种类繁多，分布广泛，几 乎存在于全球各地的水域中。
不同地区和不同水域的浮游生物种类 和数量分布各不相同，受到温度、光 照、盐度、水深等多种因素的影响。
浮游生物的生态作用
浮游植物通过光合作用产生氧气， 是水生生态系统中的主要生产者
采集浮游生物需要使用各种工具和设备，如浮游生物网、采水器、标本瓶、显微 镜、计数板等。这些工具和设备用于捕获、保存和观察浮游生物样品。
样品处理与保存
总结词
对采集到的浮游生物样品进行处理的步骤和方法。
详细描述
对采集到的浮游生物样品需要进行适当的处理和保存，以保持样品的代表性和完整性。处理方法包括洗涤、筛选、 浓缩、固定等，保存则通常采用加入适量固定剂或保存液，以及低温或冷冻等方法。样品处理和保存的步骤对于 保证分析结果的准确性和可靠性至关重要。
计数法
总结词
根据一定体积的浮游生物样品中含有的 个体数量进行计数。
VS
详细描述
计数法是浮游生物分析中最常用的方法之 一，通过在一定体积的样品中计数浮游生 物的个体数量，可以得出该体积内的浮游 生物密度。该方法需要使用计数板或计数 池等工具，操作简便，结果准确。
生物量测定法
总结词
通过测量浮游生物样品的重量、干重或湿重 来推算其生物量。
采样点的选择与布局
采样点选择
在选择浮游生物采样点时，应考虑水 体的类型、流速、水深、水质、底质 等因素，以确保采集到的样品具有代 表性。
采样点布局
采样点的布局应遵循均匀分布的原则 ，尽可能覆盖整个水体，避免出现采 样盲区。
采样时间与频率
浮游生物调查 - 中国科学院水生生物研究所
浮游生物调查1．试剂与器具主要试剂见附录1，器具见附录2、3。
2 采样2.1 采样点布设2.1.1 原则根据水体面积、形态、浮游植物的生态分布特点和调查的目的等决定采样点数量。
采样点应有代表性，能反映整个水体浮游生物的基本情况。
采样点设置数量见表1。
采样结果记入附录4。
2.1.2 湖泊、水库湖泊应兼顾在近岸和中部设点，可根据湖泊形状在湖心区、大的湖湾中心区、进水口和出水口附近、沿岸浅水区（有水草区和无水草区）分散选设；水库应在库心区（河道型水库应分别在上游、中游、下游的中心区）及大的库湾中心区、主要进水口、出水口附近、主要排污口、入库江河汇合处设点。
2.1.3 江河在干流上游、中游、下游，主要支流汇合口上游、汇合后与干流充分混合处，主要排污口附近、河口区等河段设置采样断面。
根据江河宽设置断面采样点，一般小于50m的只在中心区设点；50m～100m的可在两岸有明显水流处设点；超过100m的应在左、中、右分别设置采样点。
2.2 采样层次2.2.1 浮游植物采样水深小于3m时，只在中层采样；水深3m～6m时，在表层、底层采样，其中表层水在离水面0.5m处，底层水在离泥面0.5m处；水深6m～10m时，在表层、中层、底层采样；水深大于10m时，在表层、5m、10m水深层采样，10m以下处除特殊需要外一般不采样。
2.2.2 浮游动物采样由水体的深度决定，每隔0.5m、1m或2m取一个水样加以混合，然后取一部分作为浮游动物定量之用。
2.3 采样频次和采样时间采集次数依研究目的而定，采样次数可逐月或按季节进行，一般按季节进行。
样品瓶必须贴上标签，标明采集时间、地点。
采样时间尽量保持一致，一般在上午8：00～10：00进行。
2.4 采样方法2.4.1 浮游植物采样定量样品在定性采样之前用采水器采集，每个采样点取水样1L，贫营养型水体应酌情增加采水量。
泥沙多时需先在容器内沉淀后再取样。
分层采样时，取各层水样等量混匀后取水样1L。
浅析浮游生物调查的基本研究方法及其应用
浅析浮游生物调查的基本研究方法及其应用发布时间：2021-04-26T08:34:22.883Z 来源：《中国科技人才》2021年第6期作者：尹舜开李宏祥周景涛姚晓阳朱志豪刘振宇[导读] 浮游生物包括浮游动物和浮游植物，都在水体系统中起着不可替代的作用。
水体中浮游生物的品种和数量是判定水体质量和水域生产力等因素的重要指标[1]。
中国农业大学烟台研究院山东烟台 264670摘要：通过阅读文献与资料，总结整理了水生生物调查的基本方法，定性定量分析的步骤与数据分析技术。
并联系实际，探究其在渔业与海洋资源开发利用保护上的作用。
关键词：水生生物；定性分析；定量分析；应用引言浮游生物包括浮游动物和浮游植物，都在水体系统中起着不可替代的作用。
水体中浮游生物的品种和数量是判定水体质量和水域生产力等因素的重要指标[1]。
所以需要对水体中的浮游生物进行定性定量的调查研究，为渔业和环境资源保护提供理论指导。
1 浮游生物的采集与处理1.1 勘测水域概况在正式调查前要对某水域先进行大致了解并制定适当的调查计划以确定具休的调查方法。
勘查的主要内容是1.水域的位置和面积。
2.水源的入出水口，水深，水位，流速，透明度，ph.值，底质等。
有无工业废水排入，污染程度高低，了解枯水期丰水期等情况。
3.水体中浮游生物的概况和水体周边生物情况。
4.水体中是否有其它水生生物，大致品种及比例。
1.2 主要器材及药品浮游生物网 (25号、13号) 、有机玻璃采水器、小塑料瓶（30-60ml）用来盛定性水样、1000毫升塑料或玻璃瓶，用来盛定量水样、水温计、透明度盘、ph.试纸GPS定位仪、显微镜、解剖镜、电子分析天平;碘液 (鲁哥氏液) 、甲醛溶液 (分析纯) 等[2]。
1.2.1 固定剂的选择用浮游生物网采集的浮游植物样品，样品浓度相对较高，常以缓冲甲醛作为固定剂。
对于需通过沉降浓缩处理的样品，则使用鲁哥氏液。
因为鲁哥氏液中的碘可对细胞进行染色，使浮游植物因质量增加而具有更大的沉降速率[3]。
第三讲2水生生物调查研究
调查内容
1、浮游植物调查： 浮游植物定性调查 浮游植物定量调查
2、浮游动物调查： 浮游动物定性调查 浮游动物定量调查
一、主要试剂与器具
主要试剂： 鲁哥氏液（称取6g碘化钾溶于
20 mL蒸馏水中，待完全溶解 后，加入4g碘，摇动，至碘完 全溶解，加蒸馏水定容到100 mL，贮存于磨口棕色试剂瓶 中）。 甲醛溶液等。 主要器具：采水器，浮游生物 网，水样瓶，样品瓶，沉淀器， 计数框，显微镜，解剖镜。
录表。
2、计算生物量
1）浮游植物生物量计算 2）浮游动物生物量计算 原生动物、轮虫可用体积法求得生物体积，比重取l，再根
据体积换算为重量和生物量。 甲壳动物可用体长一体重回归方程，由体长求得体重(湿重)。 无节幼体一个可按0.003 mg湿重计算。
大型水生植物调查
一、主要试剂与器具
V: 计数框体积. (0.1ml)
Cs: 计数框面积. (400mm2)
Fs: 每个视野面积.(D=?)
四、浮游动物调查
1、采样 采样点布设：同前。 采样层次：由水体的深度决定，每隔0.5 m、1 m或2 m取
一个水样加以混合。 采样方法： 枝角类和桡足类：定量样品应在定性采样之前用采水器采
长时间保存加甲醛溶液， 枝角类和桡足类定量、定性样品应立即用甲醛
溶液固定。 3、水样沉淀浓缩 原生动物和轮虫的计数可与浮游植物计数合用
一个样品。方法同前。 枝角类和桡足类通常用过滤法浓缩水样。
4、浮游动物计数 原生动物：0.1 mL计数框全片计数。计数两片，取其平均值。 轮虫：l mL计数框全片计数。每瓶样品计数两片，取其平均
存，再加入40％甲醛溶液，用量为水样体积的4％。
第11章-浮游生物研究方法
3. 采水量
浮游动物不但种类组成复杂,而且个体大小相差也 极悬殊.大的浮游动物,如透明薄皮蚤Leptodora kindti) 可达10毫米以上,肉眼可见;小的如原生生物,只有20 一30微米,只能在足够倍数的显微镜下方能观察清楚. 它们在水体中的数量也极不同.原生动物从几百个到几 万个,一般为几干个;轮虫从几十个到上万个,一般为 几百个;甲壳动物从几个到几百个,一般为几十个.因 此要根据它们在水体中的不同密度而采不同的水量. 目前,最常用的采水量,计数原生生物,轮虫的水 样以l升为宜,枝角类,桡足类则以10-50升水样较好.
无节幼体的计数问题
无节幼体是桡足类的幼体,据初步统计它们的数量占整 个桡足类总数的40-90%,平均为75%.无节幼体一般很小, 与轮虫相差无几,甚至有的还小于轮虫和原生动物.在样品 中如果挠足类数量不多,可和枝角类,桡足类一样全部计数; 如果桡足类数量很多,全部过数花时太多,那么可把过滤样 品稀释到若干体积后,并充分摇匀,再取其中部分计数,计 数苦干片取其平均值.然后再换算成单位体积中个体数.无 节幼体亦可在l升沉淀样品中,用轮虫相同的计数方法进行计 数.
换算公式 把计数获得的结果用下列公式换算为单位体积中浮游动物个数: N= Vsn/VVa 式中 N——升水中浮游动物个体数(个/升);V—采样体积(升);Vs, Va——沉淀体积(毫升),计数体积(毫升);n—计数所获得的个体数. 例如:取1升水样,浓缩至30毫升,计数之前充分摇匀后吸取0.1毫升样 品,计数原生动物两片,获得平均值为50个,吸取1髦升样品计数轮 虫,计数两片获 得平均值为30个,则1升水个原生动物为: 30×50/1×0.1=15 000 (个) 1升水中轮虫数量为:30×30/1×1=900(个) 又如取20升水样,经25号生物网过滤后,滤缩标本全部计数得各种枝角 类50个;桡足类成体,幼体80个,无节幼400个, 则 1升水中校角类为:50/20=2.5(个);桡足类为: 480/20=24个 无节幼体如在1升沉淀样品中计数,则和轮虫一样换算;如在20升过滤样 品中分次级样品计数,则按同样的原则进行换算.
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七、数量计算： 1、定性 2、定量结果 浮游植物定量：
使用的工具有：带有0.1毫升刻度的小吸管，容量 使用的工具有：带有0.1毫升刻度的小吸管，容量 为0.1毫升的计数框（面积20ⅹ20毫米2）和具有移 0.1毫升的计数框（面积20ⅹ20毫米2 动台的显微镜。 经0.1毫升吸管吸水0.1毫升于方框内，盖上盖玻片， 0.1毫升吸管吸水0.1毫升于方框内，盖上盖玻片， 如果框内无气泡亦无水液溢出，即表示容量标准 适合，检查三次均适合，此半数框即可使用。每 次计数时用的盖玻片应用碱水或肥皂水洗净备用。 用前可浸入70%的酒精中，用时取出，用细绢拭 用前可浸入70%的酒精中，用时取出，用细绢拭 净，计数框用前以薄绸布拭净，用毕以水弄湿后 轻拭或用水冲净。
虹吸动作要十分仔细、小心。开始时虹吸管一端 放在沉淀器内约三分之二处，另一端套接在已经 用手挤压出空气的橡皮球上，然后轻轻松手并移 开橡皮球使清液流出，为了避免漂浮水面的一些 微小藻类进入虹吸管而被吸走，管吕应始终低于 水面。虹吸管内清液的活动不宜过快，可用手指 轻捏管壁以控制流量，当吸到原水样的3/5以上时， 轻捏管壁以控制流量，当吸到原水样的3/5以上时， 应使清淮一滴一滴地流下。吸出的清液要用一洁 净的器皿装盛，以便在浓缩过程在出故障时，可 重新倒入沉淀器中浓缩，不必新采水。
数横条，最少不少于5 数横条，最少不少于5条具体可自行掌握。 总之不论数视野还是数横条，每片计数到 的溪流植物总数应达到200个（低浓度时）的溪流植物总数应达到200个（低浓度时）500个（高浓度时）以上。 500个（高浓度时）以上。 同一样品的二片计数结果与其均数之差距 如果不大于其均数的10%，这两个相近的值 如果不大于其均数的10%，这两个相近的值 的均数即可视为计数结果。
浮游动物定量：
八、结果统计： 定性结果： 定量结果：个/L， 定量结果：个/L，mg/L
例：计数第一个片为250个，计数第二片为 例：计数第一个片为250个，计数第二片为 246个 246个 则两片的均数为（250+246） 则两片的均数为（250+246）/2=248 均数与第一片之差：248均数与第一片之差：248-250= -2 均数与第二片之差：248均数与第二片之差：248-246=2 则：则：-2/248= -0.0081即 -0.81% 0.0081即 2/248=+0.0081 即 0.81% 因为0.81%<10%，所以上述相近值的均数应 因为0.81%<10%，所以上述相近值的均数应 视为计数结果。
六、样品处理： 1、定性样品处理 2、定量样品处理 浮游植物样品 浮游动物样品
浮游植物样品 所采水样摇匀后倒入沉淀器中静置，使浮 游植物完全沉淀。 沉淀是一种圆柱形分液漏斗（图2 沉淀是一种圆柱形分液漏斗（图2）。如无 沉淀器也可用甘杯、烧杯或在原水样瓶中 静置沉淀。
沉淀器应置于平稳处，避免摇动。水样倾入二小 时后应将沉淀器轻轻旋转一会，以减少藻类附着 在器壁的可能性，然后静置沉淀24-48小时候。再 在器壁的可能性，然后静置沉淀24-48小时候。再 用乳胶管或橡皮管利用虹吸原理小心地抽出上都 不含藻类的清液。一般约剩下20-40毫升沉淀物转 不含藻类的清液。一般约剩下20-40毫升沉淀物转 入30或50毫升的定量瓶中，用上述清液冲洗沉淀 30或50毫升的定量瓶中，用上述清液冲洗沉淀 器2-3次，洗液仍倒入定量瓶中使水量恰好达到30 次，洗液仍倒入定量瓶中使水量恰好达到30 或50毫升。然后贴上标签，标签上要记载采集时 50毫升。然后贴上标签，标签上要记载采集时 间、地点、采水量、池号和样品号等。
浮游生物调查方法
一、调查目的： 浮游生物种类和数量与环境关系。 二、调查的主要内容： 定性调查 定量调查
三、调查工具
1、采水器
2、浮游生物网
3、透明度盘
4、标本瓶
5、固定液 鲁哥氏液 甲醛 3%-5% 3%6、其他：
四、采样点选择 五、样品采集： 1、定性样品采集 2、定量样品采集：浮游植物，浮游动物。
首先将计算瓶用左右平移的方式摇动100-200次， 首先将计算瓶用左右平移的方式摇动100-200次， 摇均匀后立即用0.1毫升吸管从中吸取0.1毫升置入 摇均匀后立即用0.1毫升吸管从中吸取0.1毫升置入 0.1毫升计数框内，在400-600倍的显微镜下观察计 0.1毫升计数框内，在400-600倍的显微镜下观察计 数，每个水样标本计数两次（二片），取其平均 值，一每片计数100个视野，但具体观察的视野数 值，一每片计数100个视野，但具体观察的视野数 以样品中浮游植物多少而酌情增减，如果平均每 个视野有十几个时，数50个视野就够了，如果平 个视野有十几个时，数50个视野就够了，如果平 均每个视野有5 个时，就需数100个视野；如果平 均每个视野有5-6个时，就需数100个视野；如果平 均每个视野不超过1 个时，要数200个视野以上， 均每个视野不超过1-2个时，要数200个视野以上，