实验动物用药量的确定及计算方法
3.3实验动物给药量的计算
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药理实验动物用药量的计算方法
动物实验所用的药物剂量,一般按mg/kg体重或g/kg体重计算,应用时须从已知药液的浓度换算出相当于每kg体重应给予的药液量(m1数),以便给药。
例1:给体重22g的小鼠腹腔注射戊巴比妥钠40mg/kg体重,溶液浓度为0.4%,应注射多少(m1)?
计算方法:小鼠每kg体重需戊巴比妥钠的量为40mg,则0.4%的戊巴比妥钠溶液的注射量应为10ml/kg体重,现小鼠体重为22g,应注射0.4%戊巴比妥钠溶液的用量:10×0.022=0.22(m1)。
例2:体重1.8kg的家兔,静脉注射20%氨基甲酸乙酯溶液麻醉,按每kg 体重1g的剂量注射,应注射多少(ml)?
计算方法:兔每kg体重需注射1g,注射液浓度为20%,则氨基甲酸乙酯溶液的注射量应为5ml/kg体重,现在兔体重为1.8kg,应注射20%氨基甲酸乙酯溶液用量:5×1.8=9(m1)。
【习题】
1.给体重2.1kg的兔子注射30mg/kg的尼可刹米.注射液浓度为10%,应注射多少毫升?
2.大鼠口服双氢氯噻嗪剂量为5mg/kg,灌胃所需药液量为2.5ml/100g应配制的浓度是多少?
3.硫喷妥钠注射剂每支0.5g,免体重1.9kg,静注硫喷妥钠剂量为100mg/kg容量为1m1/kg,该药0.5g应配成多少ml?注射的药量是多少m1?。
实验动物用药剂量计算
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[组图]人与动物及各类动物间药物剂量的换算方法热荐★★★人与动物及各类动物间药物剂量的换算方法作者:佚名文章来源:医用实验动物学点击数:11030 更新时间:2008-8-13 15:25:071.人与动物用药量换算人与动物对同一药物的耐受性是相差很大的。
一般说来,动物的耐受性要比人大,也就是单位体重的用药理动物比人要大。
人的各种药物的用量在很多书上可以查得,但动物用药量可查的书较少,而且动物用的药物种类远不如人用的那么多。
因此,必须将人的用药量换算成动物的用药量。
一般可按下列比例换算:人用药量为1,小白鼠、大白鼠为25-50,兔、豚鼠为15-20,狗、猫为5-10。
此外,可以采用人与动物的体表面积计算法来换算:(1)人体体表面积计算法计算我国人的体表面积,一般认为许文生氏公式(中国生理学杂志12:327,1937)尚较适用,即:体表面积(m2)=0.0061×身高(cm)+0.0128×体重(kg)-0.1529例:某人身高168cm,体重55kg,试计算其体表面积。
解:0.061×168+0.0128×55.0.1529=1.576m2(2)动物的体表面积计算法有许多种,在需要由体重推算体表面积时,一般认为Meeh-Rubner氏公式尚较适用,即:式中的K为一常数,随动物种类而不同:小白鼠和大白鼠9.1、豚鼠9.8、家兔10.1、猫9.8、狗11.2、猴11.8、人10.6(上列K值各家报导略有出入)。
应当指出,这样计算出来的表面积还是一种粗略的估计值,不一定完全符合于每个动物的实测数值。
例:试计算体重1.50kg家兔的体表面积。
2.人及不同种类动物之间药物剂量的换算(1)直接计算法即按:例:某利尿药大白鼠灌给药时的剂量为250mg/kg,试粗略估计狗灌胃给药时可以试用的剂量。
解:实验用大白鼠的体重一般在200g左右,其体表面积(A)为:250mg/kg的剂量如改以mg/m2表示,即为:实验用狗的体重一般在10kg左右,其体表面积(A)为:(2)按mg/kg折算mg/m2转换因子计算例:同上解:按计算出狗的适当试用剂量。
人与实验动物用药剂量换算
![人与实验动物用药剂量换算](https://img.taocdn.com/s3/m/6ec3deb4d15abe23482f4daa.png)
人与动物及各类动物间药物剂量的换算方法1.人与动物用药量换算人与动物对同一药物的耐受性是相差很大的。
一般说来,动物的耐受性要比人大,也就是单位体重的用药理动物比人要大。
人的各种药物的用量在很多书上可以查得,但动物用药量可查的书较少,而且动物用的药物种类远不如人用的那么多。
因此,必须将人的用药量换算成动物的用药量。
一般可按下列比例换算:人用药量为1,小白鼠、大白鼠为25-50,兔、豚鼠为15-20,狗、猫为5-10。
此外,可以采用人与动物的体表面积计算法来换算:(1)人体体表面积计算法计算我国人的体表面积,一般认为许文生氏公式(中国生理学杂志12:327,1937)尚较适用,即:体表面积(m2)=0.0061×身高(cm)+0.0128×体重(kg)-0.1529例:某人身高168cm,体重55kg,试计算其体表面积。
解:0.061×168+0.0128×55.0.1529=1.576m2(2)动物的体表面积计算法有许多种,在需要由体重推算体表面积时,一般认为Meeh-Rubner氏公式尚较适用,即:式中的K为一常数,随动物种类而不同:小白鼠和大白鼠9.1、豚鼠9.8、家兔10.1、猫9.8、狗11.2、猴11.8、人10.6(上列K值各家报导略有出入)。
应当指出,这样计算出来的表面积还是一种粗略的估计值,不一定完全符合于每个动物的实测数值。
例:试计算体重1.50kg家兔的体表面积。
2.人及不同种类动物之间药物剂量的换算(1)直接计算法即按:例:某利尿药大白鼠灌给药时的剂量为250mg/kg,试粗略估计狗灌胃给药时可以试用的剂量。
解:实验用大白鼠的体重一般在200g左右,其体表面积(A)为:250mg/kg的剂量如改以mg/m2表示,即为:实验用狗的体重一般在10kg左右,其体表面积(A)为:(2)按mg/kg折算mg/m2转换因子计算例:同上解:按计算出狗的适当试用剂量。
常见实验动物的捉持和给药方法
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常见实验动物的捉持和给药⽅法常见实验动物的捉持和给药⽅法⼀、⼩⽩⿏的捉持和给药⽅法1、捉持⽅法右⼿提起⿏尾,放在粗糙物(如⿏笼)上⾯,轻向后拉其尾;此时⼩⿏前肢抓住粗糙⾯不动;⽤左⼿拇指和⾷指捏住双⽿及头部⽪肤,⽆名指、⼩指和掌⼼夹其背部⽪肤及尾部,便可将⼩⿏完全固定。
腾出右⼿,可以给药。
此外,也可单⼿捉持,难度较⼤,但速度快。
先⽤拇指和⾷指抓住⼩⿏尾巴,⽤⼩指、⽆名指和⼿掌压住尾根部,再⽤腾出的拇指、⾷指及中指抓住⿏双⽿及头部⽪肤⽽固定。
2、给药⽅法a.灌胃法⼩⿏固定后,使腹部朝上,颈部拉直,右⼿⽤带灌胃针头的注射器吸取药液(或事先将药液吸好),将针头从⼝交插⼊⼝腔,再从⾆背进沿上腭进⼊⾷道。
若遇阻⼒,应退出后再插,切不可⽤⼒过猛,防⽌损伤或误⼊⽓管导致动物死亡。
灌胃量⼀般不超过0.25ml/10g。
b.腹腔注射法抓⿏⽅法同上,右⼿持注射器(5~6号针头),从耻⾻联合上⼀侧向头端以30度⾓刺⼊腹腔(应避开膀胱)。
可先刺⼊⽪下2~3mm,再刺⼊腹腔,以防药液外漏。
针头刺⼊部位不宜太⾼太深,以免刺破内脏。
注射量⼀般为0.1~0.25ml/10g。
c.⽪下注射法⼀般两⼈合作。
⼀⼈左⼿抓住⼩⿏头部⽪肤,右⼿拉住⿏尾;另⼀⼈左⼿提⾼背部⽪肤,右⼿持住注射器(针头号同上),将针头刺⼊提起的⽪下。
若⼀⼈操作,左⼿⼩指和⼿掌夹住⿏尾,拇指和⾷指提起背部⽪肤,右⼿持注射器给药。
⼀般⽤量为0.05~0.25ml/10g。
d.肌⾁注射法两⼈合作时,⼀⼈抓⿏⽅法同上,另⼀⼈左⼿拉直⼀侧后肢,右⼿持注射器,注射部位多选后腿上部外侧(针头号同上)。
如⼀⼈操作,抓⿏⽅法类似腹腔注射,只是药液注射在肌⾁内。
每腿的注射量不宜超过0.1ml。
e.尾静脉注射法将⼩⿏置于待置的固定筒内,使⿏尾外露,并⽤酒精或⼆甲苯棉球涂擦,或插⼊40℃~50℃温⽔中浸泡⽚刻,使尾部⾎管扩张。
左⼿拉尾,选择扩张最明显的⾎管;右⼿持注射器(4~5号针头),将针头刺⼊⾎管,缓慢给药。
《医学科研方法与论文写作》复习题-答题要点
![《医学科研方法与论文写作》复习题-答题要点](https://img.taocdn.com/s3/m/c8f6d10ceef9aef8941ea76e58fafab069dc449a.png)
答题要点周卸来老师复习题名词解释1 实验设计:是指科研课题的实施方案与总体设计,包括研究的具体内容、采用的材料方法、研究指标、进度安排与预期的结果。
2 系统误差:是指在一定的实验条件下,由于某种原因使得观测值出现偏差,这种偏差不是随机地分散在真值的两侧,而是具有一定的倾向性、系统性和周期性。
3 动物模型:选择特定的动物,通过一定的处理,使其达到和我们所要研究的疾病、病理、病理生理等状态相同或相近的状态。
4 实验效应:是指处理因素作用于受试对象的反应,是研究结果的最终体现,其通过具体的实验指标来表达。
5 随机误差:是由于一系列有关实验因素的微小随机波动引起的方向不定又可相互抵偿的误差,是在排除了系统误差后仍然存在的误差。
问答题1 医学科学研究的程序是什么,各程序在实施时应注意哪些问题。
答:⑴选题:选题--选题策略模仿:借鉴/延伸/独创⑵科研设计:⑶科研实施:调查、实验、临床观察⑷实验数据的统计分析、总结归纳:2 医学实验的三个基本要素是什么,在设计各基本要素的具体项目时应注意那些问题。
答:⑴处理因素:处理因素的标准化、搜索非处理因素。
⑵实验对象:需合乎实验目的。
⑶实验效应:选择好实验指标是关系研究成败的重要环节。
选择指标的依据是客观性、特异性、灵敏性、精确性。
3 误差的种类有哪些,控制误差的方法有哪些。
种类:系统误差,随机误差,偏倚。
控制误差的方法:1) 随机化、均衡化、交叉的原则、重复试验2)定期、经常校准仪器3) 处理因素标准化4) 实验过程统一标号、统一的记录表格5) 完整的实验记录6) 完善操作人员的技术水平、提高专业素质4 实验设计的基本原则有哪些,如何实施。
对照,随机,重复,盲法5医学科学研究中实验动物的选择原则是什么。
①与人的功能、代谢、结构及疾病特点相似;②遗传背景和已知菌丛明确、模型形状显著且稳定;③解剖、生理特点符合实验要求;④用于特定实验的某些特殊反应。
实验设计题1 某学者偶然发现药物A对治疗糖尿病有效,设计一个实验方案来验证它。
实验动物麻醉方法及注意事项
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实验动物麻醉方法及注意事项麻醉(anesthesia)的基本任务是消除实验过程中所至的疼痛和不适感觉,保障实验动物的安全,使动物在实验中服从操作,确保实验顺利进行。
一、常用的麻醉药(一)常用局部麻醉剂:普鲁卡因,此药毒性小,见效快,常用于局部浸润麻醉,用时配成0.5%~1%;利多卡因,此药见效快,组织穿透性好,常用1%~2%溶液作为大动物神经干阻滞麻醉,也可用0.25%~0.5%溶液作局部浸润麻醉。
(二)常用全身麻醉剂:1.乙醚乙醚吸入法是最常用的麻醉方法,各种动物都可应用。
其麻醉量和致死量相差大,所以其安全度大。
但由于乙醚局部刺激作用大,可刺激上呼吸道粘液分泌增加;通过神经反射还可扰乱呼吸、血压和心脏的活动,并且容易引起窒息,在麻醉过程中要注意。
但总起来说乙醚麻醉的优点多,如麻醉深度易于掌握,比较安全,而且麻醉后恢复比较快。
其缺点是需要专人负责管理麻醉,在麻醉初期出现强烈的兴奋现象,对呼吸道又有较强的刺激作用,因此,需在麻醉前给予一定量的吗啡和阿托品(基础麻醉),通常在麻醉前20-30分钟,皮下注射盐酸或硫酸吗啡(每公斤体重5~10mg)及阿托品(每公斤体重0.1mg)。
盐酸吗啡可降低中枢神经系统兴奋性,提高痛阈,还可节省乙醚用量及避免乙醚麻醉过程中的兴奋期。
阿托品可对抗乙醚刺激呼吸道分泌粘液的作用,可避免麻醉过程中发生呼吸道堵塞,或手术后发生吸入性肺炎。
进行手术或使用过程中,需要继续给予吸入乙醚,以维持麻醉状态。
慢性实验预备手术的过程中,仍用麻醉口罩给药,而在一般急性使用,麻醉后可以先进行气管切开术,通过气管套管连接麻醉瓶继续给药。
在继续给药过程中,要时常检查角膜反射和观察瞳孔大小(如发现角膜反射消失,瞳孔突然放大,应立即停止麻醉。
万一呼吸停止,必须立即施行人工呼吸。
待恢复自动呼吸后再进行操作。
2.苯巴比妥钠此药作用持久,应用方便,在普通麻醉用量情况下对于动物呼吸、血压和其它功能无多大影响。
动物实验的基本技术操作方法
![动物实验的基本技术操作方法](https://img.taocdn.com/s3/m/91f0eaf69e31433239689387.png)
一、动物实验的常用方法
近年来由于电子显微技术的进展,不仅可以 观察到病变时细胞内细胞器等亚细胞结构的 变化,而且也可以运用电子扫描方法对动物 器官的微小结构进行完整的表层观察。
一、动物实验的常用方法
9.免疫学观察法 注入抗原使动物致敏,制备各种抗血清, 如常选用新西兰或大白耳家兔制备病原体 免疫血清、间接免疫血清、抗补体抗体血 清、抗组织免疫血清等。采用免疫荧光技 术、酶标记免疫技术、放射免疫测定技术、 免疫电镜技术等对动物免疫后各种免疫变 化进行检查。
五、实验动物被毛的去除方法
使用以上各种脱毛剂,都应事先剪短被 毛,以节省脱毛剂,并减少对皮肤的刺 激反应,应用时用棉球蘸脱毛剂,在所 需局部涂一薄层,2-3分钟后,用温水洗 去脱落的被毛,以纱布擦干局部,涂一 层油脂即可。
六、实验动物给药途径和方法
给药的途径和方法是多种多样的, 可根据实验目的、实验动物种类和 药物剂型等情况确定。
一、动物实验的常用方法
7.生物电、活性观察法 对动物体各种生物电用电生理记录仪进行观 察记录,如心电、肌电、脑电等;对动物组 织中各种活动物质用生物化学法测定,如各 种酶,激素等。
一、动物实验的常用方法
8.病理解剖学、组织学观察法 采用肉眼观察、光镜和电镜检查,来观察、 分析动物各种疾病时病理组织学改变。可 从组织学的角度来探讨疾病防治机理,例 如通过阑尾组织切片和肉眼观察,分析口 服中药、针刺或局部敷药对有炎症阑尾的 影响,阐明不同证型时阑尾变化的病理学 特点以及某些病人用中西医结合非手术治 疗后复发的原因。
小鼠的灌胃给药
几种动物不同给药途径的常用注射量(毫升) 几种动物不同给药途径的常用注射量(毫升)
注射途径 腹 肌 静 皮 腔 肉 脉 下 小鼠 0.2-1.0 0.1-0.2 0.2-0.5 0.1-0.5 大鼠 1-3 0.2-0.5 1-2 0.5-1.0 豚鼠 2-5 0.2-0.5 1-5 0.5-2 兔 5-10 0.5-1.0 3-10 1-3 狗 5-15 2-5 5-15 3-10
人与实验动物用药剂量换算
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人与动物及各类动物间药物剂量的换算方法1.人与动物用药量换算人与动物对同一药物的耐受性是相差很大的。
一般说来,动物的耐受性要比人大,也就是单位体重的用药理动物比人要大。
人的各种药物的用量在很多书上可以查得,但动物用药量可查的书较少,而且动物用的药物种类远不如人用的那么多。
因此,必须将人的用药量换算成动物的用药量。
一般可按下列比例换算:人用药量为1,小白鼠、大白鼠为25-50,兔、豚鼠为15-20,狗、猫为5-10。
此外,可以采用人与动物的体表面积计算法来换算:(1)人体体表面积计算法计算我国人的体表面积,一般认为许文生氏公式(中国生理学杂志12:327,1937)尚较适用,即:体表面积(m2)=0.0061×身高(cm)+0.0128×体重(kg)-0.1529例:某人身高168cm,体重55kg,试计算其体表面积。
解:0.061×168+0.0128×55.0.1529=1.576m2(2)动物的体表面积计算法有许多种,在需要由体重推算体表面积时,一般认为Meeh-Rubner氏公式尚较适用,即:式中的K为一常数,随动物种类而不同:小白鼠和大白鼠9.1、豚鼠9.8、家兔10.1、猫9.8、狗11.2、猴11.8、人10.6(上列K值各家报导略有出入)。
应当指出,这样计算出来的表面积还是一种粗略的估计值,不一定完全符合于每个动物的实测数值。
例:试计算体重1.50kg家兔的体表面积。
2.人及不同种类动物之间药物剂量的换算(1)直接计算法即按:例:某利尿药大白鼠灌给药时的剂量为250mg/kg,试粗略估计狗灌胃给药时可以试用的剂量。
解:实验用大白鼠的体重一般在200g左右,其体表面积(A)为:250mg/kg的剂量如改以mg/m2表示,即为:实验用狗的体重一般在10kg左右,其体表面积(A)为:(2)按mg/kg折算mg/m2转换因子计算例:同上解:按计算出狗的适当试用剂量。
人和实验动物用药剂量换算
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人与动物及各类动物间药物剂量的换算方法1.人与动物用药量换算人与动物对同一药物的耐受性是相差很大的。
一般说来,动物的耐受性要比人大,也就是单位体重的用药理动物比人要大。
人的各种药物的用量在很多书上可以查得,但动物用药量可查的书较少,而且动物用的药物种类远不如人用的那么多。
因此,必须将人的用药量换算成动物的用药量一般可按下列比例换算:人用药量为1,小白鼠、大白鼠为25-50,兔、豚鼠为15-20,狗、猫为5-10。
此外,可以采用人与动物的体表面积计算法来换算:(1)人体体表面积计算法计算我国人的体表面积,一般认为许文生氏公式(中国生理学杂志12:327,1937)尚较适用,即:体表面积(m2)=0.0061×身高(cm)+0.0128×体重(kg)-0.1529例:某人身高168cm,体重55kg,试计算其体表面积。
解:0.061×168+0.0128×55.0.1529=1.576m2(2)动物的体表面积计算法有许多种,在需要由体重推算体表面积时,一般认为Meeh-Rubner 氏公式尚较适用,即:式中的K 为一常数,随动物种类而不同:小白鼠和大白鼠9.1、豚鼠9.8、家兔10.1、猫9.8、狗11.2、猴11.8、人10.6(上列K 值各家报导略有出入)。
应当指出,这样计算出来的表面积还是一种粗略的估计值,不一定完全符合于每个动物的实测数值。
例:试计算体重 1.50kg 家兔的体表面积。
2.人及不同种类动物之间药物剂量的换算(1)直接计算法即按:例:某利尿药大白鼠灌给药时的剂量为250mg/kg,试粗略估计狗灌胃给药时可以试用的剂量。
解:实验用大白鼠的体重一般在200g 左右,其体表面积(A)为:250mg/kg 的剂量如改以mg/m2 表示,即为:实验用狗的体重一般在10kg 左右,其体表面积(A)为:(2)按mg/kg 折算mg/m2 转换因子计算例:同上解:按计算出狗的适当试用剂量。
药理实验中各类动物的给药剂量换算
![药理实验中各类动物的给药剂量换算](https://img.taocdn.com/s3/m/0b3b783bbed5b9f3f90f1c59.png)
动物实验给药剂量换算关于不同实验动物之间或者实验动物与人之间的剂量如何作“等效”换算的问题。
分以下几点来探讨这个问题。
第一、等效剂量系数折算法换算第二、体表面积法换算第三、系数折算法与体表面积法的比较第四、系数折算法的相对误差第五、小孩与成人的剂量换算第六、少常用实验动物剂量间的换算第七、不同给药途径间的剂量换算第八、LD50与药效学剂量间的换算我们在实验中估算一种药物或化合物的使用剂量的时候,差不多是来源于两条途径:一是查文献,参考别人使用的剂量。
有时有现成的,可直接用。
有时没有我们所用动物的剂量,但有其它实验动物的。
也有的是有临床用量的,但没有实验动物的。
这样,我们就得进行换算。
这是我们今天要谈的这种方法。
另一种方法就是根据自己或文献上有关急性毒性的数据来进行估算,以期采用合适的剂量。
一般参考数据是LD50。
至于该选择LD50的多少分之一来作为参考剂量,众说纷纭。
这个我们再另题讨论。
下面我来说一说用第一种方法进行如何换算。
目前我们大多数人用的方法,是参考徐叔云教授主编的《药理实验方法学》。
在其附录中有一个表,列出了人和动物间按体表面积折算的等效剂量比值。
这个表,几乎被药理专业的人们奉为经典,一直在科研中沿用。
表如下所示:请注意最后一行,这个就是我们通常用到的。
把人的临床剂量转换为实验动物的剂量。
试着换算一个。
如:人的临床剂量为X mg/kg , 换算成大鼠的剂量:大鼠的剂量=X mg/kg×70kg×0.018/200g=X mg/kg×70kg×0.018/0.2kg=6.3 X mg/kg.这也就是说,按单位体重的剂量来算,大鼠的等效剂量相当于人的6.3倍。
在这里,我们要看到每种动物的体重(包括人),在上表中以蓝色显示的。
还要注意到折算系数,也就是表中以红色所示的。
将人的剂量转换成哪种动物的,就在相应的动物那一列下找到与人的相交的地方的折算系数,将剂量乘以折算系数,再乘上人的体重与那种动物体重的比值。
第七章 药物研究的动物实验方法
![第七章 药物研究的动物实验方法](https://img.taocdn.com/s3/m/b7872817cc7931b764ce1501.png)
二、急性毒性试验LD50 LC50 计算方法 1、改进寇氏法 要求:每组动物数相等;剂量按等比级数;Pn<0.2 Pm>0.8 根据试验条件及试验结果,选用LD50的计算公式 此法易于了解计算简便可信限不大结果可靠特别是在试验前对受试样 品的急性毒性程度了解不多时尤为适用 2、概率单位-对数图解法 预试验以每组2~3 只动物找出全死和全不死的剂量。 动物数一般每组不少于10 只各组动物数量不一定要求相等。 剂量及分组一般在预试验中得到的两个剂量组之间拟出等比的六个剂 量组或更多的组此法不要求剂量组间呈等比关系但等比可使各点距离相 等有利于作图。 作图计算 三、测定LD50应注意的几个问题 1、测定前,应进行预试验。 2、注意动物因素对试验结果的影响。 3、注意环境因素的影响。 4、注意操作因素的影响。 5、注意实验条件的一致性。 6、观察时间一般为14天。 7、一般情况下,各剂量组的死亡分布有一定规律。
第七章第七章药物研究的动物实验方药物研究的动物实验方第一节第一节药物试验剂型剂量与药物试验剂型剂量与样本数确定样本数确定一受试物的剂型配制在药物研究的动物试验中需要用溶剂助溶剂或赋形剂将受试物配制成一定剂型后给动物使用
第七章 药物研究的动物实验方法
第一节 药物试验剂型、剂量与样 本数确定
一、受试物的剂型配制 在药物研究的动物试验中,需要用溶剂、 助溶剂或赋形剂将受试物配制成一定剂型后 给动物使用。 溶剂、助溶剂的要求:无毒性、与受试 物无反应、制成的溶液稳定。 常用的溶剂:水、生理盐水、植物油等。 常用的助溶剂:吐温-80
(二)、实验动物用药量的计算方法 动物实验所用的药物剂量,一般按 mg/kg体重或g/kg体重计算,应用时须从 已知药液的浓度换算出相当于每kg体重 应注射的药液量(ml数),以便给药。 例:计算给体重1.8kg的家兔,静脉 注射20%氨基甲酸乙酯溶液麻醉,按每 kg体重1g的剂量注射,应注射多少ml?
实验动物的麻醉方法
![实验动物的麻醉方法](https://img.taocdn.com/s3/m/7c1bcf96866fb84ae45c8dea.png)
实验动物麻醉方法麻醉(anesthesia)的基本任务是消除实验过程中所至的疼痛和不适感觉,保障实验动物的安全,使动物在实验中服从操作,确保实验顺利进行。
一、常用的麻醉药(一)常用局部麻醉剂:普鲁卡因,此药毒性小,见效快,常用于局部浸润麻醉,用时配成%~1%;利多卡因,此药见效快,组织穿透性好,常用1%~2%溶液作为大动物神经干阻滞麻醉,也可用%~%溶液作局部浸润麻醉。
(二)常用全身麻醉剂:1. 乙醚乙醚吸入法是最常用的麻醉方法,各种动物都可应用。
其麻醉量和致死量相差大,所以其安全度大。
但由于乙醚局部刺激作用大,可刺激上呼吸道粘液分泌增加;通过神经反射还可扰乱呼吸、血压和心脏的活动,并且容易引起窒息,在麻醉过程中要注意。
但总起来说乙醚麻醉的优点多,如麻醉深度易于掌握,比较安全,而且麻醉后恢复比较快。
其缺点是需要专人负责管理麻醉,在麻醉初期出现强烈的兴奋现象,对呼吸道又有较强的刺激作用,因此,需在麻醉前给予一定量的吗啡和阿托品(基础麻醉),通常在麻醉前20-30分钟,皮下注射盐酸或硫酸吗啡(每公斤体重5~10mg)及阿托品(每公斤体重。
盐酸吗啡可降低中枢神经系统兴奋性,提高痛阈,还可节省乙醚用量及避免乙醚麻醉过程中的兴奋期。
阿托品可对抗乙醚刺激呼吸道分泌粘液的作用,可避免麻醉过程中发生呼吸道堵塞,或手术后发生吸入性肺炎。
进行手术或使用过程中,需要继续给予吸入乙醚,以维持麻醉状态。
慢性实验预备手术的过程中,仍用麻醉口罩给药,而在一般急性使用,麻醉后可以先进行气管切开术,通过气管套管连接麻醉瓶继续给药。
在继续给药过程中,要时常检查角膜反射和观察瞳孔大小(如发现角膜反射消失,瞳孔突然放大,应立即停止麻醉。
万一呼吸停止,必须立即施行人工呼吸。
待恢复自动呼吸后再进行操作。
2. 苯巴比妥钠此药作用持久,应用方便,在普通麻醉用量情况下对于动物呼吸、血压和其它功能无多大影响。
通常在实验前半至一小时用药。
使用剂量及方法为:狗腹腔注射80~100mg/kg体重,静脉注射70~120mg/kg体重( 一般每公斤体重给70~80mg即可麻醉,但有的动物要100~120mg才能麻醉,具体用量可根据各个动物的敏感性而定)。
实验动物用药量的确定及计算方法
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实验动物用药量的确定及计算方法(一)动物给药量的确定在观察一药物的作用时,应该给动物多在的剂量是实验开始时应确定的一个重要问题。
剂量太小,作用不明显,剂量太大,又可能引起动物中毒致死,可以按下述方法确定剂量:1.先用小鼠粗略地探索中毒剂量或致死剂量,然后用小于中毒量的剂量,或取致死量的若干分之一为应用剂量,一般可取1/10-1/5。
2.植物药粗制剂的剂量多按生药折算。
3.化学药品可参考化学结构相似的已知药物,特别是化学结构和作用都相似的药物的剂量。
4.确定剂量后,如第一次实验的作用不明显,动物也没有中毒的表现(体重下降、精神不振、活动减少或其他症状),可以加大剂量再次实验。
如出现中毒现象,作用也明显,则应降低剂量再次实验。
在一般情况下,在适宜的剂量范围内,药物的作用常随剂量的加大而增强。
所以有条件时,最好同时用几个剂量作实验,以便迅速获得关于药物作用的较完整的资料。
如实验结果出现剂量与作用强度之间毫无规律时,则应慎重分析。
5.用大动物进行实验时,开始的剂量可采用给鼠类剂量的十五分之一~二分之一,以后可根据动物的反应调整剂量。
6.确定动物给药剂量时,要考虑给药动物的年龄大小和体质强弱。
一般说确定的给药剂量是指成年动物的,如是幼小动物,剂量应减少。
如以狗为例:6个月以上的狗给药量为1份时,3-6个月的给1/2份,45-89日1/4份,20-44日的给1/8份,10-19日的给1/16份。
7.确定动物给药剂量时,要考虑因给药途径不同,所用剂量也不同,以口服量为100时,灌肠量应为100-200,皮下注射量30-50,肌肉注射量为25-30,静脉注射量为25。
(二)实验动物用药量的计算方法动物实验所用的药物剂量,一般按mg/kg体重或g/kg体重计算,应用时须从已知药液的浓度换算出相当于每kg体重应注射的药液量(ml数),以便给药。
例1:计算给体重1.8kg的家兔,静脉注射20%氨基甲酸乙酯溶液麻醉,按每kg体重1 g的剂量注射,应注射多少ml?计算方法:兔每kg体重需注射1g,注射液为20%,则氨基甲酸乙酯溶液的注射量应为5ml/kg体重,现在兔体重为1.8kg,应注射20%氨基甲酸乙酯溶液用量=5×1.8=9ml。
实验动物的麻醉方法
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实验动物麻醉方法麻醉(anesthesia)的基本任务是消除实验过程中所至的疼痛和不适感觉,保障实验动物的安全,使动物在实验中服从操作,确保实验顺利进行。
一、常用的麻醉药(一)常用局部麻醉剂:普鲁卡因,此药毒性小,见效快,常用于局部浸润麻醉,用时配成0.5%~1%;利多卡因,此药见效快,组织穿透性好,常用1%~2%溶液作为大动物神经干阻滞麻醉,也可用0.25%~0.5%溶液作局部浸润麻醉。
(二)常用全身麻醉剂:1. 乙醚乙醚吸入法是最常用的麻醉方法,各种动物都可应用。
其麻醉量和致死量相差大,所以其安全度大。
但由于乙醚局部刺激作用大,可刺激上呼吸道粘液分泌增加;通过神经反射还可扰乱呼吸、血压和心脏的活动,并且容易引起窒息,在麻醉过程中要注意。
但总起来说乙醚麻醉的优点多,如麻醉深度易于掌握,比较安全,而且麻醉后恢复比较快。
其缺点是需要专人负责管理麻醉,在麻醉初期出现强烈的兴奋现象,对呼吸道又有较强的刺激作用,因此,需在麻醉前给予一定量的吗啡和阿托品(基础麻醉),通常在麻醉前20-30分钟,皮下注射盐酸或硫酸吗啡(每公斤体重5~10mg)及阿托品(每公斤体重0.1mg)。
盐酸吗啡可降低中枢神经系统兴奋性,提高痛阈,还可节省乙醚用量及避免乙醚麻醉过程中的兴奋期。
阿托品可对抗乙醚刺激呼吸道分泌粘液的作用,可避免麻醉过程中发生呼吸道堵塞,或手术后发生吸入性肺炎。
进行手术或使用过程中,需要继续给予吸入乙醚,以维持麻醉状态。
慢性实验预备手术的过程中,仍用麻醉口罩给药,而在一般急性使用,麻醉后可以先进行气管切开术,通过气管套管连接麻醉瓶继续给药。
在继续给药过程中,要时常检查角膜反射和观察瞳孔大小(如发现角膜反射消失,瞳孔突然放大,应立即停止麻醉。
万一呼吸停止,必须立即施行人工呼吸。
待恢复自动呼吸后再进行操作。
2. 苯巴比妥钠此药作用持久,应用方便,在普通麻醉用量情况下对于动物呼吸、血压和其它功能无多大影响。
通常在实验前半至一小时用药。
实验动物用药量的确定及计算方法
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实验动物用药量的确定及计算方法(一)动物给药量的确定在观察一个药物的作用时,应该给动物多大在的剂量是实验开始时应确定的一个重要问题。
剂量太小,作用不明显,剂量太大,又可能引起动物中毒致死,可以按下述方法确定剂量:1.先用小鼠粗略地探索中毒剂量或致死剂量,然后用小于中毒量的剂量,或取致死量的若干分之一为应用剂量,一般可取1/10-1/5。
2.植物药粗制剂的剂量多按生药折算。
3.化学药品可参考化学结构相似的已知药物,特别是化学结构和作用都相似的药物的剂量。
4.确定剂量后,如第一次实验的作用不明显,动物也没有中毒的表现(体重下降、精神不振、活动减少或其他症状),可以加大剂量再次实验。
如出现中毒现象,作用也明显,则应降低剂量再次实验。
在一般情况下,在适宜的剂量范围内,药物的作用常随剂量的加大而增强。
所以有条件时,最好同时用几个剂量作实验,以便迅速获得关于药物作用的较完整的资料。
如实验结果出现剂量与作用强度之间毫无规律时,则更应慎重分析。
5.用大动物进行实验时,开始的剂量可采用给鼠类剂量的十五分之一~二分之一,以后可根据动物的反应调整剂量。
6.确定动物给药剂量时,要考虑给药动物的年龄大小和体质强弱。
一般说确定的给药剂量是指成年动物的,如是幼小动物,剂量应减少。
如以狗为例:6个月以上的狗给药量为1份时,3-6个月的给1/2份,45-89日1/4份,20-44日的给1/8份,10-19日的给1/16份。
7.确定动物给药剂量时,要考虑因给药途径不同,所用剂量也不同,以口服量为100时,灌肠量应为100-200,皮下注射量30-50,肌肉注射量为25-30,静脉注射量为25。
(二)实验动物用药量的计算方法动物实验所用的药物剂量,一般按mg/kg体重或g/kg体重计算,应用时须从已知药液的浓度换算出相当于每kg体重应注射的药液量(ml数),以便给药。
例1:计算给体重1.8kg的家兔,静脉注射20%氨基甲酸乙酯溶液麻醉,按每kg体重1g的剂量注射,应注射多少ml?计算方法:兔每kg体重需注射1g,注射液为20%,则氨基甲酸乙酯溶液的注射量应为5ml/kg体重,现在兔体重为1.8kg,应注射20%氨基甲酸乙酯溶液用量=5×1.8=9ml。
动物实验给药剂量换算
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动物实验给药剂量换算关于不同实验动物之间或者实验动物与人之间的剂量如何作“等效”换算的问题。
分以下几点来探讨这个问题。
第一、等效剂量系数折算法换算第二、体表面积法换算第三、系数折算法与体表面积法的比较第四、系数折算法的相对误差第五、小孩与成人的剂量换算第六、少常用实验动物剂量间的换算第七、不同给药途径间的剂量换算第八、LD50与药效学剂量间的换算我们在实验中估算一种药物或化合物的使用剂量的时候,差不多是来源于两条途径:一是查文献,参考别人使用的剂量.有时有现成的,可直接用。
有时没有我们所用动物的剂量,但有其它实验动物的。
也有的是有临床用量的,但没有实验动物的。
这样,我们就得进行换算。
这是我们今天要谈的这种方法.另一种方法就是根据自己或文献上有关急性毒性的数据来进行估算,以期采用合适的剂量.一般参考数据是LD50。
至于该选择LD50的多少分之一来作为参考剂量,众说纷纭.这个我们再另题讨论。
下面我来说一说用第一种方法进行如何换算.目前我们大多数人用的方法,是参考徐叔云教授主编的《药理实验方法学》。
在其附录中有一个表,列出了人和动物间按体表面积折算的等效剂量比值。
这个表,几乎被药理专业的人们奉为经典,一直在科研中沿用。
表如下所示:请注意最后一行,这个就是我们通常用到的。
把人的临床剂量转换为实验动物的剂量。
试着换算一个.如:人的临床剂量为X mg/kg ,换算成大鼠的剂量:大鼠的剂量=X mg/kg×70kg×0。
018/200g=X mg/kg×70kg×0.018/0。
2kg=6。
3 X mg/kg。
这也就是说,按单位体重的剂量来算,大鼠的等效剂量相当于人的6。
3倍。
在这里,我们要看到每种动物的体重(包括人),在上表中以蓝色显示的。
还要注意到折算系数,也就是表中以红色所示的.将人的剂量转换成哪种动物的,就在相应的动物那一列下找到与人的相交的地方的折算系数,将剂量乘以折算系数,再乘上人的体重与那种动物体重的比值。
动物实验给药量
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动物实验基础知识系列之一:剂量换算关于剂量换算的问题最近不少战友询问关于不同实验动物之间或者实验动物与人之间的剂量如何作“等效”换算的问题。
这个问题对学习药理的战友来讲,可能是非常熟悉了。
但对于非药理专业但又需做药理实验的战友来说,仍然是令人困扰的问题。
下面我们分以下几点来探讨这个问题。
第一、等效剂量系数折算法换算第二、体表面积法换算第三、系数折算法与体表面积法的比较第四、系数折算法的相对误差第五、小孩与成人的剂量换算第六、少常用实验动物剂量间的换算第七、不同给药途径间的剂量换算第八、LD50与药效学剂量间的换算下面我来简单说一下这个问题。
我们在实验中估算一种药物或化合物的使用剂量的时候,差不多是来源于两条途径:一是查文献,参考别人使用的剂量。
有时有现成的,可直接用。
有时没有我们所用动物的剂量,但有其它实验动物的。
也有的是有临床用量的,但没有实验动物的。
这样,我们就得进行换算。
这是我们今天要谈的这种方法。
另一种方法就是根据自己或文献上有关急性毒性的数据来进行估算,以期采用合适的剂量。
一般参考数据是LD50。
至于该选择LD50的多少分之一来作为参考剂量,众说纷纭。
这个我们再另题讨论。
下面我来说一说用第一种方法进行如何换算。
目前我们大多数人用的方法,是参考徐叔云教授主编的《药理实验方法学》。
在其附录中有一个表,列出了人和动物间按体表面积折算的等效剂量比值。
这个表,几乎被药理专业的人们奉为经典,一直在科研中沿用。
表如下所示:请注意最后一行,这个就是我们通常用到的。
把人的临床剂量转换为实验动物的剂量。
试着换算一个。
如:人的临床剂量为X mg/kg , 换算成大鼠的剂量:大鼠的剂量=X mg/kg×70kg×0.018/200g=Xmg/kg×70kg×0.018/0.2kg=6.3 X mg/kg.这也就是说,按单位体重的剂量来算,大鼠的等效剂量相当于人的6.3倍。
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实验动物用药量的确定及计算方法
观察一种药物对实验动物的作用时,一个重要的问题就是给动物用多大的剂量较合适。
剂量太小,作用不明显,剂量太大,又可能引起动物中毒致死。
可以按下述方法确定剂量:
1. 先用少量小鼠粗略地探索中毒剂量或致死剂量,然后用小于中毒量的剂量,或取致死量的若干分之一作为应用剂量,一般可取1/10~1/5。
2. 植物药粗制剂的剂量多按生药折算。
3. 化学药品可参考化学结构相似的已知药物,特别是化学结构和作用都相似的剂量。
4. 确定剂量后,如第一次用药的作用不明显,动物也没有中毒的表现,可以加大剂量再次实验。
如出现中毒现象,作用也明显,则应降低剂量再次实验。
在一般情况下,在适宜的剂量范围内,药物的作用常随剂量的加大而增强。
所以有条件时,最好同时用几个剂量作实验,以便迅速获得关于药物作用的较完整的资料。
如实验结果出现剂量与作用强度之间毫无规律时,则更应慎重分析。
5. 用大动物进行实验时,防止动物中毒死亡,开始的剂量可采用鼠类的1/15~1/2,以后可根据动物的反应调整剂量。
6. 确定动物给药剂量时,要考虑给药动物的年龄大小和体质强弱。
一般说确定的给药剂量是指成年动物的,如是幼龄动物,剂量应减小。
如以狗为例:6 个月以上的狗给药剂量为1份时,3~6个月的给1/2份, 45~89日的给1/4份,20~44日的给1/8 份,10~19日的给1/16份。
7. 确定动物给药剂量时,要考虑因给药途径不同,所用剂量也不同。
以口服量为100时,皮下注射量为30~50,肌肉注射量为20~30,静脉注射量为25。
8.人与动物的用药量换算方法
人与动物对同一药物耐受性不同,一般动物的耐受性要比人大,单位体重的用药量动物比人要高。
必须将人的用药量换算成动物的用药量。
一般可按下列比例换算:
人用药量: 1
小鼠、大鼠: 50~100
兔、豚鼠: 15~20
狗、猫: 5~10
以上系按单位体重口服用药量换算。
如给药途径为静脉、皮下、腹腔注射,换算比例应适当减小些。