血液标本收集和保存..
血液标本知识
血液标本知识血液标本是在临床医学中常见的检查方法之一，它可以提供很多关于人体健康状况的重要信息。
掌握血液标本知识对于医学工作者和患者来说都是非常必要的。
本文将深入探讨血液标本的采集、处理和常见检测项目等相关内容。
一、血液标本的采集1.采集前准备在进行血液标本采集之前，需要进行一系列的准备工作。
首先，采集器械和试剂应事先准备齐全，包括一次性采血针、采血管、试剂盒等。
其次，采集现场应做好消毒，以确保采集的血液样本的无菌和洁净。
另外，也需要确认患者的身份和相关的病史信息。
2.采集方法常见的血液采集方法包括静脉采血和指尖采血。
静脉采血通常在掌静脉或肘静脉处进行，这需要使用一次性采血针和采血管。
指尖采血一般用于无法采集足够量静脉血的情况，例如测血糖。
在采血过程中，要注意采集血液的体积和流速，避免不必要的疼痛和并发症。
3.采集后处理采集后的血液标本需要进行适当的处理，以确保准确可靠的检测结果。
首先，采集管要进行标示，包括患者的信息和采集时间等。
其次，应将采集的血液标本送往实验室进行检测，或按照检测项目的要求进行前处理。
二、血液标本的处理1.分离血清与血浆血液采集后，可以通过离心的方法将血液分离为血清和血浆。
血清一般是采用干净的离心管，在离心后，管中的血液上层变为血清。
血浆则是整个血液离心后得到的，它含有凝血因子。
对于不同的检测项目，选择合适的血液形式进行检测是非常重要的。
2.保存血液标本保存血液标本需要注意一些基本的原则和方法。
首先，血液标本的保存温度应在合适的范围内，通常是2-8℃。
其次，应避免血液标本的震荡和污染，以免影响检测结果的准确性。
最后，为了方便管理和诊断，每个血液标本都应有清晰的标示，包括患者的信息和采集的时间等。
三、常见检测项目血液标本可以进行多项不同的检测项目，下面介绍几个常见的检测项目。
1.血常规血常规是临床上最常用的一项检测项目，它包括血红蛋白、红细胞计数、白细胞计数、血小板计数等指标。
血液标本保存处理制度
血液标本保存处理制度
为了确保检验质量，减少检验结果误差，便于特殊检验项目阳性结果标本的审核复检，对常规生化、肿瘤标志物、乙肝两对半、肝炎病毒分型等项目的血液标本实行定期保存，根据本科室现有的保存条件作出相应的短期保存时间规定，要求科室严格按照此规定认真执行，做好标本的分类、登记、编号、保存及按时定期销毁工作。
1.生化免疫检验标本，2—8°保存7天；
2.标本保存专用冷藏箱内；
3.工作人员每日工作结束，收集当日检测标本并按样本号顺序依次放入专用标本保存架按每天的日期标注好；
4.按当天日期取出标本保存专用冷藏箱中对应7天前位置的以前标本，以前标本列为废弃标本，按废弃标本处置程序处理，并在标本保存、处理记录上做好记录；
5.按当天日期对应位置放入准备好的当日检测标本，并在标本保存、处理记录上做好记录；。
血液标本保存处理制度
血液标本保存处理制度一、前言血液标本是临床医学检验的重要基础，其质量直接关系到检验结果的准确性。
为了规范血液标本的保存和处理，确保检验结果的可靠性，根据我国相关法律法规和标准，制定本制度。
二、目的1. 规范血液标本的采集、保存和处理，确保检验质量。
2. 提高血液标本的管理水平，防止血液标本的丢失、污染和损坏。
3. 确保血液标本的安全，防止交叉感染。
4. 提高检验工作效率，为临床诊断和治疗提供准确、及时的检验结果。
三、范围本制度适用于我院所有涉及血液标本采集、保存和处理的部门和个人。
四、内容1. 血液标本的采集（1）采集前准备① 采集人员必须具备相应的专业知识和技能，经培训合格后方可进行采集工作。
② 采集前需核对患者信息，确保标本与患者一致。
③ 准备合格的采血器材，包括采血针、采血管、消毒棉签等。
④ 采血环境应清洁、安静、舒适，避免交叉感染。
（2）采集过程① 严格执行无菌操作规程，确保标本质量。
② 采集时，注意观察患者病情，避免对患者造成不必要的痛苦。
③ 采集完毕，将采血管标签填写完整，包括患者姓名、性别、年龄、采集日期、采集时间等。
④ 及时将采集的血液标本送至检验科。
2. 血液标本的保存（1）保存条件① 血液标本应存放在专用的标本冰箱内，冰箱温度控制在28℃。
② 冰箱内不得存放其他物品，以免影响标本质量。
③ 冰箱应定期清洁、消毒，确保冰箱内环境清洁。
（2）保存时间① 血液标本的保存时间应根据检验项目的要求确定，一般为2448小时。
② 特殊检验项目，如病毒抗体、肿瘤标志物等，保存时间较长，应根据实际情况确定。
3. 血液标本的处理（1）处理原则① 处理血液标本时，应遵循先采集的标本先处理的原则。
② 处理过程中，应严格执行无菌操作规程，避免污染。
③ 处理完毕，应及时将标本送至检验科。
（2）处理方法① 血液标本的处理方法应根据检验项目的要求进行，如离心、分离血清、血浆等。
② 对于需要进行特殊处理的标本，如添加抗凝剂、防腐剂等，应根据检验项目的要求进行。
对血液标本保存应注意的事项
对血液标本保存应注意的事项血液标本保存应注意的事项一、引言在医学领域，血液标本保存是非常重要的。
正确的保存和管理血液标本，可以确保准确诊断和有效治疗。
本文将重点探讨血液标本保存的注意事项，以及对此主题的一些观点和理解。
二、血液标本保存的重要性1. 保持血液标本的稳定性：血液标本保存时，要避免温度和湿度的变化。
血液标本应存放在一定的温度范围内，通常为2到8摄氏度。
这可以防止血液中的成分发生变化，保持血液样本的稳定性。
2. 避免污染和交叉感染：在血液标本的采集和保存过程中，要遵循严格的无菌操作。
使用无菌器具和容器，防止外界细菌或其他致病微生物的污染。
血液标本的保存和管理时，要避免与其他样本的交叉污染，以免影响结果的准确性。
三、血液标本保存的注意事项1. 使用合适的容器：血液标本应使用干净、无菌的容器进行保存。
常用的容器有试管、离心管或血液采集管。
容器应有密封性能，以防止气体和外界污染进入，同时也避免血液标本的泄漏。
2. 保存温度和湿度的控制：血液标本应保存在恒定的温度和湿度条件下。
通常，血液标本的保存温度为2到8摄氏度，湿度应控制在相对湿度为85%以下。
3. 标注和记录：在血液标本保存过程中，要进行详细的标注和记录。
标注应包括标本的采集时间、采集者、标本的种类和数量等信息。
记录应包括保存温度和湿度的监测结果。
4. 合理的保存时间：血液标本的保存时间应根据具体要求而定。
对于某些检测项目，可能需要短时间内进行分析，此时可以选择较短的保存时间。
而对于一些长时间追踪观察的项目，可能需要长时间保存血液标本。
四、观点和理解1. 血液标本保存是确保临床诊断准确性的重要环节。
只有在正确的保存条件下，血液标本中各项指标才能保持相对稳定，避免因为保存不当导致结果失真。
2. 标本保存所使用的容器和保存温度等因素非常重要。
使用合适的容器和控制恒定的温度可以确保血液标本的质量和稳定性。
3. 标本保存期限的合理规划也是关键。
不同的检测项目可能需要不同的保存时间，医疗机构和实验室应根据具体情况合理规划血液标本的保存时间，避免不必要的浪费和损失。
血液样本的收集与保存
血液样本的收集与保存全血根据收集的条件，分成不抗凝和抗凝两种。
同时，不抗凝分离出的上层黄色的液体我们称之为血清；抗凝分离出的上层黄色的液体我们称之为血浆。
标本的存放温度及时间，血清、血浆及细胞分离的方法步骤也是分析前影响检验结果的重要因素。
抽血后，血细胞因代谢需要，要消耗掉部分营养成分，故对这些成分进行测定时，需及时地离心以分离掉细胞成分。
采血前个体的准备情况，如空腹时间的长短、采样时间的确定及采血时患者的姿势；止血带应用时间，输液情况，体育运动，抗凝剂及稳定剂的选用；标本的处理等均可影响到某些检验指标的水平。
故标本采集过程应标准化，以最大限度地减少分析前误差。
一、不抗凝收集血清：1、无添加剂的干燥空管收集:血管内壁均匀涂有防止挂壁的药剂(硅油)。
它利用血液自然凝固的原理使血液凝固，等血清自然析出后，离心使用。
主要用于血清生化(肝功、肾功、心肌酶、淀粉酶等)、电解质(血清钾、钠、氯、钙、磷等)、甲状腺功能、药物检测、艾滋病检测、肿瘤标志物、血清免疫学检测。
亦可直接用干燥EP管收集全血，充分静置使得红细胞充分自然凝固后，离心分离出血清待用或保存。
2、用促凝管收集:采血管内壁均匀涂有防止挂壁的硅油，同时添加了促凝剂。
促凝剂能激活纤维蛋白酶，使可溶性纤维蛋白变成不可溶性的纤维蛋白聚体，进而形成稳定的纤维蛋白凝块，如果想快点出结果时，可采用促凝管。
一般静置半小时到1小时，直接离心分离出血清待用或保存,常用于急诊生化。
3、含有分离胶及促凝剂的采血管收集：管壁经过硅化处理，并涂有促凝剂可加速血液的凝固，缩短检验时间。
管内加有分离胶，分离胶与PET管具有很好的亲和性，确实起到隔离作用，一般即使在普通离心机上，分离胶能将血液中的液体成分(血清)和固体成分(血细胞)彻底分开并积聚在试管中形成屏障。
离心后血清中不产生油滴，主要用于血清生化(肝功、肾功、心肌酶、淀粉酶等)、电解质(血清钾、钠、氯、钙、磷等)、甲状腺功能、药物检测、艾滋病检测、肿瘤标志物、血清免疫学。
检验标本的采集、储存、转运和处理制度
检验标本的采集、储存、转运和处理制度【检验标本的采集】一、血液标本的采集血液标本可来自于静脉、动脉或毛细血管。
静脉血是最常用的标本，静脉穿刺是最常用的采血方法。
毛细血管采血主要用于儿童，血气分析多使用动脉血。
（一）静脉采血法1 ．采血步骤采血前核对病人姓名、性别、年龄、编号及检验项目等，按试验项目要求，准备好相应的容器，如空白试管、抗凝管或促凝管等。
病人应取坐位或卧位，采血部位通常是前臂肘窝的正中静脉。
若用普通采血法，采血后应取下针头，将血液沿管壁缓慢注入试管内。
2 ．注意事项（ 1 ）防止溶血：造成溶血的因素有注射器和容器不干燥、不清洁；淤血时间过长；穿刺不顺利，组织损伤过多；抽血速度太快；血液注入容器时未取下针头或注入速度过快产生大量泡沫；震荡过于剧烈等。
若用普通注射器采血后，未取针头直接将血注入真空管内，也易造成溶血。
体内溶血属合格标本，但应在报告单上注明。
（ 2 ）避免充血和血液浓缩：采血时应动作迅速，尽可能缩短止血带使用时间。
用止血带压迫时间最好不超过半分钟，否则将使生化结果升高或下降。
（ 3 ）若病人正在进行静脉输液，不宜在输液同侧手臂采血；若女性病人做了乳腺切除术，应在手术对侧手臂采血。
（ 4 ）采血的体位：体位改变可引起一系列的生理变化，使血液中的许多指标发生改变。
一般采取直立位采血，其二标本的测定值比卧位高 5％～ 15％。
因此，采血时要注意保持正确的体位（坐位或卧位），以及体位的一致性。
（ 5 ）采血时只能向外抽，决不能向静脉内推，以免注入空气，形成气栓而造成严重后果。
（ 6 ）很多生化成分受膳食影响，因此，采血前要确认病人是否空腹。
（二）动脉采血法肱动脉、股动脉、桡动脉以及其它任何部位的动脉都可以作为采血点，但多选择肱动脉和桡动脉。
在摸到明显搏动处，按常规消毒，左手固定搏动处，右手持注射器，针头成60 °角刺入，血液将自动进入注射器内。
采血注意事项见血气分析部分。
检验科血液标本的保存标准
检验科血液标本的保存标准
血液标本的保存是非常重要的，因为它们直接影响着实验结果的准确性。
以下是关于血液标本保存的一些标准和注意事项：
1. 温度，血液标本应该在2-8摄氏度的温度下保存。
这个温度范围可以确保血液标本的稳定性和防止细菌的生长。
2. 容器，血液标本应该储存在干净、密封的容器中，以防止标本的污染或者蒸发。
通常使用的容器有血液采集管或者试管。
3. 标签，每个血液标本容器都应该有清晰的标签，上面包括病人的姓名、出生日期、采集时间等信息。
这可以确保标本不会被弄混，并且可以追踪每个标本的信息。
4. 保质期，血液标本应该在采集后尽快送到实验室进行分析。
如果不能立即送到实验室，标本可以在2-8摄氏度的条件下保存，但是保存时间不宜过长，一般不超过24小时为宜。
5. 防止冻结，血液标本在保存过程中应该避免冻结，因为冻结会破坏血液细胞的结构，影响实验结果的准确性。
总的来说，血液标本的保存标准包括适当的温度、干净的容器、清晰的标签、尽快送到实验室以及避免冻结。
这些标准的遵守可以
确保血液标本的质量和实验结果的准确性。
血液标本采集送检留样保存制度
血液标本采集送检留样保存制度一、目的为了确保血液标本采集、送检、留样和保存的质量和安全，规范操作流程，提高检测结果的准确性和可靠性，根据国家相关法律法规和标准，制定本制度。
二、适用范围本制度适用于医疗机构、采血机构、实验室等从事血液标本采集、送检、留样和保存工作的相关人员。
三、采集与送检1. 采集（1）采集血液标本应由具有专业资格的医护人员操作，严格执行无菌操作规程。
（2）采集前应向患者或献血者说明采集的目的、方法和注意事项，取得其同意。
（3）根据检测项目需求，选择合适的采血管、采血器具和抗凝剂，确保采血过程顺利。
（4）采集过程中应严格监控，避免标本污染、损坏和丢失。
2. 送检（1）采集后的血液标本应尽快送检，避免长时间放置。
（2）标本运送过程中应保持温度适宜，避免剧烈震动和阳光直射。
（3）标本的运送应使用专门的标本运输箱或保温容器，并确保容器密封良好。
四、留样与保存1. 留样（1）根据检测项目需求，留取足够的血液标本进行复查和比对。
（2）留样应使用专用的留样容器，容器应清洁、干燥、无菌。
（3）在留样容器上应清晰标注患者的姓名、性别、年龄、住院号、标本采集时间、检测项目等信息。
2. 保存（1）留样的血液标本应放置在适宜的温度和湿度条件下保存，确保标本质量。
（2）根据检测项目的不同，选择合适的保存方法，如冷藏、冷冻等。
（3）保存标本时应做好记录，包括保存时间、温度、湿度等信息，以便追溯和质量控制。
（4）标本的保存期限应根据检测项目的需求和实验室的规定确定，一般不少于1年。
五、质量控制与监测1. 定期对采集、送检、留样和保存环节进行质量控制和监测，确保操作规范、流程合理。
2. 对采集的血液标本进行严格的质量评估，不合格的标本应予以废弃，并做好记录。
3. 定期对留样的血液标本进行质量评估，确保保存的标本质量符合检测要求。
4. 对质量控制和监测过程中发现的问题，应及时进行分析、处理和改进。
六、人员培训与教育1. 从事血液标本采集、送检、留样和保存工作的人员应具备相应的专业知识和技能。
检验标本的采集、储存、转运和处理制度
检验标本的采集、储存、转运和处理制度【检验标本的采集】一、血液标本的采集血液标本可来自于静脉、动脉或毛细血管。
静脉血是最常用的标本,静脉穿刺是最常用的采血方法。
毛细血管采血主要用于儿童,血气分析多使用动脉血.(一) 静脉采血法1 ．采血步骤采血前核对病人姓名、性别、年龄、编号及检验项目等,按试验项目要求,准备好相应的容器,如空白试管、抗凝管或促凝管等.病人应取坐位或卧位,采血部位通常是前臂肘窝的正中静脉。
若用普通采血法，采血后应取下针头，将血液沿管壁缓慢注入试管内。
2 ．注意事项（ 1 ) 防止溶血:造成溶血的因素有注射器和容器不干燥、不清洁；淤血时间过长;穿刺不顺利，组织损伤过多；抽血速度太快；血液注入容器时未取下针头或注入速度过快产生大量泡沫；震荡过于剧烈等.若用普通注射器采血后，未取针头直接将血注入真空管内，也易造成溶血。
体内溶血属合格标本，但应在报告单上注明。
（ 2 ）避免充血和血液浓缩：采血时应动作迅速，尽可能缩短止血带使用时间。
用止血带压迫时间最好不超过半分钟，否则将使生化结果升高或下降。
（ 3 ）若病人正在进行静脉输液，不宜在输液同侧手臂采血;若女性病人做了乳腺切除术，应在手术对侧手臂采血。
( 4 ）采血的体位：体位改变可引起一系列的生理变化，使血液中的许多指标发生改变。
一般采取直立位采血，其二标本的测定值比卧位高 5％～ 15％。
因此，采血时要注意保持正确的体位(坐位或卧位）,以及体位的一致性.（ 5 ) 采血时只能向外抽，决不能向静脉内推，以免注入空气，形成气栓而造成严重后果。
（ 6 ) 很多生化成分受膳食影响,因此，采血前要确认病人是否空腹。
（二) 动脉采血法肱动脉、股动脉、桡动脉以及其它任何部位的动脉都可以作为采血点，但多选择肱动脉和桡动脉。
在摸到明显搏动处，按常规消毒，左手固定搏动处,右手持注射器，针头成60 °角刺入,血液将自动进入注射器内。
采血注意事项见血气分析部分。
血液标本的采集接收保存制度
血液标本的采集接收保存制度
1.病人的输血标本由本院医护人员根据申请检验的目的和要求，持贴有申请单联号或条形码（患者信息）的采血管，当面核查后抽血3-5毫升，由专人送输血科（不许家属送标本）。
2. 输血科专人签收血液标本，当面核查申请单的内容、检验目的和要求，确认无误后登记签收。
如发现有任何问题必须由输血科当班者与申请医师亲自处理。
3. 配血前的标本在输血科保存3日，配血后的标本保存7日。
备注
1. 所用血样要能够恰当地反映受血者当前的免疫学状态，《临床输血技术规范》规定受血者配血试验的血标本必须是输血前3天之内的。
如果受血者需要继续输注红细胞，再次申请输血时（超出24小时），应该重新采集一份血样进行交叉配合试验。
2. 要防止血样溶血，溶血的标本不能使用，因溶血后的游离血红蛋白可以掩盖抗体引起的溶血。
3. 不允许从输液管中抽血(血液被稀释)，如遇紧急情况时，要用生理盐水冲洗管道，并弃去最初抽取的5ml血液后再采集标本。
4. 若受血者已用肝素治疗，应在采集血样时注明，同
时通知输血科。
5. 右旋醣酐等中高分子药物可干扰配血，应在药物输注前采集血样备用。
血液标本采集、运送与保存质量保证
血液标本采集、运送与保存质量保证
饮食因素影响
1、血常规:血常规属于常规检查项目，一般没有空腹要求但建议在此项检查前避免油腻、高蛋白 饮食，且不宜饮酒、熬夜或剧烈运动; 2、肝肾功能:对于肝肾功能检查抽血，往往有空腹要求，这项检查旨在明确肝功能与肾功能。若 吃完饭了再抽血，通常会因进食导致血脂浓度的增高，造成ALT、CREA数值的异常，尤其是进食 过多肉类或蛋白; 3、空腹血糖:空腹血糖可了解人体的基础血糖状态，以排除糖尿病前期或糖尿病状态。饮食后进 行空腹血糖检查，结果会因食物中的糖分在胃肠道的吸收入血导致检测结果升高。 4.除以上情况外，饮食还会对血液检测项目包括甲状腺功能、肿瘤标志物等检查产生影响，具体 有何影响以及是否能够吃饭，均需严格遵医嘱。
进食对血液中的某些指标有影响。 例如血糖等因素会受到食物代谢 分解的影响导致浓度偏高，对血 液的质量和浓度也有影响，另外 生理状态下（生物钟、月经、性 别）如中午白细胞会高于早晨， 运动高于运动前。
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药物和毒品因素
药物和毒品对生化检验可带来复杂的影 响，它们不仅可改变某些物质在体内的 代谢过程，同时也可干扰实验过程中的 化学反应，如维生素C，它是一种还原 剂，可干扰葡萄糖氧化酶法测定血糖， 使之降低而误认为低血糖。长期口服避 孕药和雌激素类药物可使转铁蛋白、甘 油三脂升高，因此在采血前应停用这药 物。吗啡可使血淀粉酶、脂肪酶、转氨 酶、肝、尿酸、血糖降低。
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血液标本采集、运送与保存质量保证
生理因素影响
1、年龄：从胎儿出生到儿童、成年和老年的各个时期检查的正常参考值都不完全相同，不能用同一标准来衡 量。新生儿出生的头几天红细胞计数和血红蛋白含量比成人高，儿童血液中碱性磷酸酶含量较成人高，老年人 胆固醇含量较高所以易患动脉粥样硬化症。 2、性别：男性肌肉比较发达，所以血液中肌肝、肌酸激酶含量较女性高。其他男性较女性高的指标有甘油三脂， r-谷胺酰转移酶，胆红素，转氨酶，尿素，红细胞，血红蛋白等。女性比男性高的指标有高密度脂蛋白胆固醇， 载脂蛋白AⅠ，女性激素和网织红细胞等。 3、妊娠：随着孕期的延长，孕妇各系统将发生一系列的生理性变化，如甲状腺素分泌增加，总蛋白，白蛋白含 量减少，肾小球滤过率增加，尿量增多，红细胞沉降率加快，凝血因子活性增强，纤维蛋白原增多，甲胎蛋白 升高等。 4、饮食：饮食对血液生化检验指标的影响取决于饮食的成分和进食时间;餐后抽血检查对血脂、血糖、转氨酶、 胆红素、无机磷、尿酸、尿素、总蛋白、钾、钠、钙等都有较大的影响，因此在测定这些指标时应禁食12小时。 饮酒可使糖异生受抑制，从而导致血糖降低，血乳酸、尿酸升高。长期酗酒可引起肝脏损害，r-谷氨酰转移酶升 高。 5、运动：由于呼吸加快，出汗较多，体液分布发生改变导致血液生化指标的明显变化。如马拉松运动员跑完全 程后45分钟抽血检查与赛前相比，钾、钠、钙、碱性磷酸酶、白蛋白、血糖、无机磷、转氨酶、尿素、尿酸、 胆红素等将升高1倍以上。因此采集标本前应注意休息，避免剧烈运动。
标本采集、送检、运送、接收、处理、保存和销毁规程
标本采集、送检、运送、接收、处理、保存和销毁规程1、目的保证标本采集到贮存过程符合本实验室检测及法律法规的要求,保证标本质量。
2、适用范围本站血液检测标本、检测留样标本及临床送检标本。
3、职责采血人员或相关工作人员负责标本的采集、送检、运送和交接;血库工作人员负责血液检测样本的临时接收和暂存;检验人员负责标本的接收、处理、保存和销毁;办公室负责组织检验科业务人员对标本采集人员进行相关培训。
4、作业步骤4.1样本采集要求:4.1.1:知情同意:标本采集应征得献血者知情同意,内容包括:告知采集(留取)标本量,以及用途(仅用于本站血液检测)。
4.1.2:采集:a.初筛检测样本:采集前严格核对献血者和登记表,抽取1-2ml 的献血者血液于含饱和EDTA-Na2 /K2抗凝剂50ul的普通塑料试管中或含有抗凝剂的真空管中。
贴好与献血者登记表一致的献血序列码。
b.献血后血液检测样本:(1)留取要求:献血者献血后采集人员从血袋/留样袋中留取双份血样用于实验室的一检和二检,两支血样试管,一支为含别离胶的促凝真空管(黄盖),应先留取(不能混入血袋中保养液),另一支为EDTAK2抗凝真空管(紫盖),每支试管留取3-5ml血液,留取后立即轻轻上下颠倒至少3次与抗凝剂/促凝剂充分混匀,贴上与献血登记表、血袋标识条码一致校验码为07的献血序列码。
(2)序列码粘贴要求:序列码粘贴不歪斜、无褶皱,沿负压管盖下竖直粘贴,血型标识向上,条码清晰;(3)校对要求:一次只对一袋血液和同源样本进行贴签留样;所留标本必须按规程进行操作,并经过Spring采血管理模块对采血袋、登记表和标本管三个序列号一致后方可进入下一流程。
(4)临时储存:血液标本留取结束后及时放在2-10℃环境中保存。
c.临床送检标本要求:(1)疑难血型鉴定及交叉配血:使用一次性真空采血管采集受检者血样6-10ml,一支EDTA-K2抗凝,另一支未抗凝,每支3-5ml。
血液标本采集送检留样保存制度
血液标本采集送检留样保存制度一、引言血液标本作为临床诊断、治疗和科研的重要基础，其采集、送检、留样和保存的质量直接关系到检验结果的准确性。
为确保血液标本的质量，规范血液标本采集送检留样保存工作，特制定本制度。
二、血液标本采集1. 采集前的准备工作（1）核对患者信息：在采集血液标本前，医护人员应认真核对患者姓名、性别、年龄、住院号等基本信息，确保无误。
（2）采集器材准备：根据检验项目要求，准备好相应的采血管、注射器、消毒棉签等器材。
（3）患者沟通：向患者解释采集血液标本的目的、过程及注意事项，取得患者配合。
2. 采集过程（1）选择合适的采集部位：根据患者情况，选择合适的静脉进行穿刺。
尽量选择粗直、弹性好、易于固定的静脉。
（2）消毒：用消毒棉签对穿刺部位进行消毒，待消毒液干燥后进行穿刺。
（3）穿刺：操作者戴无菌手套，以左手拇指固定穿刺部位，右手持注射器进行穿刺。
（4）采集：待穿刺成功后，缓慢抽取血液，注意观察患者反应，如出现不良反应，应立即停止采集。
（5）拔针：采集完成后，迅速拔出注射器，用消毒棉签压迫穿刺部位，直至止血。
3. 采集后的处理（1）采血管标识：将采集完成的血液标本放入采血管中，并在采血管上注明患者姓名、住院号、采集时间等信息。
（2）采血管运输：将采血管放入专用运输箱内，确保采血管稳固、避免碰撞。
三、血液标本送检1. 送检时间：血液标本采集完成后，应在规定时间内送至检验科。
一般情况下，采集后的血液标本应在2小时内送检。
2. 送检方式：采用专用运输箱，确保采血管稳固、避免碰撞。
3. 送检人员：送检人员应具备一定的专业素质，了解血液标本送检的要求和注意事项。
4. 送检流程：送检人员将血液标本送至检验科后，与检验人员核对标本信息，确认无误后，由检验人员接收并登记。
四、血液标本留样1. 留样目的：为便于临床复检、科研及法律纠纷处理，应对采集的血液标本进行留样。
2. 留样时间：血液标本留样时间为采集后的2小时内。
检验标本的采集、储存、转运和处理制度
检验标本的采集、储存、转运和处理制度【检验标本的采集】一、血液标本的采集血液标本可来自于静脉、动脉或毛细血管。
静脉血是最常用的标本，静脉穿刺是最常用的采血方法。
毛细血管采血主要用于儿童,血气分析多使用动脉血。
（一）静脉采血法1 ．采血步骤采血前核对病人姓名、性别、年龄、编号及检验项目等,按试验项目要求,准备好相应的容器，如空白试管、抗凝管或促凝管等。
病人应取坐位或卧位，采血部位通常是前臂肘窝的正中静脉。
若用普通采血法，采血后应取下针头，将血液沿管壁缓慢注入试管内。
2 ．注意事项（ 1 ）防止溶血:造成溶血的因素有注射器和容器不干燥、不清洁；淤血时间过长；穿刺不顺利，组织损伤过多；抽血速度太快;血液注入容器时未取下针头或注入速度过快产生大量泡沫；震荡过于剧烈等.若用普通注射器采血后，未取针头直接将血注入真空管内，也易造成溶血.体内溶血属合格标本，但应在报告单上注明。
（ 2 ）避免充血和血液浓缩：采血时应动作迅速，尽可能缩短止血带使用时间。
用止血带压迫时间最好不超过半分钟，否则将使生化结果升高或下降。
（ 3 ）若病人正在进行静脉输液，不宜在输液同侧手臂采血；若女性病人做了乳腺切除术,应在手术对侧手臂采血。
（ 4 ) 采血的体位：体位改变可引起一系列的生理变化,使血液中的许多指标发生改变。
一般采取直立位采血，其二标本的测定值比卧位高 5％～ 15％。
因此，采血时要注意保持正确的体位（坐位或卧位），以及体位的一致性。
（ 5 ）采血时只能向外抽，决不能向静脉内推，以免注入空气，形成气栓而造成严重后果。
（ 6 ）很多生化成分受膳食影响，因此,采血前要确认病人是否空腹。
（二）动脉采血法肱动脉、股动脉、桡动脉以及其它任何部位的动脉都可以作为采血点，但多选择肱动脉和桡动脉。
在摸到明显搏动处,按常规消毒，左手固定搏动处，右手持注射器，针头成60 °角刺入,血液将自动进入注射器内。
采血注意事项见血气分析部分。
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血液标本的收集和保存方法说明：一般建议用新鲜的血液标本进行实验。
如果标本已经保存较长时间，请联系康成公司技术部，以确认样本是否适合进行实验。
一、 全血收集请按照实际使用的收集方法，如注射器收集或真空收集管等，参考相应的厂商提供产品说明进行操作。
采集好全血，将采集好的全血转移至单独的冻存管，按照每400~500ul/管分装好。
短期保存，可放入- 20°C 或- 70°C冰箱。
长期保存，请放入液氮。
二、 血浆收集为获得血浆进行实验，应使用抗凝管采集全血，并尽快进行血浆分离：1000g离心10分钟，分离血浆和细胞组分。
将采集好的血浆转移至单独的冻存管，按照每400~500ul/管分装好。
短期保存，可放入- 20°C 或- 70°C冰箱。
长期保存，请放入液氮。
图片来源：Exiqon ‘ Quantification of MicroRNA expression in Blood Plasma/Serum Samples’注意：血浆收集应使用抗凝管，抗凝剂可以用柠檬酸钠或EDTA等，但一定不要使用肝素抗凝，因为肝素对RNA实验有较大影响三、 血清收集为获得血清进行实验，应使用凝血管采集全血，采血后两小时内分离血清。
采血后轻轻倒转采血管混合4~5次，直立置于室温待血液完全凝固（一般约一小时），1000g离心10分钟，分离血清。
将采集好的血清转移至单独的冻存管，按照每400~500ul/管分装好。
短期保存，可放入- 20°C 或- 70°C冰箱。
长期保存，请放入液氮。
四、 血清、血浆和全血样本的保存和运输→ microRNA芯片检测血清、血浆或全血标本约需要1~2ml的量（即每份样品2~4管）。
→在样品保存及转移的过程中，应避免反复冻融样品。
→运输过程必须使用足量干冰保证始终低温。
干冰量至少为8公斤（足量），且运输用厚壁泡沫箱，且需用封箱带密封。
注：保存血清，血浆或者全血所使用的1.5 ml冻存管或离心管，操作中使用的枪头等必须高温灭菌，装好样品后管口需要以封口膜封好。
参考文献：1. Signature microRNA Expression Profile of Essential Hypertension and Its Novel Link to Human Cytomegalovirus Infection. Li S., et al., Circulation, 2011.2. Characterization of microRNAs in serum: a novel class of biomarkers for diagnosis of cancer and other diseases. Xi C., et al., Cell Research, 2008.附：TRI抽提RNA protocol→如果条件允许，亦可采用TRI Reagent BD保存全血、血浆和血清，并抽提其中的RNA→TRI Reagent BD（For processing whole blood, plasma, or serum）可以从Sigma或者MRC(Molecular Research Center)订购1、RNA的抽提采用TRI Reagent BD从全血、血浆和血清中抽提RNA，整个过程可以在1小时内完成，完整的RNA的得率比其他的抽提方法高30－150％。
其他方法抽提的RNA的完整性都不如TRI Reagent BD，特别是采用柱离心式抽提方法很可能改变RNA的组成。
TRI Reagent BD尤其适用于抽提病毒RNA。
抽提得到的RNA可用于northern、dot blot bybridization、poly A＋ selection、in vitro translation、RNase protection assay、molecular cloning和PCR。
实验方法需要自备的试剂：1‐bromo‐3‐chloropropane（溴氯丙烷，BCP）或氯仿、异丙醇、乙醇和5N醋酸建议使用一次性的聚丙烯离心管，并可承受12,000g离心。
1、裂解：0.75ml TRI Reagent BD＋0.2‐0.25ml全血、血浆或血清2、两相分离：裂解液＋0.1ml溴氯丙烷或0.2ml氯仿3、RNA沉淀：水相层＋0.5ml异丙醇4、洗RNA：1ml 75％ 乙醇5、RNA溶解：FORMAzol、0.5% SDS、或水实验在室温中进行，除非特定步骤。
1、裂解A、血清：加入0.25ml血清和2‐8ul Polyacryl Carrier（Cat.No.PC152）到0.75ml TRI Reagent BD中，盖上盖子，用手或震荡器晃动离心管直至充分混匀。
B、全血或血浆：加入0.2ml全血或血浆到0.75ml TRI Reagent BD，每0.2ml全血或血浆添加20ul5N 醋酸，盖上盖子，用手或震荡器晃动离心管直至充分混匀。
醋酸可以在混合血液样品前的TRI Reagent BD中添加，也可混合后添加。
用1ml冰醋酸（>99％）与2.48ml水混合制备5N的醋酸。
样品体积与试剂体积的比例始终与上述实验方法中一致。
样品体积过大会导致DNA污染，而体积太小则有可能获得过于少量的RNA。
注意：使用TRI裂解样品后，样品干冰运输，或于－70℃存放数月，至进行后续实验。
2、两相分离将裂解液室温放置5分钟，使得核蛋白复合物充分解离。
接下来，每0.75ml裂解液中添加0.1ml 溴氯丙烷或者0.2ml氯仿，盖紧盖子，剧烈晃动15秒。
混合液室温放置2‐5分钟，12,000g，4℃离心15分钟。
离心后，混合物分为下部褐色的酚-氯仿相、中间相和上部无色的水相。
RNA保留在水相中，DNA和蛋白分别在中间相和有机相中。
水相层的体积大约为用于裂解的TRI Reagent BD试剂体积的60％。
用溴氯丙烷代替氯仿不会影响RNA、DNA和蛋白的质量，并且可以降低DNA污染RNA的可能性（4）。
用于两相分离的氯仿不能含有异戊醇或者其他添加物。
很重要的一点是必须要冷冻离心（4-10℃）。
如果离心温度过高，DNA就有可能残留在水相中。
这种情况下得到的RNA可以用于northern分析，但是不能用于PCR。
3、RNA沉淀将水相层转移到新的离心管中，中间相和有机相储存在4℃以备后续实验用。
向水相中加入异丙醇混匀，沉淀RNA。
每0.75ml TRI Reagent BD分离得到的水相中加入0.5ml异丙醇。
室温放置5‐10分钟，12,000g，4‐25℃离心8分钟。
RNA沉淀在管底呈现为胶状或白色沉淀块。
4、清洗RNA吸掉上清，加入75％乙醇，涡旋振荡重悬RNA沉淀。
每0.75mlTRI reagent BD试剂抽提得到的RNA用1ml75％乙醇清洗。
若前面的分离步骤在大离心管（>2ml）中进行的话，则将RNA‐乙醇悬液转移到小离心管中。
转移时使用口径处减掉2‐3mm的1ml枪头。
7,500g，4‐25℃离心5分钟。
如果RNA沉淀在管壁上或者不能贴壁，那么使用12,000g离心。
5、溶解RNA吸掉乙醇，将RNA沉淀自然风干5分钟。
很关键的一点是不能让RNA彻底干燥，否则会降低RNA的可溶性。
不要采用真空装置离心干燥RNA。
用FORMAzol（cat.no. FO121）、水或者用枪头吹打混匀配制而成的0.5％SDS溶液溶解RNA，55‐60℃温育10-15分钟。
用于溶解RNA的水或者SDS溶液必须先用DEPC处理。
在用于RT-PCR之前，用FORMAzol溶解的RNA必须用乙醇沉淀出来。
若用FORMAzol溶解RNA的话则不必干燥RNA。
6、结果用EB染琼脂糖凝胶电泳分离的RNA，或者用亚甲基兰染转移到杂交膜上的RNA，可以看到两条主带，分别为2kb和5kb的rRNA，另外还有一条0.1‐0.3kb的小分子量的RNA。
关键的是最终制备得到的RNA应该没有DNA和蛋白污染，260/280的比值应该在1.6‐1.9之间。
如果用于RT‐PCR 分析，用Dnase消化对于得到理想的结果是很重要的。
一般来说，从1ml人的全血中可以分离出15‐20ug总RNA。
要想获得理想的分光光度计测定值，RNA最好用pH.>7.5的水或者缓冲液（例如磷酸缓冲液 cat.no. SP130）来稀释。
若用pH<7的蒸馏水来测量会导致260/280比值降低则干扰我们判断RNA中是否有蛋白的污染（6）。
注意事项1、在0.75ml TRI reagent BD中添加2‐8ulPolyacryl Carrier（Cat.No.PC152）有利于抽提小体积（<0.2ml）的血液样品中的RNA。
如果样品体积<0.2ml，要么用血清将样品体积调整到0.2ml，要么按<0.2ml的样品体积相应地减少试剂使用量。
当抽提全血或者血浆的RNA时，每0.1ml 全血或者血浆中加入10ul 5N醋酸。
2、在加入溴氯丙烷或氯仿前，TRI reagent BD的裂解液可以在‐70℃存放数月。
RNA沉淀（步骤4中的RNA）可以在75％乙醇中、4℃存放至少一周，-20℃则至少可存放一年。
3、若血液样品存放在4℃时，细胞中的RNA会快速降解。
为了抽提到完整的RNA，采集样品的过程必须迅速分装、冻存在-70℃，不管样品是否用TRI reagent BD处理。
病毒样品可以在4℃存放数天。
4、手和灰尘是Rnase最大的污染源。
整个实验过程中务必使用手套并盖紧离心管盖。