APHA 9221E粪大肠菌群
粪大肠菌群的测定
15.7mg硫代硫酸钠可去除样品中1.5mg活性氯,硫代硫酸钠用量可 根据样品实际活性氯量调整。
4 .无菌水:取适量实验用水,经 高压蒸汽灭菌20min, 备用。 5. 硫代硫酸钠( Na2S2O3.5H2O)。 (去除游离氯) 6.乙二胺四乙酸二钠(C10H14N2O8Na2 .2H2O)。 7.乙二胺四乙酸二钠溶液: ρ (C10H14N2O8Na2 .2H2O) =0.15 g/ml 称取15g乙二胺四乙酸二钠,溶于适量水中,定容至100ml,此溶液可保存 30d。 8.硫代硫酸钠溶液: ρ ( Na2S2O3.5H2O) =0.10 g/ml 称取15.7g硫代硫酸钠, 溶于适量水中,定容至100ml,临用现配。
2. 浓缩乳糖蛋白胨培养液: (此溶液用于检验大肠菌群) 按上述乳糖蛋白胨培养液的制备方法配制。除蒸馏水外,各组分用量 增加至三倍。 (即按上述配方比例三倍 (除蒸馏水外) ,配成三倍浓 缩的乳糖蛋白胨培养液)
①在何种情况下用多少三倍浓度的培养基接种? 答:接种体积为10ml时,试管内应装入有3倍浓度乳糖蛋 白胨培养液5ml。
• 三、肯定要加塞子的,我们用的塞子是软材料 (好像是软橡胶? 白色的,塞子中间另有一 个可以活动的塞子,能保证加塞后的试管透气,其实用什么材料不重要的。
• 四、需要的仪器设备为:生化培养箱、无菌操作台 (空气精华级别100) 、高压灭菌锅、 冰箱、干燥箱。
五、干扰和消除
1.
,能破坏微生物细胞内的酶活性,导
若接种量过高,培养液应加倍成分。这是由于样品的量大 的情况下,培养液稀释大,各种成分的相对浓度就会不足, 就不能满足细菌的生长要求,存在实验失败的概率。因此, 合理调整样品量和营养液浓度的比例需要反复实验和多组 对照。
粪大肠菌群数测量方法-概念解析以及定义
粪大肠菌群数测量方法-概述说明以及解释1.引言1.1 概述概述部分的内容可以描述该篇文章的研究背景以及粪大肠菌群数测量方法的重要性。
可以参考以下内容进行撰写:概述粪大肠菌群数(Fecal coliform count)是评估水体、食品和环境卫生安全的重要指标之一。
粪大肠菌群数测量方法的准确性和可靠性对于保障公众健康和环境质量至关重要。
随着生活水平的提高和环境污染问题的日益严重,对粪大肠菌群数测量方法的研究与探索变得尤为重要。
本文旨在详细介绍目前常用的三种粪大肠菌群数测量方法,即第一种测量方法、第二种测量方法和第三种测量方法。
通过比较这三种方法的原理、步骤以及各自的优缺点,可以帮助读者更全面地了解和选择合适的测量方法。
本文结构本文分为引言、正文和结论三个部分。
引言部分对粪大肠菌群数测量方法的研究背景和意义进行了概述。
正文部分详细介绍了三种测量方法的原理、步骤以及优缺点。
结论部分对本文的主要观点进行总结,并对未来相关研究进行展望。
通过本文的阅读,读者可以对粪大肠菌群数测量方法有一个全面的了解,并对选择适合自己研究对象的测量方法具备一定的指导意义。
希望本文能够为相关领域的研究工作者提供有价值的信息和启示,推动粪大肠菌群数测量方法的改进和发展。
1.2 文章结构文章结构部分的内容可以包括对整篇文章的大致框架进行介绍,即各个章节及其内容的概览。
在文章结构部分中,可以简要介绍文章的组成和布局,以帮助读者更好地理解整篇文章的结构和内容安排。
此外,可以提及各个章节的主要目标和内容,以及各个章节之间的逻辑关系。
具体编写文章结构部分的内容如下:文章结构:本文共分为引言、正文和结论三个部分。
引言部分主要概述了本文的研究背景和目的,同时简要介绍了大纲中各个章节的内容安排。
正文部分详细介绍了三种粪大肠菌群数测量方法:第一种测量方法、第二种测量方法和第三种测量方法。
每种测量方法都包括了原理、步骤和优缺点的详细介绍。
通过对这三种测量方法的讨论和比较,读者可以全面了解不同测量方法的特点和应用情况。
什么是粪大肠菌
什么是粪大肠菌什么是粪大肠菌粪大肠菌群粪大肠菌群是大肠菌群的一种,又名耐热大肠菌群粪大肠菌群是生长于人和温血动物肠道中的一组肠道细菌,随粪便排出体外,约占粪便干重的1/3以上,故称为粪大肠菌群。
受粪便污染的水、食品、化妆品和土壤等物质均含有大量的这类菌群。
若检出粪大肠菌群即表明已被粪便污染。
大肠菌群1、大肠菌群是指一群好氧及兼性厌氧,在37℃、24h能分解乳糖产酸产气的革兰氏阴性无芽孢杆菌,它主要来源于人畜粪便,通常可作为水体粪便污染的指标菌大肠菌群2、大肠菌群是指37℃生长时能发酵乳糖,在24h内产酸产气的革兰阴性无芽孢杆菌,除包括大肠埃希氏杆菌属外,还包括肠杆菌科的肠杆菌属、枸椽酸菌属、克雷伯菌属3、大肠菌群是指一群能在36℃,24h内发酵乳糖产酸产气,需氧和兼性厌氧的革兰阴性无芽胞杆菌.它主要包括肠杆菌科的大肠埃希氏菌、枸椽酸杆菌、克雷伯氏菌和阴沟肠杆菌文献来源大肠菌群并非细菌学分类命名,而是卫生细菌领域的用语,它不代表某一个或某一属细菌,而指的是具有某些特性的一组与粪便污染有关的细菌,这些细菌在生化及血清学方面并非完全一致,其定义为:需氧及兼性厌氧、在37℃能分解乳糖产酸产气的革兰氏阴性无芽胞杆菌。
一般认为该菌群细菌可包括大肠埃希氏菌、柠檬酸杆菌、产气克雷白氏菌和阴沟肠杆菌等。
大肠菌群分布较广,在温血动物粪便和自然界广泛存在。
调查研究表明,大肠菌群细菌多存在于温血动物粪便、人类经常活动的场所以及有粪便污染的地方,人、畜粪便对外界环境的污染是大肠菌群在自然界存在的主要原因。
粪便中多以典型大肠杆菌为主,而外界环境中则以大肠菌群其他型别较多。
大肠菌群是作为粪便污染指标菌提出来的,主要是以该菌群的检出情况来表示食品中有否粪便污染。
大肠菌群数的高低,表明了粪便污染的程度,也反映了对人体健康危害性的大小。
粪便是人类肠道排泄物,其中有健康人粪便,也有肠道患者或带菌者的粪便,所以粪便内除一般正常细菌外,同时也会有一些肠道致病菌存在(如沙门氏菌、志贺氏菌等),因而食品中有粪便污染,则可以推测该食品中存在着肠道致病菌污染的可能性,潜伏着食物中毒和流行病的威胁,必须看作对人体健康具有潜在的危险性。
3、大肠菌群、粪大肠菌群和大肠杆菌
↓36±1℃,48±2h
↓44.5±0.5℃,24±2h
————————
———————
↓
↓
↓
↓
浑浊,产气
不产气 浑浊,产气 不产气:粪大肠菌群阴性
查MPN表
大肠菌群阴性 查MPN表
报告大肠菌群
报告粪大肠菌群
的MPN值
的MPN值
大肠菌群计数检验的操作
MPN法
LST不产气(-) 小导管里无气泡
LST产气(+)
36℃±1 ℃ 培养24h
加入 Kovacs氏试剂
接触面红色,阳性
甲基红反应(MR)
肠杆菌科各菌属都能发酵葡萄糖,在分解葡萄糖 过程中产生丙酮酸,进一步分解中,由于糖代谢的 途径不同,可产生乳酸,琥珀酸、醋酸和甲酸等大 量酸性产物,可使培养基PH值下降至pH4.5以下,使 甲基红指示剂变红。
VRBA平板计数法
选择15~150平 板计数典型和
可疑菌落
36℃±1 ℃ 18h ~24h
典型菌落为紫红色 周围有红色胆盐沉
淀环,0.5mm
挑选10个菌落 接种到BGLB
结果报告
经最后证实大肠菌群阳性的BGLB试管比 例乘以VRBA菌落数再乘以稀释倍数,即为每 克(毫升)样品中大肠菌群数。 如:稀释倍数10-3 ,吸取样品稀释液1ml
大肠菌群和粪大肠菌群的检测流程图 MPN法
检样25g
↓
稀释(三个连续的稀释度,如10-1,10-2,10-3)
↓
接种(每个稀释度接种3管LST,每管1ml)
↓ 36±1℃,48±2h
——————————————
↓
↓
浑浊,产气
不产气
↓
报告大肠菌群阴性
粪大肠菌群的测定
粪大肠菌群的测定1 卫生学意义粪大肠菌群测定的卫生学意义:一、与大肠菌群相比,粪大肠菌群在人和动物粪便中所占的比例较大,而且在自然界容易死亡。
因此,粪大肠菌群的存在表明食品近期内可能直接或间接的受到了粪便的污染;二、作为粪便污染指标评价食品的卫生状况,推断食品中肠道致病菌污染的可能性;三、常用做贝类和贝类养殖用水的卫生指标。
2 检验方法2.1 术语与定义一群在44.5 °C培养24h-48h能发酵乳糖、产酸产气的需氧和兼性厌氧革兰氏阴性无芽胞杆菌。
卫生学概念,又称为耐热大肠菌群,主要是大肠杆菌,但也包括克雷伯氏菌属等。
2.2 设备和材料除微生物实验室常规灭菌及培养设备外,其他设备和材料如下:(1)恒温培养箱:36C±1C。
(2)冰箱:2C〜5C。
( 3)恒温水浴箱:46C±1C。
( 4)天平:感量0.1g 。
(5)无菌吸管:1mL(具0.01m该U度)、10mL(具0.1m该U度)或微量移液器及吸头。
( 6)无菌锥形瓶:容量500mL。
( 7)无菌培养皿:直径90mm。
(8) pH计或pH比色管或精密pH试纸。
2.3 培养基和试剂(1)月桂基硫酸盐胰蛋白胨(Lauryl Sulfate Tryptose , LST)肉汤:1) 成分:胰蛋白胨或胰酪胨:20.0g ;氯化钠:5.0g ;乳糖:5.0g ;磷酸氢二钾(KHPO): 2.75g ;磷酸二氢钾(KHPQ): 2.75g ;月桂基硫酸钠:0.1g ; 蒸馏水:1000mL; pH:6.8±0.22) 制法:将上述成分溶解于蒸馏水中,调节pH。
分装到有玻璃小倒管的试管中,每管10 mL。
121 C高压灭菌15 min。
(2)EC肉汤(E.coli , BGLB :1)成分:胰蛋白胨或胰酪胨:20.0 g; 3号胆盐或混合胆盐:1.5 g;乳糖:5.0g ;磷酸氢二钾(K2HPQ) : 4.0g ;磷酸二氢钾(KHPQ) : 1.5g ;氯化钠:5.0g ; 蒸馏水:1000mL pH:6.9 ± 0.1。
粪大肠菌群的监测分析
1.粪大肠菌群粪大肠菌群是总大肠菌群中的一部分,用来表明水质受污染的程度,主要来自粪便。
粪大肠菌群是一类能使乳糖发酵、产酸产气的需氧及兼性厌氧的革兰氏阴性无芽孢杆菌,在44.5 ℃培养24~48h能发酵乳糖产酸产气。
通过对粪大肠菌群的监测,可了解水体受生活污水污染的状况。
粪大肠菌群适用于河流、湖泊等地表水、企业污水及医院废水的监测,是综合评价城镇污水,尤其是生活污水污染的一个必不可少的重要指标。
粪大肠菌群作为地表水环境质量标准唯一的一项微生物监测指标,我国多用多管发酵法进行检测,近几年也更新了好几个相关环境标准。
2样品的采集和保存2.1 采样瓶的准备和存放采集粪大肠菌群的采样瓶需要用牛皮纸封包好后,再经过高压灭菌器灭菌才能使用。
灭菌后的采样瓶里如果含有少量冷凝水,可以放在烘箱里烘干。
有条件的单位,也可以使用无菌采样瓶。
灭菌后的采样瓶也有其保存期,超过两周内未使用就必须重新灭菌。
绝大部分实验室都是在首次灭菌后不再管其使用期限。
采样瓶存放过久可能受到杂菌污染。
2.2 样品采集采样人员大多缺乏细菌学监测知识,出现很多采样不规范的现象。
如:微生物项目水样和理化水样混采;灭菌瓶开盖时间过早、水样在空气中暴露时间过长;水样采集量过满(既容易导致水样中细菌缺氧死亡,又不利于水样检测前振荡摇匀);微生物样品和其他理化项目同时采样时,没有做到细菌样品优先采集;采样人员在采集样品时,没注意避免采样瓶受杂菌污染(手接触到瓶盖和瓶颈、采样设备不规范)。
2.3 样品运输保存在样品的运输和保存过程中,样品的冷藏是关键(温度过高过低都不利于样品的保存)。
由于仪器设备条件不够,运输过程不满足样品所需温度或者路途遥远,送检时间超过6h,都会导致样品失效。
样品交接时间过长(在样品送入实验室之后,采样人员要将采样记录移交给业务室,然后由接样员对水样进行编号并将检测任务下发到监测室),导致样品没有及时分析而超过时限。
特别是,在执法监测和污染源监督性监测中,需要的采样时间长,有时还需要分时间段监测,这过程很容易造成样品超时。
粪大肠菌群检测方法
粪大肠菌群检测方法
粪大肠菌群检测是一项非常重要的检测方法,可以帮助医生了解肠道菌群的健
康状况,对于一些肠道疾病的诊断和治疗具有重要的指导意义。
目前,常见的粪大肠菌群检测方法主要包括传统培养法、分子生物学方法和代谢产物分析法。
传统培养法是最早被使用的检测方法之一,其原理是将粪便样本在特定的培养
基上进行培养,然后观察和计数不同菌种的数量。
这种方法简单易行,但是存在着检测时间长、无法培养一些难以培养的菌种等缺点。
分子生物学方法是近年来得到广泛应用的一种检测方法,其原理是通过PCR
扩增、测序等技术,对粪便样本中的微生物DNA进行检测和分析。
这种方法可以
快速、准确地获取肠道微生物的信息,但是需要专业的设备和技术人员进行操作,成本较高。
代谢产物分析法是一种新兴的检测方法,其原理是通过检测粪便中微生物代谢
产物的种类和含量,来推断肠道微生物的组成和功能状态。
这种方法无需培养微生物,可以直接反映微生物的活动情况,但是目前仍处于研究阶段,需要更多的临床验证。
除了以上几种方法外,近年来还出现了一些新的粪大肠菌群检测技术,如16S rRNA测序技术、宏基因组测序技术等,这些新技术在提高检测灵敏度、准确性和
全面性方面具有一定优势,但是也存在着技术门槛高、设备昂贵等问题。
总的来说,粪大肠菌群检测方法在不断地发展和完善,不同的方法各有优缺点,应根据具体的临床需求和实际情况选择合适的检测方法。
未来随着技术的不断进步,相信粪大肠菌群检测方法会更加快速、准确、全面,为肠道健康的评估和疾病的诊断治疗提供更好的帮助。
粪大肠菌群国家标准
粪大肠菌群国家标准粪大肠菌群是指存在于人和动物的胃肠道内的一类细菌群,其中包括了大肠杆菌等多种细菌。
这些细菌在人体内起着重要的生理功能,但同时也可能引发多种疾病。
因此,制定粪大肠菌群国家标准对于保障公共卫生安全、食品安全和环境卫生具有重要意义。
首先,粪大肠菌群国家标准应明确细菌的检测方法和标准。
目前,常用的检测方法包括培养法、PCR法等,国家标准应明确不同检测方法的适用范围和标准要求,确保检测结果的准确性和可比性。
同时,国家标准还应规定细菌的允许浓度范围,以便监管部门对食品、饮用水、环境卫生等方面进行监测和管理。
其次,国家标准应规定粪大肠菌群在不同环境中的允许浓度限值。
比如在饮用水中,粪大肠菌群的允许浓度应严格控制,以保障民众饮用水的安全。
在食品加工环节,也应规定粪大肠菌群的允许浓度限值,以确保食品的卫生安全。
此外,在环境卫生监测中,国家标准也应规定粪大肠菌群的允许浓度限值,以保障公共环境的卫生与安全。
再次,国家标准还应明确粪大肠菌群的防控措施和应急处置措施。
一旦发现粪大肠菌群超标,应该采取哪些措施来防止疫情扩散,保障公共卫生安全?国家标准应对此进行详细规定,以提供参考依据。
同时,应急处置措施也应该在国家标准中得到规范,以便相关部门在突发事件中能够迅速、有效地处置。
最后,国家标准的制定还需要考虑国际标准的趋势和发展。
粪大肠菌群国家标准应与国际标准保持一致,以便我国在国际贸易中能够顺利对接。
同时,国家标准也应不断更新和完善,以适应不断变化的国内外环境和需求。
综上所述,粪大肠菌群国家标准的制定对于保障公共卫生安全、食品安全和环境卫生具有重要意义。
国家标准的制定需要明确细菌的检测方法和标准、规定允许浓度限值、明确防控措施和应急处置措施,并与国际标准保持一致。
希望相关部门能够加强标准的制定和监管,确保粪大肠菌群在合理范围内,以保障公众的健康和安全。
粪大肠菌群检测标准
粪大肠菌群检测标准
粪大肠菌群检测是评价消化道微生物菌群组成和功能的重要指标,常用于评估肠道健康和消化功能。
以下是一般粪大肠菌群检测的参考标准:
1. 总菌群量:正常情况下,粪便样本中的大肠菌群数量应该在10^7~10^9 CFU/g之间。
2. 菌群多样性指数:通常使用菌群多样性指数(如Shannon指数)评估菌群的多样性程度。
正常情况下,指数应该在较高水平。
3. 优势菌群和病原菌:粪大肠菌群检测还可以确定主要的优势菌群种类和比例,以及是否存在潜在的病原菌。
正常情况下,优势菌群应该是益生菌(如双歧杆菌、乳酸菌等),而病原菌应该是少量或不存在。
4. 菌群平衡和稳定性:正常的粪大肠菌群应该具有良好的平衡和稳定性。
如果菌群失调或不稳定,可能会导致肠道问题和消化不良等症状。
需要注意的是,粪大肠菌群检测的标准可能因不同的实验室和研究领域而有所差异。
因此,具体的标准应根据实验室或临床医生的建议进行参考。
三种监测地表水中粪大肠菌群标准方法的比较
I节能环保LOW CARBON WORLD2021/6三种监测地表水中粪大肠菌群标准方法的比较唐微微,罗娅敏,陈瀚,赵志友(四川省成都生态环境监测中心站,四川成都610066)【摘要】多管发酵法、纸片法和酶底物法是目前测定地表水中粪大肠菌群的常用标准方法,通过三种方法对粪大肠菌群标准物质和实际地表水样进行分析检测,结果表明:多管发酵法、纸片法和酶底物法用于粪大肠菌群的检测结果具有一致性;通过三种方法优缺点的对比,多管法成本低适用于常规检测,纸片法高效方便更适用于大批量快速检测,酶底物法操作简单,不受场地限制可直接现场检测,更适用于应急现场监测遥【关键词】多管发酵法;纸片法;酶底物法;粪大肠菌群;地表水【中图分类号】X132【文献标识码】A【文章编号】2095-2066(2021)06-0034-020前言粪大肠菌群又称耐热大肠菌群,是在44.5益能生长并发酵乳酸产酸产气、需氧和兼性厌氧的革兰氏阴性无芽抱杆菌⑴。
环境地表水中的粪大肠菌群主要来自粪便的污染,因此通过测定水中粪大肠菌群的含量,可间接得出水体受粪便污染的情况囚,是当前国内外环境监测部门主要监测项目之一,是评价水体污染程度和环境卫生的重要指标,在《地表水环境质量(GB3838—2002)》中,规定I、域、芋、郁及吁类水粪大肠菌群的含量依次臆200、200〜2000、2000〜10000、10000~20000及20000~40000个/L,我国地表水体粪大肠菌群含量普遍较高,部分水域含量甚至超过吁类水质标准。
多管发酵法叫纸片法⑷和酶底物法间是目前国内测定地表水中粪大肠菌群常用的标准方法。
多管发酵法早在1985年就列入《生活饮用水标准检验方法(GB5750-85)》,并于2018年发布修订版,是粪大肠菌群测定的经典方法,它作为《水和废水监测分析方法(第四版)》中的推荐方法向,美国公共卫生协会(APHA)出版的《水和废水标准检验方法(20版)》中方法9221E也采用的是多管发酵法;纸片法在西方发达国家运用较少,主要在一些发展中国家使用,环保部在2015年发布了纸片法的标准方法,它作为《水和废水监测分析方法(第四版)》中的推荐方法(C类方法)叫酶底物法是一种新型酶技术检测方法,已在美、日、韩和欧洲许多国家使用孔2003年从美国引入我国,环保部在2018年发布了酶底物法的标准方法。
大肠菌群的定义
大肠菌群的定义●大肠菌群系指一群能发酵乳糖、产酸产气、需氧和兼性厌氧的革兰氏阴性无芽孢杆菌。
●大肠菌群不是细菌学上的分类命名,而是根据卫生学方面的要求,提出的与粪便污染有关的细菌,即作为食品、水体等是否受过人畜粪便污染的指示菌,这些细菌在生化及血清学方面并非完全一致。
根据进一步的生化试验,可将这群细菌再分为大肠艾希氏菌(俗称大肠杆菌)、弗氏柠檬酸杆菌、肺炎克雷伯氏菌和阴沟肠杆菌等。
大肠杆菌的定义●大肠杆菌(也称大肠埃希氏菌),分类于肠杆菌科,归属于埃希氏菌属。
●大肠杆菌指革兰氏阴性无芽孢杆菌、乳糖发酵产酸产气、IMViC试验(靛基质、MR、V-P、柠檬酸盐试验)为++--或-+--的细菌。
●与人类有关的大肠杆菌统称为致泻性大肠杆菌,包括五种:肠毒素性大肠杆菌(ETEC)、致病性大肠杆菌(EPEC)、出血性大肠杆菌(EHEC)、侵袭性大肠杆菌(EIEC)、黏附性大肠杆菌(EAEC)。
卫生学意义●大肠菌群和大肠杆菌是评价卫生质量的重要指标,作为食品中的粪便污染指标。
●食品中检出大肠菌群,表明该食品有粪便污染,既可能有肠道致病菌存在,因而也就有可能通过污染的食品引起肠道传染病的流行。
大肠菌群数的高低,表明了粪便污染的程度,也反映了对人体健康危害性的大小。
●大肠杆菌在外界存活时间与一些主要肠道致病菌接近,它的出现预示着某些肠道病原菌的存在,因此该菌是国际上公认的卫生监测指示菌。
近年来,有些国家在执行HACCP管理中,将大肠杆菌检测作为微生物污染状况的监测指标和HACCP实施效果的评估指标。
大肠杆菌的生物学特性基本形态:此菌为两端钝圆的短小杆菌,一般约0.5-0.8μm*1.0-3.0 μm,多单独存在或成双,但不呈长链排列。
约50%的菌株有周生鞭毛,但多数只有1-4根,一般不超过10根,故菌体动力弱。
多数菌株有菌毛,有的有荚膜或微荚膜,不形成芽孢,对普通碱性染料着色良好,革兰氏染色阴性。
培养特性:●大肠杆菌合成代谢能力强,在含无机盐、铵盐、葡萄糖的普通培养基上生长良好。
粪大肠菌群标准
粪大肠菌群标准
粪大肠菌群是指存在于人体肠道内的一类微生物群落,其中包括大肠埃希氏菌、沙门氏菌、变形杆菌等。
这些微生物既可以对人体产生益处,如帮助消化食物、合成维生素等,也可能对人体造成危害,引发肠道感染、食物中毒等疾病。
因此,对粪大肠菌群的标准控制至关重要。
首先,粪大肠菌群标准的制定应当参考国际上已有的相关标准和规定,如世界卫生组织发布的《食品微生物标准》、国际食品法典委员会的《食品微生物标准》等。
这些标准通常包括对粪大肠菌群的检测方法、限量要求、危害因素评估等内容,为我国粪大肠菌群标准的制定提供了重要参考。
其次,粪大肠菌群标准的制定应充分考虑我国国情和食品安全形势。
我国人口众多,饮食习惯多样,因此粪大肠菌群标准的制定应当针对我国人群的特点和饮食习惯,制定相应的限量要求和监测控制措施,以保障食品安全。
另外,粪大肠菌群标准的制定还需要考虑不同食品的特点和用途。
不同的食品对粪大肠菌群的容忍度各不相同,因此粪大肠菌群
标准应当根据不同食品的特点和用途,制定相应的限量要求和监测控制措施,以确保不同食品的安全性。
最后,粪大肠菌群标准的制定还需要充分考虑监测和检测技术的发展。
随着科学技术的不断进步,粪大肠菌群的监测和检测技术也在不断更新和完善,因此粪大肠菌群标准的制定应当充分考虑最新的监测和检测技术,确保标准的科学性和准确性。
总之,粪大肠菌群标准的制定是保障食品安全的重要举措,需要充分考虑国际标准、国情、食品特点和监测技术的发展,以确保标准的科学性、准确性和实用性。
只有通过科学合理的标准,才能有效地控制粪大肠菌群,保障食品安全,保护人民健康。
粪大肠杆菌群测定方法
水质粪大肠菌群的测定粪大肠菌群是总大肠菌群中的一部分,主要来自粪便。
在44.5℃温度下能生长并发酵乳糖产酸产气的大肠菌群称为粪大肠菌群。
用提高培养温度的方法,造成不利于来自自然环境的大肠菌群生长的条件,使培养出来的菌主要为来自粪便中的大肠菌群,从而更准确地反映出水质受粪便污染的情况。
粪大肠菌群的测定可以用多管发酵法和滤膜法。
第一篇多管发酵法1. 适用范围本标准适用于地表水、地下水及废水中粪大肠菌群的测定。
2. 原理多管发酵法是以最可能数(most probable number)简称MPN来表示试验结果的。
实际上它是根据统计学理论,估计水体中的大肠杆菌密度和卫生质量的一种方法。
如果从理论上考虑,并且进行大量的重复检定,可以发现这种估计有大于实际数字的倾向。
不过只要每一稀释度试管重复数目增加,这种差异便会减少,对于细菌含量的估计值,大部分取决于那些既显示阳性又显示阴性的稀释度。
因此在实验设计上,水样检验所要求重复的数目,要根据所要求数据的准确度而定。
3. 培养基和试剂本标准所用试剂除另有注明外,均为符合国家标准的分析纯化学试剂;实验用水为新制备的去离子水。
3.1单倍乳糖蛋白胨培养液:成分:蛋白胨10g牛肉浸膏3g乳糖5g氯化钠5g1.6%溴甲酚紫乙醇溶液1mL蒸馏水1000mL制法:将蛋白胨、牛肉浸膏、乳糖、氯化钠加热溶解于1000mL蒸馏水中,调节pH 为7.2~7.4,再加入1.6%溴甲酚紫乙醇溶液1mL,充分混匀,分装于含有倒置的小玻璃管的试管中,于高压蒸汽灭菌器中,在115℃灭菌20min,贮存于暗处备用。
3.2 三倍乳糖蛋白胨培养液:按上述配方比例三倍(除蒸馏水外),配成三倍浓缩的乳糖蛋白胨培养液,制法同上。
3.3 EC培养液:成分:胰胨20g乳糖5g胆盐三号 1.5g磷酸氢二钾(K2HPO4)4g磷酸二氢钾(KH2PO4)1.5g氯化钠5g蒸馏水1000mL制法:将上述成分加热溶解,然后分装于含有玻璃倒管的试管中。
粪大肠菌群标准
粪大肠菌群标准粪大肠菌群是指存在于人体肠道内的一类细菌群,它们对人体健康具有重要影响。
粪大肠菌群标准是衡量人体肠道健康状况的重要指标之一。
在临床医学和生物学研究中,粪大肠菌群标准的检测和分析具有重要意义。
本文将对粪大肠菌群标准进行详细介绍,以便读者对其有更深入的了解。
粪大肠菌群标准的检测方法主要包括定量PCR、荧光原位杂交(FISH)、16S rRNA基因测序等。
这些方法可以准确地检测和分析粪大肠菌群的组成和数量,从而为临床诊断和研究提供重要依据。
通过检测粪大肠菌群标准,可以了解肠道微生态平衡的状况,及时发现和预防肠道相关疾病的发生。
粪大肠菌群标准的参考范围是指健康人群粪便中正常存在的大肠菌群数量和种类。
一般来说,粪大肠菌群标准的参考范围是10^7~10^9CFU/g,主要包括埃希菌、变形杆菌、大肠杆菌等。
当粪大肠菌群数量超出正常范围,或者某些致病菌的数量异常增多时,就可能导致肠道菌群失衡,引发肠道疾病。
粪大肠菌群标准与肠道健康密切相关。
良好的粪大肠菌群标准可以维持肠道内微生态的平衡,有利于食物消化吸收、免疫功能调节等。
而当粪大肠菌群标准异常时,就可能导致肠道疾病的发生,如肠道感染、炎症性肠病等。
因此,定期检测粪大肠菌群标准,对于维护肠道健康非常重要。
除了临床诊断外,粪大肠菌群标准的研究对于肠道微生态的科学认识也具有重要意义。
通过对粪大肠菌群标准的研究,可以深入了解肠道微生态的结构和功能,为肠道疾病的治疗和预防提供理论依据。
同时,粪大肠菌群标准的研究也为肠道微生态调节和干预提供了新的思路和方法。
综上所述,粪大肠菌群标准是衡量肠道健康的重要指标,对于临床诊断和肠道微生态研究具有重要意义。
通过检测和研究粪大肠菌群标准,可以更好地了解肠道健康状况,预防和治疗肠道疾病,促进人体健康。
因此,我们应该重视粪大肠菌群标准的检测和研究,加强对肠道健康的关注,促进肠道微生态平衡,维护人体健康。
大肠菌群、粪大肠、大肠埃希氏菌检验的相关知识总结
大肠菌群、粪大肠、大肠埃希氏菌检验的相关知识总结1、大肠菌群、粪大肠菌群和大肠埃希氏菌检验方法(1)大肠菌群(colifoms)在36°C培养48h可发酵乳糖产酸产气、需氧或兼性厌氧的革兰氏阴性无芽孢杆菌。
该菌主要来源自人畜粪便,作为粪便污染指标评价食品的卫生状况,推断食品中肠道致病菌污染的可能。
(2)粪大肠菌群(Fecal colifoms)也称耐热大肠菌群。
指大肠菌群中能在44.5℃生长、发酵乳糖产生气体的一群细菌。
与大肠菌群一样,并非细菌学分类命名,而是卫生细菌领域的用语,它不代表某-一个或某一属细菌,而指的是具有某些特性的-组与粪便污染有关的细菌,这些细菌在生化及血清学方面并非完全一致。
食品卫生学意义:作为粪便污染食品的指标菌,MPN值愈低则说明食品受粪便污染程度及对人体健康危害程度愈低。
作为肠道致病菌污染食品的指针,大肠菌群数量越多则肠道致病菌存在的可能性就越高,但两者之间并不总是呈平行关系。
(3)大肠埃希氏菌(Escherichia coli)分类学概念:肠杆菌科、埃希氏菌属。
是人和温血动物肠道内普遍存在的细菌,是粪便中的主要菌种。
一般生活在人大肠中并不致病,但它侵入人体一些部位时,可引起感染。
主要有:O抗原(菌体抗原,150个);K抗原(荚膜抗原,90个);H抗原( 鞭毛抗原,50个)(4)致泻性大肠埃希氏菌能侵入肠粘膜上皮细胞,引起食物中毒的大肠埃希氏菌。
产毒性大肠埃希氏菌(ETEC)-肠胃炎、旅行性腹泻。
致病性大肠埃希氏菌(EPEC)-婴儿腹泻;肠出血性大肠埃希氏菌(EHEC)--出血性结肠炎;(O157:H7;O104:H4;O111;O126等)侵袭性大肠埃希氏菌(EIEC)—杆菌性痢疾;粘附性大肠埃希氏菌(EAEC)—急慢性腹泻。
2、大肠菌群、粪大肠菌群、大肠埃希氏菌的关系3、相关检验方法标准GB4789.3-2016食品安全国家标准食品微生物学检验大肠菌群计数GB 4789.38-2012食品安全国家标准食品微生物学检验大肠埃希氏菌计数GB 4789.39- -2013食品安全国家标准食品微生物学检验粪大肠菌群计数GB4789.6- 2016 食品安全国家标准食品微生物学检验致泻大肠埃希氏菌检验GB4789.36-2016食品安全国家标准食品微生物学检验大肠埃希氏O157:H7/NM检验。
水中粪大肠菌群测定方法的比较研究分析
水中粪大肠菌群测定方法的比较研究分析湖南衡阳421200摘要:多管发酵法、滤膜法、纸片快速法和酶底物法是目前国内测定水中粪大肠菌群的常用标准方法。
分别从方法的检出限、方法操作、准确度和方法间的一致性四个方面对水中粪大肠菌群的测定进行了对比研究,总结出各方法的适用范围和优缺点,为分析人员根据实际条件和水样类型选择最佳方法提供参考。
关键词:粪大肠菌群;酶底物法;多管发酵法;滤膜法;纸片快速法粪大肠菌群是在 44.5℃ 温度下能生长并发酵乳糖产酸,产气,需氧及兼性厌氧的革兰氏阴性无芽孢杆菌,主要来自粪便。
粪大肠菌群又称耐热大肠菌群,可以指示水体是否遭受粪便污染,直接指示生活污水的污染,间接反映肠道致病菌的污染风险,是水质检验中非常重要的卫生指标。
目前,国内测定水中粪大肠菌群的标准分析方法有多管发酵法、滤膜法、纸片快速法和酶底物法。
多管发酵法早在 1985 年就列入了《生活饮用水标准检验方法》( GB 5750 -85) ,至今已经沿用了三十多年,是行业内公认的粪大肠菌群测定的经典方法,卫生、水利、环保等行业均有多管发酵法的方法标准。
美国公共卫生协会( APHA) 出版的《水和废水标准检验方法》( 20 版) 中方法 9221E 也采用的是多管发酵法; 滤膜法采用直接计数特征菌落的方式,不同于其它三种方法采用 MPN 法计数,其应用广泛性仅次于多管发酵法,美国 APHA 方法9222D和ISO9308 - 1: 2014采用的是滤膜法; 纸片快速法在西方发达国家采用较少,主要在一些发展中国家使用,环保部在 2015 年发布了测定水中粪大肠菌群的纸片快速法; 酶底物法利用粪大肠菌群在邻硝基苯-β - D -吡喃半乳糖苷培养基上培养产生β - D -半乳糖苷酶,该酶可以分解色源底物释放出黄色的邻硝基苯酚,通过颜色变化定性,MPN 法定量。
我国没有酶底物法测定粪大肠菌群的现行国家和行业标准,美国APHA 方法 9221 E、ISO 9380 - 2: 2012 和 GB5750. 12 -2006均将酶底物法列入标准,但仅限测定总大肠菌群和大肠埃希氏菌。
APHA9221E粪大肠菌群
APHA9221E粪大肠菌群Standard Methods for the Examination of Water and Wastewater ? Copyright 1999 by American Public Health Association, American Water Works Association, Water Environment Federationpresence-absence (P-A) procedure.Can. J. Microbiol. 15:771.CLARK, J.A. & L.T. VLASSOFF . 1973. Relationships among pollution indicator bacteria isolated from raw water and distribution systems by the presence-absence (P-A) test. Health Lab. Sci.10:163.CLARK, J.A. 1980. The influence of increasing numbers of nonindicator organisms upon the detection of indicator organisms by the membrane filter and presence-absence tests. Can. J.Microbiol. 26: 827.CLARK, J.A., C.A. BURGER & L.E. SABATINOS . 1982. Characterization of indicator bacteria in municipal raw water, drinking water and new main water samples. Can. J. Microbiol.28:1002.JACOBS, N.J., W.L. ZEIGLER, F.C. REED, T.A. STUKEL & E.W. RICE . 1986. Comparison of membrane filter, multiple-fermentation-tube, and presence-absence techniques for detecting total coliforms in small community water systems. Appl. Environ. Microbiol. 51:1007.RICE, E.W., E.E. GELDREICH & E.J. READ . 1989. The presence-absence coliform test for monitoring drinking water quality. Pub. Health Rep. 104:54.9221 E. Fecal Coliform ProcedureElevated-temperature tests for distinguishing organisms of the total coliform group that also belong to the fecal coliformgroup are described herein. Modifications in technical procedures,standardization of methods, and detailed studies of the fecal coliform group have established the value of this procedure. The test can be performed by one of the multiple-tube proceduresdescribed here or by membrane filter methods as described in Section 9222. The procedure using A-1 broth is a single-step method.The fecal coliform test (using EC medium) is applicable to investigations of drinking water,stream pollution, raw water sources, wastewater treatment systems, bathing waters, seawaters,and general water-quality monitoring. Prior enrichment in presumptive media is required for optimum recovery of fecal coliforms when using EC medium. The test using A-1 medium is applicable to source water, seawater, and treated wastewater.1. Fecal Coliform T est (EC Medium)The fecal coliform test is used to distinguish those total coliform organisms that are fecal coliforms. Use EC medium or, for a more rapid test of the quality of shellfish waters, treated wastewaters, or source waters, use A-1 medium in a direct test.a. EC medium:Tryptose or trypticase20.0g Lactose5.0g Bile salts mixture or bile salts No. 31.5g Dipotassium hydrogen phosphate, K 2HPO 4 4.0gStandard Methods for the Examination of Water and WastewaterPotassium dihydrogen phosphate, KH2PO4 1.5gSodium chloride, NaCl 5.0gReagent-grade water 1L Add dehydrated ingredients to water, mix thoroughly, and heat to dissolve. pH should be 6.9± 0.2 after sterilization. Before sterilization, dispense in fermentation tubes, each with an inverted vial, sufficient medium to cover the inverted vial at least partially after sterilization. Close tubes with metal or heat-resistant plastic caps.b. Procedure: Submit all presumptive fermentation tubes or bottles showing any amount of gas, growth, or acidity within 48h of incubation to the fecal coliform test.1) Gently shake or rotate presumptive fermentation tubes or bottles showing gas, growth, or acidity. Using a sterile 3- or 3.5-mm-diam loop or sterile wooden applicator stick, transfer growth from each presumptive fermentation tube or bottle to EC broth (see Section 9221B.2).2) Incubate inoculated EC broth tubes in a water bath at 44.5 ± 0.2°C for 24 ± 2 h.Place all EC tubes in water bath within 30 min after inoculation. Maintain a sufficient water depth in water bath incubator to immerse tubes to upper level of the medium.c. Interpretation: Gas production with growth in an EC broth culture within 24 ± 2 h or less is considered a positive fecal coliform reaction. Failure to produce gas (with little or no growth) constitutes a negative reaction. If multiple tubes are used, calculate MPN from the number of positive EC broth tubes as described in Section 9221C. When using only one tube for subculturing from a single presumptive bottle, report as presence or absence of fecal coliforms.2. Fecal Coliform Direct Test (A-1 Medium)a. A-1 broth: This medium may be used for the direct isolation of fecal coliforms from water. Prior enrichment in apresumptive medium is not required.Lactose 5.0gTryptone20.0gSodium chloride, NaCl 5.0gSalicin 0.5gPolyethylene glycol p-isooctylphenyl ether*#(35) 1.0mLReagent-grade water 1L Heat to dissolve solid ingredients, add polyethylene glycol p-isooctylphenyl ether, and adjust to pH 6.9 ± 0.1. Before sterilization dispense in fermen tation tubes with an inverted vial sufficient medium to cover the inverted vial at least partially after sterilization. Close with metal or heat-resistant plastic caps. Sterilize by autoclaving at 121°C for 10 min. Store in dark at roomCopyright 1999 by American Public Health Association, American Water Works Association, Water Environment FederationStandard Methods for the Examination of Water and Wastewater ? Copyright 1999 by American Public Health Association, American Water Works Association, Water Environment Federation temperature for not longer than 7 d. Ignore formation of precipitate.Make A-1 broth of such strength that adding 10-mL sample portions to medium will not reduce ingredient concentrations below those of the standard medium. For 10-mL samples prepare double-strength medium.b. Procedure: Inoculate tubes of A-1 broth as directed in Section 9221B.1b 1). Incubate for 3h at 35 ± 0.5°C. Transfer tubes to a water bath at 44.5 ± 0.2°C and incubate for an additional 21± 2 h.c. Interpretation: Gas production in any A-1 broth culturewithin 24 h or less is a positive reaction indicating the presence of fecal coliforms. Calculate MPN from the number of positive A-1 broth tubes as described in Section 9221C.3. BibliographyPERRY, C.A. & A.A. HAJNA . 1933. A modified Eijkman medium. J. Bacteriol. 26:419.PERRY, C.A. & A.A. HAJNA . 1944. Further evaluation of EC medium for the isolation of coliform bacteria and Escherichia coli .Amer. J. Pub. Health 34:735.GELDREICH, E.E., H.F. CLARK, P.W. KABLER, C.B. HUFF & R.H. BORDNER . 1958. The coliform group. II. Reactions in EC medium at 45°C. Appl. Microbiol. 6:347.GELDREICH, E.E., R.H. BORDNER, C.B. HUFF, H.F. CLARK & P.W. KABLER . 1962. Type distribution of coliform bacteria in the feces of warm-blooded animals. J. Water Pollut. Control Fed.34:295.GELDREICH, E.E. 1966. Sanitary significance of fecal coliforms in the environment. FWPCA Publ. WP-20-3 (Nov.). U.S. Dep. Interior, Washington, D.C.ANDREWS, W.H. & M.W. PRESNELL . 1972. Rapid recovery of Escherichia coli from estuarine water.Appl. Microbiol. 23:521.OLSON, B.H. 1978. Enhanced accuracy of coliform testing in seawater by a modification of the most-probable-number method. Appl. Microbiol. 36:438.STRANDRIDGE, J.H. & J.J. DELFINO . 1981. A-1 Medium: Alternative technique for fecal coliform organism enumeration in chlorinated wastewaters. Appl. Environ. Microbiol. 42:918.9221 F.Escherichia coli Procedure (PROPOSED)Escherichia coli is a member of the fecal coliform group of bacteria. This organism in water indicates fecal contamination. Enzymatic assays have been developed that allow for theidentification of this organism. In this method E. coli are defined as coliform bacteria that possess the enzyme E -glucuronidase and are capable of cleaving the fluorogenic substrate 4-methylumbelliferyl-E -D -glucuronide (MUG) with the corresponding release of the fluorogen when grown in EC-MUG medium at 44.5°C within 24 ± 2 h or less. The procedure is used as a confirmatory test after prior enrichment in a presumptive medium for total coliform bacteria.This test is performed as a tube procedure as described here or by the membrane filter method as。
粪大肠菌群操作细则
粪大肠菌群多管发酵法1、培养基、试剂与仪器本标准所用试剂除另有注明外,均为符合国家标准的分析纯化学试剂;实验用水为新制备的去离子水。
单倍乳糖蛋白胨培养液:称取23.0g乳糖蛋白胨营养液于1L蒸馏水中,加热煮沸至完全,分装于含有倒置的小玻璃管的试管中,每试管约8ml〔先用移液管吸取7ml至试管中,再用滴管吸取营养液放至小玻璃管中,直至营养液溢出。
注意小玻璃管中不能有气泡,若出现气泡,应将气泡排出后再注入营养液。
,于高压蒸汽灭菌器中,在115℃灭菌20min,贮存于暗处备用。
EC 培养液:称取37.0gEC肉汤于1L蒸馏水中,加热煮沸至完全,分装于含有倒置的小玻璃管的试管中,每管8ml〔操作方法同单倍乳糖蛋白胨营养液,于高压蒸汽灭菌器中,在115℃灭菌20min,贮存于暗处备用。
培养基的存放在密封瓶中的脱水培养基成品要存放在大气湿度低、温度低于30℃的暗处,存放时应避免阳光直接照射,并且要避免杂菌侵入和液体蒸发。
当培养液颜色变化,或体积变化明显时废弃不用。
验所需仪器超净工作台、恒温培养箱、高压蒸汽灭菌器、冰箱、酒精灯、天平、电炉、500ml广口瓶、烧杯、玻璃棒、玻璃发酵管、试管架、移液管、移液枪、接种环2步骤前期准备器皿灭菌〔高压蒸汽灭菌:所用采集水样的广口瓶、玻璃试管、移液管、玻璃棒、接种环、移液枪枪头等器皿均需放入高压锅灭菌。
广口瓶:将清洗干净的采样瓶盖好瓶盖,用牛皮纸、报纸等防潮纸将瓶盖、瓶顶和瓶颈处包裹好,用绳子绑好,置于121℃的高压蒸汽灭菌器灭菌15分钟。
玻璃试管〔已经装好营养液、移液管、玻璃棒、接种环、移液枪枪头:用牛皮纸、报纸等防潮纸将其包裹好,置于121℃的高压蒸汽灭菌器灭菌15分钟。
采样:采取水样时,可握住瓶子下部直接将已灭菌的带盖采样瓶插入水中,约距水面10~15cm处,拔瓶盖,瓶口朝水流方向,使水样灌入瓶内然后盖上瓶盖,将采样瓶从水中取出。
如果没有水流,可握住瓶子水平前推,直到充满水样为止。
粪大肠菌群的测定步骤
粪大肠菌群的测定1、半个月前配好初、复发酵所需培养液2、采样时用500ml 广口玻璃瓶分开采样,牛皮纸封口3、操作(1) 培养液初发酵 单倍乳糖蛋白胨培养液:蛋白胨 10 g牛肉浸膏 3 g乳糖 5 g氯化钠 5 g蒸馏水 1000ml调节PH 为7.2—7.4(NaOH )6%溴甲基紫乙醇溶液 1 ml 充分混匀后 10ml (三倍是5ml )分装于试管中,盖紧塞于蒸气锅中灭菌20min (0.1—0.5kpa ),冷却后于药品储存箱保存。
单月13个地表水(每个水样需10个单倍,5个三倍),2个创业(每个水样需15个单倍)。
共190个(1900ml )单倍,65个三倍(325ml )。
双月10个地表水,2个创业。
共130个(1600ml )单倍,50个三倍(250ml )。
创业的水一个月采两次水样复发酵 EC 培养液胰胨 20 g乳糖 5 g胆盐三号 1.5 g磷酸氢二钾 4 g磷酸二氢钾 1.5 g氯化钠 5 g蒸馏水 1000ml充分混匀后 10ml 分装于试管中,盖紧塞于蒸气锅中灭菌20min (0.1—0.5kpa ),冷却后于药品储存箱保存。
三倍乳糖蛋白胨培养液: 蛋白胨 30 g 牛肉浸膏 9 g 乳糖 15 g 氯化钠 15 g 蒸馏水 1000ml 溴甲基紫乙醇溶液 3 ml(2)做样初发酵:地表水15根管为一个水样。
5根为一组。
第一排为5ml三倍培养液,加10ml水样;第二排为10ml单倍培养液,加1ml水样;第三排为10ml单倍培养液,取1ml水样稀释至10ml后再从中取1ml至装有培养液的试管。
(10、1、0.1的取样量)创业,每个水样15根单倍。
同上逐级稀释,取样量为0.1、0.01、0.001ml。
将初发酵管放入培养箱中培养,温度为37℃±0.5℃,时间为24h±2h。
观察:产酸产气为阳性,即变色且有气泡产生,可轻击试管查气泡。
复发酵:呈阳性的试管进行接种后,做复发酵。
大肠菌群、粪大肠菌群、大肠杆菌的关系
大肠菌群、粪大肠菌群、大肠杆菌的关系大肠菌群:需氧及兼性厌氧、在37℃能分解乳糖产酸产气的革兰氏阴性无芽胞杆菌K'a?粪大肠菌群:指一群能在44.5℃24h内发酵乳糖产酸产气的需氧和兼性厌氧的革兰氏阴性无芽孢杆菌。
大肠杆菌:大肠菌群中的大肠埃希氏菌Ⅰ型和Ⅲ型:^"Ko靛基质+tk甲基红+9V-P -T?枸橼酸盐大肠菌群指的是具有某些特性的一组与粪便污染有关的细菌,这些细菌在生化及血清学方面并非完全一致,其定义为:需氧及兼性厌氧、在37℃能分解乳糖,产酸产气的革兰氏阴性无芽孢杆菌。
大肠菌群包括埃希氏菌属,克雷伯氏菌属、肠杆菌属和柠檬酸杆菌属等的细菌。
食品中检出大肠菌群细菌,表明该食品有粪便污染。
既然有粪便污染,则可以推测该食品中存在着肠道致病菌污染的可能性,潜伏着食物中毒和流行病的威胁,同时也反映出被测食品对人体健康存在危害。
这是一个比较合理的推论。
大肠菌群数的高低,表明了粪便污染的程度,也反映了对人体健康危害性的大小。
D大肠菌群的检验比较简单,但其和粪便污染的相关性还受到质疑,原因是其中的一些细菌能够在环境样品中检出。
相对来说,粪大肠菌群对粪便污染的指示作用更为直接和贴切,而且检测方法相对大肠杆菌简单,为此是一种较好的粪便指示菌(或称为“指示菌群”)。
与大肠菌群相比,粪大肠菌群在人和动物粪便中所占的比例较大,而且在自然界容易死亡。
因此,粪大肠菌群的存在表明食品可能直接或间接的受到了近期的粪便污染。
粪大肠菌群又叫耐热大肠菌群,主要就是大肠杆菌,但也包括克雷伯氏菌属。
!fk食物中检出大肠杆菌,具有下述含义:可能存在其他粪便来源的细菌;可能存在各种肠道致病性细菌。
食物中未检出大肠杆菌,不能保证完全没有致病性细菌。
]目前,这三个指标在实际工作中都在应用,但其用途还是有所不同的。
大肠菌群用做水源的卫生指标和食品加工卫生状况的通用指标,粪大肠菌群用于贝类和贝类养殖用水的卫生指标,大肠杆菌用于指示近期粪便污染或不卫生加工。
- 1、下载文档前请自行甄别文档内容的完整性,平台不提供额外的编辑、内容补充、找答案等附加服务。
- 2、"仅部分预览"的文档,不可在线预览部分如存在完整性等问题,可反馈申请退款(可完整预览的文档不适用该条件!)。
- 3、如文档侵犯您的权益,请联系客服反馈,我们会尽快为您处理(人工客服工作时间:9:00-18:30)。
Standard Methods for the Examination of Water and Wastewater © Copyright 1999 by American Public Health Association, American Water Works Association, Water Environment Federationpresence-absence (P-A) procedure.Can. J. Microbiol. 15:771.CLARK, J.A. & L.T. VLASSOFF . 1973. Relationships among pollution indicator bacteria isolated from raw water and distribution systems by the presence-absence (P-A) test. Health Lab. Sci.10:163.CLARK, J.A. 1980. The influence of increasing numbers of nonindicator organisms upon the detection of indicator organisms by the membrane filter and presence-absence tests. Can. J.Microbiol. 26: 827.CLARK, J.A., C.A. BURGER & L.E. SABATINOS . 1982. Characterization of indicator bacteria in municipal raw water, drinking water and new main water samples. Can. J. Microbiol.28:1002.JACOBS, N.J., W.L. ZEIGLER, F.C. REED, T.A. STUKEL & E.W. RICE . 1986. Comparison of membrane filter, multiple-fermentation-tube, and presence-absence techniques for detecting total coliforms in small community water systems. Appl. Environ. Microbiol. 51:1007.RICE, E.W., E.E. GELDREICH & E.J. READ . 1989. The presence-absence coliform test for monitoring drinking water quality. Pub. Health Rep. 104:54.9221 E. Fecal Coliform ProcedureElevated-temperature tests for distinguishing organisms of the total coliform group that also belong to the fecal coliform group are described herein. Modifications in technical procedures,standardization of methods, and detailed studies of the fecal coliform group have established the value of this procedure. The test can be performed by one of the multiple-tube proceduresdescribed here or by membrane filter methods as described in Section 9222. The procedure using A-1 broth is a single-step method.The fecal coliform test (using EC medium) is applicable to investigations of drinking water,stream pollution, raw water sources, wastewater treatment systems, bathing waters, seawaters,and general water-quality monitoring. Prior enrichment in presumptive media is required for optimum recovery of fecal coliforms when using EC medium. The test using A-1 medium is applicable to source water, seawater, and treated wastewater.1. Fecal Coliform Test (EC Medium)The fecal coliform test is used to distinguish those total coliform organisms that are fecal coliforms. Use EC medium or, for a more rapid test of the quality of shellfish waters, treated wastewaters, or source waters, use A-1 medium in a direct test.a. EC medium:Tryptose or trypticase20.0g Lactose5.0g Bile salts mixture or bile salts No. 31.5g Dipotassium hydrogen phosphate, K 2HPO 4 4.0gStandard Methods for the Examination of Water and WastewaterPotassium dihydrogen phosphate, KH2PO4 1.5gSodium chloride, NaCl 5.0gReagent-grade water 1L Add dehydrated ingredients to water, mix thoroughly, and heat to dissolve. pH should be 6.9± 0.2 after sterilization. Before sterilization, dispense in fermentation tubes, each with an inverted vial, sufficient medium to cover the inverted vial at least partially after sterilization. Close tubes with metal or heat-resistant plastic caps.b. Procedure: Submit all presumptive fermentation tubes or bottles showing any amount of gas, growth, or acidity within 48 h of incubation to the fecal coliform test.1) Gently shake or rotate presumptive fermentation tubes or bottles showing gas, growth, or acidity. Using a sterile 3- or 3.5-mm-diam loop or sterile wooden applicator stick, transfer growth from each presumptive fermentation tube or bottle to EC broth (see Section 9221B.2).2) Incubate inoculated EC broth tubes in a water bath at 44.5 ± 0.2°C for 24 ± 2 h.Place all EC tubes in water bath within 30 min after inoculation. Maintain a sufficient water depth in water bath incubator to immerse tubes to upper level of the medium.c. Interpretation: Gas production with growth in an EC broth culture within 24 ± 2 h or less is considered a positive fecal coliform reaction. Failure to produce gas (with little or no growth) constitutes a negative reaction. If multiple tubes are used, calculate MPN from the number of positive EC broth tubes as described in Section 9221C. When using only one tube for subculturing from a single presumptive bottle, report as presence or absence of fecal coliforms.2. Fecal Coliform Direct Test (A-1 Medium)a. A-1 broth: This medium may be used for the direct isolation of fecal coliforms from water. Prior enrichment in a presumptive medium is not required.Lactose 5.0gTryptone20.0gSodium chloride, NaCl 5.0gSalicin 0.5gPolyethylene glycol p-isooctylphenyl ether*#(35) 1.0mLReagent-grade water 1L Heat to dissolve solid ingredients, add polyethylene glycol p-isooctylphenyl ether, and adjust to pH 6.9 ± 0.1. Before sterilization dispense in fermentation tubes with an inverted vial sufficient medium to cover the inverted vial at least partially after sterilization. Close with metal or heat-resistant plastic caps. Sterilize by autoclaving at 121°C for 10 min. Store in dark at room© Copyright 1999 by American Public Health Association, American Water Works Association, Water Environment FederationStandard Methods for the Examination of Water and Wastewater © Copyright 1999 by American Public Health Association, American Water Works Association, Water Environment Federation temperature for not longer than 7 d. Ignore formation of precipitate.Make A-1 broth of such strength that adding 10-mL sample portions to medium will not reduce ingredient concentrations below those of the standard medium. For 10-mL samples prepare double-strength medium.b. Procedure: Inoculate tubes of A-1 broth as directed in Section 9221B.1b 1). Incubate for 3h at 35 ± 0.5°C. Transfer tubes to a water bath at 44.5 ± 0.2°C and incubate for an additional 21± 2 h.c. Interpretation: Gas production in any A-1 broth culture within 24 h or less is a positive reaction indicating the presence of fecal coliforms. Calculate MPN from the number of positive A-1 broth tubes as described in Section 9221C.3. BibliographyPERRY, C.A. & A.A. HAJNA . 1933. A modified Eijkman medium. J. Bacteriol. 26:419.PERRY, C.A. & A.A. HAJNA . 1944. Further evaluation of EC medium for the isolation of coliform bacteria and Escherichia coli .Amer. J. Pub. Health 34:735.GELDREICH, E.E., H.F. CLARK, P.W. KABLER, C.B. HUFF & R.H. BORDNER . 1958. The coliform group. II. Reactions in EC medium at 45°C. Appl. Microbiol. 6:347.GELDREICH, E.E., R.H. BORDNER, C.B. HUFF, H.F. CLARK & P.W. KABLER . 1962. Type distribution of coliform bacteria in the feces of warm-blooded animals. J. Water Pollut. Control Fed.34:295.GELDREICH, E.E. 1966. Sanitary significance of fecal coliforms in the environment. FWPCA Publ. WP-20-3 (Nov.). U.S. Dep. Interior, Washington, D.C.ANDREWS, W.H. & M.W. PRESNELL . 1972. Rapid recovery of Escherichia coli from estuarine water.Appl. Microbiol. 23:521.OLSON, B.H. 1978. Enhanced accuracy of coliform testing in seawater by a modification of the most-probable-number method. Appl. Microbiol. 36:438.STRANDRIDGE, J.H. & J.J. DELFINO . 1981. A-1 Medium: Alternative technique for fecal coliform organism enumeration in chlorinated wastewaters. Appl. Environ. Microbiol. 42:918.9221 F.Escherichia coli Procedure (PROPOSED)Escherichia coli is a member of the fecal coliform group of bacteria. This organism in water indicates fecal contamination. Enzymatic assays have been developed that allow for the identification of this organism. In this method E. coli are defined as coliform bacteria that possess the enzyme E -glucuronidase and are capable of cleaving the fluorogenic substrate 4-methylumbelliferyl-E -D -glucuronide (MUG) with the corresponding release of the fluorogen when grown in EC-MUG medium at 44.5°C within 24 ± 2 h or less. The procedure is used as a confirmatory test after prior enrichment in a presumptive medium for total coliform bacteria.This test is performed as a tube procedure as described here or by the membrane filter method as。