免疫组化步骤
免疫组化实验步骤流程
免疫组化实验步骤流程1.样品制备：a.组织样品：从动物或人体获得的组织样品首先需要固定在福尔马林中，然后通过蜡包埋技术将组织固定在蜡块中。
之后，将蜡块切成薄片，然后将薄片分别放置于载玻片上。
b.细胞样品：将细胞悬浮液放置在载玻片上，并用福尔马林进行固定。
2.抗原恢复：固定的组织或细胞样品经过脱水和脱脂处理后，需要通过抗原恢复来揭示隐藏的抗原。
抗原恢复的方法可以是热处理、酶切或化学处理等。
3.形成蛋白结合位点：将载玻片上的样品用蛋白结合剂如牛血清白蛋白（BSA）、鱼胶或生物素素蛋白结合剂等进行封闭处理，以防止非特异性结合。
4.孵育抗体：a.主抗体：将特异性的首要抗体加入到样品中，与目标抗原结合形成抗原抗体复合物。
b.辅助抗体：添加荧光素或酶标记的次抗体，与主抗体结合，以扩大信号的产生。
5.洗涤：用缓冲液洗涤载玻片，以去除未结合的抗体和其他无关物质。
6.信号增强：a.酶标记的实验，为了增加信号强度，可以加入荧光素或发光底物。
b.荧光标记的实验，可以直接观察荧光。
7.显色：在酶标记的实验中，加入染色底物以产生可见的颜色，从而定位并显示目标抗原的存在。
8.盖玻片：在涂抹适当封片剂后，将载玻片盖上一片封片玻片，以保护样品并减少光的干扰。
9.显微镜观察：使用显微镜观察载玻片下的样品，并通过图像系统进行图像捕捉和分析。
10.结果评估：评估图像和数据以确定抗原的表达和分布情况。
根据实验目的，可以进行半定量或定量的数据分析。
需要注意的是，免疫组化实验中的条件、试剂和步骤会因实验目的不同而略有差异。
因此，在进行实验前需仔细阅读相关文献和制定适合的实验方案，以确保实验结果的准确性和可靠性。
免疫组化主要步骤
免疫组化主要步骤1. 洗载玻片:将载玻片置于重铬酸钾和浓H2SO4混合液中,目的是为了是载玻片上的硅胶等除去,同时使一些肉眼看不见的凹凸不平的表面变平整,便于组织吸附,然后置于清水中清洗,除去残余的重铬酸钾和浓H2SO4(大约冲一个小时左右),再将载玻片浸泡于酒精之中, 然后放到架子上,置于37°C温箱中，将多聚赖氨酸涂布于玻片的表面，由于Lys带正电，而大多数的组织带负电荷，从而产生吸附作用。
2. 包埋组织:先在铁模具中加入一些液态石蜡，先稍微冷却，然后再将待包埋的组织置于石蜡之中，并排列整齐，再将塑料模具盒盖上，最后加入少许液体石蜡，进行冷冻，使石蜡变成固态。
3. 切片：将包埋好的组织从模具上取下来，并置于石蜡切片机上，切片机通过调节上下左右来来使组织和切割方向一致，然后调节切片的厚度，一般为5µm,如果比较难切，则可以适当调整厚度，用毛笔将切割的载玻片向外拉，并用小镊子将包含有完整组织的载玻片置于40°C温水中。
4. 捞组织：当组织载玻片置于40°C温水中之前，要先将水浴中的气泡赶走，以免气泡受热上浮而贴到组织上，组织受热展开，最好是组织不起皱纹，用载玻片捞组织时，一般取载玻片的下1/3或者下1/2一般每种组织捞5-6张，其中2-3张是备用的，每张载玻片上通常捞两份组织，做对照使用，这样形成的误差就比较小了，而且捞载玻片的时候最好方向一致，以便观察，再将捞出来的载玻片置于架子上，放入37°C温箱中烘干。
5. 脱蜡：依次将载玻片放入二甲苯-二甲苯-100%酒精-100%酒精-95%酒精-90%酒精-80%酒精-70%酒精，起脱蜡作用的主要是二甲苯,依据的是相似相溶的原理.一般在每个试剂中放10min,天气热可以少放几分钟,相反,天气较冷的话,就要适当延长脱蜡时间,一般为12-15min.6. 抗原修复：脱蜡后在清水中冲洗一段时间，加入3%H2O2浸泡10min，从而除去内源性的过氧化氢酶，然后倒掉H2O2，在清水中洗两次，再加入柠檬酸缓冲液，放入微波炉中蒸煮3min（中火），一般刚到沸腾即可，冷却至室温，然后再蒸煮一次，冷却至室温，蒸煮的目的是为了使抗原的位点暴露出来。
免疫组化的操作流程
免疫组化的操作流程免疫组化是一种在细胞或组织中检测特定抗原或抗体的方法。
免疫组化广泛应用于医学诊断、生命科学研究和药物研发等领域。
下面是免疫组化的操作流程。
1.样本处理：首先，需要准备待检测的样本。
样本可以是组织片、细胞悬液或液体样本（如血清或尿液）。
对于组织样本，通常需要固定、切片和脱水等处理步骤，以保持细胞和组织的结构和形态。
2.抗原修复：组织样本中的抗原通常会在固定处理过程中被破坏或失活。
为了恢复抗原的免疫反应性，需要进行抗原修复步骤。
常用的抗原修复方法包括加热诱导抗原修复和酶诱导抗原修复。
3.抗原检测：制备好的样本可以用于检测抗原。
抗原检测通常通过选择与目标抗原特异性结合的一组试剂，如特异性抗体或亲和素。
这些试剂将与待检测样本发生特异性结合，从而形成特定的抗原-抗体结合物。
4.一次抗体结合：首先，将样本与一次抗体结合。
一次抗体是与目标抗原结合的特异性抗体。
待检测样本与一次抗体一起孵育，使其与目标抗原发生特异性结合。
5.洗涤：为了去除未结合的一次抗体和其他非特异性结合物，需要进行洗涤步骤。
洗涤可以用缓冲液溶液进行多次重复，以确保样本的纯净性。
6.二次抗体结合：接下来，需要将与检测物发生特异性结合的二次抗体与样本反应。
二次抗体是与一次抗体特异性结合的抗体。
这些二次抗体通常与标记物结合，如辣根过氧化物酶（HRP）或碱性磷酸酶（AP）等。
7.洗涤：与一次抗体结合后，需要再次进行洗涤步骤，以去除未结合的二次抗体和其他非特异性结合物。
8.标记物探测：二次抗体中的标记物将通过检测技术进行可视化。
最常用的检测技术是酶联免疫吸附实验（ELISA），其中酶标记物与底物反应产生可见的颜色变化。
其他常用的标记物包括荧光染料、生物素-链霉亲和素等。
9.观察和分析：最后，需要使用光学显微镜或显微镜等工具观察标记物，并进行结果分析。
可以根据标记物的位置、数量和强度等进行定量和定性的分析。
总之，免疫组化操作流程包括样本处理、抗原修复、抗原检测、一次抗体结合、洗涤、二次抗体结合、洗涤、标记物探测和观察分析等步骤。
免疫组化法实验操作步骤
免疫组化法实验操作步骤以下是免疫组化法的标准实验操作步骤：1.样本准备：a.获取待检样本，例如组织切片或细胞悬液。
b.将样本固定，常用的固定剂包括福尔马林、乙醇和乙酸等。
c.进行脱水和石蜡包埋，以便于后续切片。
2.制备切片：a.用切片机将固定的样本切成薄片，通常为4-6微米。
b.将切片平均分配在载玻片上。
3.制备蜡块：a.将切片放入烘箱中进行去蜡，以去除切片上的石蜡。
b.用乙醇对切片进行脱水然后重新水化。
c.将切片放入热稳定耐热塑料材料中，通常为硝酸纤维素薄膜等。
4.抗原恢复：a.使用高温高压（如压力锅或蒸汽炉）进行抗原恢复，以改善抗体与抗原的结合效率。
b.根据实验需要选择适当的抗原恢复缓冲液，如磷酸盐缓冲液（PBS）、EDTA缓冲液或三氯醋酸缓冲液等。
c.将切片放入抗原恢复缓冲液中进行恢复处理。
5.抗体处理：a. 选择适当的一抗（primary antibody），根据目标蛋白质的性质选择单克隆或多克隆抗体。
b.将一抗稀释至适当浓度，根据抗原的强度调整抗体浓度。
c.将一抗加入样本上共孵育，使抗体与目标蛋白质发生特异性结合。
d.对于一些抗体，可以使用辅助试剂如牛血清蛋白、牛血清、胶原蛋白等增强结合效果。
6.清洗：a.用PBS或其他合适的缓冲液冲洗切片，以去除未结合的一抗。
b.重复冲洗步骤多次，以充分去除未结合的抗体。
7.检测标记：a.选择适当的检测标记，如酶（如辣根过氧化物酶，HRP）、荧光染料或金标记等。
b.将标记物加入到一抗与抗原结合的位置上，以形成可视的标记。
8.染色：a.若使用酶标记物，则使用特定底物进行染色，产生颜色反应。
b.若使用荧光标记物，则观察荧光信号。
9.显微镜观察：a.使用适当的显微镜观察切片，记录和分析结果。
b.对于荧光标记，可以使用特定的荧光染色剂如DAPI进行细胞核染色。
10.结果分析：a.根据实验设计和目的，对结果进行定性或定量分析。
b.可以使用图像分析软件进行影像处理和数据分析。
免疫组化步骤和注意事项
免疫组化步骤和注意事项免疫组化是一种重要的实验技术，用于鉴定细胞、组织或生物样本中特定抗原的分布和表达情况。
它可以通过对特定抗原与抗体的特异性结合来检测目标分子的存在和定位。
下面将介绍免疫组化的步骤和注意事项。
免疫组化的主要步骤包括抗原脱蜡、抗体反应、显色和染色。
1. 抗原脱蜡：免疫组化的第一步是将组织样本或细胞脱脂、脱蜡和重水化，以去除蜡质，并使抗体更容易与目标抗原反应。
2. 抗体反应：将脱蜡的组织样本或细胞块通过抗原修复处理，以恢复抗原的免疫反应性。
然后，将免疫抗体与待检测的抗原反应，形成免疫复合物。
免疫抗体可以是单克隆抗体或多克隆抗体，可以与组织或细胞中的特定抗原高度特异性地结合。
3. 显色：免疫复合物形成后，可以使用标记有酶（如辣根过氧化物酶或碱性磷酸酶）或荧光标记的二抗来检测免疫复合物。
在酶法中，可添加草酰胺基苯酸（DAB）或硫代硝基羟基苯并啶（NBT/BCIP）等底物以产生可见的色素沉积。
在荧光法中，免疫复合物被激光器或荧光灯激发后，会发出特定颜色的荧光信号。
4. 染色：完成显色后，可以通过核染色（如用伊红、伊红和伊蓝）来观察细胞核的形态特征，以配合免疫标记物的定位。
虽然免疫组化是一种有价值的技术，但在实施过程中也需要注意一些问题：1. 选择合适的抗体：在进行免疫组化实验时，选择特异性高、效价好的一抗抗体非常重要。
一抗抗体的选择应基于抗原的特异性和病变的病理生理特性。
2. 优化抗体浓度：免疫组化实验中，抗体浓度的选择是关键因素。
过高的抗体浓度会导致非特异性的染色，而过低的浓度则无法检测到目标抗原。
3. 优化抗原修复处理：抗原修复处理对于免疫组化的成功非常重要。
选择合适的抗原修复方法可以增强组织或细胞中的抗原的免疫反应性。
4. 阴性对照和阳性对照：为了验证实验的可靠性，每次免疫组化实验都应包括阴性对照和阳性对照。
阴性对照不包含待检测的抗原，而阳性对照则确保抗体和显色试剂的正常工作。
5. 切片质量：免疫组化实验的结果直接受到切片质量的影响。
免疫组化相关步骤
免疫组化相关步骤免疫组化（immunohistochemistry，IHC）是一种基于抗原抗体反应的方法，用于检测组织或细胞中其中一种特定蛋白质的表达。
下面将详细介绍免疫组化的相关步骤。
免疫组化的步骤包括样品制备、抗原修复、阻断、一抗反应、二抗反应和染色，具体如下：1.样品制备：首先，需要获取组织标本。
通过活体组织切片、细胞涂片或冷冻切片等方法制备标本。
制备好的标本需要保持完整和有代表性，通常要求切片不超过5μm厚。
2.抗原修复：组织切片在固定过程中会损害抗原的完整性，因此需要进行抗原修复，以恢复抗原的表达。
常用的抗原修复方法包括热解修复（如加热、压力煮等）和酶解修复（如胰蛋白酶消化等）。
3.阻断：组织切片会与非特异抗体结合，影响免疫反应的特异性，因此需要进行阻断。
常用的阻断方法包括用牛血清白蛋白（BSA）或奶粉进行阻断，以防止非特异性背景信号的产生。
4.一抗反应：将含有特异性抗体的试剂加到组织切片上，使其与目标抗原结合。
特异性抗体可针对不同的抗原进行选择，如研究一些蛋白质的表达，可以选择该蛋白的特异性抗体。
5.二抗反应：一抗与抗原结合后，需要加入与该一抗来自不同物种的二抗。
二抗通常是免疫出来的，其与一抗结合后，可形成复合物，具有荧光或酶标记。
6.染色：最后，通过染色方法来显示抗原的表达。
染色可以是荧光染色或酶标染色。
荧光染色利用特定颜料对特异性标记的抗体进行荧光标记，并在荧光显微镜下观察。
酶标染色则使用酶标记的二抗，再加入相应的底物进行染色。
除了以上的基本步骤1.控制组：为了验证实验是否准确，通常需要设置阴性和阳性对照组。
阴性对照组通常是替代一抗的种属、浓度和机制抗体；阳性对照组是已知具有目标蛋白表达的组织切片。
2.负载密度和反应时间：一抗的负载密度和反应时间需要优化，以确保对目标蛋白的增强标识，同时最大限度地减少背景信号。
3.显微镜观察和图像分析：观察染色结果时，要选择合适的显微镜，以获得清晰的图像。
免疫组化详细步骤
免疫组化步骤取组织、固定、制片（脱水、透明、浸蜡、包埋）、切片、烤片、抗原修复、滴加抗体一、取组织二、固定三、制片1、脱水透明的酒精梯度和时间70%酒精20min 80%酒精1h90%酒精1h 95%酒精Ⅰ2h95%酒精Ⅱ2h 无水乙醇Ⅰ15min无水乙醇Ⅱ15min 无水乙醇Ⅲ15min二甲苯酒精1:1 15min 二甲苯Ⅰ25min二甲苯Ⅱ25min 二甲苯Ⅲ15min2、浸蜡：石蜡融化后，在石蜡Ⅰ、Ⅱ、Ⅲ中各浸蜡1h3、包埋四、切片烤片用切片机切片，取完整组织切片放于37℃温水中展片，取完整组织于载玻片上，并放入到60℃的烤箱中烤6个小时五、脱蜡至水六、抗原修复配置柠檬酸抗原修复液于微波中煮沸，在高压锅内放入自来水煮沸（不盖锅盖），将装有煮沸的抗原修复液的烧杯置于高压锅内，将水化后的玻片放入煮沸的抗原修复液中，盖上锅盖，待其压力达到最大时维持三分钟七、取出玻片，水浴逐渐降温直至完全冷却八、将玻片放置于塑料板上，滴加3%的过氧化氢室温孵育10min，以阻断内源性过氧化氢酶，10min过后PBS冲洗2次×3分钟九、除去PBS（甩干或者吸水纸吸干），每张切片滴加第一抗体（稀释相应倍数），4℃过夜十、PBS冲洗3次×2分钟，除去PBS液，每张切片滴加聚合物增强剂，室温孵育10min十一、PBS冲洗2分钟×3次，除去PBS，每张切片滴加酶标抗兔聚合物，室温孵育10min十二、PBS冲洗2分钟×3次，除去PBS，每张切片滴加新配制的DAB（二氨基联苯胺），室温孵育2~10分钟，显微镜观察十三、苏木精复染：苏木精复染5min，水洗3min，0.1%HCl浸提两次，水洗3min，反蓝液数秒，水洗十四、脱水透明：70%酒精3min、80%酒精3min、90%酒精3min、无水乙醇3min、二甲苯Ⅰ3min、二甲苯Ⅱ3min十五、封片。
免疫组化法实验操作步骤
免疫组化法实验操作步骤步骤一：取材固定1.将需要处理的组织或细胞样本，如切片或离心沉淀等，放置在含有适当浓度的固定试剂（如4%的中性缓冲甲醛）中，使其固定。
2.这一步的目的是保持蛋白质的结构和形态，使其对后续步骤的抗体反应更加稳定。
步骤二：脱水和包埋1.将样本从固定试剂中洗涤，并逐渐转移到乙醇溶液中，以脱水。
2.将样本转移到适当浓度的透明剂（如甲基丙烯酸甲酯）中，使其透明化。
3.最后，将样本包埋在合适的固化剂（如尼龙、蜡、树脂等）中，以便后续的切片操作。
步骤三：切片和烘干1.使用组织切片机将样本以适当的厚度切成切片。
2.将切片放置在加热平台上，烘干以去除切片中的水分。
步骤四：抗体处理1.使用适当的抗体稀释液将抗体与切片接触。
抗体可为一抗或二抗，具体选择取决于实验需求。
2.将切片放置在含有抗体的湿润孵育盒中，使其与抗体反应。
孵育温度和时间取决于抗体的要求，一般在4℃下孵育过夜。
步骤五：洗涤1.将切片取出，并置于洗涤缓冲液中，用于去除未结合的抗体。
2.反复洗涤3-4次，每次至少5分钟，确保切片完全清洗。
步骤六：标记1.添加适当浓度的二抗，如辣根过氧化物酶（HRP）标记的二抗，与已经结合的一抗反应。
2.孵育切片与二抗共反应，孵育温度和时间根据试剂的要求进行。
步骤七：显色和染色1.使用合适的显色剂将切片进行显色。
常见的显色剂有DAB（二氨基联苯氧化物）和VIP（有机磷染料）等。
2.彩色染色可根据实验需求进行，可以使用核染料如伊红、快速伊红等对细胞核进行染色。
步骤八：石蜡去除和封片1.将切片浸入去石蜡溶液中，去除石蜡。
2.使用适当稀释的巴豆胶溶液将切片封闭，确保切片在显微镜下观察时保持湿润。
步骤九：显微镜观察1.将封片放置在显微镜载物台上，使用适当放大倍率的显微镜观察切片。
2.观察切片的染色情况、抗体标记的结果等，记录并进行分析。
这些是一般的免疫组化法实验操作步骤，根据具体实验需求和试剂要求，可能会有一些细微的差异和额外的步骤。
免疫组化基本步骤
免疫组化基本步骤免疫组化是一种研究细胞或组织中特定抗原表达的方法。
它是通过将已知抗原与未知组织或细胞的衍生物进行反应，然后通过可见光或荧光显微镜观察这些抗原的表达情况。
免疫组化的基本步骤如下：1.样本预处理：首先，需要对待检组织样本进行预处理。
这通常包括固定和包埋。
固定可以使用甲醛、乙醇等化学物质进行，目的是保持组织或细胞的形态结构和细胞膜完整性。
接下来，样本通常会被包埋在石蜡或冰冻剂中，以便进行切片。
2.切片制备：将处理后的样本切片。
通常可以使用切片机或超薄切片机将固定好的组织切成薄片，通常为4-10微米。
切片可以更好地展示组织结构和细胞的形态。
3.抗原恢复：根据需要，可能需要进行抗原恢复步骤。
抗原恢复是通过热或酶解的方法，来使抗原的免疫原性恢复。
这是因为在组织固定的过程中，抗原常常会被交联变性，丧失免疫反应性。
4.抗体染色：将待检样本与已知抗体进行反应。
已知抗体可以是单克隆或多克隆抗体。
这些抗体具有对特定抗原的亲和力。
反应通常在生物素-链霉亲和素体系或酶-抗酶（如辣根过氧化物酶）体系中进行。
通过这些反应，待检抗原会与抗体结合，形成抗原和抗体的复合物。
5.检测标记物：接下来，需要对已形成的抗原-抗体复合物进行检测。
这通常涉及到糖基化酶物质（如辣根过氧化物酶或碱性磷酸酶）或荧光标记抗体。
检测标记物的选择取决于研究者的需求以及所使用的设备和系统。
6.显色：根据使用的检测标记物不同，需要进行相应的显色步骤。
对于辣根过氧化物酶或碱性磷酸酶体系，可以使用底物通过化学反应产生颜色信号。
对于荧光标记抗体，可以通过激光或紫外线照射来使其发出荧光光。
7.显微观察：将显色后的样本放置在显微镜下进行观察。
根据待检抗原的位置和表达情况，可以通过显微镜来观察和分析组织或细胞中抗原的分布和表达水平。
免疫组化技术在医学研究和临床诊断中发挥着重要的作用。
它能够帮助研究人员了解组织或细胞中特定抗原的表达情况，从而深入了解疾病的发生机制，并且可以用于辅助诊断和病理分析。
免疫组化操作步骤自编
免疫组化操作步骤一免疫组化（LP法）操作步骤：1.切片常规脱蜡至水。
如需抗原修复，可在此步后进行2.缓冲液洗3min/2次。
3.为了降低内源性过氧化物酶造成的非特异性背景染色，将切片放在Hydrogen Peroxide Block 中孵育10-15 分钟。
4.缓冲液洗5min/2次。
5.滴加Ultra V Block ,在室温下孵育5分钟以封闭非特异性的背景染色。
（注：孵育不要超过10分钟，否则会导致特异性染色降低。
如果一抗的稀释液中含有5 一10%正常羊血活，这一步可以省略。
）6.缓冲液洗5min/2次。
7.滴加一抗工作液37 C孵育1 — 2小时。
（具体孵育时间和温度由试验者最终决定）8.缓冲液洗5min/2次。
9. 滴加Primary Antibody Enhancer（增强子），在室温下孵育20分钟。
10.缓冲液洗5min/2 次。
11.滴加HRP Polymer（酶标二抗），在室温下孵育30分钟。
（注：HRP Polymer对光敏感，应避免不必要的光暴露并储存在不透明的小瓶中。
）12.缓冲液洗5min/2 次。
13.向1ml DABPlus Substrate （或 AEC Plus Substrate）中滴加1-2 滴DAB Plus Chromogen （或AEC Plus Chromogen ）,混匀后滴加到切片上，孵育 3 — 15 分钟。
（具体时间由染色深浅决定。
）14.自来水充分冲洗，复染，脱水，透明，封片。
二.免疫组化（三步法）操作步骤：（1 ）、石蜡切片脱蜡至水。
（2 ）、3%H 2 O 2室温孵育5-10分钟，以消除内源性过氧化物酶的活性。
（3 ）、蒸僻水冲洗，PBS浸泡5分钟x2 （如需抗原修复，可在此步后进行）。
（4 ）、5-10%正常山羊血活（PBS稀释）封闭，室温孵育10分钟，倾去血活，勿洗。
滴加一抗工作液，37 C孵育1-2小时或4 C过夜。
（5 ）、PBS冲洗，5分钟x3次。
免疫组化实验步骤
免疫组化实验步骤1）编号NB（神经母细胞瘤）、T（实体瘤）。
2）烘片，60℃，30min。
3）标记染色蛋白，即标明目的蛋白4）脱蜡至水。
第一缸二甲苯代替物10min，第二缸二甲苯代替物20min，第一缸100％乙醇5min，第二缸100％乙醇5min，第三缸100％乙醇5min，90％乙醇5min，80％乙醇5min，75％乙醇5min，水洗5min x2。
5）3%H 2 O 2室温孵育10min（以消除内源性过氧化物酶的活性）（提前配制3%H 2 O 2，30% H 2 O 2稀释10倍），水洗5min x2。
6）抗原修复，将切片浸入0.01M柠檬酸缓冲液，微波中最大火力加热3min，暂停，再加热2min，冷却40min，PBS（使用PBS洗涤时，可加tween20浓度为0.05%）洗5min x2。
PBS洗涤时根据不同目的蛋白，可加tween20，可不加tween20，本实验中具体使用如下：7）0.05% TritonX-100室温孵育10 min，PBS洗5min x2。
8）将组织周围用棉签擦干，用免疫组化专用笔画圈圈住组织，防止后面反应液流出组织。
9）5%血清（PBS 稀释）封闭，室温摇床孵育30 min。
血清来源与二抗来源动物一致。
本实验中不同血清使用情况如下表：10）甩去封闭液体，滴加一抗（血清封闭液稀释）工作液，室温摇床5min，置于4℃冰箱过夜。
一抗稀释倍数，及4℃冰箱过夜次数如下表：11）PBS洗5min x3，滴加二抗（anti-mouse、anti-rabbit均用PBS稀释200倍），室温摇床1h。
PBS洗5min x3。
12）加strepavidin（PBS稀释500倍），室温摇床1h，PBS洗PBS洗5min x3。
13）DAB显色剂显色，10min，1mlA液（DABbuffer）+1滴B液（DAB）。
水洗3min x2。
14）苏木素复染10min，水洗10mi n x3。
免疫组化流程步骤
免疫组化流程---袁燕平以下步骤为本人免疫组化常用步骤，流程与常见流程无异，流程如下；1 脱蜡---脱蜡前首先烤片10分钟，二甲苯1，2，3，各10分钟。
二甲苯应该经常更换！2 水化---梯度酒精至水，100％5分钟，100％5分钟，95％3分钟,85％3分钟,75％3分钟，自来水流水冲3分钟。
注意冲水时水量不宜过大，细流即可！3 抗原修复---采取微波加热修复，修复液为柠檬酸盐溶液（最常用），具体方法为：先将修复液加热至沸腾，然后放入玻片，先使用中火8分钟，然后低火8分钟。
一般要求热修复时间达到15分钟才能达到比较好的抗原修复作用。
请注意：在抗原修复完成之后要求玻片上组织一直保持湿润，千万不能出现组织风干的情况。
部分抗原分子可无需进行抗原修复。
4 冷却---一般采取流水降温冷却法，即将容器置于自来水流水中缓慢降温，降温不宜过快，30分钟为好。
部分实验室采取自然冷却法。
5 灭内源性过氧化物酶---注意此时开始一直将玻片置于湿盒中保湿！滴加液体前先用免疫组化专用笔绕组织涂画一圈，甩干组织上的水分，用力不要过猛，然后滴加3％的过氧化氢-甲醇溶液（或者医用3％的过氧化氢），室温15min。
（因为免疫组化中使用的显色液的主要成分为过氧化氢，灭酶可以避免假阳性的出现）。
随后PBS洗3次3分钟。
6 封闭---甩干组织上的液体，滴加与二抗来源相同的非免疫血清（兔血清常用），室温封闭20分钟。
提前配制一抗，使用抗体稀释液（或PBS）按1:100-400（酌情）比例稀释一抗。
每块组织滴加10-30ul体积抗体即可，每次使用前必须新鲜配制，抗体稀释后尽快使用。
7 孵一抗---不需PBS洗，可甩干组织上的液体并滴加合适稀释度的一抗， 4度过夜孵育。
8 复温---将湿盒从冰箱拿出置于室温中15分钟。
PBS洗3次3分钟。
9孵二抗---甩干组织上的液体，滴加二抗，每张切片约滴加10ul即可，注意液体面积要大于组织面积，否则显色时出现边缘效应（假阳性），37度孵育30-60分钟。
免疫组化实验步骤
免疫组化实验步骤1.溶解和固定样本：首先，将需要检测的细胞或组织样本固定在载玻片上。
最常用的固定剂包括甲醛和乙醇，固定时间可根据样本类型和大小来决定。
2. 渗透化处理：固定后的样本往往会产生较大的凝胶，渗透化处理是为了增加抗体的进入和细胞膜蛋白的释放。
渗透化处理一般使用皂类化合物如Tween-20、Triton X-100或SDS。
3.阻断非特异性结合：为了减少非特异性结合，需要进行阻断。
使用一种含有蛋白质（如牛血清白蛋白、胶原蛋白等）的缓冲液，将玻片上的固定样本浸泡数十分钟至数小时。
4.抗原恢复：一些蛋白质长时间固定后可能会导致其变性或掩盖其一些结构域，这种情况下需要进行抗原恢复。
抗原恢复有两种常见方法，热水浴和酶消化。
前者将玻片放在含有缓冲剂的热水中，后者则经过酶消化处理，例如使用胰酶。
5.抗体孵育：将特异性一抗加入到含有抗体绑定缓冲液中，然后将其滴加到玻片上，孵育在温和的条件下一段时间（通常为1小时至过夜）。
抗体结合到样本中的特定抗原上。
6.洗涤：洗涤步骤是为了去除非特异性结合的一抗和其他蛋白质。
使用含有适当洗涤缓冲剂（如磷酸盐缓冲液或PBS）的盛满容器，将玻片在其中轻轻漂洗数次。
8.再次洗涤：同样地，使用含有适当洗涤缓冲液的容器，将玻片在其中轻轻漂洗数次，去除非特异性结合的二抗。
9.信号放大：添加一种可视化或发光的底物使得免疫反应可见。
通常使用的方法有酶标记二抗、荧光染料标记的二抗或放射性标记的二抗。
10.显微镜观察：在光学显微镜下观察和记录实验结果。
使用显微镜观察样本，根据信号强度和位置对阳性和阴性结果进行评估。
这些步骤是一般免疫组化实验的基本步骤，但每个实验都有特定的条件和需求，可能需要对步骤进行修改和优化。
免疫组化相关步骤
免疫组化相关步骤免疫组化是一种常用的组织学检测方法，通过使用特异性抗体标记目标蛋白的方法，来检测该蛋白在组织中的存在和分布情况。
以下是免疫组化的一般步骤：第一步：固定组织样本首先，将需要检测的组织样本进行固定处理，通常使用的固定剂是10%中性缓冲福尔马林（neutral buffered formalin，NBF）。
组织固定可以保持细胞和组织的形态结构，防止其在处理过程中的破坏。
第二步：脱水和石蜡浸渍固定后的组织样本需要经过脱水和石蜡浸渍处理，以便能够在切片时保持其形态。
首先使用不同浓度的乙醇进行脱水处理，然后将组织样本置于融化的石蜡中，使其充分浸渍。
脱水和石蜡浸渍的目的是将组织中的水分替换成石蜡，以便在切片时能够获得高质量的组织切片。
第三步：制备组织切片在将组织样本进行脱水和石蜡浸渍后，使用组织切片机将组织样本切成薄片。
通常使用的厚度为4-6微米的切片。
制备组织切片时需要注意保持切片的完整性和减少组织切片之间的花样。
第四步：脱蜡和再脱水经过组织切片制备后，需要进行脱蜡和再脱水处理，以便后续的免疫染色。
脱蜡处理通常使用木油（xylene）或等效溶剂来去除石蜡，并进行再脱水步骤以去除木油。
第五步：抗原修复抗原修复是免疫组化中非常重要的一步。
组织固定和石蜡包埋可以对目标蛋白的抗原性造成一定的损害，抗原修复通过将切片置于酶解剂（如胰蛋白酶）或缓冲盐溶液中加热，修复抗原，使其更易于抗体识别。
第六步：阻断非特异性结合第七步：抗体孵育在进行免疫染色之前，需要将特异性抗体添加到切片上，与目标蛋白结合。
免疫组化可以使用多种抗体，包括一抗（primary antibody）和二抗（secondary antibody）。
一抗是与目标蛋白直接结合的抗体，而二抗则与一抗结合，其本身标记有酶标记物，如辣根过氧化物酶，或荧光标记物。
第八步：信号可视化和显色完成抗体孵育后，需要使用适当的显色试剂将抗体信号可视化。
显色试剂可以是一些酶标颜色反应法，例如使用DAB（3,3'-联氨基苯并噻唑啉-4,5′-二羧酸）进行显色；或者是荧光探测试剂，通过激光共聚焦显微镜或荧光显微镜来观察。
免疫组化流程
免疫组化流程免疫组化（Immunohistochemistry, IHC）是一种通过检测组织中特定抗原蛋白的存在和定位的技术。
它在病理诊断、研究和药物开发中起着重要作用。
免疫组化流程主要包括标本处理、抗原修复、抗体染色和结果分析等步骤。
首先，标本处理是免疫组化流程中的第一步。
组织标本通常是从病理切片或细胞培养物中获取的。
标本需要经过固定、脱水、透明化等处理，以保持组织的形态结构和抗原的完整性。
固定可以使用福尔马林或其他化学试剂，脱水则是将组织中的水分逐渐置换为透明剂，如醇和二甲苯。
透明化后，标本被包埋在蜡块中，使其能够被切片。
接下来是抗原修复步骤。
在标本处理过程中，抗原可能会因为固定和包埋的影响而发生变性或者掩盖。
因此，需要通过加热或酶处理等方法来修复抗原。
常用的抗原修复方法包括热诱导抗原修复（heat-induced epitope retrieval, HIER）和酶诱导抗原修复（enzyme-induced epitope retrieval, EIER）。
这些方法可以使抗原重新暴露，提高抗体的结合效率。
随后是抗体染色步骤。
选择合适的一抗和二抗是关键。
一抗是指直接与目标抗原结合的抗体，而二抗则是与一抗结合的抗体。
在染色过程中，一抗首先与标本中的抗原结合，然后通过二抗与标记物（如酶、荧光物质）结合，形成可见的染色产物。
常用的标记物有辣根过氧化物酶（HRP）和碱性磷酸酶（AP）等。
染色后，标本需要经过反染、脱水、透明化等步骤，最终被封片封存。
最后是结果分析步骤。
通过显微镜观察染色后的标本，评估抗原的表达情况和定位。
根据染色的强度、范围和细胞定位等信息，对标本进行定性和定量分析。
结果分析还需要结合临床和病理信息，最终得出诊断或研究结论。
总的来说，免疫组化流程是一个复杂而精细的过程，需要严格控制各个步骤，确保结果的准确性和可靠性。
只有在规范的操作下，免疫组化技术才能发挥其在疾病诊断和研究中的重要作用。
免疫组化详细步骤
免疫组化步骤取组织、固定、制片(脱水、透明、浸蜡、包埋)、切片、烤片、抗原修复、滴加抗体一、取组织二、固定三、制片1、脱水透明的酒精梯度和时间70%酒精20min 80%酒精1h90％酒精1h 95％酒精Ⅰ2h95%酒精Ⅱ2h 无水乙醇Ⅰ15min无水乙醇Ⅱ15min 无水乙醇Ⅲ15min二甲苯酒精1:1 15min 二甲苯Ⅰ25min二甲苯Ⅱ25min 二甲苯Ⅲ15min2、浸蜡:石蜡融化后,在石蜡Ⅰ、Ⅱ、Ⅲ中各浸蜡1h3、包埋四、切片烤片用切片机切片，取完整组织切片放于37℃温水中展片，取完整组织于载玻片上，并放入到60℃的烤箱中烤6个小时五、脱蜡至水六、抗原修复配置柠檬酸抗原修复液于微波中煮沸,在高压锅内放入自来水煮沸(不盖锅盖)，将装有煮沸的抗原修复液的烧杯置于高压锅内，将水化后的玻片放入煮沸的抗原修复液中,盖上锅盖,待其压力达到最大时维持三分钟七、取出玻片，水浴逐渐降温直至完全冷却八、将玻片放置于塑料板上，滴加3％的过氧化氢室温孵育10min，以阻断内源性过氧化氢酶，10min过后PBS冲洗2次×3分钟九、除去PBS（甩干或者吸水纸吸干），每张切片滴加第一抗体（稀释相应倍数）,4℃过夜十、PBS冲洗3次×2分钟，除去PBS液，每张切片滴加聚合物增强剂，室温孵育10min十一、PBS冲洗2分钟×3次,除去PBS，每张切片滴加酶标抗兔聚合物,室温孵育10min十二、PBS冲洗2分钟×3次，除去PBS，每张切片滴加新配制的DAB(二氨基联苯胺），室温孵育2~10分钟,显微镜观察十三、苏木精复染:苏木精复染5min，水洗3min，0.1％HCl浸提两次，水洗3min，反蓝液数秒，水洗十四、脱水透明:70％酒精3min、80%酒精3min、90%酒精3min、无水乙醇3min、二甲苯Ⅰ3min、二甲苯Ⅱ3min十五、封片。
免疫组化实验步骤
免疫组化实验步骤1.血样制备：-采集血液样本，离心分离血浆或血清。
-用PBS洗涤血浆或血清，去除杂质。
2.组织固定：-采集待检组织样本，用缓冲福迪液进行固定。
常用的福迪液包括4%的甲醛和10%的中性缓冲福迪液。
-将组织固定在玻片上，通常通过石蜡包埋来保护组织样本。
3.切片：-使用旋转式或电动切片机将固定的组织切割成5-10μm厚的切片。
-将切片放置在带有去福迪剂密封的玻片上，然后进行脱脂和重水处理。
4.抗原恢复：-将切片浸泡在适当的抗原恢复缓冲液中，以恢复切片中的抗原结构。
-常用的抗原恢复方法包括热敏感抗原恢复、酶消化抗原恢复和酸碱抗原恢复等。
5.阻断非特异性结合位点：-使用适当浓度的蛋白抑制剂（如牛血清蛋白）在切片上进行阻断，防止非特异性结合。
-将切片在室温下孵育一段时间，以使蛋白抑制剂有效阻断非特异性结合。
6.抗体染色：-添加特定的初级抗体到切片上，与待检测的特定抗原结合。
-孵育切片，使初级抗体与抗原结合。
-将切片用PBS或缓冲盐水洗涤去除未结合的抗体。
7.信号放大：-添加合适的二级抗体到切片上，与初级抗体结合。
二级抗体可标记有荧光染料、酶或金粒等。
-孵育切片，使二级抗体与初级抗体结合。
-将切片用PBS或缓冲盐水洗涤去除未结合的二级抗体。
8.检测与成像：-根据二级抗体标记的方式，使用合适的检测方法进行信号放大。
-如果使用荧光标记的二级抗体，可以利用荧光显微镜观察和拍摄图像。
-如果使用酶标记的二级抗体，可以使用底物和显色试剂进行检测和成像。
9.结果分析：-观察并分析免疫组化染色结果，评估抗原的定位和表达情况。
-可以使用计算机图像分析系统进行定量分析和比较。
10.结论和报告：-根据实验结果，得出结论并撰写实验报告。
-将实验结果与已知文献资料进行对比和解释，讨论可能的研究价值和应用前景。
注意事项：-实验过程中需严格遵守无菌操作规范，以避免交叉污染和误差。
-选用合适的正对照和阴性对照，以确保实验结果的准确性和可靠性。
免疫组化实验步骤
免疫组化实验步骤
1 前期准备
免疫组化实验试验主要是利用细胞中含有特定标志物的抗体，来观察细胞中某些特定蛋白质的位置和分布情况，其前期准备工作有以下几点需要考虑：
1、要做免疫组化实验必须首先准备一些*抗体,即抗特定标志物的抗体；
2、准备标本培养环境，保证细胞存活活跃；
3、清点实验要用到的必要物质，检查是否所有实验材料都已准备就绪；
4、准备实验记录，如实验方案、实验步骤、实验结果等，以保证实验数据的准确性和可比性。
2 具体实验步骤
免疫组化实验是实验员非常关注的一个实验，下面罗列出其具体实验步骤：
1、将标本培养到细胞形成一定规模的培养皿；
2、冷冻切割：将细胞悬停的溶液，用-20度的硫酸乙酸或三氯甲烷冷冻，然后将其分割为明显的薄片；
3、将冷冻标本培养到特定的沉淀液中，然后以石蜡改变其物理性质，使蛋白质定置固定；
4、将固定的载体实验片上滴涂稀释的抗体，经一定的反应时间，使其与抗原结合；
5、以使抗体以及它所结合的标志物发挥发色效果，得以定位特定的蛋白质。
免疫组化实验往往被用来观察某个蛋白质在不同细胞水平和组织水平分布情况，从而形成具有一定科学依据性的认识，为临床医学研究和药物方案提供可靠的指导和依据。
免疫组化实验步骤及配方
免疫组化实验步骤及配方免疫组化实验是一种用于检测和定位特定蛋白质在细胞、组织或器官中表达的技术。
免疫组化实验包括一系列步骤，如抗原修复、非特异性结合抑制、免疫原和次级抗体处理、显色/荧光染色等。
下面将详细介绍免疫组化实验的步骤及配方。
1.抗原修复：抗原修复是为了恢复因组织固定而引起的抗原性损失。
一般使用高温或酶解方法进行抗原修复。
-高温方法：将组织切片置于高温缓冲液中加热，一般在95°C下加热15-20分钟。
-酶解方法：如胰酶消化、蛋白酶消化等。
例如，可以使用0.1%胰酶在37°C下进行酶解。
2.非特异性结合抑制：非特异性结合抑制是为了防止免疫试剂（如次级抗体）与非特异性蛋白结合，从而降低假阳性结果。
一般使用正常动物血清或胶体等进行非特异性结合抑制。
-正常动物血清：根据动物源种类（如小鼠、兔子等）选择相应的正常动物血清。
-胶体：如牛血清蛋白、牛血清白蛋白等。
可以在最终稀释液中加入1-2%的胶体。
3.免疫原处理：免疫原处理是为了增强目标抗原与抗体的结合效率，一般通过与次级抗体或酵素结合。
根据具体实验需求，可以选择荧光标记、酶标记或金标记等不同的方式进行免疫原处理。
-荧光标记：如荧光素等。
-酶标记：如辣根过氧化物酶（HRP）、碱性磷酸酶（AP）等。
-金标记：如胶体金、纳米金等。
4.次级抗体处理：次级抗体处理是为了增强免疫原与目标抗原之间的结合效应。
一般使用来自其他物种的抗体作为次级抗体。
根据不同实验需求，可以选择与荧光标记、酶标记或金标记结合的次级抗体。
-荧光标记：如青蒿素标记的抗兔荧光标记抗体等。
-酶标记：如HRP标记抗体、AP标记抗体等。
-金标记：如碳标记抗体、金标记抗体等。
5.显色/荧光染色：显色/荧光染色是为了可视化目标抗原的分布和定位。
根据不同的免疫标记试剂，可以选择适当的染色方法。
-显色：如DAB（3,3'-二氨基联苯）染色。
-荧光染色：根据使用的荧光标记试剂选择相应的染色方法，如DAPI 染色、FITC染色等。
免疫组化操作步骤
免疫组化操作步骤免疫组化（Immunohistochemistry，IHC）是一种广泛应用于病理学和生物医学研究中，用于检测和定量分析组织或细胞中特定抗原的方法。
它通过将标记有特定抗体的染色剂与细胞或组织中的相应抗原结合，从而实现对抗原的定位和可视化。
以下是免疫组化操作的详细步骤：准备组织样本：1.选择需要研究的组织样本，可以是固定的组织块、冰冻切片或细胞涂片。
2.如果是固定的组织块，使用福尔马林等适当的固定剂进行固定，并进行脱水和包埋。
3.如果是冰冻切片，将组织冷冻在液氮中，使用微型切片机切割薄片。
4.如果是细胞涂片，将细胞均匀涂布在载玻片上。
脱脂和再脱水：1. 对于固定的组织块和细胞涂片，使用低渗透性石蜡溶液（如xylene）进行脱脂，一般需要多次处理。
2.使用梯度酒精浓度（例如100%，90%，80%和70%）进行再脱水处理，每个浓度的浸泡时间一般为5-10分钟。
抗原修复：1.固定的组织块可使用热诱导抗原修复（如加热高压反应釜中）或酶诱导抗原修复（如2%的蛋白酶）进行抗原修复。
2.冰冻切片和细胞涂片不需要抗原修复。
阻断非特异性结合位点：1.使用一种非特异性抗体，如牛血清蛋白、小鼠和兔血清、杂交小鼠兔血清混合物等，进行阻断非特异性结合位点，减少假阳性反应。
一抗和二抗处理：1.加入特异性一抗，该抗体将结合目标抗原。
一抗的浓度根据实验要求和文献建议进行选择。
2.在室温下，对样本进行适当时间的孵育，以便一抗与抗原结合。
4.加入标记有荧光素或酶素的二抗，如荧光素-同种同型抗体或酶标记的抗小鼠或抗兔免疫球蛋白。
5.孵育样本适当时间，以便二抗与一抗结合。
洗涤：1.使用缓冲液对样本进行洗涤，以去除未结合的抗体和其他非特异性的结合物。
2.洗涤的时间和次数根据实验要求和抗体的特性进行调整。
可视化和显色：1.对于荧光标记的二抗，使用荧光显微镜观察并拍摄图像。
2.对于酶标记的二抗，使用适当的显色物质，如DAB（3,3'-二氨基苯啶）或VIP（维泊酶）等，进行显色反应。
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免疫组化实验步骤细胞和组织的固定（一）固定为了更好的保持细胞和组织原有的形态结构，防止组织自溶，有必要对细胞和组织进行固定。
固定的作用不仅是使细胞内蛋白质凝固，终止或抑制外源性和内源性酶活性，更重要的是最大限度的保存细胞和组织的抗原性，使水溶性抗原转变为非水溶性抗原，防止抗原弥散。
不同抗原，其稳定性也不相同，因而对固定剂的耐受性差异较大（二）固定剂用于免疫组织化学的固定剂种类较多，性能各异，在固定半稳定性抗原时，尤其重视固定剂的选择，介绍如下。
1．醛类固定剂双功能交联剂，其作用是使组织之间相互交联，保存抗原于原位，其特点是对组织穿透性强，收缩性小。
有人认为它对IgM、IgA、J链、K 链和λ链的标记效果良好，背景清晰，是常用的固定剂。
1）4%多聚甲醛为我们常用固定剂2）Bouin’s液该固定液为组织学、病理学常用固定剂之一，对组织穿透力较强而收缩性较小，比单独醛类固定更适合免疫组化染色。
Kayhko认为用于标记B细胞的J链较好，但Bullock则认为它可导致Igg γ重链变性，故必需加大第一抗体的浓度。
2．丙酮及醇类固定剂系最初免疫细胞化学染色的固定剂，其作用是沉淀蛋白质和糖，对组织穿透性很强，保存抗原的免疫活性较好。
但醇类对低分子蛋白质、多肽及胞浆内蛋白质保存效果较差，解决的办法是和其它试剂混合使用，如加冰醋酸、乙醚、氯仿、甲醛等。
丙酮的组织穿透性和脱水性更强，常用于冰冻切片及细胞涂片的后固定，保存抗原性较好，平时4。
C低温保存备用，临用时，只需将涂片或冰冻切片插入冷丙酮内5-10min，取出后自然干燥，贮存于低温冰箱备用。
以上介绍了免疫组织化学中常用的固定液，用于免疫组化的固定剂种类很多，不同的抗原和标本需经过反复试验，选用最佳固定液，迄今尚无一种标准固定液可以用于各种不同的抗原固定。
而且同一固定液固定的组织，免疫组化染色标记结果可截然不同。
选择最佳固定液标准是：①最好地保持细胞和组织的形态结构。
②最大限度地保存抗原的免疫活性。
一些含重金属的固定液在免疫组化技术中是禁用的。
实际经验告诉我们，中性缓冲福尔马林（或多聚甲醛）是适应性较广泛的固定液，但固定时间不宜过长。
必要时，可作多种固定液对比，从而选出理想的标准固定液。
固定组织时应注意：①应力求保持组织新鲜，勿使其干燥，尽快固定处理。
②组织块不易过大过厚，必须小于2cm×1.5cm×0.3cm，尤其是组织块厚度必须控制在0.3cm以内。
③固定液必须有足够的量，在体积上一般大于组织20倍以上，否则组织中心固定不良影响效果。
④组织固定后应充分水洗，去除固定液造成的人为假象。
石蜡组织标本处理过程1．取材：将动物（如大小鼠）断颈处死后迅速取出所要组织，然后裁成大小为(1cm×1cm×0.5cm)剔除组织上的脂肪和钙化，将组织放入PBS缓冲液中洗涤（直至组织上无血渍为止）2．固定：将组织置于4%多聚甲醛固定液中4℃固定，固定时间和组织厚度成正比（每1mm一小时）3．脱水：固定后的组织经PBS缓冲液洗涤后（浸泡30分钟×3次）放入乙醇中4度剃度脱水1) 70%乙醇4℃3～4h2) 80%乙醇4℃3～4h3) 90%乙醇4℃2～3h4) 95%乙醇Ⅰ4℃2～3h5) 95%乙醇Ⅱ4℃1～2h6) 100%乙醇Ⅰ4℃1.5h7) 100%乙醇Ⅱ4℃1.5h8) 二甲苯Ⅰ4℃0.5～1h9) 二甲苯Ⅱ4℃0.5１～1h10) 石蜡Ⅰ60℃1h11) 石蜡Ⅱ60℃2h以上全过程为18-24h，也可在室温内使用自动脱水机代替。
如组织块小，直径小于0.5cm，可用快速石蜡包埋切片，全过程只需4h左右。
有些组织在切片时易碎（如肝脏），在脱水时可适当缩短脱水时间4浸蜡：将组织浸入液态石蜡中（2小时×2次）严格控制浸蜡温度（60—65℃为宜），防止温度过高导致组织蛋白丢失。
5模具包埋：待蜡完全凝固后4℃保存6切片：要求刀片锋利，切片时尽量避免刀痕与皱折，切片投入50℃左右水浴中，若展片困难时可适度加入几滴乙醇，待完全展开后将其黏附在玻片中央。
7烤片：60℃烤片30分钟，或37℃恒温箱过夜..烤完后切片标本可长期保存免疫组化的试剂准备最重要的是选择好一抗、二抗或者还有三抗，注意抗体的特异性、效价和交叉反应。
其他常用试剂有：1、0.01M(pH7.4)的磷酸盐缓冲生理盐水（PBS），稀释抗体和洗片子用；2、清洁液、纯水，洗玻片用3、多聚赖氨酸处理载玻片，防止脱片4、固定液：4%多聚甲醛或冷丙酮等；5、15%~30%蔗糖，组织脱水用；6、梯度酒精脱水、二甲苯透明、石蜡包埋，或者OCT包埋做冰冻切片；7、抗原修复液：枸橼酸缓冲液（pH6.0）；或PBS8、活化剂：EDTA或者Triton X-100；9、1%~10%牛血清清蛋白（BSA）封闭液；10、H2O2，灭活内源性过氧化物酶；11、显色液：根据你做的酶来选择，如果是HRP就用DAB，如果是AKP，就用NBT/BCIP，免疫荧光则不需要；12、封片剂。
免疫组化实验步骤工作原理：SABC是专为免疫组化和其他免疫检测而设计的，用以显示组织和细胞中抗原分布。
链霉亲和素是一种从链霉菌中提取的蛋白质，分子量47000。
同亲和素一样，对生物素分子有极高的亲和力，是一般抗原抗体亲和力的一百万倍。
亲和素是一个碱性蛋白质（IP=10），经改造后可以转变成中性蛋白质。
链霉亲和素等电点接近中性，IP=6.0~6.5，对组织和细胞的非特异吸附很低，基于链霉亲和素的免疫组化方法背景很低。
SABC即StreptAvidin—BiotinComplex,。
根据研究，SABC大约可形成一百个左右的过氧化物酶和五十个左右的链霉亲和素所构成的复合物。
大量的酶将保证SABC具有很高的敏感性。
SABC兼具高敏感性，低背景和操作简便的优点。
所需试剂：推荐您使用本公司免疫组化试剂盒：1. 5%BSA封闭液：12ml。
用于组织切片的封闭。
2. 二抗：12ml。
亲和纯化抗体，标记长臂生物素。
山羊抗小鼠IgG(或IgM)或兔IgG。
3. SABC：12ml。
链酶亲和素—生物素—过氧化物酶复合物。
您还需要的试剂：1．粘片剂APES或POLY-L-LYSINE（博士德公司有售）。
2．0.02 M PBS（pH7.2-7.6）配法：1000ml蒸馏水中加氯化钠8.5g,Na2HPO4 2.8g,NaH2PO40.4g。
如果用的是含水磷酸盐，应加上分子式中水的含量。
3．0.01M枸橼酸盐缓冲液：1000ml蒸馏水中加枸橼酸三钠（C6H5Na3O7?2H2O）3g, 枸橼酸(C6H8O7?H2O ) 0.4g。
4．DAB显色试剂盒（博士德公司有售）。
免疫组化染色程序的选择：用户需根据抗原/抗体的特点确定程序，多数情况下要先比较各程序染色结果。
A程序：石蜡切片热修复抗原程序。
适于核抗原，易被固定破坏的抗原。
B程序：石蜡切片酶消化程序。
适于被固定遮避的抗原。
C程序：石蜡切片酶不消化/修复程序。
适于稳定的抗原。
D程序：细胞涂片，冰冻切片染色程序。
A.石蜡切片微波修复抗原染色程序:1. 载玻片防脱片剂处理:可选择APES或Poly-Lysine。
捞片后置烤箱58-60℃30-60分以使切片紧密粘附。
2. 切片常规脱蜡至水。
3. 30%H2O2 1份+蒸馏水10份混合,室温5-10分钟以灭活内源性酶。
蒸馏水洗3次。
4．热修复抗原:将切片浸入0.01M 枸橼酸盐缓冲液（PH6.0）,电炉或微波炉加热至沸腾后断电，间隔5-10分钟后，反复1-2次。
冷却后PBS（pH7.2-7.6）洗涤1-2次。
5．滴加5%BSA封闭液,室温20分钟。
甩去多余液体, 不洗。
6．滴加适当稀释的一抗（小鼠或兔IgG），37 ℃1小时左右或20℃时2小时左右。
也可4℃过夜。
PBS（pH7.2-7.6）洗2分钟×3次。
（一抗的稀释度、孵育时间和温度与染色强度、背景有直接关系。
一般来说，阳性染色强度不够时，可提高一抗浓度和延长孵育时间；背景过高时，可降低一抗浓度和缩短孵育时间。
）7．滴加生物素化山羊抗小鼠IgG(或兔、人IgG),20-37℃20分钟。
PBS（pH7.2-7.6）洗2分钟×3次。
8．滴加试剂SABC,20-37℃20分钟。
PBS（pH7.2-7.6）洗5分钟×4次。
9．DAB显色:使用DAB显色试剂盒(AR1022)。
取1ml蒸馏水,加试剂盒中A,B,C 试剂各1滴,混匀后加至切片。
室温显色, 镜下控制反应时间，一般在5-30分钟之间。
也可自配显色剂显色。
蒸馏水洗涤。
10．苏木素轻度复染。
脱水,透明,封片。
显微镜观察。
B. 石蜡切片酶消化程序:以下面的步骤代替A程序中的第4步:滴加复合消化液(博士德有售)5-10分钟。
蒸馏水洗3次。
也可以使用0.1%的胰蛋白酶作消化液。
C. 石蜡切片酶不消化/修复程序:对于不需要微波修复或消化的抗原,省略A程序中的第4步即可。
D.血涂片，细胞和冰冻切片染色程序1.载玻片经防脱片剂处理（Poly-L-Lysine）。
2.抗凝血经分层离心后涂片；培养细胞也可涂片或贴片生长；冰冻切片室温风扇吹干。
3.固定方案首选4%多聚甲醛或10%福尔马林固定30分钟；对不能耐受甲醛固定的抗原，纯丙酮室温固定30分钟。
蒸馏水洗。
（干燥后可冰冻保存）4. 30%H2O2 1份+纯甲醇50份混合,室温浸泡30分钟，以灭活内源性过氧化物酶。
蒸馏水洗3次。
其余步骤和石蜡切片5-10步相同。
注意事项：如果染色背景过高，在SABC反应之后，DAB显色之前,用加有0.01—0.02%TWEEN20的PBS（pH7.2-7.6）洗涤切片4次，单纯PBS洗2次，然后DAB 显色。