烟草组织培养实验方案
烟草植物组织培养
烟草植物组织培养实验实验目的一学习和掌握植物组织培养技术，理解植物细胞的全能性。
实验原理二年代初期发展起来的一项生物技术。
由于其拥有占地世纪30植物组织培养是从20少、繁殖系数大等特点，现以在全世界的园林植物尤其是花卉的种苗繁育上得到广泛应用。
本文着重介绍组织培养技术的理论原理、操作过程、生产技术以及经济核算等方面的内容，使大家对组织培养在园林植物尤其是花卉的种苗繁育的应用有所了解，为以后的实际操作提供依据。
在植物组织培养中，主要目标是诱导愈伤组织形成和形态发生，使一个离体的细胞、一块组织或一个器官的细胞，通过脱分化形成愈伤组织，并由愈伤组织再分化形成植物体。
从一块外植体形成典型的愈伤组织，大致要经历三个时期：起动期、分裂期和形成期。
①起动期是指细胞准备进行分裂的时期。
用于接种的外植体的细胞，通常都是成熟细胞，处在静止状态。
起动期是通过一些刺激因素（如机械损伤、改变光照强度、增加氧等）和激素的诱导作用，使外植体细胞的合成代谢活动加强，迅速进行蛋白质和核酸的合成。
机械损伤能诱导植物体细胞开始分裂，如伤口上会出现愈伤组织。
在植物组织培养中沿用了愈伤组织这一名词，但是植物组织培养中诱导外植体细胞分裂形成的愈伤组织，大都不是损伤的结果。
外源的生长素类物质对诱导细胞开始分裂效果很好，因此生长素类物、萘乙4-D4-二氯苯氧乙酸2，，质在植物组织培养中得到广泛应用，常用的有生长素（2）细胞分裂素IBA、吲哚丙酸IPA和吲哚丁酸NAA酸、萘乙酰胺NAD和吲哚乙酸IAA））等。
分裂期是，KT-30CPPU糠氨基嘌呤（KT）氯吡苯脲（6-（苄氨基嘌呤6-BA、6-指外植体细胞经过诱导以后脱分化，不断分裂、增生子细胞的过程。
处于分裂期的愈伤组织的特点是：细胞分裂快，结构疏松，颜色浅而透明。
外植体的脱分化因植物种类、器官来源及其生理状况的不同而有很大差别。
例如，烟草、胡萝卜等植物的脱分化比较容易，禾本科植物的脱分化比较难；花的脱分化比较容易，茎、叶的脱分化比较难；幼嫩组织的脱分化比较容易，成熟的老组织脱分化比较难。
烟草组织培养
题目 ： 烟草组织培养
组员 ：刘耀敏（组长）黄净 任艳芳 钟小程 刘瑞莲 黄勺舒 周燕梅
• 研究目的：近年来随着先进的烟草工 厂化育苗的推广，传统的育种方法难 以克服自然退化的问题，而通过组织 培养可以克服这样一个问题。故烟草 组培在市场上将占有很大的优势。所 以我们组想对烟草进行组织培养研究， 这大部分也是我们个人的兴趣。 • 参考文献：烟草快速繁殖及培养的研 究（云南农业大学学报，第十三卷， 第四期）
研究内容：用试管快繁技术繁殖, 可节约繁 殖材料，只取原材料上的一小块组织或 器官就能在短期内生产出大量市场所需 的优质苗木, 每年可以繁殖出几万甚至数 百万的小植株，既不损伤原材料又可获 得较高的经济效益。 采用茎尖培养的方法或结合热处理除去绝 大数植物的病毒、真菌和细菌，使植株 生长势强、色泽鲜艳、抗逆能力提高
• 试管繁殖是一种微型的无性繁殖,它取材于 同一个体的体细胞而不是性细胞,因此其后 代遗传性非常一致,能保持原有品种的优良 性状。对保质、保纯有着特殊作用。可获 得大量的统一规格、高质量的苗木。
• 研究意义：1、繁殖速度快、繁殖 系数大; 2、繁殖方式多;有短枝扦 插、芽增殖、原球茎、器官分化和 胚状体发生 3、繁殖后代整齐一致, 能保持原有品种的优良性状 4、可 获得无毒苗 5、可进行周年工厂化、培养基的制备 在建立一个新的实验体系时，为了能研制出一种 适合的培养基，最好先由一种已被广泛彩的基本 培养基开始，烟草的培养采用的是MS基本培养 基。在实际培养过程中，分为三种培养基进行使 用： 1 1、诱导愈伤组织的培养基：MS+6MS+6BA2+NAA0.5 2、诱导芽的培养基：MS+6-BA2+NAA0.1 3、诱导根的培养基：MS+6-BA2+IBA0.5 各种培养基所用琼脂为9g/L，蔗糖均为30g/L， PH为5.5-6.0
烟草的组织培养技术
烟草的组织培养技术一、目的与要求1.验证“植物细胞全能性”理论。
2.学习用生长调节剂对植物器官发生的诱导方法。
二、实验原理植物组织培养是指在无菌条件下，分离、并在培养基中培养离体植物组织（器官或细胞）的技术。
植物组织培养的理论依据是植物细胞的全能性，即植物体的每个活细胞都有相同的遗传组成，在适当条件下具有繁殖出完整植株的能力。
植物组织当中原本已经分化的细胞，组织、器官一旦脱离原有的机体环境，成为离体状态，在适宜的营养和外界条件下，就会表现出细胞的全能性，从已经分化的细胞通过脱分化，成为重新具有分裂能力的胚性细胞，并能再分化重新生长发育成完整的植株。
愈伤组织：是指一个离体的细胞、一块组织或一个器官的细胞，通过脱分化不断分裂、增生子细胞，这些细胞分裂快，结构疏松，颜色浅而透明，逐渐形成了无序结构的细胞团。
脱分化：已经分化的细胞，发生生理、生化的改变，退回到胚性细胞的过程。
再分化：经过脱分化的细胞或组织再次获得分化成不同功能的细胞、组织、器官或完整植物体。
三、材料和用具1.材料：无菌烟草叶盘（已经诱导成芽），拟南芥。
2.用具：超净工作台、高压灭菌锅、培养箱、电子天平、移液器、手术解剖刀、大、小镊子、30ml烧杯、500ml烧杯、药勺、玻璃棒、培养瓶、平皿、试纸（PH5.4-7），报纸等。
3.试剂：MS培养基、0.5mol/LNaOH、1mol/L HCl。
四、操作步骤（一）诱导培养基配制（见表1）1.加MS储液（储液配置见附表）大量元素和微量元素的母液都是高浓度的，为防止混合后发生沉淀，建议加完大量元素后先加水（约总体积3/4），再加各微量元素和有机成分。
铁盐也是微量元素，因为易发生沉淀，所以与其它微量元素分开配。
储液中的铁盐存于棕色瓶中。
配好的储液应当4℃保存。
表1是4瓶培养基（1组）的配置方案。
表1 诱导培养基配制表成分实际称取量蒸馏水120 mlMS母液15 mL蔗糖 4.5 g用蒸馏水粗略定容至100mlpH值 5.8琼脂 1.2 g2.加蔗糖（3%）（m/v）。
烟草植物组织培养
烟草植物组织培养实验一实验目的学习和掌握植物组织培养技术。
深刻理解植物细胞的全能性。
二实验原理植物组织培养是从20世纪30年代初期发展起来的一项生物技术。
由于其拥有占地少、繁殖系数大等特点，现以在全世界的园林植物尤其是花卉的种苗繁育上得到广泛应用。
本文着重介绍组织培养技术的理论原理、操作过程、生产技术以及经济核算等方面的内容，使大家对组织培养在园林植物尤其是花卉的种苗繁育的应用有所了解，为以后的实际操作提供依据。
在植物组织培养中，主要目标是诱导愈伤组织形成和形态发生，使一个离体的细胞、一块组织或一个器官的细胞，通过脱分化形成愈伤组织，并由愈伤组织再分化形成植物体。
从一块外植体形成典型的愈伤组织，大致要经历三个时期：起动期、分裂期和形成期。
①起动期是指细胞准备进行分裂的时期。
用于接种的外植体的细胞，通常都是成熟细胞，处在静止状态。
起动期是通过一些刺激因素（如机械损伤、改变光照强度、增加氧等）和激素的诱导作用，使外植体细胞的合成代谢活动加强，迅速进行蛋白质和核酸的合成。
机械损伤能诱导植物体细胞开始分裂，如伤口上会出现愈伤组织。
在植物组织培养中沿用了愈伤组织这一名词，但是植物组织培养中诱导外植体细胞分裂形成的愈伤组织，大都不是损伤的结果。
外源的生长素类物质对诱导细胞开始分裂效果很好，因此生长素类物质在植物组织培养中得到广泛应用，常用的有生长素（2，4-二氯苯氧乙酸2，4-D、萘乙酸NAA、萘乙酰胺NAD和吲哚乙酸IAA、吲哚丙酸IPA和吲哚丁酸IBA）细胞分裂素（6-苄氨基嘌呤6-BA、6-糠氨基嘌呤（KT）氯吡苯脲（KT-30，CPPU））等。
分裂期是指外植体细胞经过诱导以后脱分化，不断分裂、增生子细胞的过程。
处于分裂期的愈伤组织的特点是：细胞分裂快，结构疏松，颜色浅而透明。
外植体的脱分化因植物种类、器官来源及其生理状况的不同而有很大差别。
例如，烟草、胡萝卜等植物的脱分化比较容易，禾本科植物的脱分化比较难；花的脱分化比较容易，茎、叶的脱分化比较难；幼嫩组织的脱分化比较容易，成熟的老组织脱分化比较难。
普生实验报告烟草幼苗培养
普生实验报告
实验名称烟草幼苗的组织培养
实验目的：
1.掌握植物组织培养中无菌操作技术。
2.学习用生长调节剂对植物器官发生的诱导方法。
记录一：周次：14
6-BA:NAA=1:5 2-4D
6-BA:NAA=5:1 对照组
记录二：周次：15
6-BA:NAA=1:5 2-4D
6-BA:NAA=5:1 对照组
记录三：周次：16
6-BA:NAA=1:5 2-4D
6-BA:NAA=5:1 对照组
作用：6-BA ：促进芽的形成,诱导愈伤组织发生。
NAA ：促进细胞分裂与扩大，诱导形成不定根。
差异：培养基中生长素、细胞分裂素浓度不同，可以诱导烟草幼片生根或生芽。
细胞的全能性：植物组织当中原本已经分化的细胞，一旦脱离原有的机体环境，成为离体状态，在适宜的营养和外界条件下，就会表现出全能性，从已经分化的细胞发生脱分化，成为重新具有分裂能力的细胞，并能重新生长发育成完整的植株。
烟草幼苗的组织培养
烟草幼苗的组织培养
一、目的与要求
掌握植物组织培养中无菌操作技术 学习用生长调节剂对植物器官发生的诱导方法
二、 实验原理
植物组织培养 在无菌条件下，将植物体的一部分细胞、组织、器 官切割下来，接种到营养介质上，使其增殖成一群细胞、组织、器官， 甚至完整植物体的实验技术。
植物细胞全能性 植物体的每个活细胞都有相同的遗传组成，在适
当条件下具有繁殖出完整植株的能力。 脱分化 已经分化的细胞，发生生理、生化的改变，退回到胚性 细胞的过程。 再分化 经过退分化的细胞或组织再次获得分化成不同功能的细 胞、组织、器官或完整植物体。 改变生长素NAA和细胞分裂素6-BA浓度比例，可以决定烟草幼苗从 叶片直接分化生成根或芽。 2，4-D能够诱导生成愈伤组织。
1% 1% 1% 3%
3个实验组 5.8 0.8%
Step1: 配大瓶培养基(无激素)
500 ml
Step 2: 分瓶,加激素, 调PH=5.8
125ml
ctrl
NAA:6-BA=1:5
NAA:6-BA=5:1 2,4-D
Step 3:分装,加琼脂
30ml
四、操作步骤
1.灭菌：
(1)器具灭菌： 剪、镊、培养皿，诱导培养基， 120℃，高压灭菌15-20min；
五、无菌操作注意事项
1.
2.
无菌操作时不要讲话，以免污染；
用酒精对双手消毒时，务必待酒精彻底挥发后再靠近酒 精灯火焰，以免火焰伤手。
烟草实验实训目的和要求
烟草实验实训目的和要求
烟草是遗传转化的模式植物，已经建立了一套完善的转化再生体系。
本实验以烟草为实验材料，使同学们了解根癌农杆菌介导法的基本原理和一般步骤，掌握遗传转化的基本操作技术。
烟草叶片，LBA4404质粒载体，摇床，培养皿（带滤纸），移液枪，镊子，手术刀，无菌水。
根癌农杆菌介导转化的方法已经比较成熟，易于在植物细胞和组织培养实验室进行。
具体操作程序如下：
（1）根癌农杆菌质粒的保存：构建好的根癌农杆菌质粒接种在YEP固体培养基上，YEP固体培养基的成分为每100mL含NaCl 0.5g，酵母1 g，水解酪蛋白1g，琼脂1.5g，pH值7.0，在冰箱中冷藏，一个月换一次培养基，保证菌种正常生长。
（2）配制YEP液体培养基：成分同上，只是不添加琼脂，分装于试管中，每试管加入5mL左右的液体培养基，包好后高压灭菌，放置于冰箱中待用。
（3）摇菌：用灭菌后的牙签或者火柴棍等挑出一些菌液，一起放入上述YEP液体培养基中，然后置于振荡器上摇菌16—17h（180r ／min），直至溶液变浑浊，即有大量菌丝长出。
（4）用消毒后的0.5mm打孔器从叶片上切出叶盘，然后将叶盘投入农杆菌悬液中培养5min。
（5）用滤纸吸干多余的菌液，叶片放在MS+6—BA 1.0 mg/L 十IAA 0.1 mg/L培养基上共培养2d，随后转至附加卡那霉素
100mg/L，羧苄青霉素500 mg/L的培养基上筛选培养，（25±1）℃，16h光周期。
（6）2周后分化出卡那霉素抗性芽（应为绿色），从基部将芽切下，转至含100mg/L卡那霉素和500 mg/L羧苄青霉素的MS+0.1 mg/LIAA上生根培养，生根后的植株移入温室内栽培。
烟草叶片组织培养及植株再生
1、选取的叶片应尽可能健康， 无病虫害。
2、消毒过程中要避免过度浸泡， 以免对叶片造成损伤。
3、培养基的成分和浓度是诱导愈伤组织的关键因素，需要根据实验目的进 行调整。
4、培养过程中的温度和光照也是影响愈伤组织生长的重要环境因素，需要 保持恒定。
步骤2：红花烟草叶片愈伤组织诱导后的处理措施以及后续的筛选和优化 在红花烟草叶片愈伤组织诱导成功后，需要进行以下处理措施：
谢谢观看
通过对红花烟草叶片愈伤组织的诱导与植株再生研究，可以为提高烟草的产 量和品质以及植物生物技术的进一步发展提供有力的支持。
步骤1：红花烟草叶片愈伤组织 诱导的基本步骤和注意事项
红花烟草叶片愈伤组织的诱导主要分为以下几个步骤：
1、选取健康的红花烟草叶片， 将其用自来水冲洗干净。
2、将洗净的叶片置于消毒液中浸泡一定时间，以杀死叶片表面的微生物。 常用的消毒液有70%酒精和0.1%升汞等。
烟草叶片组织培养及植株再生
01 一、引言
目录Leabharlann 02二、烟草叶片组织培 养
03 三、烟草植株再生
04 四、分析比较叶片组 织培养和植株再生
05 五、总结
06 参考内容
一、引言
随着生物技术的迅速发展，植物组织培养技术已成为一种重要的研究手段， 广泛应用于农业、林业、医药等领域。在烟草行业，叶片组织培养和植株再生技 术的运用对于提高烟草产量、品质以及抗病抗逆性等方面具有重要意义。本次演 示将详细介绍烟草叶片组织培养和植株再生的基本原理、方法及应用，并对其优 缺点进行分析和比较。
（1）方法：烟草叶片组织培养的主要流程包括选取叶片、消毒、接种、培 养、增殖和移栽等步骤。
（2）设备：实验室进行烟草叶片组织培养需要的基本设备包括超净工作台、 酒精灯、解剖刀、镊子、培养皿、三角瓶、摇床等。
烟草幼苗的组织培养实验报告
烟草幼苗的组织培养实验报告一，实验名称：烟草幼苗的组织培养二，实验原理：植物组织培养是指在无菌条件下，分离并在培养基中培养立体植物组织（器官和细胞）的技术。
植物组织培养的理论基础是植物细胞具有全能型。
植物组织当中原本已经分化的细胞，在脱离原有机体环境成为离体状态，在适宜的营养和外界条件下，就会表现出全能性，从已经分化的细胞发生脱分化，成为重新具有分裂能力的细胞（本实验中用到的是愈伤组织，是由植物的一个离体的细胞，一块组织或一个器官的细胞脱分化形成的），并重新生长发育成完整的植株。
生长素，细胞分裂素浓度之间的平衡可以决定烟草组织幼苗的叶片或茎髓将产生根，茎或仅仅是愈伤组织。
三，实验材料和用具：1、材料：烟草幼茎2、用具：超净工作台、高压灭菌锅、培养箱、电子天平、移液器、手术器械、20ml量筒、PH试纸、烧杯、玻璃棒、三角烧瓶、封口膜、高压橡皮筋。
3、试剂：MS培养基、NAA、6-BA四，实验步骤：1、培养基的配置成分实际称取量大量元素（10×）40 ml蒸馏水300 ml微量元素（100×） 4 ml有机成分（100×） 4 ml铁盐（100×） 4 ml蔗糖12 g定容至400 ml激素（1 mg/ml）每130 ml MS加：生根6-BA=13 μl NAA=65 μl生芽6-BA=65 μl NAA=13 μl对照组（不加激素）pH值 5.8分瓶30 ml/瓶琼脂0.24 g2、培养基、剪子、镊子、枪头需在高压灭菌锅120摄氏度灭菌20分钟。
3、接种前打开无菌间和超净台紫外灯照射30分钟4、肥皂洗手和手腕，关闭无菌间棚顶紫外灯，打开超净台风机，并关掉超净工作台上的紫外灯。
再用百分之七十的酒精喷手。
5、点燃酒精灯6、将橡皮筋解开（不掀开封口膜），放到无菌风道侧面。
将镊子见到放到酒精灯外焰灼烧，冷却后剪取外肢体。
迅速用另一手持三角瓶，去下封口膜，瓶口略倾斜，在酒精灯外焰上灼烧数秒。
烟草的组织培养技术研究
烟草的组织培养技术研究一、概述烟草作为重要的经济作物，在全球范围内广泛种植。
随着生物技术的不断发展，组织培养技术在烟草育种、种质资源保存和生物反应器等领域的应用日益广泛。
烟草组织培养技术是指通过无菌操作，将烟草的离体组织或细胞，在人工控制的环境条件下进行培养，使其再生成为完整植株的技术。
该技术具有繁殖速度快、遗传稳定性好、不受季节限制等优点，对于提高烟草的产量和品质具有重要意义。
烟草组织培养技术的研究始于上世纪中叶，随着培养条件的优化和技术的不断创新，现已发展成为一项成熟且高效的生物技术手段。
烟草组织培养技术的研究重点主要集中在培养基的优化、外源基因的导入与表达、以及培养过程中的生理生化变化等方面。
通过深入研究这些关键技术，有望为烟草产业的可持续发展提供新的技术支撑和动力。
烟草组织培养技术也面临着一些挑战和问题，如培养过程中的污染问题、遗传变异的风险以及培养成本较高等。
未来烟草组织培养技术的研究还需要进一步探索新的培养方法、提高培养效率、降低培养成本，并加强与其他生物技术的结合，以推动烟草产业的持续健康发展。
1. 烟草产业的重要性及面临的挑战烟草产业在全球经济中占有重要地位，它不仅是许多国家的税收主要来源，同时也为农民提供了稳定的收入来源。
随着社会对健康问题的日益关注，烟草产业面临着前所未有的挑战。
从经济角度看，烟草产业对全球经济的贡献不容忽视。
烟草制品的销售为各国政府带来了可观的税收收入，这些资金被用于支持国家的各项公共事业。
烟草种植也是许多发展中国家农民的主要经济来源，对于提高农民生活水平、促进农村经济发展具有重要意义。
烟草产业也面临着诸多挑战。
最为突出的是健康问题的挑战。
越来越多的研究表明，吸烟对人体健康具有极大的危害，可导致多种疾病，如肺癌、心血管疾病等。
这使得社会对烟草产业的质疑声越来越大，许多国家和地区开始实施严格的控烟政策，限制烟草制品的生产和销售。
烟草产业还面临着环境保护和可持续发展的挑战。
烟草组织培养实验方案
烟草组织培养实验方案摘要本实验通过配制四种培养基来实现烟草种子萌发，种子苗叶片诱导、分化及植株再生，从而获得课题所需要的基因受体植株。
关键词烟草组织培养前言组织培养不仅是一种植物快速繁殖的手段,同时也是植物改良、种质保存和次生物质生产的理想途径。
烟草是典型的基因工程模式植物,易于进行组织培养,容易得到再生的转化植株。
一实验植物：华烟6号二实验材料：华烟6号种子三实验方法与步骤1．培养基的配制本次实验使用（1）种子萌发培养基：MS培养基+GA30.7mg/L；（2）愈伤组织诱导及其幼芽分化培养基:MS+2,4-D 0.5 mg/L +6-BA 1.0 mg/L；（3）幼芽增殖培养基：MS+6-BA 1.0 mg/L +NAA 0.2 mg/L；（4）生根培养基：MS+NAA 0.2 mg/L。
上述培养基均附加3%蔗糖，0.8%琼脂，pH5.8，培养温度25±2℃，光照强度2 000 lx。
2. 培养基的灭菌——高压蒸汽灭菌（湿热灭菌法）3. 无菌苗的获得把烟草种子用市售丝袜（或纱布）包好，先分别用75%乙醇或无菌水浸泡30 s，用无菌水洗净表面抑制种子萌发的药物，待洗涤的水清澈透明，然后将烟草种子用70%酒精浸泡1 min, 10%NaClO消毒10 min,经无菌水漂洗后，在超净工作台处（紫外灭菌20～30min）接种于以配置好的（1）培养基,放入(27±1)℃的光照培养架中培养。
光照周期为10 h(8:00~18:00)光照,12 h暗培养。
种子苗具4~5叶时继代扩繁备用。
4. 烟草叶片愈伤诱导及不定芽分化在超净工作台上取上述烟草无菌苗幼嫩叶片1~2片于无菌培养皿中，将叶片切成1.0～1.5平方厘米的小方块，接入（2）中培养。
约2～3d后，叶片外植体卷曲、增厚、膨胀，15d后外植体脱分化形成疏松絮状浅黄绿色的愈伤组织，愈伤组织诱导率为100%。
30d后，从叶片外植体产生的疏松愈伤组织上分化出许多浅黄绿色芽点。
烟草叶片培养
实验六烟草叶片培养
一、目的要求
1、了解烟草叶片组织培养植株再生的途径。
2、熟练掌握叶片外植体的消毒与接种技术。
二、材料、仪器与试剂
1、材料：带有3-5片以上真叶的烟草实生苗；
2、仪器：超净工作台、培养皿、接种工具、酒精灯等；
3、试剂：固体培养基（MS无机+B5有机+2mg/L 6-BA）、消毒剂、无菌蒸馏水等
三、方法步骤
1、选取大小合适的烟草幼嫩叶片，剪下后放入小烧杯中用清水冲洗去掉叶片表面灰尘，70%酒精处理30s，10%次氯酸钠溶液10min，无菌水冲洗3-5次后，无菌水浸润备用。
2、将一片消毒处理后的烟草叶片放置于培养皿中，用无菌解剖刀切成0.5c m×0.5cm大小左右的碎片，并将其接种至已配制好的无菌固体培养基表面。
3、将接种好的材料放置于25±2℃的培养室中进行培养。
4、观察叶片的生长状况，并记录过程。
四、作业
将本次实验过程写成实验报告，并写出实验观察结果。
烟草植物组织培养
烟草植物组织培养实验一实验目的学习和掌握植物组织培养技术，理解植物细胞的全能性。
二实验原理植物组织培养是从20世纪30年代初期发展起来的一项生物技术。
由于其拥有占地少、繁殖系数大等特点，现以在全世界的园林植物尤其是花卉的种苗繁育上得到广泛应用。
本文着重介绍组织培养技术的理论原理、操作过程、生产技术以及经济核算等方面的内容，使大家对组织培养在园林植物尤其是花卉的种苗繁育的应用有所了解，为以后的实际操作提供依据。
在植物组织培养中，主要目标是诱导愈伤组织形成和形态发生，使一个离体的细胞、一块组织或一个器官的细胞，通过脱分化形成愈伤组织，并由愈伤组织再分化形成植物体。
从一块外植体形成典型的愈伤组织，大致要经历三个时期：起动期、分裂期和形成期。
①起动期是指细胞准备进行分裂的时期。
用于接种的外植体的细胞，通常都是成熟细胞，处在静止状态。
起动期是通过一些刺激因素（如机械损伤、改变光照强度、增加氧等）和激素的诱导作用，使外植体细胞的合成代谢活动加强，迅速进行蛋白质和核酸的合成。
机械损伤能诱导植物体细胞开始分裂，如伤口上会出现愈伤组织。
在植物组织培养中沿用了愈伤组织这一名词，但是植物组织培养中诱导外植体细胞分裂形成的愈伤组织，大都不是损伤的结果。
外源的生长素类物质对诱导细胞开始分裂效果很好，因此生长素类物质在植物组织培养中得到广泛应用，常用的有生长素（2，4-二氯苯氧乙酸2，4-D、萘乙酸NAA、萘乙酰胺NAD和吲哚乙酸IAA、吲哚丙酸IPA和吲哚丁酸IBA）细胞分裂素（6-苄氨基嘌呤6-BA、6-糠氨基嘌呤（KT）氯吡苯脲（KT-30，CPPU））等。
分裂期是指外植体细胞经过诱导以后脱分化，不断分裂、增生子细胞的过程。
处于分裂期的愈伤组织的特点是：细胞分裂快，结构疏松，颜色浅而透明。
外植体的脱分化因植物种类、器官来源及其生理状况的不同而有很大差别。
例如，烟草、胡萝卜等植物的脱分化比较容易，禾本科植物的脱分化比较难；花的脱分化比较容易，茎、叶的脱分化比较难；幼嫩组织的脱分化比较容易，成熟的老组织脱分化比较难。
作业：设计烟草叶片组织培养培养基
探索植物叶片组织培养在基因编辑、 基因功能研究和植物生物技术等领域 的应用前景。
深入研究叶片组织培养过程中发生的 生理生化变化，以及与植物生长和发 育相关的基因表达模式。
THANKS
无菌原则
总结词
培养基必须无菌，以避免微生物污染对烟草叶片组织培养的影响。
详细描述
在组织培养过程中，微生物污染是一个常见的问题，它会对实验结果产生严重影响。因此，在设计培养基时，必 须采取有效的灭菌措施，确保培养基的无菌状态。常用的灭菌方法包括高压蒸汽灭菌和过滤除菌等。同时，在操 作过程中也需要严格遵守无菌操作规范，以避免人为引入的微生物污染。
05
培养基的效果评估
生长速度的测定
生长速度
通过定期测量叶片组织的大小，可以 评估培养基对生长速度的影响。在相 同的时间间隔内，生长速度越快，说 明培养基的营养成分越能满足叶片组 织的生长需求。
生长曲线
通过绘制生长曲线，可以更直观地了 解叶片组织的生长动态。生长曲线能 够反映不同时间点的生长速率，有助 于判断培养基是否适合叶片组织的生 长。
详细描述
生长调节剂如细胞分裂素和生长素对植物细胞的分裂和分化具有重要作用。通 过实验筛选适合烟草叶片组织培养的生长调节剂，可以促进细胞分裂和诱导愈 伤组织的形成。
其他添加物的选择
总结词
除了基础培养基和生长调节剂外，添加其他物质如抗氧化剂、糖和维生素等可以 提高培养效果。
详细描述
抗氧化剂可以保护细胞免受氧化损伤，糖作为碳源为细胞提供能量，维生素对细 胞的代谢具有重要作用。通过添加这些物质，可以提高烟草叶片组织培养的细胞 活力和生长速度。
04
烟草叶片组织培养培养基的 优化设计
基础培养基的选择
总结词
烟草栽培学实验指导书
目录实验一烟草形态与类型的观察与识别 (2)实验二育苗技术观察 (5)实验三烤烟烟苗素质考察 (10)实验四主要栽培技术与烤烟生长分析 (11)实验五打顶时期与留叶数对叶片生长的影响观察 (12)实验六烤烟叶片经济性状考察 (13)实验一烟草形态与类型的观察与识别一、目的通过观察烤烟根、茎、叶等器官构造与形态，建立对烟草初步的感性认识；观察掌握不同类型烟草的形态特征并能识别。
二、内容观察烤烟植株形态及根、茎、叶等器官特征，观察烤烟、白肋烟、香料烟、晒烟、晾烟、黄花烟六种类型的外观特征，并能描述。
1、烤烟烤烟亦称火管烤烟，源于美国的弗吉尼亚州，具有特殊的形态特征，因而也被称为弗吉尼亚型。
烤烟的主要特征是植株高大，叶片分布较疏而均匀。
一般株高120-150cm，单株着叶20-30片，叶片厚苤适中，中部的质量最佳。
栽培上不宜施用过多的氮素肥料。
叶片自下而上成熟，分次采收最初的调制方法也是晾晒。
后来（1869）年改用火管烘烤。
目前是在烤房内调制，烤后呈金黄色。
其化学成分的特点是含糖量较高，蛋白质含量较低，烟碱含量中等。
烤烟是我国也是世界上栽培面积最大的烟草类型，是卷烟工业的主要原料，也被供作斗烟。
世界上生产烤烟的国家主要有中国、美国、印度，其次是巴西、津巴布韦、泰国、加拿大、日本等。
我国烤烟种植面积和总产量都居世界第一位。
重点产区有河南、山东、云南、贵州、黑龙江、湖南、湖北、陕西、安徽等省，四川、广东、福建、辽宁、江西、广西、吉林等省（区）也有较大面积的栽培。
2、晒烟晒烟的烟叶利用阳光调制，主要有晒红烟与晒黄烟。
一般晒黄烟外观特征和所含化学成分与烤烟相近，而晒红烟则同烤烟差别较大。
晒红烟的叶片一般较少，叶肉较厚，分次采收或一次采收，晒制后多呈深褐色或褐色，以上部叶片质量最好。
烟叶一般含糖量较低，蛋白质和烟碱含量较高，烟味浓，劲头大。
晒烟主要用于斗烟、水烟和卷烟，也作为雪茄芯叶、束叶和鼻烟、嚼烟的原料。
此外，有些晒烟还可以加工成杀虫剂。
彭勇 烟草组织培养实验报告
烟草组织培养 实验报告单位：华中师大一附中姓名：彭 勇完成时间：2016.10.14烟草组织培养（彭 勇 华中师大一附中）一 实验目的1．熟悉植物组织培养技术的基本原理2．掌握培养基制备、外植体处理、接种、培养观察等技术方法3．理解外植体脱分化及再分化过程二 实验原理植物体细胞具有细胞全能性。
在无菌且光照、温度、营养等培养条件适宜的情况下，离体的植物组织会经过脱分化过程形成愈伤组织，经再分化形成丛芽、生根最终发育成新的幼苗。
三 实验材料、药品及仪器1．实验材料：脱毒烟草幼苗（川布兰公司提供）2．实验药品：70%酒精、超纯水、MS培养基试剂盒等（试剂盒包含MS培养基干粉、pH试纸、激素A/B，川布兰公司提供）3．仪器设备：微波炉、高压蒸汽灭菌锅、光照培养箱、电子天平、pH计、超经工作台、酒精灯等4．器械及用具：镊子、手术剪、酒精灯、记号笔等5．玻璃器皿：培养瓶（川布兰公司提供）、量筒、容量瓶、烧杯、培养皿等四 实验简要过程与操作1．操作间超净工作台的准备将组培室操作间、超净工作台、光照培养箱等打扫清理干净，并用70%酒精对超净工作台等设备进行擦拭消毒，然后将操作间和超净工作台的紫外灯和风机打开，消毒30-60min。
2．培养基的制备按照试剂盒附带说明书称量、溶解培养基干粉并用微波炉煮沸，定容后浓度浓度为42g/L；然后调节pH至6.0。
其中用叶片诱导愈伤组织时，1L培养基需添加激素A 2mL、激素B 20μL；愈伤组织诱导丛芽、根的分化，以及用带芽的茎段直接诱导培养幼苗时，则无需添加激素A和B。
3．培养基的分装将煮沸并定容后的培养基（呈现澄清透明状），冷却至约50℃（不烫手）时分装至培养瓶，每瓶分装约20-30mL，适当拧紧培养瓶盖。
4．器具及培养基的高压蒸汽灭菌将分装好的培养瓶以及用牛皮纸包好的镊子、手术剪、培养皿等一并放入高压蒸汽灭菌锅内，121℃加热20min；灭菌完成后取出置于消毒好的超净工作台，待其自然冷却，培养基灭菌后在瓶底有少量铁锈色颗粒沉淀。
烟草组培苗实验步骤
烟草叶片的组织培养一、实验原理与实验步骤在植物组织培养中，主要目标是诱导愈伤组织形成和形态发生，使一个离体的细胞、一块组织或一个器官的细胞，通过脱分化形成愈伤组织，并由愈伤组织再分化形成植物体。
从一块外植体形成典型的愈伤组织，大致要经历三个时期：起动期、分裂期和形成期。
植物材料：烟草植株药品：（2,4-D、NAA、6-BA浓度均可）、1mol/LNaOH、1mol/LHCL蒸馏水、70%酒精0.01%升汞仪器：玻璃杯、玻璃棒、pH试纸（5.5-9.0）、1瓶无菌水、1个无菌烧杯、1包无菌滤纸、1个无菌白瓷板、培养瓶若干移液器、微波炉、灭菌器、超净工作台、酒精灯、解剖刀、镊子二、实验方法与步骤注意：1、大量元素按照使用时高10倍的数值称取，分别将各种化合物称量后，除CaCl2•2H2O 单独配制外，其余化合物混合在500ml烧杯中加适量蒸馏水溶解，用玻璃棒搅拌促溶，倒入1000ml容量瓶中用蒸馏水定容至刻度，置小口瓶中保存，贴上标签注明化合物名称（或编号），浓缩倍数，配制日期和配制者姓名，CaCl2-2H2O配制同上置于另一小口瓶中。
2、微量元素母液的配制按要求浓缩100倍的数值称取，分别将各种化合物称量除铁盐（FeSO4-7H2O和Na2-EDTA.2H2O）作为一组单独配制外，其余化合物可混合置于烧杯内加少量蒸馏水溶解后，定容在1000ml容量瓶中，置小口瓶中保存，贴上标签3、铁盐配制将FeSO4•7H2O和Na2-EDTA.2H2O分别溶于450ml蒸馏水中，加热，（很重要）不断搅拌，溶解后，两液混合，调PH至5.5加水定容至1000ml,置于小口瓶中，贴上标签。
4、有机物母液配制，按母液要求浓缩50倍，除蔗糖按3%单独临时称量外，其余分别称量后，溶解，定容在500ml容量瓶中，置于小口瓶中保存，贴上标签。
5．母液最好在2~4℃的冰箱中贮存，特别是有机类物质，贮存时间不宜过长，无机盐母液最好在一个月内用完，如发现有霉菌和沉淀产生，就不能再使用。
烟草根部组织培养及药物分析研究
烟草根部组织培养及药物分析研究烟草是一种广泛种植及使用的作物，其根部组织含有大量有益成分，如挥发油、黄酮类化合物等。
因此，对烟草根部组织的培养及药物分析研究具有重要意义，可以为医药、化妆品及食品等领域的研究提供重要的基础。
一、烟草根部组织培养技术烟草的根部组织可以进行组织培养，即将其分离、培养，以获得大量的细胞或组织材料。
烟草的组织培养技术被广泛应用于植物遗传转化、组织工程等研究领域。
1. 培养基的配制烟草根部组织的培养需要一定的培养基，其配方一般为：MS 培养基+植物生长素+蔗糖。
其中，植物生长素促进细胞分裂及生长，而蔗糖则提供营养。
2. 培养过程将烟草根部通过消毒处理后，分离出细胞或组织，并在培养基中进行培养。
在培养过程中，需要定期更换培养基、调整植物生长素和蔗糖的浓度等。
培养成功后，可用于烟草药物成分的提取及分析，也可以进行基于基因工程的遗传转化等研究。
二、烟草根部药物分析1. 提取方法烟草根部中的药物成分主要是挥发油、黄酮类化合物等。
提取这些化合物的方法一般为：全浸法、超声波提取法等。
其中，超声波提取法操作简便、提取率高，被广泛使用。
2. 分析方法烟草根部中的化合物含量分析可通过高效液相色谱法、气相色谱法等进行。
这些分析方法对药物成分进行准确、可靠的定量分析，有助于研究烟草根部中的药物成分在医药、化妆品及食品等领域的应用。
三、烟草根部组织培养及药物分析的应用烟草根部的培养及药物分析对医药、化妆品及食品等领域具有重要意义。
在医药领域中，烟草根部中的化合物被广泛应用于抗炎、抗菌、镇痛等方面。
同时，在化妆品及食品领域，烟草根部的化合物也有很好的应用前景。
总之，烟草根部组织培养及药物分析是对烟草进行深入研究及利用的重要手段。
其可以为医药、化妆品及食品等领域的研究提供重要的基础，对于推动相关产业的发展具有重要作用。
细胞工程实验-烟草叶片的组织培养.
细胞工程学实验报告专业：_ 09级生物技术一班__ 姓名：___ __ 学号：____ _ _实验一实验室的设计及基本设备一、实验室的设计1、实验室设计的原因：植物细胞工程实验室的流程是：清洗玻璃器皿、配制培养基、高压气灭菌、无菌操作、培养室培养植物、植物材料的检测。
因此实验室需要有清洁器皿和配制培养基的准备室，无菌操作室或超净工作台，供培养材料用的培养室，检查培养情况并做记录的实验室。
一般在设计上，每个组分最好按工作的自然程序连续排列，如：准备室、灭菌室、无菌操作室、植物材料培养室、检测室。
实验室的安排应合理简洁，并要求无尘、灭菌、光洁、清净。
2、实验室的布局要求：（1）准备室准备室可以是一大间或几小间，主要用于进行一切与实验有关的准备工作：完成所使用的各种药品的贮备、称量、溶解、器脿醮涤、培养基配制与分装、培养基和培养器皿的灭菌、培养材料的预处理等。
必要的设备有:准备室应具备实验台、药品柜、水池、仪器、药品、防尘橱（放置培养容器）、冰箱、天平、蒸馏水器、酸度计及常用的培养基配制用玻璃仪器等。
洗涤灭菌区功能：完成各种器具的洗涤、干燥、保存、培养基的灭菌等。
要求：洗涤灭菌室根据工作量的大小决定其大小，一般面积控制在30-50m2。
在实验室的一侧设置专用的洗涤水槽，用来清洗玻璃器皿。
中央实验台还应配置2个水槽，用于清洗小型玻璃器皿。
如果工作量大，可以购置一台洗瓶机。
准备1-2个洗液缸，专门用于洗涤对洁净度要求很高的玻璃器皿，地面应耐湿并排水良好。
设备：水池、落水架、中央实验台、高压灭菌锅、超声波清洗器、干燥灭菌器（如烘箱）等。
（2）无菌室（接种室）进行植物细胞、组织培养操作的关键是无菌条件。
室内的墙壁要求光滑平整；地面为光洁的水磨石，平坦无缝，避免灰尘积累，便于清扫。
紫外灯一般在3到4平方米内安装1到2只；在工作台下安置紫外灯紫外灯可使灭菌彻底。
同时，工作台上方安装平板玻璃，以防操作时落灰。
条件不好时，用无菌箱代替无菌室，箱内用紫外灯灭菌。
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烟草组织培养实验方案
摘要本实验通过配制四种培养基来实现烟草种子萌发，种子苗叶片诱导、分化及植株再生，从而获得课题所需要的基因受体植株。
关键词烟草组织培养
前言
组织培养不仅是一种植物快速繁殖的手段,同时也是植物改良、种质保存和次生物质生产的理想途径。
烟草是典型的基因工程模式植物,易于进行组织培养,
容易得到再生的转化植株。
一实验植物：华烟6号
二实验材料：华烟6号种子
三实验方法与步骤
1．培养基的配制
本次实验使用（1）种子萌发培养基：MS培养基+GA30.7mg/L；（2）愈伤组织诱导及其幼芽分化培养基:MS+2,4-D 0.5 mg/L +6-BA 1.0 mg/L；（3）幼芽增殖培养基：MS+6-BA 1.0 mg/L +NAA 0.2 mg/L；（4）生根培养基：MS+NAA 0.2 mg/L。
上述培养基均附加3%蔗糖，0.8%琼脂，pH5.8，培养温度25±2℃，光照强度2 000 lx。
2. 培养基的灭菌——高压蒸汽灭菌（湿热灭菌法）
3. 无菌苗的获得
把烟草种子用市售丝袜（或纱布）包好，先分别用75%乙醇或无菌水浸泡30 s，用无菌水洗净表面抑制种子萌发的药物，待洗涤的水清澈透明，然后将烟草种子用70%酒精浸泡1 min, 10%NaClO消毒10 min,经无菌水漂洗后，在超净工作台处（紫外灭菌20～30min）接种于以配置好的（1）培养基,放入(27±1)℃的光照培养架中培养。
光照周期为10 h(8:00~18:00)光照,12 h暗培养。
种子苗具4~5叶时继代扩繁备用。
4. 烟草叶片愈伤诱导及不定芽分化
在超净工作台上取上述烟草无菌苗幼嫩叶片1~2片于无菌培养皿中，将叶片切成1.0～1.5平方厘米的小方块，接入（2）中培养。
约2～3d后，叶片外植体卷曲、增厚、膨胀，15d后外植体脱分化形成疏松絮状浅黄绿色的愈伤组织，愈伤组织诱导率为100%。
30d后，从叶片外植体产生的疏松愈伤组织上分化出许多浅黄绿色芽点。
60d后，不仅从愈伤组织上分化出越来越多幼芽，芽诱导频率(芽数/块愈伤组织)为25～35，而且还可观察到，该愈伤组织较早分化产生的幼芽叶片呈现不同程度白化（或缺绿）。
但此时若将此缺绿幼芽切下，转接至不加2,4-D的幼芽增殖培养基（3）上，3～5d后即可恢复正常，缺绿症状消失，并可不断增殖，发育成绿色健壮的小苗。
光照时间8～12小时，温度通常在23～28℃之间。
5. 诱导生根及移栽
取约3～4cm长的无根小苗接种于生根培养基（4）中，约7～8d后，几乎所有外植体均从其基部产生白色幼根，根诱导频率为3～5，部分在培养基表面的根具大量白色根毛。
当试管苗长至5～6cm高时，打开瓶口，在散射光下放置2d后取出，洗去根部残留培养基，种植于经过消毒的珍珠岩、泥炭土和菜园土等量混合的基质中，成活率可达95%以上。
四数据记录：
编号 种子数目萌发时间萌发数目萌发时间染菌率
烟草叶片愈伤组织诱导情况
编号每瓶接种数愈伤组织诱导率愈伤组织状态染菌率
烟草叶片愈伤组织再生植株情况
编号分化率每个愈伤组织分化芽数分化情况染菌率
编号生根率生根情况 再生植株分化根数染菌率
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