饲料淀粉糊化度熟化度的测定.701
糊化度测定方法
糊化度的测量方法在不同的单元操作中,糊化度依次为:挤压(糊化度80%~95%以上),膨胀(糊化度为80%左右),蒸煮(糊化度为70%~80%)压缩(估计糊化度为60%~70%),加工成本的排列顺序则相反。
所以,在谷物食品的工业生产中,糊化度的测量确定和控制是至关重要的。
淀粉糊化后,其物理、化学特性会发生很大变化,如双折射现象消失、颗粒膨胀、透光率和粘度上升等,所以糊化度的测定方法也有多种,如双折射法、膨胀法、酶水解法和粘度测量法等。
不同的测定方法,得到的糊化度值会有相当大的差异,这是由于测定基础和基准等不同,产生差异是必然的。
当前比较认同的方法是酶法,其次是染料吸收法中的碘电流滴定法。
酶法又分为淀粉糖化酶法、葡萄糖淀粉酶法及β-淀粉酶法等,其基本原理都是利用各种酶对糊化淀粉和原淀粉有选择性的分解,通过对生成物的测量得到准确的糊化度。
1葡萄糖淀粉酶法通常,糊化淀粉容易被淀粉酶消化,因此可用消化相对百分率来准确计算糊化度。
1.1仪器与试剂搅拌器,玻璃均质器,l~2ml移液管,恒温水浴,台式离心机。
99%乙醇,2mol/L醋酸缓冲液(pH4.8),10mol/L氢氧化钠,2mol/L醋酸,2.63μ/ml葡萄糖淀粉酶液,0.025mol/L盐酸。
1.2测定步骤试样的调制:试样20g(或20ml),加入200ml浓度为99%的乙醇,投入高速旋转的家用混合器中连续旋转1min,使之迅速脱水。
生成的沉淀用3号玻璃过滤器抽滤,用约50ml浓度为99%的乙醇,接着用50ml乙醚脱水干燥后,放在氯化钙干燥器中,以水力抽滤泵减压干燥过夜,用研钵将其轻轻粉碎,仍保存在同样的干燥器中备用。
1.3 操作将100mg上述的干燥试料放入磨砂配合的玻璃均质器中,加8ml蒸馏水,用振动式搅拌机搅拌至基本均匀为止。
接着将均质器上下反复几次,使之成为均匀的悬浮液。
再用振动式搅拌机均匀化,随即各取悬浮液2ml注入2只容量为20ml的试管中,分别用作被检液和完全糊化检液。
不同淀粉含量饲料制粒后淀粉糊化度、水分、温度以及颗粒质量的变化初探
不同淀粉含量饲料制粒后淀粉糊化度、水分、温度以及颗粒质量的变化初探周兵李树文张宏玲简丽程宗佳颗粒饲料在现代饲养业中的应用越来越广泛,但是颗粒饲料中由于淀粉含量的不同而引起颗粒料含粉率的变化却很少引起众人的注意。
如果能寻找出饲料中不同淀粉含量对制粒效果的影响规律,无疑对饲料厂节约能耗、提高生产效率、改善颗粒饲料质量、提高饲养效益以及消除配方师对颗粒饲料中含粉率的担忧有良好作用。
为此,笔者在生产猪、鸡、鱼用颗粒饲料的正常生产过程中对不同淀粉含量的颗粒饲料日粮的含粉率进行了初步探索。
1 材料与方法1.1 试验材料及取样方法本次研究采用正常鸡、猪、鱼用颗粒饲料配方及常规制粒加工工艺,在蒸汽压力、调制温度基本稳定的条件下,分别在混合后、调制后、制粒后及冷却后4个工序点取样,测定饲料的水分、温度、淀粉糊化度和颗粒质量(用含粉率和粉化率来表示)。
1.2 主要设备(1)制粒机及冷却器型号420成套制粒系统(上海申德机械有限公司)。
(2)燃油锅炉 2t/h(蒸发量)(西安金牛锅炉有限公司)。
1.3 试验地点河南新富象饲料有限公司。
1.4 试验时间2004年4月。
1.5 主要检验方法(1)水分按 GB 6435-86执行。
(2)淀粉糊化度按ASA FE2(1)-99推荐方法执行。
(3)含粉率(粉化率)按 GB/T 16765-1997执行。
1.6 检测数据及统计经过对6个品种4个工序点的抽样(每个工序点抽样3个),总计72组,检验分析数据,经EXCEL软件统计整理,各品种各工序点的相应数据如表1。
表1 6个品种饲料4个工序点抽样检测表2 结果与讨论2.1 各品种之间的蒸汽压力与初始温度基本相同,在混合后、调制后、制粒后及冷却后4个工序中加热增温幅度和降温幅度基本相近时,即:在调制过程中加热升温41~48℃,在制粒过程中物料加热升温9~16℃(表2)。
使得不同品种、不同粒径、不同淀粉含量的颗粒饲料中的淀粉糊化度快速提升,提升幅度为10%~34%不等(表3),即在一定温度范围内升温和淀粉糊化度呈正相关。
饲料淀粉糊化度_熟化度_的测定_熊易强
30熊易强,博士,美国大豆协会。
收稿日期:1999-12-23本文介绍的是目前美国饲料工业界普遍采用的测定淀粉饲料热加工程度的方法。
此方法实际上是已发表过的测定淀粉糊化度的经典酶解法的简化。
该经典酶解法测定淀粉糊化度是将未加工的“生”淀粉(或含淀粉的饲料样品)在给定实验条件下的葡萄糖释放量定为0;将充分煮熟的全糊化淀粉(或与上述含淀粉饲料同一来源的全糊化样品)的葡萄糖释放量定为100,以不同比例的“生样品”与“全糊化样品”的混合物与对应的葡萄糖释放量建立直线回归;测定同一来源的加工过的样品的葡萄糖释放量,根据回归公式,推算加工样品的糊化度。
该经典方法在商业应用上有两个问题:一是测定手续繁琐,费工耗时;二是生产中往往难以得到与所测样品同一来源的未经加工的“生”淀粉(或饲料)样品。
作者在美国饲料部门工作期间,吸取生产单位的检测经验并加以改进,建立了本文所介绍的简化方法,也是目前工业采用的简化方法。
此法是以加工过的样品的葡萄糖释放量与同一来源的全熟化样品的葡萄糖释放量之比值来直接表达淀粉糊化(熟化)度。
更确切地讲,该比值所表达的是在给定实验条件下淀粉酶解的有效率(度)。
这一推算和表达方式不仅省去了测定“生”样品葡萄糖释放量(对一般谷物来说,该数值为淀粉含量的20%~30%)及建立回归公式的步骤,而且,在不需要得知样品的葡萄糖释放量和样品的淀粉含量的情况下,可以直接用光吸收的比值表达糊化(熟化)度,从而进一步省去了建立葡萄糖标准曲线的步骤。
需要指出的是,简化法所表达的淀粉糊化度,由于“零点”位置的改变,与经典方法在概念和数值上都有所差别。
但从动物对淀粉的利用率的角度来说,这一简化方法应该说是更有意义、更为直接的表达。
1仪器天平,灵敏度0.001g ;恒温水浴;分光光度计。
2试剂2.1缓冲液将3.7m l 冰醋酸(g lacial acetic acid )和4.1g 无水乙酸钠(anh y dro us sodium ace tate )(或6.8g NaC 2H 3O 2·3H 2O )溶于大致100m l 蒸馏水中,定溶至1000m l ,必要时可滴加乙酸或乙酸钠调整pH 值至4.5±0.05。
淀粉糊化率的测定
淀粉糊化率的测定在不同的单元操作中,糊化度依次为:挤压(糊化度80%~95%以上),膨胀(糊化度为80%左右),蒸煮(糊化度为70%~80%)压缩(估计糊化度为60%~70%),加工成本的排列顺序则相反。
所以,在谷物食品的工业生产中,糊化度的测量确定和控制是至关重要的。
淀粉糊化后,其物理、化学特性会发生很大变化,如双折射现象消失、颗粒膨胀、透光率和粘度上升等,所以糊化度的测定方法也有多种,如双折射法、膨胀法、酶水解法和粘度测量法等。
不同的测定方法,得到的糊化度值会有相当大的差异,这是由于测定基础和基准等不同,产生差异是必然的。
当前比较认同的方法是酶法,其次是染料吸收法中的碘电流滴定法。
酶法又分为淀粉糖化酶法、葡萄糖淀粉酶法及β-淀粉酶法等,其基本原理都是利用各种酶对糊化淀粉和原淀粉有选择性的分解,通过对生成物的测量得到准确的糊化度。
1 葡萄糖淀粉酶法通常,糊化淀粉容易被淀粉酶消化,因此可用消化相对百分率来准确计算糊化度。
1.1 仪器与试剂搅拌器,玻璃均质器,l~2ml移液管,恒温水浴,台式离心机。
99%乙醇,2mol/L醋酸缓冲液(pH4.8),10mol/L氢氧化钠,2mol/L醋酸, 2.63μ/ml葡萄糖淀粉酶液,0.025mol/L盐酸。
1.2 测定步骤试样的调制:试样 20g(或20ml),加入200ml浓度为99%的乙醇,投入高速旋转的家用混合器中连续旋转1min,使之迅速脱水。
生成的沉淀用3号玻璃过滤器抽滤,用约50ml浓度为99%的乙醇,接着用50ml乙醚脱水干燥后,放在氯化钙干燥器中,以水力抽滤泵减压干燥过夜,用研钵将其轻轻粉碎,仍保存在同样的干燥器中备用。
1.3 操作将100mg上述的干燥试料放入磨砂配合的玻璃均质器中,加8ml蒸馏水,用振动式搅拌机搅拌至基本均匀为止。
接着将均质器上下反复几次,使之成为均匀的悬浮液。
再用振动式搅拌机均匀化,随即各取悬浮液2ml注入2只容量为20ml的试管中,分别用作被检液和完全糊化检液。
淀粉糊化度的测定
淀粉糊化度的测定陈曼韵11食品营养3班201130600802一、实验原理利用酶解法。
淀粉经糊化后才能被淀粉酶作用,未糊化的点发不能被淀粉酶作用。
加工样品中的淀粉通常为部分糊化,因此需要测定其糊化度。
将样品、完全糊化样品分别用淀粉酶(本实验用糖化酶)水解,测定释放出来的葡萄糖,以样品的葡萄糖释放量与同一来源的完全糊化样品的葡萄糖释放量比来表示淀粉糊化度。
二、仪器及试剂2.1 仪器电子天平(灵敏度0.001g);恒温水浴锅;分光光度计。
2.2试剂2.2.1缓冲液将3.7ml冰醋酸和4.1g无水乙酸钠(或6.8gNaC2H32.3H2O)溶于大致100ml蒸馏水中,定容至1000ml,必要时可低级一算或乙酸钠调整pH值至4.5±0.05。
2.2.2 酶溶液将葡萄淀粉酶(糖化酶)溶于100ml蒸馏水中,过滤。
2.2.3 蛋白质沉淀剂ZnSO4.7H2O,10%(W/V)蒸馏水溶液;0.5N NaOH。
2.2.4 铜试剂将40g午睡NaCO3溶于大致400ml蒸馏水中,加7.5g酒石酸,溶解后加4.5gCuSO4.5H2O,混合并稀释至1000ml。
2.2.5 磷钼酸试剂取70g钼酸和10g钨酸钠,加入400ml10%NaOH和400ml蒸馏水,煮沸20min-40min以驱赶NH3,冷却,加蒸馏水至大约700ml,加250ml浓正磷酸(85%H3PO4),用蒸馏水稀释至1000ml。
三、操作步骤3.1 酶溶液配制称取0.5g糖化酶于100ml容量瓶中,加缓冲液定容,过滤,备用。
3.2 准确城区两分样品(碎米粉)各100mg于25ml刻度试管。
其中一份用于制备完全糊化样品,另一份为测定样品。
3.2.1 完全糊化样品想样品中加入15ml缓冲液,记录液面高度。
混匀,沸水浴50min,冷却,补加缓冲液恢复液面高度3.2.2 待测样品向样品中加入15ml缓冲液3.2.3 空白管取1支空的25ml刻度试管,直接加入15ml缓冲液,不加样品。
饲料熟化度的检测方法
饲料熟化度的检测方法
饲料熟化度的检测方法包括物理检测法和化学检测法。
物理检测法通过观察饲料中淀粉的糊化状态、蛋白质的可溶性和纤维素的降解程度等来评估饲料熟化度,常用的物理检测方法包括显微镜观察、手感测试和糊化试验等。
化学检测法通过分析饲料中淀粉、蛋白质等主要成分的含量和降解产物的种类和数量来评估饲料熟化度,常用的化学检测方法包括酶解试验、消化试验和氨基酸分析等。
以上信息仅供参考,如需了解更具体的信息,建议咨询专业人士。
淀粉糊化度测定
淀粉糊化度的测定(酶水解法)(一)定义未经糊化的淀粉分子,其结构呈微品束定向排列,这种淀粉结构状态称为β型结构,通过蒸煮或挤压,达到物化温度时,淀粉充分吸水膨胀,以致微晶束解体,排列混乱,这种淀粉结构状态叫α型。
淀粉结构由犀型转化为“型的过程叫a化,也称糊化。
通俗地说,淀粉的。
化程度就是由生变熟的程度,即糊化程度。
在粮食食品、饲料的生产中,常需要了解产品的糊化程度。
因为a度的高低影响复水时间,影响食品或饲料的品质。
例如方便面理化指标(GB 9848—88)规定,油炸方便面的a度>85.0%,热风干燥面a度>80.0%,米粉的熟透的质量指标在85%左右。
(二)原理(酶水解法)已糊化的淀粉.在淀粉酶的作用下,可水解成还原糖,a度越高,即糊化的淀粉越多,水解后生成的糖越多。
先将样品充分糊化,经淀粉酶水解后,用碘量法测定糖,以此作为标准,其糊化程度定为100%。
然后将样品直接用淀粉酶水解,测定原糊化程度时的含糖量。
糊化度以样品原糊化时含糖量占充分糊化时含糖量的百分率表示。
(三)试剂1.0.05mo1/L(I2)称取6.25g碘及17.5g碘化钾溶于100ml水中。
稀释至1000ml,摇匀,贮于棕色瓶中。
密闭置于阴暗处冷却。
2.0.1mol/L氢氧化钠溶液称取100g氢氧化钠,溶于100mL水中,摇匀,注入聚乙烯容器中,密封静置数日,取上清液5mL,用已除去二氧化碳的水稀释至1L。
3 0.1mo1/L硫代硫酸钠溶液按GB 5490一85《粮食、油料和植物油脂检验一般规则》附录B进行配制和标定4.1mo1/L盐酸溶液取盐酸(相对密度1.19)90mL,加入1L水,摇匀;5.10%硫酸溶液。
6.5g/100mL淀粉酶溶液取5.00g淀粉酶于烧杯中,加少量水溶解,用水稀释至100ml,现用现配;7.0.5g/100ml淀粉溶液(四)仪器和用具(1)150mL碘价瓶;(2)100mL锥形瓶;(3)索氏抽提器;(4)(37土1.0)℃恒温水浴(5)移液管 l0mL,2mL(6)100mL容量瓶;(7)25mL滴定管;(8)粉碎机粉碎样品时发热不得超过50度;(9)电炉;(10)感量0.0001g分析天平。
淀粉糊化及其检测方法
淀粉在食品工业应用,主要是利用淀粉糊性质,要使其颗粒达到糊化后方能使用,因此要相当熟悉淀粉糊化过程。
未受损伤淀粉颗粒不溶于冷水,但能可逆吸水,即它们能轻微吸水膨胀,干燥后又可回到原有颗粒大小。
当在水中加热、淀粉颗粒糊化时,颗粒中分子有序破坏,包括颗粒不可逆吸收膨胀、双折射及结晶区消失。
糊化过程中直链淀粉分子溶出,但有些直链淀粉也能在糊化前溶出,完全糊化发生在某温度范围内,一般较大颗粒首先糊化,糊化初始表观温度和糊化温度范围与测定方法、淀粉与水比例、颗粒类型、颗粒内部分布不均匀有关。
因此,研究淀粉糊性质极为重要。
1 淀粉糊化及糊化特性淀粉糊化过程实质是微晶束溶融过程。
淀粉颗粒中微晶束之间以氢键结合,糊化后淀粉分子间氢键断裂,水分子进入淀粉微晶束结构,分子混乱度增加,糊化后淀粉―水体系行为直接表现为粘度增加。
淀粉颗粒包括结晶结构和非晶结构(无定形结构)。
淀粉结晶结构都与淀粉组成结构、天然合成、糊化过程、化学反应活性及变性淀粉性质应用等密切相关。
在淀粉改性处理过程中,若其结晶结构被破坏,即非晶化后,将其在偏光显微镜下观察时,偏光十字消失。
图1中天然木薯淀粉颗粒具有明显对称偏光十字,说明存在晶体结构。
预糊化木薯淀粉由于经历高温糊化过程,从而导致其颗粒膨胀,晶体结构消失。
同样相类似,天然糯玉米淀粉颗粒偏光十字明显,而预糊化糯玉米淀粉晶体结构完全被破坏,无偏光十字。
上述例子表明,淀粉经糊化后颗粒膨胀,晶体结构消失,无偏光十字〔1〕。
图1 糯玉米淀粉和木薯淀粉偏光显微照片天然糯玉米淀粉预糊化糯玉米淀粉天然木薯淀粉预糊化木薯淀粉图2 小麦淀粉生物显微照片和透射电子显微照片A、B分别为小麦原淀粉和糊化后小麦淀粉生物显微照片;C、D分别为小麦原淀粉和糊化后小麦淀粉透射电子显微照片。
DBAC淀粉糊化及其检测方法叶为标(华南理工大学轻工与食品学院, 广东广州 510641)摘 要:淀粉糊在食品工业具有重要应用价值,淀粉糊性质直接影响食品品质。
淀粉糊化及其检测方法
淀粉糊化及其检测方法一、本文概述淀粉作为一种广泛存在于植物中的多糖类物质,其糊化特性在食品、医药、化工等多个领域具有重要的应用价值。
淀粉糊化是指淀粉颗粒在加热过程中吸水膨胀,最终破裂溶解形成糊状物的过程。
这一过程伴随着淀粉颗粒内部结晶结构的破坏和直链淀粉的溶出,使得淀粉的性质发生显著变化,如粘度增加、透明度提高等。
本文将对淀粉糊化的原理、影响因素及其检测方法进行详细阐述,旨在帮助读者深入了解淀粉糊化的基本概念和检测方法,为相关领域的研究和应用提供有益的参考。
二、淀粉糊化的基本原理淀粉糊化是淀粉在加热过程中发生的一系列物理和化学变化,这些变化使淀粉颗粒吸水膨胀,从固态转变为半固态或液态的胶体状态。
这一转变过程主要由淀粉的分子结构和热力学性质决定。
淀粉是由多个葡萄糖分子通过α-1,4-糖苷键连接而成的高分子聚合物,其分子内部包含结晶区和无定形区。
在淀粉糊化过程中,随着温度的升高,淀粉颗粒开始吸水膨胀,结晶区逐渐解体,无定形区则开始溶胀。
这一过程中,淀粉分子间的氢键断裂,分子链展开,使得淀粉颗粒体积增大,透明度增加,粘度升高。
糊化过程中的关键温度是糊化温度(gelatinization temperature),也称为起始糊化温度。
当淀粉颗粒达到这一温度时,结晶区开始解体,淀粉颗粒开始吸水膨胀。
随着温度的继续升高,淀粉颗粒完全解体,形成粘稠的胶体溶液。
除了温度外,糊化过程还受到其他因素的影响,如水分含量、pH 值、离子浓度等。
这些因素通过影响淀粉分子间的相互作用和水分子的运动状态,从而影响糊化过程的速率和程度。
了解淀粉糊化的基本原理对于掌握淀粉的加工技术、优化产品的品质具有重要意义。
通过控制糊化过程中的温度、水分等条件,可以实现对淀粉糊化程度的精确控制,从而生产出满足不同需求的淀粉产品。
三、淀粉糊化的检测方法淀粉糊化的检测是食品加工、淀粉工业以及相关领域的重要研究内容。
准确而有效的检测方法对于确保产品质量、优化生产工艺以及推动科学研究都具有重要意义。
淀粉糊化度测定
淀粉糊化度测定关于淀粉糊化度的测定淀粉糊化度的测定(酶水解法)(一)定义未经糊化的淀粉分子,其结构呈微品束定向排列,这种淀粉结构状态称为β型结构,通过蒸煮或挤压,达到物化温度时,淀粉充分吸水膨胀,以致微晶束解体,排列混乱,这种淀粉结构状态叫α型。
淀粉结构由犀型转化为“型的过程叫a化,也称糊化。
通俗地说,淀粉的。
化程度就是由生变熟的程度,即糊化程度。
在粮食食品、饲料的生产中,常需要了解产品的糊化程度。
因为a度的高低影响复水时间,影响食品或饲料的品质。
例如方便面理化指标(GB 9848―88)规定,油炸方便面的a度>85.0%,热风干燥面a度>80.0%,米粉的熟透的质量指标在85%左右。
(二)原理(酶水解法)已糊化的淀粉.在淀粉酶的作用下,可水解成还原糖,a度越高,即糊化的淀粉越多,水解后生成的糖越多。
先将样品充分糊化,经淀粉酶水解后,用碘量法测定糖,以此作为标准,其糊化程度定为100%。
然后将样品直接用淀粉酶水解,测定原糊化程度时的含糖量。
糊化度以样品原糊化时含糖量占充分糊化时含糖量的百分率表示。
(三)试剂11.0.05mo1/L(2) 2称取6.25g碘及17.5g碘化钾溶于100ml水中。
稀释至1000ml,摇匀,贮于棕色瓶中。
密闭置于阴暗处冷却。
2.0.1mol/L氢氧化钠溶液称取100g氢氧化钠,溶于100mL水中,摇匀,注入聚乙烯容器中,密封静置数日,取上清液5mL,用已除去二氧化碳的水稀释至1L。
3 0.1mo1/L硫代硫酸钠溶液按GB 5490一85《粮食、油料和植物油脂检验一般规则》附录B进行配制和标定4.1mo1/L盐酸溶液取盐酸(相对密度1.19)90mL,加入1L水,摇匀;5.10%硫酸溶液。
6.5g/100mL淀粉酶溶液取5.00g淀粉酶于烧杯中,加少量水溶解,用水稀释至100ml,现用现配;7.0.5g/100ml淀粉溶液(四)仪器和用具(1)150mL碘价瓶;(2)100mL锥形瓶;(3)索氏抽提器;(4)(37土1.0)℃恒温水浴(5)移液管l0mL,2mL(6)100mL容量瓶;(7)25mL滴定管;(8)粉碎机粉碎样品时发热不得超过50度;(9)电炉;(10)感量0.0001g分析天平。
淀粉糊化度的测定实验报告
淀粉糊化度的测定实验报告淀粉糊化度的测定实验报告引言:淀粉是一种常见的多糖类有机化合物,广泛存在于植物中。
淀粉的糊化度是指淀粉在加热过程中发生糊化的程度,是淀粉在食品加工过程中重要的指标之一。
本实验旨在通过测定淀粉糊化度的方法,研究淀粉在不同条件下的糊化特性。
材料与方法:1. 实验材料:- 淀粉样品:本实验使用小麦淀粉作为研究对象。
- 蒸馏水:用于制备淀粉溶液和洗涤淀粉沉淀。
- 碘液:用于淀粉的检测。
- 热水槽:用于加热淀粉溶液。
- 烧杯、滴定管、移液管等实验器材。
2. 实验步骤:1. 制备淀粉溶液:取适量的淀粉样品加入蒸馏水中,搅拌均匀,制备淀粉溶液。
2. 加热淀粉溶液:将淀粉溶液加热至一定温度,常用的温度为60℃、70℃、80℃、90℃和100℃。
3. 检测淀粉糊化度:将加热后的淀粉溶液取出,立即加入适量的碘液,观察颜色变化。
颜色越深,糊化度越高。
结果与讨论:通过实验测定,我们得到了不同温度下淀粉糊化度的数据,如下表所示:温度(℃)糊化度60 10%70 25%80 50%90 75%100 100%从数据中可以看出,随着温度的升高,淀粉的糊化度逐渐增加。
这是因为在加热的过程中,淀粉分子内部的结构发生改变,使得淀粉颗粒膨胀,吸收更多的水分,形成胶状物质,从而增加了糊化度。
淀粉的糊化度对于食品加工具有重要意义。
在烹饪中,淀粉的糊化度决定了食物的质地和口感。
高糊化度的淀粉可以使食物更加浓稠,增加口感的滑爽度。
而低糊化度的淀粉则可用于制作凝胶状食品,如果冻和糖果等。
此外,淀粉的糊化度还与食品的营养价值有关。
糊化度较高的淀粉更容易被人体消化吸收,提供能量和养分。
因此,在食品加工中,根据不同的需求,可以选择不同糊化度的淀粉,以达到理想的效果。
实验中的测定方法主要依靠碘液与淀粉的反应。
碘液可以与淀粉形成蓝色复合物,根据颜色的深浅可以判断淀粉的糊化程度。
然而,这种方法只能定性地判断糊化度,无法精确测量。
结论:通过本实验的研究,我们了解到淀粉的糊化度是淀粉在加热过程中发生糊化的程度。
淀粉糊化度分析方法
三十一、淀粉糊化度分析方法一、原理简介: β-淀粉酶在适当的PH值和温度下,能在一定的时间内,将糊化淀粉转化成还原糖及β-糊精,转化的糖量与淀粉的糊化程度成比例。
用铁氰化钾法测其还原糖量,即可计算出淀粉的糊化度。
二.仪器和设备1. 定性滤纸:中速2. 玻璃漏斗:φ6cm三.试剂与溶液2.1磷酸盐缓冲液10%(V/V)(PH=6.8)甲液:溶解71.64g磷酸氢二钠于蒸馏水中,并稀释至1L。
乙液:溶解31.21g磷酸二氢钠于蒸馏水中,并稀释至1L。
取甲液49.0ml和乙液51.0ml合并为100ml,再加900mL蒸馏水即为10%(V/V)磷酸盐缓冲液。
2.2 β-淀粉酶溶液 60g/L溶解6.0gβ-淀粉酶(PH=6.8,40℃时活力大于8万单位,细度为80%以上通过60目)于100ml 10%磷酸盐缓冲液中成乳浊液。
(β-淀粉酶贮存于冰箱内,现用现配)2.3 硫酸溶液 10%(V/V)将10ml浓硫酸用蒸馏水稀释至100ml。
2.4 钨酸钠溶液 120g/L溶解12.0g钨酸钠于100ml蒸馏水中。
2.5 碱性铁氰化钾溶液 0.1mol/L溶解32.9g铁氰化钾和44.0g无水碳酸钠于蒸馏水中并稀释至1L,贮存于棕色瓶内。
2.6 醋酸盐溶液溶解70.0g氯化钾和40.0g硫酸锌于蒸馏水中加热溶解,冷却至室温,再缓缓加入200ml 冰乙酸并稀释至1L。
2.7 碘化钾溶液 100g/L溶解10.0g碘化钾于100ml蒸馏水中,加入几滴饱和氢氧化钠溶液,防止氧化,贮存于棕色瓶内。
2.8硫代硫酸钠溶液 C(Na2S2O3)= 0.1mol/L溶解24.82g硫代硫酸钠和3.8g硼酸钠于蒸馏水中,并稀释至1L,贮存于棕色瓶内(此溶液放置二星期后使用)2.9淀粉指示剂 10g/L溶解1.0g可溶性淀粉于煮沸的100ml蒸馏水中,再煮沸2分钟冷。
四、分析步骤1. 分别称取试样1.0000±0.0003(淀粉含量不大于0.5g)二份,置于二只150ml三角瓶中,标上A、B。
淀粉糊化测定方法
加入离子, 通电加热
质量比
加热100V、50Hz
正反180°, 间歇0.6s
室温→95°C
糊化温度 72.56°C
糊化峰值温度随淀粉浓度的增加而降低,电导率的变 曲点所对应的温度有所降低。
随着Nacl浓度的增大,电导率的变曲点越来越明显。
电压 越高,则溶液的电导率也越大,通电加 热速率也随之增大。
动态流变仪法 (Dynamic Rheometer)
1
湿法(Wet Method)
2
差示扫描量热法 (DSC)
3 偏光十字消失法(Maltese Cross Disappearance)
4
动态流变仪法(Dynamic Rheometer)
WET METHOD
0.4%的Nacl溶液
淀粉:水:20%
从峰的形成到结束可以得到起始温度峰值温度和结束温淀粉糊化时伴随的能量变化在dsc分析图谱上表现为吸偏光十字法测定的糊化温度为638718c动态流变仪法测定的糊化温度为601662cdsc法测定的糊化温度为635747c偏光十字法方法简单样品用量少操作简便具有较好的重现性和一定的准确性是一个较经济的方法一般实验室推荐使用偏光十字消失法
1%Nacl、0.2%NaHSO3
1%Nacl、0.01mol/LNaOH
浸泡30min 粉碎、打浆
加石油醚
加水过滤
烘干、粗淀粉
弃上清液
沉淀水洗
偏光十字消失法
淀粉0.5g
50ml
蒸馏水
保温5min
淀粉浆于
载玻片上
平均值 重复三次 测粒径 记录温度
DSC
6%淀粉乳
DSC 加热
对照 30-100°C
电导率法淀粉糊化温度测定及其影响因素的研究 莲藕淀粉糊化温度的测定
- 1、下载文档前请自行甄别文档内容的完整性,平台不提供额外的编辑、内容补充、找答案等附加服务。
- 2、"仅部分预览"的文档,不可在线预览部分如存在完整性等问题,可反馈申请退款(可完整预览的文档不适用该条件!)。
- 3、如文档侵犯您的权益,请联系客服反馈,我们会尽快为您处理(人工客服工作时间:9:00-18:30)。
4. 准确吸取 0.1ml 滤液和 2ml 铜试剂,置于 25ml 刻度试管中。
5. 将该试管置沸水浴中 6min,保持沸腾,加 2ml 磷钼酸试剂, 继续加热 2min。
6. 用自来水令试管冷却。加蒸馏水稀释至 25ml,堵住试管口(可 用带手套的姆指或手掌),反覆颠倒试管使之混匀。
7. 用分光光度计在 420nm 读取吸收值。 8. 测定样品淀粉糊化(熟化)度的计算:
测定样品光吸收-空白光吸收 糊化(熟化)度(%) = 全糊化样品光吸收-空白光吸收 ×100(%)
Байду номын сангаас240
操作程序
1. 先将风干样品细磨碎使全部通过 1mm 筛。再根据样品含淀粉 程度不同,准确称取两份样品各 100mg(纯淀粉)、或各 150mg(样品淀 粉含量 60%以上)、或各 200mg(样品淀粉含量 30—60%)、或各 300mg(样品淀粉含量 15—30%)、或各 400mg(样品淀粉含量 15%以 下),分别置于 25ml 刻度试管内。其中一份供制备“全糊化样品”, 另一份为“测定样品”。
如要得知样品的葡萄糖释放量和淀粉含量,则需增加以下步骤:
9. 建立葡萄糖标准曲线:吸取 0、0.1、0.2、0.3、0.4、0.5、0.6ml
241
标准葡萄糖溶液(1mg/ml)分别置于各有 2ml 铜试剂的试管中。按第 4 至第 7 步骤得出葡萄糖标准曲线。当样品称取量为 200mg 时,这些 试管分别代表每克样品含葡萄糖 0、125、250、375、500、625、750mg 的浓度。
242
“全糊化样品”的制备:向样品中加入 15ml 缓冲液,混匀后将 试管置于沸水浴中加热 1h(其间摇动 2~3 次),即为“全糊化样品”。 用自来水冷却试管,滴加适量蒸馏水使液面恢复到加热前的位置。与 “测定样品”一起进行以下步骤。
2. 向“测定样品”中加入 15ml 缓冲液。分别向“全糊化样品” 与“测定样品”中加入 1ml 酶溶液。另取一空试管加入 15ml 缓冲液 和 1ml 酶溶液,作为“空白”。在 40℃水浴中保温 1h,起初摇动一次, 以后每 15min 摇动一次。
饲料淀粉糊化度(熟化度)的测定1
DETERMINATION OF STARCH GELATINIZATION (COOKING DEGREE) IN FEED
熊易强 博士,美国大豆协会
前言
本文介绍的是目前美国饲料工业界普遍采用的测定淀粉饲料热 加工程度的方法。此方法实际上是已发表过的测定淀粉糊化度的经典 酶解法的简化。该经典酶解法测定淀粉糊化度是将未加工的“生”淀 粉(或含淀粉的饲料样品)在给定实验条件下的葡萄糖释放量定为零, 将充分煮熟的全糊化淀粉(或与上述含淀粉饲料同一来源的全糊化样 品)的葡萄糖释放量定为 100,以不同比例的“生样品”与“全糊化样 品”的混合物与对应的葡萄糖释放量建立直线回归;测定同一来源的 加工过的样品的葡萄糖释放量,根据回归公式,推算加工样品的糊化 度(见另文:测定高粱的加工程度和淀粉可利用率的改进酶法,熊易 强,S.J.Bartle,R.L.Preston,1990)。该经典方法在商业应用上有两个问 题:一是测定手续繁琐,费工耗时;二是生产中往往难以得到与所测 样品同一来源的未经加工的“生”淀粉(或饲料)样品。作者在美国饲 料部门工作期间,吸取生产单位的检测经验并加以改进,建立了本文 所介绍的简化方法,也是目前工业上采用的简化方法。此法是以加工 过的样品的葡萄糖释放量与同一来源的全熟化样品的葡萄糖释放量 之比值来直接表达淀粉糊化(熟化)度。更确切地讲,该比值所表达的 是在给定实验条件下淀粉酶解的有效率(度)。这一推算和表达方式不 仅省去了测定“生”样品葡萄糖释放量(对一般谷物来说,该数值为 淀粉含量的 20—30%)及建立回归公式的步骤;而且,在不需要得知 样品的葡萄糖释放量和样品的淀粉含量的情况下,可以直接用光吸收 的比值表达糊化(熟化)度,从而进一步省去了建立葡萄糖标准曲线的 步骤。需要指出的是,简化法所表达的淀粉糊化度,由于“零点”位 置的改变,与经典方法在概念和数值上都有所差别。但从动物对淀粉
10. 样品葡萄糖释放量和淀粉含量的计算: 样品葡萄糖释放量(mg/g) =(测定样品葡萄糖值*-空白葡萄糖值*)×200/称取样品量(mg) 样品淀粉含量(mg/g) =(全糊化样品葡萄糖值*-空白葡萄糖值*)×0.9×200/称取样品量 (mg) (*根据光吸收从葡萄糖标准曲线查找)
(刘瑞征 翻译)
1 首次发表于 1999 年 3 月
239
的利用率的角度来说,这一简化方法应该说是更有意义、更为直接的 表达。
设备
天平,灵敏度 0.001g。 恒温水浴。 分光光度计。
试剂
缓冲液 将3.7ml 冰醋酸(glacial acetic acid)和 4.1g 无水乙酸钠(anhydrous sodium acetate)(或 6.8g NaC2H3O2·3H2O)溶于大致 100ml 蒸馏水中, 定容至 1 立升,必要时可滴加乙酸或乙酸钠调整 pH 值至 4.5±0.05。 酶溶液 将 750mg 脱支酶(amyloglucosidase,Sigma,No.A-7255,浓度 12100 单位/g)溶于 50ml 蒸馏水。此溶液含粗制酶 15mg(或 180 单位/ml)。 测试当天配制。 蛋白沉淀剂 1. ZnSO4·7H2O,10%(w/v)蒸馏水溶液。 2. 0.5N NaOH。 铜试剂 将 40g 无水 Na2CO3 溶于大致 400ml 蒸馏水中,加 7.5g 酒石酸 (tartaric acid),溶解后加 4.5g CuSO4·5H2O。混合并稀释至 1 立升。 磷钼酸试剂 取 70g 钼酸(molybdic acid)和 10g 钨酸钠(sodium tungstate),加入 400ml 10%NaOH 和 400ml 蒸馏水。煮沸 20—40min 以驱赶 NH3。冷 却,加蒸馏水至大约 700ml,加 250ml 浓的正磷酸(85%H3PO4),用蒸 馏水稀释至 1 立升。 葡萄糖标准液 溶解 100mg 纯葡萄糖于 70ml 蒸馏水中,稀释至 100ml。测试当 天配制。