失血性休克及抢救实验报告
机能学实验报告(失血性休克)
\失血性休克的实验治疗一、实验目的1.观察家兔失血性休克对机体的机能变化及微循环变化2.探讨不同治疗方案对失血性休克的作用及机制二、实验原理1.失血性休克的原理：微循环障碍致微循环动脉血灌流不足，重要的生命器官因缺氧而发生功能和代谢障碍，是各型休克的共同规律。
休克时微循环的变化大致可分为以下三期，即微循环缺氧期、微循环淤血期和微循环凝血期。
（1）正常情况：①动静脉吻合支是关闭的②只有20%毛细血管轮流开放，有血液灌流③毛细血管开放与关闭受毛细血管前括约肌的收缩和舒张调节；（2）微循环缺氧期：①交感神经兴奋和肾上腺素、去甲肾上腺素分泌增多，小动脉，微动脉，后微动脉，毛细血管前括约肌收缩②动静脉吻合支开放③毛细血管血液灌流不足；（3）微循环淤血期①进入毛细血管的血液仍很少②毛细血管开放，血管床容积扩大，进入毛细血管内的血液流动很慢③毛细血管扩张淤血；（4）微循环凝血期①血管内淤血②广泛血栓形成。
2.阿拉明和多巴胺治疗失血性休克原理：阿拉明是α受体激动剂，具有明显的收缩血管作用。
小计量的多巴胺能够扩血管。
三、实验仪器设备大动物手术器械，输血输液装置，呼吸血压描记装置，气管插管，动脉插管，静脉插管，注射器若干，生理盐水，肝素，多巴胺及阿拉明。
四、实验方法与步骤1．动物称重与固定：将麻醉好的兔子称重后，仰卧位固定于动物手术台上。
2．备皮：剪去颈部、腹股沟手术部位的毛。
3．颈部手术：①行气管插管并连接呼吸换能器，记录呼吸；②行颈总动脉插管并连接压力换能器，记录动脉血压；③行颈外静脉插管并连接输液装置，输液用。
4．股部手术：于右侧腹股沟动脉搏动明显处沿动脉走向切开皮肤4—5cm，分离股动脉，夹上动脉夹。
5．观察与记录实验过程中动态观察记录的指标包括：一般情况，皮肤黏膜颜色、血压、心率和呼吸。
（1）放血前：手术完毕，观察与记录上述指标作为实验作为对照。
在颈静脉注射肝素，1ml/kg；（2）放血造成休克：①松开股动脉夹，用注射器抽血并观察血压变化，直至血压维持在平均45mmHg，并维持15min②测量放血量；（3）抢救：根据放血量取等量生理盐水注射，注射完后再注射生理盐水15ml+0.5ml/kg阿拉明，注射完后即为抢救即刻，记录上述指标。
家兔失血性休克及其抢救实验报告
家兔失血性休克及其抢救实验报告
实验一：家兔失血性休克模型的建立
实验目的：本实验旨在建立家兔失血性休克模型，以便探究该病情的发生机制及抢救
措施。
实验材料和方法：本次实验材料均来自成年雄性家兔，共有15只，体质量均为2.5
kg左右，每只家兔体内取得150 ml鲜血，并以此构建失血休克模型，放置于恒温器中保
持恒温，监测家兔体温、血氧饱和度、心率等生理指标。
实验结果：按照实验设定，放血完毕后，家兔的体表温比刚开始实验时期降低了 1.2℃以上，血氧饱和度下降到80-90%以下，而心率却急剧上升到160-170次/分钟之外，家兔
还出现了瘙痒、抽搐、呕吐等典型症状，明显发现其已经进入失血性休克状态。
结论：本实验成功建立了家兔失血性休克模型，可供今后失血性休克研究及抢救策略
研究使用。
实验目的：本实验旨在考察用于家兔失血性休克的抢救策略的有效性，并找出最佳的
抢救方案。
实验材料和方法：经过安置好各个参数后，按照实验设计，将15只家兔随机分成3组，每组5只：对照组、抗血清组、血液制品组，分别给予相应的抢救治疗，比较形成失
血性休克的家兔休克恢复情况。
实验结果：经过1个小时的抢救，家兔失血性休克模型的生理指标有显著改善。
其中，血液制品组的体表温降幅最低，血氧饱和度下降最小，心率最低，可见血液制品组的抢救
措施最为有效。
结论：本次实验证实，在家兔失血性休克抢救中，最佳抢救方案应该采用血液制品抢救，并取得良好治疗效果。
失血性休克实验报告
失⾎性休克实验报告综合实验三重症急救——失⾎性休克及抢救报告⼈：徐⼦岩实验名称：失⾎性休克实验时间：2017年5⽉25⽇14:00-22:00实验地点：仙林基础医学楼机能学实验室实验⼈员：主管——邢思妍主操作⼈——许雅丽仪器监护——杨雪助⼿——徐⼦岩实验⽬的：1.学习动脉插管测量和记录动脉⾎压并观察神经体液因素对动脉⾎压的调节作⽤。
2.复制家兔失⾎性休克模型，探讨失⾎性休克的发病机理并分析抢救措施。
3.观察失⾎性休克时和抢救过程中动物的代谢功能代谢变化及微循环改变。
4.观察不同药物对动物⾎压指标的影响，并学习其作⽤机制。
实验材料：[动物] 新西兰纯种⽩兔[药品] 20%乌拉坦、利多卡因注射液、0.9％氯化钠注射液、125U/ml肝素溶液、1％普鲁卡因，7.5％⾼渗盐⽔、5％葡萄糖、去氧肾上腺素注射液，异丙肾上腺素注射液，重酒⽯酸去甲肾上腺素注射液，盐酸肾上腺素注射液，佩尔（乌拉地尔），硝酸⽢油注射液。
[器材] ⼿术器械，注射器（1ml、5ml、10ml），动脉插管，压⼒换能器、⽣物信号采集处理系统、呼吸机。
针头（9号、16号）、头⽪针、动脉导管、⽓管插管、兔⼿术台、听诊器、压⼒换能器、HX200型呼吸流量换能器、RM6240多道⽣理信号采集处理系统、输⾎输液装置、微循环观察装置。
实验步骤：动物体征：体重1.92kg，排便量⼤，难⿇。
1. 家兔称重后⽿缘静脉缓慢注射20%乌拉坦（按5ml/kg）⿇醉。
待动物⿇醉后，于仰卧位固定在兔⼿术台上。
2．连接⼼电电极，在⽣物信号采集系统中记录⼼电图。
3．⼿术局部剪⽑，颈前正中切开⽪肤6-8cm，直⾄下颌⾓上1.5-2cm，⽤⽌⾎钳钝性分离软组织及颈部肌⾁，暴露⽓管及与⽓管平⾏的左右⾎管神经鞘，细⼼分离⼀侧鞘膜内的颈总动脉和迷⾛神经。
在⽓管下穿两根粗结扎线备⽤。
4．全⾝肝素化：经⽿缘静脉注射125U/ml的肝素1ml/Kg进⾏全⾝肝素化。
5．结扎左颈总动脉远⼼端，做左颈动脉插管，将导管与动脉结扎固定，接上压⼒换能器，在⽣物信号采集系统中记录⾎压。
【报告】实验7：失血性休克及其抢救
失血性休克及其抢救（浙江中医药大学第一临床医学院）【摘要】目的：复制兔失血性休克模型。
观察兔在失血性休克的表现，探讨失血性休克的发生机制。
了解失血性休克的抢救。
方法：用右颈总动脉放血，左颈总动脉用以测量血压，右颈总静脉输血、输液进行抢救。
结果：少量放血时，家兔血压及呼吸下降，但是在短时间内回升；大量放血时（50ml），血压、呼吸下降较快且自我恢复能力降低；进行输血输液等治疗措施后，大致恢复正常。
结论：少量失血，机体的自身代偿作用可以使血压恢复正常；失血过多，机体会发生失代偿作用；经输血输液等治疗后，血压可恢复基本正常。
【关键词】失血性休克抢救1 实验材料血压换能器，RM6240系统，1ml，10ml，50ml注射器，止血钳，剪刀，眼科剪，动脉夹，棉线，氨基甲酸乙酯，生理盐水，肝素等。
2 实验对象家兔3 实验步骤3.1实验系统连接及参数设置：血压换能器固定在铁支柱上，高度与心脏同一平面。
压力换能器输出线接微机生物信号采集处理系统输入通道。
3.2手术准备3.2.1 麻醉固定取家兔一只，称重2kg；用20%氨基甲酸乙酯按5ml/kg沿耳缘静脉缓慢注射，用量10ml后麻醉不成功，又注射了3ml，共注射13ml，至呼吸深而慢，皮肤夹捏反射迟钝为至。
背位固定。
3.2.2 颈部手术剪去颈前被毛，颈前正中切开皮肤6~7cm，直至下颌角上1.5cm，用止血钳钝性分离软组织及颈部肌肉，暴露气管及气管平行的左、右血管神经鞘。
用玻璃分针分离两侧颈总动脉，穿两根线备用。
分离右侧颈外静脉，穿两根线备用。
3.2.3 颈总动脉插管1）在左颈总动脉远心端结扎，近心端用动脉夹夹住，并在动脉下面穿线备用。
用眼科剪在靠近结扎处动脉壁上剪一“V”字形切口，将动脉插管向心方向插入颈总动脉内，扎紧固定。
打开动脉夹。
2）稍稍提起颈静脉远心端的细线，用眼科剪朝心脏方向剪一“V”字形切口，将插管向心方向插入颈静脉内，扎紧固定。
3）右颈总动脉连接已肝素化的50ml注射器，内含3ml肝素。
机能综合实验报告失血性休克
机能综合实验报告失血性休克一、实验目的通过模拟失血性休克这种常见危重病情，了解休克的相关知识，熟悉休克时机体各系统生理功能变化，掌握休克的监测、抢救措施和护理技巧等基本知识和技能。
二、实验原理失血性休克是指因大量失血造成心脏无法维持血液循环所形成的一种危重急症，是失血后机体对风险因素的一种自保反应。
失血性休克的发生，必须存在某种形式的有效循环血量严重不足，主要表现为低血容量、低血压和组织缺氧等。
机体对失血休克的反应即是消化道道、皮肤脉管收缩、淋巴系统流速下降、交感神经系统生物反应降低，以利用有限的血容量为机体的重要器官供应足够的氧气和营养。
当出现失血休克时，必须尽快进行抢救，以保证机体各系统生理功能得以维持，及时防止危及生命的情况的发生。
三、实验器材及药品1. 实验仪器及设备：生命体征监护仪、氧气瓶及氧气面罩、Ⅲ 型汇流管等。
2. 实验药品及溶液：生理盐水、血液置换液及血液净化液等。
四、实验过程1. 了解实验仪器及设备的使用方法、药品及溶液的配制方法。
2. 请实验被试躺在床上，坚持卧床休息。
3. 用生命体征监护仪记录患者心率、呼吸频率、血压、体重等指标，并设置报警上下限。
4. 为患者取血检查，模拟患者失血量，测量本次失血量，并记录血红蛋白、血细胞比容等5. 开始进行失血性休克模拟实验。
通过静脉输液吊盐水和生理盐水来控制患者的血容量，进一步降低患者的血容量，使失血量达到实验设置的程度。
6. 在休克过程中，监测患者生命体征的变化，如心率、呼吸、血压等。
当患者发生失去反应时，应立即进行紧急抢救。
7. 进行抢救措施，包括输液、打氧气等，及时恢复患者的生命体征状态。
8. 护理措施，如保温、检查压疮等。
五、实验结果与分析1. 实验过程中，患者逐渐进入失血休克状态，生命体征逐渐变差，如心率增快并出现心律不齐，血压下降，呼吸困难等。
3. 实验结果还表明，在失血性休克中应该根据患者的情况及时采取抢救措施，如输液、打氧气，及时恢复患者的生命体征状态。
家兔失血性休克及抢救实验报告
--------------------- 精选公文范文------------------家兔失血性休克及抢救实验报告篇一：休克实验报告家兔失血性休克及其抢救实验人员5 人第2 组班一、实验目的1. 复制家兔失血性休克模型，观察少量失血和大量失血对家兔动脉血压、心率、皮肤和粘膜颜色的影响。
探讨其发生机制。
2. 用颈外静脉输血和输液的方法抢救失血性休克，观察抢救过程中家兔动脉血压、心率、皮肤和粘膜颜色的变化。
二、实验材料和方法实验器械：兔手术台，常规手术器械，注射器，动脉夹，动脉插管，电刺激连线，血压换能器，三通管，铁架台，棉线，纱布实验仪器：电脑，RM6240 生物信号采集系统---------- 精选公文范文----------实验药品：20%氨基甲酸乙酯，肝素，生理盐水/10g三、实验对象家兔1 只由浙江中医药大学动物实验中心提供四、实验步骤1、仪器调试：首先打开电脑，选择MedLab 生物信号处理系统；从第1、2、3 通道中选择1 个通道，记录动脉血压。
其次将血压换能器连接线与相应的通道相连，检查换能器是否正常,加肝素溶液排除空泡，先清零，血压0mmH2、家兔称重、麻醉和固定取家兔一只，称重：，用20%氨基甲酸乙酯以5ml /Kg （体重）, 耳缘静脉缓慢注射麻醉, 共注射14ml, 至呼吸深而慢、反射迟钝（角膜反射、夹肢反射）为止。
把兔子以背位固定法固定。
3、麻醉起效后手术颈部手术——左颈总动脉、右颈外静脉、右颈总动脉插管------- 精选公文范文----------23（1）颈部备皮，作颈部，正中 3～5cm 切口，左右颈总动脉分离，穿线标记，备用。
（2）左颈总动脉插管术 --- 测血压 动脉插管及换能器肝素化，左颈总 动脉远心端结扎，近心端动脉夹夹闭， 动脉前壁倒 “V ”切口动脉插管插入， 结扎 固定。
放开动脉夹记录正常动脉血压。
（ 3）右颈外静脉插管术 —输血输液排掉输液管中的空气。
失血性休克实验报告
失血性休克实验报告失血性休克实验报告休克，作为一种严重的生理状态，是由于全身有效循环血量不足而导致的组织灌注不足。
其中，失血性休克是一种常见的休克类型，通常由于大量失血引起。
为了深入了解失血性休克的发展过程以及可能的治疗方法，我们进行了一系列的实验。
实验一：失血性休克的模拟在这个实验中，我们使用了动物模型来模拟失血性休克的过程。
选择小鼠作为实验对象，通过控制失血量来观察休克的发展过程。
首先，我们将小鼠随机分为两组，一组为实验组，一组为对照组。
实验组的小鼠将被抽取一定量的血液，模拟大量失血的情况，而对照组的小鼠则不进行任何处理。
在实验进行的过程中，我们密切观察了小鼠的生理指标，如血压、心率、呼吸等。
结果显示，实验组的小鼠在失血后很快出现了血压下降、心率加快以及呼吸急促等症状，而对照组的小鼠则保持了相对稳定的生理状态。
实验二：失血性休克的影响因素在实验一的基础上，我们进一步探究了失血性休克的影响因素。
我们改变了实验组小鼠的失血速度，以模拟不同程度的失血情况。
结果显示，失血速度的增加导致了休克的发展更为迅速。
失血速度越快，小鼠出现休克的时间越早，并且休克的程度也更加严重。
这一结果表明，失血速度对于休克的发展过程具有重要的影响。
实验三：失血性休克的治疗方法在实验一和实验二的基础上，我们进一步探究了失血性休克的治疗方法。
我们尝试了不同的治疗手段，如输血、血管活性药物等，来评估它们对休克的影响。
结果显示，输血可以明显改善休克的症状，提高小鼠的生存率。
而血管活性药物的使用则对休克的治疗效果有限。
这一结果提示，输血是目前治疗失血性休克最有效的方法之一。
讨论与结论通过以上实验，我们对失血性休克的发展过程以及可能的治疗方法有了更深入的了解。
失血性休克的发展过程可以迅速而严重，而失血速度对于休克的发展具有重要的影响。
在治疗方面，输血是一种有效的治疗手段，可以明显改善休克的症状。
然而，我们也意识到实验中存在一些局限性。
失血性休克及其抢救实验报告
失血性休克及其抢救实验报告摘要：本实验旨在探讨失血性休克的发病机制及抢救方法。
实验采用动物模型，对不同程度的失血性休克进行模拟，并进行适当的抢救措施。
实验结果表明，适时的输血和容量复苏是抢救失血性休克的关键，能有效恢复循环系统功能，提高动物存活率。
引言：失血性休克是一种常见的急性危重症，严重威胁患者的生命。
尽早识别和抢救失血性休克可以有效提高患者的生存率。
目前，输血和容量复苏是常用的抢救措施，但对于失血性休克的最佳抢救方法仍有争议。
因此，本实验拟通过动物模型的建立，模拟失血性休克情况，评估不同抢救措施的效果，为临床抢救工作提供指导。
材料与方法：1.实验动物：选取健康的实验动物，共40只。
2.实验分组：将实验动物随机分为四组，每组10只。
-A组：正常对照组，不接受任何处理。
-B组：模拟轻度失血性休克组，失血量为全血量的10%。
-C组：模拟中度失血性休克组，失血量为全血量的20%。
-D组：模拟重度失血性休克组，失血量为全血量的30%。
3.实验操作：-通过穿刺法取得实验动物的全血量，确定失血量。
-对B、C、D组实施相应失血量的失血模拟。
-适时给予B、C、D组输注血液或盐水进行容量复苏。
-监测各组动物的生命体征变化和心血管功能参数。
4.实验指标：-血压、心率、血氧饱和度、尿量等生命体征指标的监测。
-大血管压力、心输出量等心血管功能参数的监测。
-动物的存活率和病理切片观察。
结果：1.生命体征变化：B、C、D组实验动物在失血后，血压、心率和血氧饱和度明显下降，尿量减少。
2.心血管功能参数：B、C、D组实验动物的大血管压力和心输出量显著低于正常对照组。
3.存活率：B组的存活率为90%，C组为70%，D组为40%。
4.病理切片观察：D组实验动物出现明显的组织坏死、器官功能受损等病理变化。
讨论：实验结果表明，失血性休克会导致动物的心血管功能受损，严重影响其生命体征和生存率。
容量复苏是抢救失血性休克的主要措施，早期输血和适时补液能有效维持循环系统功能，提高动物的存活率。
失血性休克及其抢救实验报告
家兔的失血性休克及其抢救【摘要】1.目的：复制兔失血性休克模型；观察兔在失血性休克时的表现及循环变化；探讨失血性休克的发生机制及救治方法；了解失血性休克抢救。
2.方法：第二章微机生物信号采集处理系统，第四章动物实验技术。
3.结果：少量放血时，家兔血压及呼吸下降，但是在短时间内回升；大量放血时（45ml），血压、呼吸下降较快且自我恢复能力降低；进行输血输液等治疗措施后，大致恢复正常。
4.结论：少量失血，机体的自身代偿作用可以使血压恢复正常；失血过多，机体会发生失代偿作用；经输血输液等治疗后，血压可恢复基本正常。
【关键词】休克；失血性休克；微循环【Abstract】1. Purpose: copy rabbit uncontrolled hemorrhagic shock model; Observe the rabbit uncontrolled hemorrhagic shock performance and circulation of change; Discusses the uncontrolled hemorrhagic shock the pathogenesis and treatment methods; Understand the rescue uncontrolled hemorrhagic shock. 2. Methods: the second chapter microcomputer biological signal acquisition and processing system, the fourth chapter animal experiment technology. 3. The result: a few bloodletting, blood pressure and breath of decline, but in a short time, rebounded, A large bloodletting (45 ml), blood pressure, respiratory decline faster and self recover capacity reduction; Intravenous treatment measures for a blood transfusion, roughly returned to normal. 4. Conclusion: a small amount of blood, the body's own compensatory function can make blood pressure returned to normal; Excessive blood loss, the body will happen decompensated role; The blood transfusion intravenous treatment, bloodpressure may restore basic normal.【Key Word】Shock; Uncontrolled hemorrhagic shock; microcirculation 1实验材料1.1对象：家兔2.7kg；1.2实验试剂：氨基甲酸乙酯，肝素，生理盐水；1.3实验仪器：铁架台，婴儿秤，RM6240生物信号采集系统，手术剪1把，止血钳，镊子，兔手术台，注射器及针头，血管插管，动脉夹，血压换能器，输液装置，照明灯，棉线若干，纱布；2实验方法2.1实验装置与连接：①将压力换能器固定于铁支架上，使换能器的位置尽量与实验动物的心脏在同一水平面上。
失血性休克救护实训报告
一、实训背景失血性休克是临床常见的急危重症之一，主要由于大量失血导致有效循环血量锐减，引起组织器官灌注不足，进而导致代谢障碍和器官功能障碍。
为提高我院医护人员对失血性休克的急救处理能力，保障患者生命安全，特组织本次失血性休克救护实训。
二、实训目的1. 熟悉失血性休克的临床表现、诊断要点及治疗原则。
2. 掌握失血性休克的急救流程及各项操作技术。
3. 提高团队协作能力，增强应对突发公共卫生事件的能力。
三、实训内容1. 理论学习（1）失血性休克的病因、病理生理、临床表现、诊断要点及治疗原则。
（2）失血性休克的急救流程及各项操作技术。
（3）失血性休克的预防措施。
2. 实践操作（1）模拟失血性休克患者的抢救过程，包括评估、监测、止血、扩容、纠酸、抗休克治疗等。
（2）练习各项操作技术，如静脉穿刺、动脉穿刺、中心静脉置管、输血、补液等。
（3）团队合作演练，提高应对突发公共卫生事件的能力。
四、实训过程1. 理论学习阶段通过集中授课、案例分析、讨论等形式，使参训人员掌握失血性休克的病因、病理生理、临床表现、诊断要点及治疗原则。
2. 实践操作阶段（1）模拟抢救过程：将参训人员分为若干小组，每组模拟一位失血性休克患者，进行抢救演练。
演练内容包括评估、监测、止血、扩容、纠酸、抗休克治疗等。
（2）操作技术练习：在模拟抢救过程中，参训人员练习各项操作技术，如静脉穿刺、动脉穿刺、中心静脉置管、输血、补液等。
（3）团队合作演练：针对突发公共卫生事件，进行团队合作演练，提高应对能力。
3. 总结与反馈实训结束后，组织参训人员进行总结，针对存在的问题进行反馈，并提出改进措施。
五、实训成果1. 参训人员对失血性休克的病因、病理生理、临床表现、诊断要点及治疗原则有了更加深入的了解。
2. 参训人员掌握了失血性休克的急救流程及各项操作技术。
3. 提高了参训人员的团队协作能力和应对突发公共卫生事件的能力。
六、实训体会1. 失血性休克是一种严重的急危重症，救治过程中时间就是生命，必须迅速、准确地判断病情，采取有效的救治措施。
失血性休克及其抢救实验报告
失血性休克及其抢救实验报告实验名称：失血性休克及其抢救
实验目的：研究失血性休克的病因、临床表现、抢救方法及效果，提高对该病的认识与处理水平。
实验对象：实验动物为大鼠，共50只，均为雄性，体重200-250g。
实验方法：
1. 建立失血性休克模型
将大鼠随机分为5组，每组10只。
分别施行不同程度的失血，建立失血性休克模型，控制失血量在10％、20％、30％、40％和50％。
2. 抢救方法
输注0.9％生理盐水：对照组，在建立失血性休克后立即注射等体积0.9％生理盐水。
输注白蛋白：在失血后30分钟开始输注50％白蛋白，每只动物按10ml/kg计算，以1ml/min的速度输注。
输注血浆：在失血后30分钟开始输注新鲜血浆，每只动物按10ml/kg计算，以1ml/min的速度输注。
注射多巴胺：在失血后30分钟开始注射多巴胺，每只动物按5μg/kg计算，以1μg/min的速度注射。
注射血管紧张素：在失血后30分钟开始注射血管紧张素，每只动物按5μg/kg计算，以1μg/min的速度注射。
3. 结果观察
观察血压、呼吸、心率等指标变化，记录抢救30分钟、60分钟、120分钟后的存活情况和死亡率。
实验结论：
1. 输注白蛋白、血浆能够有效提高血容量，维持血压稳定，降低死亡率。
2. 注射多巴胺和血管紧张素对保护脏器有一定作用，但对降低死亡率的效果不明显。
3. 在抢救失血性休克时，应注重维持血容量稳定，保证血液流通，早期抢救有利于提高存活率。
本实验为科学研究之目的，保证动物受到合理对待并已获得相关实验室伦理委员会批准。
失血性休克实验报告
失血性休克实验报告
实验目的：
研究失血性休克对生物体的影响，了解失血性休克的病理生理过程。
实验材料与方法：
材料：小白鼠（实验组）、生理盐水、失血设备
方法：
1. 将10只具有相似体重的小白鼠随机分为两组：实验组和对照组。
2. 实验组小白鼠经颈动脉置管后，在规定时间内抽取相应量的血液，模拟失血性休克。
3. 对照组小白鼠同样进行颈动脉置管，但没有抽取血液。
4. 实验组和对照组小白鼠在抽取血液前后进行体温、心率、呼吸等指标的监测。
5. 实验结束后，对实验组小白鼠进行解剖，观察器官的病理变化。
实验结果：
1. 实验组小白鼠在血液抽取后体温逐渐下降，心率和呼吸频率逐渐增加。
2. 实验组小白鼠出现晕厥、乏力、腹泻等失血性休克症状。
3. 实验组小白鼠在解剖时观察到体内器官质地松软，心脏和肝脏呈淡黄色等病理变化。
结论：
失血性休克会导致生物体内循环血量减少，引起低血压、组织缺氧等一系列病理生理反应。
实验结果表明，在失血性休克的早期阶段，生物体会通过自身代偿机制进行冲击反应，但随着失血的持续增加，生物体逐渐耗竭其代偿能力，出现休克症状，并对器官造成明显的损害。
因此，对于失血性休克的治疗，应尽早补充血容量，纠正低血容量状态，以保护重要器官功能。
失血性休克及抢救实验报告
失血性休克及抢救实验报告失血性休克及抢救[目的]1．学习动脉插管测量和记录动脉血压并观察神经体液因素对动脉血压的调节作用；2．复制家兔失血性休克模型，探讨失血性休克的发病机理并分析抢救措施。
[动物] 家兔，体重2.5~3.5kg，性别不拘。
[药品] 20%乌拉坦、1%普鲁卡因、0.9％氯化钠注射液、125U/ml 肝素溶液、7.5％高渗盐水、5％葡萄糖、低分子量右旋糖苷、氨茶碱、去甲肾上腺素、乙酰胆碱、地塞米松、多巴胺、酚妥拉明、肾上腺素、异丙肾上腺素。
[器材] 手术器械，注射器（1ml、5ml、10ml），动脉插管，压力换能器、生物信号采集处理系统、呼吸机。
针头（9 号、16 号）、头皮针、动脉导管、气管插管、兔手术台、听诊器、压力换能器、HX200 型呼吸流量换能器、RM6240 多道生理信号采集处理系统、输血输液装置、微循环观察装置。
[方法]1. 仪器安装、调试将压力换能器固定于铁支架上，其位置应与仰卧家兔心脏在同一平面，输出线连接生物信号采集系统。
在电脑的实验软件中找到循环系统，进入系统的实验信号记录状态，调节仪器参数。
2．家兔麻醉及实验前准备家兔称重后耳缘静脉缓慢推注20%乌拉坦5ml/kg 体重。
静推麻醉药品速度不要太快，同时观察家兔的结膜反射、瞳孔大小、呼吸心跳等生命体征。
待动物麻醉后，将其仰卧固定于手术台上，固定四肢，用棉绳钩住门齿，将绳拉紧并缚于兔台铁柱上。
①分离颈总动、静脉及颈部神经：手术局部剪毛，颈前正中切开皮肤6-8cm，用止血钳钝性分离软组织及颈部肌肉，暴露气管、颈总动脉、颈静脉、迷走神经，用玻璃分针仔细分离右侧神经，穿细线。
②分离股动脉：剪去腹股沟内侧被毛，分离一侧股动脉，做动脉插管，以备放血用。
③分离气管：分离气管，做气管插管，插管一端连接呼吸流量换能器。
④暴露小肠襻：在腹部左侧距中线5cm 处剪毛，做长度约6cm 的纵行切口，打开腹腔。
将小肠襻置于微循环观察盒内，利用医学图象分析系统，打开微循环测量项，通过计算机采集图象，观察失血前后微循环变化。
失血性休克_实验报告
1. 建立失血性休克动物模型，观察休克过程中心脏、肾脏及微循环的变化。
2. 了解抢救失血性休克时扩容血容量的意义，并探讨不同血管活性药物治疗失血性休克的疗效。
3. 观察肠系膜微循环，了解休克的机理。
二、实验材料与仪器1. 实验动物：雄性SD大鼠6只，体重200-250g。
2. 仪器：手术显微镜、手术器械、生理盐水、肝素、肾上腺素、去甲肾上腺素、生理盐水、恒温箱、微循环显微镜等。
三、实验方法1. 动物分组：将6只大鼠随机分为3组，每组2只。
对照组、实验组1、实验组2。
2. 建立失血性休克模型：（1）将大鼠置于恒温箱中预热至37℃。
（2）采用腹主动脉插管法，将大鼠的腹主动脉结扎，使血液流出，建立失血性休克模型。
（3）观察失血性休克过程中心脏、肾脏及微循环的变化。
3. 治疗方案：（1）对照组：不进行任何治疗。
（2）实验组1：给予扩容治疗，静脉注射生理盐水。
（3）实验组2：在扩容治疗的基础上，给予血管活性药物治疗，静脉注射去甲肾上腺素。
4. 观察指标：（1）心率、血压、呼吸频率等生命体征。
（2）心脏、肾脏及微循环的变化。
（3）肠系膜微循环的变化。
1. 对照组：心率、血压、呼吸频率等生命体征在实验过程中逐渐下降，直至死亡。
心脏、肾脏及微循环出现明显障碍。
2. 实验组1：心率、血压、呼吸频率等生命体征在扩容治疗后有所回升，但仍然低于正常水平。
心脏、肾脏及微循环障碍得到一定程度的改善。
3. 实验组2：心率、血压、呼吸频率等生命体征在扩容治疗和血管活性药物治疗后明显回升，接近正常水平。
心脏、肾脏及微循环障碍得到显著改善。
五、讨论与分析1. 失血性休克是临床常见的危急重症，其发病机制复杂，主要表现为微循环障碍、组织灌注不足和器官功能障碍。
2. 本实验通过建立失血性休克动物模型，观察到休克过程中心脏、肾脏及微循环的变化，为临床治疗提供了理论依据。
3. 扩容治疗是抢救失血性休克的基本措施，可改善组织灌注，减轻器官功能障碍。
失血性休克及其抢救实验报告
失血性休克及其抢救实验报告失血性休克及其抢救实验报告休克是一种严重的病理状态，常见的类型包括失血性休克、感染性休克和心源性休克等。
其中，失血性休克是由于大量出血导致血容量不足，无法维持组织器官的正常灌注，从而引发一系列生理学和代谢学紊乱的疾病状态。
本文将重点探讨失血性休克的机制以及抢救实验报告。
失血性休克的机制主要涉及三个方面：血容量减少、循环动力学改变和代谢紊乱。
血容量减少是由于大量出血导致的，这会引起有效循环血量的减少，使得组织器官的灌注受到限制。
循环动力学改变包括心输出量的降低和外周血管阻力的增加，这是机体为了维持血压而采取的代偿机制。
然而，这种代偿机制在长时间内无法持续，导致组织器官的灌注进一步受损。
代谢紊乱表现为细胞内外电解质和酸碱平衡的紊乱，导致细胞功能受损。
为了研究失血性休克的抢救方法，我们进行了一系列的实验。
实验对象为实验室小鼠，分为实验组和对照组。
实验组小鼠经过大量出血后，立即进行抢救措施，包括输注红细胞悬液、血浆和血小板等。
对照组小鼠则未进行任何抢救措施，观察其病情发展。
实验结果显示，实验组小鼠在抢救措施后，血压逐渐恢复正常，心率稳定。
而对照组小鼠则出现血压持续下降、心率加快的情况。
此外，实验组小鼠的组织器官灌注明显好于对照组，肝脏、肾脏等器官的功能也得到保护。
这表明，及时进行输血和补液等抢救措施对于失血性休克的治疗非常重要。
进一步的实验还研究了不同抢救措施的效果。
我们发现，单纯输注红细胞悬液并不能有效改善失血性休克的病情，而联合输注血浆和血小板等血液制品则能够更好地恢复血容量和改善循环动力学。
此外，我们还尝试了使用血管活性药物来扩张外周血管，以减轻心脏负担。
实验结果显示，血管活性药物在一定程度上能够改善血流动力学参数，但并不能完全恢复正常。
综上所述，失血性休克是一种严重的病理状态，需要及时进行抢救。
抢救措施包括输血、补液和使用血管活性药物等，其中联合输注血浆和血小板等血液制品的效果更好。
失血性休克及抢救
结扎动脉远心端，将另一套线拨 向远心端后于近心端上动脉夹；剪开动 脉一小切口，将动脉插管插入并结扎好。
第四页，共二十二页。
6. BL系统心电导线连接 (了解一下，这步可不做) 将导针插入四肢皮下：右前肢——红色，左前肢——黄色，左下肢——绿
色，右后肢——黑色。 7. BL系统操作：
第二十页，共二十二页。
休克的防治：
一、积极预防休克的发生
二、早期发现，及时合理治疗
1. 补充循环血量〔扩容〕
补液原那么是“需多少，补多少〞
2. 纠正酸中毒和电解质紊乱 3. 合理使用血管活性药物
4. 保护细胞的药物
第二十一页，共二十二页。
内容总结
失血性休克。4.全身肝素化：耳缘静脉注射肝素〔0.5ml/100g〕。将动脉插管接入 压力换能器并用肝素生理盐水将气体排出。7. 放血〔思考：两次放血分别模拟休克哪期 。8.回输血〔思考：输血原那么。因此毛细血管前阻力明显大于后阻力。4. 保护细胞的 药物
2. 固定兔子于手术板
3. 气管插管：正中线剪开皮肤，钝性别离胸 骨锁骨肌中部，暴露气管，套单线，剪切 气管〔倒T字口〕进行插管，结扎固定。
4.全身肝素化：耳缘静脉注射肝素
第三页，共二十二页。
5. 右颈总动脉插管
钳夹胸骨锁骨肌右半侧外拉，另 一止血钳钝性纵向别离深部组织，找出 右劲总动脉，并别离开与之伴行的迷走 神经，于动脉下方穿2条线。
第二次放血：15min内放血使BP缓慢降至35~45mmHg，记 录BP、RR。继续放血使BP维持在35~45mmHg 30min， 记 录BP、RR。
8.回输血〔思考：输血原那么？〕
回输血所放血液，5min后记录BP、RR。
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失血性休克及抢救
[目的]
1．学习动脉插管测量和记录动脉血压并观察神经体液因素对动脉血压的调节作用；
2．复制家兔失血性休克模型，探讨失血性休克的发病机理并分析抢救措施。
[动物] 家兔，体重 2.5~3.5kg，性别不拘。
[药品] 20%乌拉坦、 1%普鲁卡因、 0.9％氯化钠注射液、 125U/ml 肝素溶液、 7.5％高渗盐水、5％葡萄糖、低分子量右旋糖苷、氨茶碱、去甲肾上腺素、乙酰胆碱、地塞米松、多巴胺、
酚妥拉明、肾上腺素、异丙肾上腺素。
[器材] 手术器械，注射器（ 1ml、 5ml、 10ml），动脉插管，压力换能器、生物信号采集处理
系统、呼吸机。
针头（ 9 号、 16 号）、头皮针、动脉导管、气管插管、兔手术台、听
诊器、压力换能器、 HX200 型呼吸流量换能器、 RM6240 多道生理信号采集处理系
统、输血输液装置、微循环观察装置。
[方法]
1. 仪器安装、调试
将压力换能器固定于铁支架上，其位置应与仰卧家兔心脏在同一平面，输出线连接生物信
号采集系统。
在电脑的实验软件中找到循环系统，进入系统的实验信号记录状态，调节仪器
参数。
2．家兔麻醉及实验前准备
家兔称重后耳缘静脉缓慢推注 20%乌拉坦 5ml/kg 体重。
静推麻醉药品速度不要太快，
同时观察家兔的结膜反射、瞳孔大小、呼吸心跳等生命体征。
待动物麻醉后，将其仰卧固
定于手术台上，固定四肢，用棉绳钩住门齿，将绳拉紧并缚于兔台铁柱上。
①分离颈总动、静脉及颈部神经：手术局部剪毛，颈前正中切开皮肤 6-8cm，用止血钳
钝性分离软组织及颈部肌肉，暴露气管、颈总动脉、颈静脉、迷走神经，用玻璃分针
仔细分离右侧神经，穿细线。
②分离股动脉：剪去腹股沟内侧被毛，分离一侧股动脉，做动脉插管，以备放血用。
③分离气管：分离气管，做气管插管，插管一端连接呼吸流量换能器。
④暴露小肠襻：在腹部左侧距中线 5cm 处剪毛，做长度约 6cm 的纵行切口，打开腹腔。
将小肠襻置于微循环观察盒内，利用医学图象分析系统，打开微循环测量项，通过计
算机采集图象，观察失血前后微循环变化。
⑤动脉插管：结扎左颈总动脉远心端，用动脉夹夹住近心端，在动脉下再穿一根线备用。
用眼科剪在靠近结扎处动脉壁剪一 V 字型切口，将充满肝素的动脉插管向心脏方向插
入颈总动脉内，扎紧固定。
3.观察记录正常血压及神经体液调节和药物刺激对血压的影响
①打开动脉夹，描计一段正常血压波动曲线作为对照，记录收缩压、舒张压和平均动脉压。
②调节电刺激器，以中等强度（从 3V 开始逐渐增强到合适强度）、频率 30Hz、波宽为 2ms
的连续电脉冲刺激右侧迷走神经，记录血压变化。
③待血压恢复正常后，静脉注射 0.1g/L 去甲肾上腺素 0.3ml，记录血压变化；待血压恢复正常后，静脉注射 0.01g/L 乙酰胆碱（ 0.1ml/kg），记录血压变化。
4.失血性休克模型的复制及抢救。
[实验结果]
1.实验前观察
雄兔，体重2.778kg，毛色、唇色正常，泄殖孔处微黄，呼吸音未见异常。
2.实验步骤
（1）颈动脉、气管插管；心电图
①动脉插管后BP一度高至130mmHg（SP），插管时发现有血栓存在，使抽血困难，脉压下降，后结扎
该处在血栓下方重新插管。
②剪开气管时出血较多（可能剪到环状软骨附近，血供丰富），气管插管时发现气管中有较大血块，
可能为手术中有血液进入气管导致，但也有可能是实验动物自身问题。
同时当插管深入时，家兔剧烈挣扎。
实验过程中，插管中有较多痰液，导致呼吸波不正常。
③心电图插针后始终有基电波干扰，图像无法正常解读。
（2）微循环观察
微循环情况良好，红细胞清晰可见，Cap、靠近小动脉的Cap中RBC均多而快。
（3）建造休克模型
从颈动脉处抽血60ml左右（因血栓存在，开始时抽血少而慢），血压下降至40mmHg左右，经过15min代偿，血压回升不明显，认为模型建造成功，血气分析后开始救治。
（4）救治：
药物目的现象
生理盐水 50ml补充血容量SP上升至90mmHg左右，DP>50mmHg,脉压差40mmHg左右
NaHCO3 9ml纠酸SP进一步回升，DP、脉压差未见明
显变化
地塞米松 0.3ml抗炎无明显变化
右旋糖酐 7ml 改善微循环，消除血管内
红细胞聚集和血栓形成
DP降至40mmHg左右，故停止
酚妥拉明 0.32ml扩血管SP、DP下降
自体血/生理盐水混合液（1:1）补充血容量，升血压
见微循环明显改善，SP>90mmHg,DP
约70mmHg，脉压差下降
（5）尸检：
①明显肺水肿
②颈总动脉插管处有明显血栓
③心脏略大，包膜增厚
④气管内有泡沫样液体
（6）血气汇总
正常休克救治后
Na (mmol/L)141136140
K (mmol/L) 3.0 2.8 3.0
Cl (mmol/L)102————TCO2 (mmol/L)309 14
BUN (mg/dL)17————
Glu (mg/dL)189————
Hct %PCV351916
pH 7.4317.187 7.212 PCO2 (mmHg)43.522.5 32.0 HCO3 (mmol/L)28.98.6 12.9 BEecf (mmol/L)5-20 -15 AnGap (mmol/L)13————
Hb* (g/dL)11.9 6.5 5.4
推测/呼碱合并代酸酸纠正未彻底（7）呼吸统计
平均呼气峰流量(ml/s)平均吸气
谷流量
(ml/s)
最大呼气
峰流量
(ml/s)
最小吸气
谷流量
(ml/s)
呼吸率
(次/分)
平均呼吸
深度
(ml/s)
每分通气
量
ml
麻醉后32.68-36.4538.93-42.754469.13934.3876抽血后32.11-42.9438.17-45.046075.041319.0423休克代
偿
13.93-15.7416.79-16.796329.67826.5338生理盐
水
22.28-22.4726.72-24.436944.75961.8658纠酸17.13-20.7520.61-22.96237.88806.282
实验操作
呼吸
现象
麻醉后各项数据基本正常
（8）血压统计
收缩压
(mmHg)
舒张压
(mmHg) 平均压 (mmHg) 脉压差 (mmHg) 心率 (次/分) 间期 (ms) 麻醉后 129.58 109.95 119.37 19.63 291 205.85 抽血后 46.17 32.08 36.58 14.08 246 243.56 休克代偿 94.37 59.04 71.55 35.33 226 265.67 生理盐水 89.87 57.78 68.8 32.1 228 263.13 纠酸 83.24 46.7 58.58 36.53 231 259.67 地塞米松 78.41 43.68 54.87 34.73 229 262.4 右旋糖酐 79.02 44.67 56.97 34.35 224 267.33 酚妥拉明 78.63 44.26 56.17 34.38 225 266.64 自体血 91.04
70.18
82.23
20.86
216
277.79
抽血后
吸气量基本增加，呼气量不变；呼吸率增高；呼吸深度加深。
生理盐水
呼气量、吸气量和呼吸深度都有所回升，呼吸频率依旧加快。
纠酸
呼气量有所下降，而吸气量不变。
呼吸率和呼吸深度有所下降
之后步骤，因忘记夹闭软管，所以不可取用。
但可明显看出自体血回输后，呼吸频率增快。
实验操作
血压
现象
麻醉后各项数据基本正常
抽血后收缩压、舒张压明显降低，心率降低
休克代偿收缩压、舒张压明显回升，且收缩压回升幅度更大，但仍都小于正常值；脉压差增大。
微循环中出现血细胞堆积，血流减慢，大量
毛细血管关闭。
生理
盐水
收缩压、舒张压无明显变化、甚至有所降低。
纠酸血压有所下降
地塞米松血压仍在下降
右旋糖酐血压无明显变化，微循环有所改善酚妥拉明血压无明显变化
自体血舒张压、收缩压立刻明显回升，微循环明显
改善。
讨论
原始实验记录如下
血气。