黄蜀葵花总黄酮研究进展_周雷
黄蜀葵花中黄酮类成分对前脂肪细胞增殖、分化及胰岛素抵抗的影响
黄蜀葵花中黄酮类成分对前脂肪细胞增殖、分化及胰岛素抵抗的影响黃蜀葵花中富含黃酮类成分,具有保护心血管、改善肾功能等作用。
该文采用3T3-L1前脂肪细胞诱导分化的成熟脂肪细胞,建立胰岛素抵抗模型,分为正常组,模型组,异槲皮苷(HY)、金丝桃苷(JY)、槲皮素(QT)、槲皮素-3′-O-葡萄糖苷(QG)、棉皮素-8-O-β-葡萄糖醛酸(GG)给药组,BCA法检测细胞培养液中葡萄糖的含量,荧光定量qPCR检测PPARγ,C/EBPα,SREBP-1,脂联素,内酯素,抵抗素基因mRNA的表达水平。
结果显示,5种黄酮类化合物5 μmol·L-1浓度时可促进3T3-L1前脂肪细胞的增殖,浓度为100 μmol·L-1时可抑制前脂肪细胞的增殖;与正常组比较,模型组细胞对葡萄糖摄取量降低(P<0.01);与模型组相比,5种黄酮类化合物100 μmol·L-1 给药组细胞葡萄糖消耗量显著上升(P<0.01),PPARγ,C/EBPα,脂联素表达明显增加(P<0.01),SREBP-1,抵抗素,内酯素的表达明显降低(P<0.01),促使脂肪细胞分化。
研究表明,HY,JY,QT,QG,GG能调控前脂肪细胞增殖,促进脂肪细胞分化及糖脂代谢相关因子PPARγ,C/EBPα,SREBP-1,脂联素,内酯素,抵抗素的表达,促进前脂肪细胞分化,增加葡萄糖利用,从而改善胰岛素抵抗。
标签:锦葵科;黄属葵花;胰岛素抵抗;黄酮类成分;3T3-L1脂肪细胞[Abstract] Abelmoschus manihot was rich in flavonoids,which has been reported the activity on protecting angiocarpy and improving renal function. This study aimed to explore the action mechanism of five flavonoids from A. manihot on how to ameliorating insulin resistance through the regulation of the glucose and expression of PPARγ,C/EBPα,SREBP-1,resistin,visfatin,adiponectin in 3T3-L1 adipocytes. After the 3T3-L1 preadipocytes were differentiated into mature adipocytes,insulin resistance model was built. Insulin resistance adipocytes were treated with 5,100 μmol·L-1 quercetin,isoquercitrin,hyperoside,quercitrin-3′-O-glucoside,gossypetin-8-O-β-glucoside. The glucose was indirectly determined by BCA kit. The mRNA expression levels of PPARγ,C/EBPα,SREBP-1,resistin,visfatin,adiponectin were detected by real-time quantitative PCR. Results showed that five flavonoids at 5 μmol·L-1 could accelerate preadipocytes proliferation and inhibit that at 100 μmol·L-1 Compared with the normal group,glucose uptake reduced significantly in model group (P<0.01). With the treatment of five flavonoids at 100 μmol·L-1,glucose consumption increased significantly (P<0.01). The high expression of PPARγ,C/EBPα,adiponectin expression was significantly increased (P<0.01),and low expression of SREBP-1,resistin,visfatin after respective administration with five flavonoids at 100 μmol·L-1 promoted adipocyte differentiation. This study showed that,HY,JY,QT,QG,GG can control preadipocytes proliferation,promote adipocyte differentiation and regulate the expression of relative factors with lipid metabolism,such as PPARγ,C/EBPα,SREBP-1,adiponectin,resistin,visfatin,increasing glucose utilization and improving insulin resistance in 3T3-L1 adipocyte.[Key words] Malvaceae;Abelmoschus manihot;insulin resistance;flavonoids;3T3-L1 adipocytedoi:10.4268/cjcmm20162424黄蜀葵花为锦葵科Malvaceae秋葵属Abelmoschus黄蜀葵Abelmoschus manihot (L.)Medic.的干燥花冠,始载于《嘉佑本草》,先后收录于《本草纲目》与2010年版《中国药典》。
黄蜀葵花黄酮类化合物的化学成分及药理作用研究进展
黄蜀葵花黄酮类化合物的化学成分及药理作用研究进展作者:黎晶晶徐柏颐来源:《安徽农业科学》2017年第07期摘要黄蜀葵花为锦葵科植物黄蜀葵的干燥花冠,民间应用历史悠久。
现代药理学证实,黄酮类化合物为主要的活性物质。
对黄蜀葵花黄酮类化合物的化学成分和药理作用的研究现状进行了综述,为黄蜀葵花黄酮类化合物的进一步研究和发展提供参考。
关键词黄蜀葵花;黄酮类化合物;化学成分;药理作用中图分类号 S567.2 文献标识码 A 文章编号 0517-6611(2017)07-0120-05Research Progress on the Chemical Compostion and Pharmacological Action of Flavonoids in Flower of Abelmoschus manihot(L.) Medic.LI Jing-jing1, XU Bai-yi2(1.Zhejiang Pharmaceutical College, Ningbo, Zhejiang 315000;2.SZYY Group Pharmaceutical Limited, Taizhou, Jiangsu 225500)Abstract The flower of Abelmoschus manihot(L.) Medic. has a long history of medicinal application in folk. Modern pharmacology confirmed that flavonoids were the main active part. The chemical composition and pharmacological action of flavonoids in flower of Abelmoschus manihot (L.) Medic.were reviewed, it would provide reference for further research and development of flavonoids in flower of Abelmoschus manihot(L.) Medic..Key words Flower of Abelmoschus manihot(L.) Medic.;Flavonoids;Chemical composition;Pharmacological action黄蜀葵花为锦葵科植物黄蜀葵[Abelmoschus manihot(L.)Medic.]的干燥花冠[1],民间应用历史悠久。
黄蜀葵花总黄酮预处理的脑缺血保护作用及作用机理的开题报告
黄蜀葵花总黄酮预处理的脑缺血保护作用及作用机
理的开题报告
一、研究背景和意义
脑缺血是导致脑中风和其他神经系统疾病的主要病因之一,具有较
高的发病率和致残率。
因此,寻找有效的脑缺血预防和治疗方法具有重
要的临床意义。
黄蜀葵是一种常见的草药,具有广泛的药理活性,已被广泛应用于
中药制剂中。
黄蜀葵提取物含有丰富的黄酮类化合物,其中包括总黄酮、芦丁、山奈酚等,现有的研究已证明黄酮类化合物具有一定的神经保护
作用。
因此,本研究将探究黄蜀葵花总黄酮预处理对脑缺血的保护作用及
其作用机理,为寻找新的神经保护药物提供参考。
二、研究内容和方法
1. 实验动物选取50只SD大鼠,随机分为5组:正常组、模型组、低、中、高剂量的黄蜀葵花总黄酮预处理组。
2. 实验前一周,对低、中、高剂量组的大鼠分别灌胃黄蜀葵花总黄
酮100、200、400mg/kg,每天两次。
3. 在建立脑缺血模型后,对实验组和正常组的大鼠进行各项生化指
标的检测,包括超氧化物歧化酶(SOD)、丙二醛(MDA)、谷胱甘肽
过氧化物酶(GPx)和氧化氮(NO)等。
4. 采用组织切片法观察各组大鼠脑组织的形态变化以及细胞死亡情况;运用RT-PCR和Western Blot技术检测各组大鼠脑组织中相关的分子信号通路和代谢途径的表达情况。
三、研究预期结果及意义
1. 预处理后黄蜀葵花总黄酮能够明显减少脑缺血造成的神经损伤,并改善生化指标的异常情况;
2. 黄蜀葵花总黄酮保护作用的机理可能与抗氧化、抗炎和神经元凋亡等多个途径有关;
3. 结果将为开发新的脑缺血保护药物提供理论和实验依据,具有重要的临床应用价值。
黄蜀葵花总黄酮定量研究
黄蜀葵花总黄酮定量研究目的:用高效液相色谱法测定黄蜀葵花总黄酮中金丝桃苷的含量。
方法:色谱柱:依利特-C-18-柱 2.4 线性关系考察取上述对照品溶液,用甲醇分别稀释至364.99、182.495、91.2475、45.6238、22.8119、11.4059μg/ml,在高效液相色谱仪中,注入不同浓度的对照品溶液10μl,测定。
经线性回归,得金丝桃苷回归方程y=21.93x+27.36,r=1.0000,金丝桃苷在11.4059~364.99μg/ml范围内,同峰面积的积分值呈良好线性关系。
2.5 精密度试验同一对照品溶液,精密吸取10μl后,注入液相色谱仪,重复测定6次,以峰面积计算,RSD为0.58%(n=6)。
2.6 稳定性试验同一供试品溶液,于0、2、4、6、8、12h进样,测定峰面积,RSD为0.84%(n=6),结果表明:供试品溶液12h内稳定。
2.7 重复性试验取同一批号(141009)的黄蜀葵花总黄酮,约100mg,共6份,精密称定,依法制备供试品溶液,测定,以金丝桃苷含量计算,RSD为1.21%(n=6)。
结果表明,重复性较好。
2.8 加样回收率试验根据加样回收率试验的要求,取已知含量的黄蜀葵花总黄酮(141009)约50mg,共6份,精密称定后,加入金丝桃苷对照品,依法制备供试品溶液,液相色谱仪中注入精密吸取的10μl,测定,计算,平均回收率为97.14%,RSD为1.86%。
2.9 样品含量测定取3批黄蜀葵花总黄酮,每批2份,根据上述方法,制备供试品溶液,进样,测定,计算结果如下。
见表2。
3 讨论试验中曾参考药典[9] :以乙腈-0.1%磷酸溶液(15∶85)为流动相,结果分离效果不好,又尝试乙腈-0.1%磷酸溶液,不同比例等度洗脱系统,金丝桃苷未能有效分离,且分析时间过长。
通过反复试验,最后以乙腈-0.1%磷酸溶液,梯度洗脱:0~35min(16∶84),35~37min(30∶70),37~53min-(30∶70)-,53~55min(16∶84),55~60min(16∶84),实现了较好的分离效果。
黄蜀葵花的研究进展_高雷
黄蜀葵花的研究进展高雷1,张平1,2,程钢2(1.安徽医科大学药学院,安徽合肥230032;2.安徽医科大学第一附属医院药剂科,安徽合肥230022)摘要:黄蜀葵花为锦葵科秋葵属植物黄蜀葵A bel m oschus m anihot(L.)M e d ic.的干燥花,民间应用历史悠久。
近年来研究表明黄蜀葵花的黄酮类成分具有广泛的药理活性,本文对黄蜀葵花化学成分、提取方法、含量测定及药理作用的研究现状作一综述,提出了今后的研究和发展方向。
关键词:黄蜀葵;研究进展Advances in studies on flower of Abelmoschus mani hot(L.)M edic.GAO L ei1,Z HANG P i ng1,2,C H E NG G ang2(1.School of P har m acy,A nhu iM e d ical University,H e f ei230032,China;2.Pharmacy D epart m ent,T he F irst A ff ili ated H osp it al of A nhu iM e d ical University,H e f ei230022,China)Abstrac t:F los A bel m oschus m ani hot has a long h i story of app licati on.R ecen t st udies sho w t hat flavono ids of A bel m oschus m anihot(L.) M e d ic.have a w i de range of phar m acolog i ca l ac tiv ity.T his artic l e is a rev ie w m a i n l y on chem ica l co m pos iti on,ex tracti ng m ethod,assay i ng and phar m aco l og ic acti on o f A bel moschus mani ho t(L.)M edic,and it ra i ses research and deve l op m ent directi on.K ey word s:A bel mo schus m aniho t(L.)M e d ic.;st udy advance黄蜀葵花最早记载于5嘉佑本草6,分布广泛、资源丰富, 5本草纲目6记载:其花气味甘、寒、滑、无毒,主治小便淋及催生,治诸恶疮脓水久不瘥者,作末敷之即愈,为疮家要药,消疽肿,浸油涂汤火伤等。
黄蜀葵花总黄酮药理活性的研究进展
l f a v o n o i d s , r e d u c i n g s u g a r s , t a n n i n s a n d l o n g c h a i n h y d r o c a r b o n s , e t c . F l a v o n o i d s i s t h e ma i n a c t i v e i n g r e d i e n t . T h i s p a p e r r e v i e w s r e —
e f f e c t , a n t i p y r e t i c a n l a g e s i c a c t i o n , p r o t e c t i n g c e r e b r o v a s c u l a r i s c h e mi c i n j u r y , p r o mo t i n g a n g i o g e n e s i s , h y p o g l y c e mi c a c t i v i t y a n d a n t i — i n —
,
( 1 C o l l e g e o fP h a r m a c y , G u i z h o u U n i v e r s i t y , G u i z h o u 5 5 0 0 2 5 , C h i n a ; 2 G u i z h o u P r o v i n c i a l C h i n e s e Me d i c i n e C r e a t i o n E n g i n e e r i n g C e n t e r ,
f e c t i o n e fe c t .
Ke y Wo r d s T o t l a l f a v o n e o f Ab e l mo s c h u s ma n i h o t ;P h a r ma c o l o g i c a l a c t i v i t y ;Re v i e w
黄蜀葵花总黄酮对缺血性损伤保护作用的实验研究进展
·综 述·黄蜀葵花总黄酮对缺血性损伤保护作用的实验研究进展潘 武1,2,蒋 萌1 (1.南京中医药大学,江苏 南京 210029;2.沭阳县人民医院 消化科,江苏 沭阳 224600)摘要:黄蜀葵花总黄酮是中药黄蜀葵花的主要有效成分,实验研究显示其对缺血性疾病有较好的药理作用,对心脑缺血性损伤有明确的保护作用,其机制主要与抗脂质过氧化、减少自由基生成、抑制细胞凋亡相关。
关键词:黄蜀葵花总黄酮;缺血性损伤中图分类号:R282.71 文献标志码:A doi:10.3969/j.issn.1671⁃3826.2010.03.046 文章编号:1671⁃3826(2010)03⁃0446⁃03 黄蜀葵花总黄酮(total flavones of abelmoschl manihot L. medic,TFA)是从黄蜀葵花中提取的黄酮类成分。
黄蜀葵花最早记载于《嘉佑本草》,《本草纲目》记载:其花气味甘、寒、滑、无毒,主治小便淋及催生,治诸恶疮脓水久不瘥者,作末敷之即愈,为疮家要药,消疽肿,浸油涂汤火伤等。
TFA作为黄蜀葵花的主要有效成分,在缺血性疾病方面表现出良好的药理作用。
现对近年来TFA在缺血性疾病中的实验研究现状做一综述。
1 药学概况作为黄蜀葵花的主要有效成分,对TFA化学成分的研究目前比较集中。
近30年来,不同的学者[1-4]应用多种研究方法从黄蜀葵花中提取黄酮类成分并进行分析,目前比较明确的黄酮类单体有槲皮素⁃3⁃洋槐糖苷、槲皮素⁃3’⁃葡萄糖苷、金丝桃苷、槲皮素、杨梅素、棉皮素⁃3’⁃0⁃β⁃葡萄糖苷及异槲皮苷、木槿苷等。
对TFA及单体化学成分及结构的研究仍在继续,对TFA提取及含量测定方法研究的报道也日趋增多,程钢等[5]采用正交试验等方法优选出TFA的提取工艺,提取液总黄酮得率为4.84%,RSD=1.6%,提取较完全,稳定性好。
李琳等[6]采用HPLC梯度洗脱法、曲延伟等[7]采用紫外分光光度法测定黄蜀葵花药材的总黄酮含量,方法简便易行,重现性好,精密度高,可快速控制药材质量。
含黄蜀葵花外用制剂的研究进展
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药 物 研 发
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含黄蜀葵花外用制剂的研究进展
陈淑娴 柴程芝 葛海涛 ” ( 1 . 中国药科大 学 南京 2 1 0 0 0 9; 2 . 南京苏 中药物研 究有限公 司 南京 2 1 0 0 0 9 )
摘 要 黄 蜀葵花 为锦葵科植物黄 蜀葵 的干燥花冠, 药用 历史悠久。化 学研究表 明,黄 蜀葵花的主要活性成分 为黄 酮类化合物,其 中以金 丝桃苷,槲皮素,异槲 皮苷三者含量最高。近年来的药 ̄T L r l # , 床研究表明,黄蜀葵花具有广泛的
文献标识码 : A
文章编号 : 1 0 0 6 — 1 5 3 3 ( 2 0 1 7 ) 0 5 — 0 0 7 5 0 4
Re s e a r c h pr o g r e s s o f t he t o pi c a l p r e pa r a t i o ns c o nt a i ni ng a be l mo s c hus c o r o l l a
p r e pa r a t i o n.
KEY W ORDS a b e l mo s c h u s c o r o l l a ; e x t e r n a l a p p l i c a t i o n ; u l c e r
黄蜀葵花有效部位——总黄酮提取物的制备工艺及新用途[发明专利]
专利名称:黄蜀葵花有效部位——总黄酮提取物的制备工艺及新用途
专利类型:发明专利
发明人:张玲,凌沛学,尚立霞,曲延伟,吴永霞
申请号:CN200810238150.0
申请日:20081209
公开号:CN101757053A
公开日:
20100630
专利内容由知识产权出版社提供
摘要:本发明是一种黄蜀葵花有效部位——总黄酮提取物的制备工艺及新用途,具体是在制备治疗急慢性胃炎、消化系统溃疡药物、烧烫伤、外伤感染药物以及痈疽肿毒药物中的用途。
申请人:凌沛学
地址:250014 山东省济南市山大路264号
国籍:CN
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26447251_黄蜀葵花不同开放程度对药材中总黄酮及其糖苷类成分含量及其提取率的影响
黄蜀葵花不同开放程度对药材中总黄酮及其糖苷类成分含量及其提取率的影响郭小藤1ꎬ刘燕2ꎬ张清华1ꎬ尚立霞1(1.山东省药学科学院泰山学者重点实验室ꎬ山东济南250101ꎻ2.山东省药学科学院山东省生物药物重点实验室ꎬ山东济南250101)摘要:目的㊀研究黄蜀葵花不同开放程度对黄蜀葵花药材中总黄酮㊁金丝桃苷㊁异槲皮苷含量及其醇提取物的影响ꎮ方法㊀采用紫外-可见分光光度法测定黄蜀葵花药材中总黄酮含量ꎬ采用高效液相色谱法测定黄蜀葵花药材中金丝桃苷和异槲皮苷的含量ꎬ并比较黄蜀葵花药材醇提转移率ꎬ评价不同开放程度样品之间的差异ꎮ结果㊀完全开放的黄色黄蜀葵花中各成分含量均较高ꎬ醇提转移率高㊁油层较少ꎬ半开放及未开放黄绿色的黄蜀葵花中各成分均偏低ꎬ醇提转移率较低㊁油层较多ꎮ结论㊀黄蜀葵花药材宜在花期内完全开放后采收ꎬ颜色以亮黄色为最佳ꎬ本研究为各地黄蜀葵花药材的进一步开发利用提供了质量控制依据ꎮ关键词:黄蜀葵花ꎻ不同开放程度ꎻ总黄酮ꎻ金丝桃苷ꎻ异槲皮苷ꎻ提取率中图分类号:R927.2㊀文献标识码:A㊀文章编号:2095-5375(2022)01-0026-005doi:10.13506/j.cnki.jpr.2022.01.005EffectsofdifferentfloweringdegreesofAbelmoschusmanihotonflavonoidsandextractionrateGUOXiaoteng1ꎬLIUYan2ꎬZHANGQinghua1ꎬSHANGLixia1(1.KeyLaboratoryofTaishanScholarꎬShandongAcademyofPharmaceuticalScienceꎬJinan250101ꎬChinaꎻ2.ShandongProvincialKeyLaboratoryofBiopharmaceuticalsꎬShandongAcademyofPharmaceuticalScienceꎬJinan250101ꎬChina)Abstract:Objective㊀ToresearchtheeffectsofdifferentfloweringdegreesofAbelmoschusmanihot(L.)Mediconthecontentsoftotalflavonoidsꎬhyperosideꎬisoquercitrinandtheethanolextracts.Methods㊀ThecontentoftotalflavonoidsinA.manihot(L.)MedicwasdeterminedbyUV-VisspectrophotometryꎬandthecontentsofhyperosideandisoquercitrinweredeterminedbyHPLC.TheethanolextractiontransferratesofA.manihot(L.)Medicwerecomparedtoevaluatethediffer ̄encesamongsampleswithdifferentflowingdegrees.Results㊀Thecontentofeachcomponentinfully-opened-yellowflowerwashigherꎬthealcoholextractiontransferratewashigherandtheoillayerwasless.Thecontentofeachcomponentinsemi-openedandunopenedyellow-greenflowerwaslowerꎬthealcoholextractiontransferratewaslowerandtheoillayerwasmorethanothers.Conclusion㊀TheA.manihotshouldbeharvestedafterfullopeningduringthefloweringperiodꎬandbrightyellowisthebestcolor.ThisstudyprovidedqualitycontrolbasisforthefurtherdevelopmentandutilizationofA.manihotinvariousregions.Keywords:AbelmoschusmanihotL.MedicꎻDifferentfloweringdegreeꎻTotalflavonoidsꎻHyperosideꎻIsoquercitrinꎻEx ̄tractionrate㊀㊀黄蜀葵花为锦葵科秋葵属植物黄蜀葵[Abelmoschusmanihot(L.)Medic.]的干燥花冠(带雄蕊及花柱)ꎬ味甘性寒ꎬ归肾及膀胱经ꎻ具有清利湿热㊁消肿解毒的功效ꎻ内服用于湿热壅遏和淋浊水肿ꎻ外治痈疽肿毒ꎬ水火烫伤[1]ꎮ它作为药用始于宋代[2]ꎬ其后历代本草均有记载ꎬ民间应用历史悠久ꎬ并收载于各版«中国药典»以及江苏㊁山东等一些地方药材标准中ꎮ黄蜀葵花原产于我国南方ꎬ喜温暖湿润ꎬ现㊀基金项目:药物分析与质量控制中心创新能力建设项目(山东省企业重大技术创新及产业化项目)㊀作者简介:郭小藤ꎬ女ꎬ主管药师ꎬ研究方向:中药新药研究与开发ꎬE-mail:ghaut@126.com除西北地区外ꎬ全国各地均有栽培ꎬ主要产区有江苏㊁浙江以及安徽等[3-4]ꎮ黄蜀葵花含有上千种化合物ꎬ主要包括黄酮类㊁还原糖类㊁鞣质㊁甾醇类㊁多糖类化合物以及其他成分ꎬ其中黄酮类化合物为黄蜀葵花的主要活性成分ꎬ黄酮类成分中又以金丝桃苷和异槲皮苷含量最高[5-8]ꎮ药理学研究表明ꎬ黄蜀葵花的黄酮类成分具有保护心㊁脑缺血ꎬ改善肝㊁肾功能以及修复口腔黏膜溃疡等作用[9-10]ꎮ临床应用黄蜀葵花及其总黄酮治疗多种口腔炎症㊁慢性支气管炎ꎬ止痛效果显著ꎬ对慢性肾小球肾炎有明显疗效[11]ꎮ中药材的采收㊁加工是其生产和品质形成的重要环节ꎬ对确保中药材质量和临床疗效有着十分重要的意义ꎮ历版«中国药典»仅规定黄蜀葵花于夏㊁秋二季花开时采摘ꎬ及时干燥ꎮ但目前关于黄蜀葵花开放程度对药材质量影响的相关报道尚少ꎮ因此ꎬ为了保证黄蜀葵花药材质量的优质和均一ꎬ本研究以金丝桃苷和异槲皮苷为对照品ꎬ采用紫外-可见分光光度法和高效液相色谱法对黄属葵花药材中总黄酮㊁金丝桃苷和异槲皮苷成分进行含量测定ꎬ同时采用正交试验确定的总黄酮提取最佳工艺ꎬ考察药材的提取率ꎬ评价黄蜀葵花不同开放程度时药材的质量ꎬ为黄蜀葵花的合理开发及利用提供了科学依据ꎮ1㊀仪器与试药1.1㊀仪器设备㊀Waterse2695高效液相色谱仪(2998PDA二极管阵列检测器ꎬWatersEmpower工作站ꎬ均为美国Waters公司)ꎻAgilent8454UV-Vis分光光度计(美国安捷伦)ꎻMettlerXS-205电子分析天平(瑞士梅特勒-托利多)ꎻDNT-0.1/00多功能提取浓缩机组(浙江温兄机械阀业有限公司)ꎻEYELAN-1100旋转蒸发仪(上海爱朗仪器有限公司)ꎻKQ2200DA型数控超声波清洗器(昆山市超声仪器有限公司)ꎮ1.2㊀试药㊀金丝桃苷对照品(批号:111521-201809ꎬ含量:94.9%ꎬ中国食品药品检定研究院)ꎻ异槲皮苷对照品(批号:111809-201804ꎬ含量:97.2%ꎬ中国食品药品检定研究院)ꎻ黄蜀葵花药材产地均为江苏ꎬ经山东省药学科学院泰山学者重点实验室鉴定为锦葵科植物黄蜀葵[Abelmoschusmanihot(L.)Medic.]的干燥花ꎻ乙腈为色谱纯ꎬ磷酸为优级纯ꎬ其他试剂均为分析纯ꎬ超纯水为自制ꎮ2㊀方法与结果2.1㊀性状㊀黄蜀葵花药材的外观性状是其质量评价的重要部分ꎬ由于黄蜀葵花不属于大宗药材ꎬ市售黄蜀葵花药材外观性状差异较大ꎬ因此本研究对黄蜀葵花药材的花形及开放程度㊁花色进行了观察ꎬ并考察了外观性状与含量之间的相关性ꎮ江苏是黄蜀葵花药材种植规模较大的省份ꎬ花期为8 10月ꎬ本试验选用的药材均为江苏种植且在花期内不同开放程度的药材ꎮ经过对6批药材样品外观性状的观察ꎬ发现其花形基本分为全开放形或半开放形㊁未开放螺旋卷状形等开放程度ꎻ花色分为亮黄色或黄色㊁黄色偏绿等颜色ꎮ其中全开放的花ꎬ花瓣大而舒展ꎬ花色为亮黄色ꎻ半开放的花ꎬ花瓣没有完全展开ꎬ花色多为黄色ꎻ未开放的花ꎬ花形为卷曲螺旋状ꎬ外层花瓣呈浅绿色ꎬ结果见表1㊁图1~2ꎮ表1㊀黄蜀葵花药材来源及外观性状药材编号产地开放程度花色S1江苏盐城未开放螺旋卷形黄色偏绿S2江苏盐城未开放螺旋卷形黄色偏绿S3江苏淮安未开放螺旋卷形黄色偏绿S4江苏泰州未开放螺旋卷形黄色偏绿S5江苏无锡未开放螺旋卷形黄色偏绿S6江苏东台半开放形黄色S7江苏宜兴半开放形黄色S8江苏徐州半开放形黄色S9江苏宿迁半开放形黄色S10江苏盐城半开放形黄色S11江苏苏州全开放形亮黄色S12江苏宿迁全开放形亮黄色S13江苏盐城全开放形亮黄色S14江苏盐城全开放形亮黄色S15江苏淮安全开放形亮黄色A.全开放形ꎻB.半开放形ꎻC.未开放螺旋卷形图1㊀黄蜀葵花药材不同花形样品A.亮黄色ꎻB.黄色ꎻC.黄色偏绿图2㊀黄蜀葵花药材不同花色样品2.2㊀黄蜀葵花药材的提取㊀分别取不同开放程度的黄蜀葵花药材各4kgꎬ加85%乙醇回流提取两次ꎬ第一次12倍量ꎬ第二次10倍量ꎬ每次提取1hꎬ提取液滤过ꎬ滤液减压回收乙醇并浓缩至相对密度为1.18~1.20(60ħ)ꎮ将醇提浓缩液静置16~20hꎬ撇去上层油ꎬ即得醇提浸膏ꎮ分别称定醇提浸膏和油层的重量ꎬ计算本品醇提浸膏得率ꎬ结果见表2ꎮ㊀㊀全开放的黄蜀葵花提醇提出膏率最高ꎬ油层最少ꎻ半开放的黄蜀葵花出膏率略低于全开放的花ꎬ去油率偏高ꎻ未开放的黄蜀葵花醇提浸膏出膏率最低ꎬ去油率高且油层结实ꎮ表2㊀黄蜀葵花药材提取结果药材编号醇提浸膏重量/kg醇提出膏率(%)去油率(%)油层状态S11.8446.008.18结实S21.9649.008.37结实S32.0250.508.01结实S41.8646.507.65结实S51.9448.507.97结实S62.3157.755.41较松散S72.2756.755.69较松散S82.1253.005.27较松散S92.0852.005.88较松散S102.1954.755.48较松散S112.3358.253.96薄而松散S122.3659.004.65薄而松散S132.4360.753.49薄而松散S142.3759.254.13薄而松散S152.4561.253.73薄而松散S1~S5平均1.9248.108.04S6~S10平均2.1954.855.55S11~S15平均2.3959.703.992.3㊀总黄酮含量测定2.3.1㊀供试品溶液的制备㊀取不同开放程度的黄蜀葵花药材样品粉末(过四号筛)0.5gꎬ每个样品各2份ꎬ精密称定ꎬ置圆底烧瓶中ꎬ精密加入甲醇100mLꎬ称定重量ꎬ加热回流2hꎬ放冷ꎬ再称定重量ꎬ用甲醇补足减失的重量ꎬ摇匀ꎬ滤过ꎬ取续滤液备用ꎮ取不同批次的醇提取样品0.15gꎬ置25mL量瓶中ꎬ精密称定ꎬ加甲醇20mLꎬ超声处理20minꎬ放冷ꎬ加甲醇至刻度ꎬ摇匀ꎬ离心10minꎬ取上清液备用ꎮ2.3.2㊀对照品溶液的制备㊀取金丝桃苷对照品适量ꎬ精密称定ꎬ加甲醇制成每1mL含金丝桃苷80μg的溶液ꎬ即得ꎮ2.3.3㊀测定波长的选择㊀精密量取对照品溶液3mLꎬ置25mL量瓶中ꎬ加50%甲醇稀释至刻度ꎬ摇匀ꎻ精密量取供试品溶液1mLꎬ置25mL量瓶中ꎬ加50%甲醇稀释至刻度ꎬ摇匀ꎻ以50%甲醇为空白ꎬ在200~800nm范围内扫描吸收曲线ꎮ结果表明ꎬ金丝桃苷对照品与供试品溶液在256nm波长处均有相同的最大吸收ꎮ2.3.4㊀标准曲线的绘制㊀精密量取对照品溶液1㊁2㊁3㊁4㊁5㊁6mLꎬ分别置25mL量瓶中ꎬ加50%甲醇稀释至刻度ꎬ摇匀ꎮ以50%甲醇为空白ꎬ照紫外-可见分光光度法在256nm波长处测定吸光度ꎬ以吸光度为纵坐标ꎬ浓度为横坐标ꎬ绘制标准曲线ꎮ得回归方程:C=0.0521A-0.0011(R2=0.99999)ꎬ线性范围为3.0368~18.2210μg mL-1ꎮ2.3.5㊀含量测定㊀精密量取药材供试品溶液1.0mLꎬ置25mL量瓶中ꎬ精密量取醇提浸膏供试品溶液1.0mLꎬ置50mL量瓶中ꎬ分别加50%甲醇稀释至刻度ꎬ摇匀ꎬ在256nm处测定吸光度ꎬ从标准曲线上读出供试品溶液中金丝桃苷的量ꎬ计算总黄酮含量ꎮ结果见表3ꎮ㊀㊀全开放的黄蜀葵花样品中总黄酮含量及醇提转移率最高ꎬ半开放的黄蜀葵花总黄酮含量及醇提转移率略低于全开放的花ꎬ未开放的黄蜀葵花总黄酮含量和醇提转移率均最低ꎬ醇提浸膏中总黄酮含量趋势与药材基本一致ꎮ表3㊀不同开放程度黄蜀葵花及醇提浸膏总黄酮含量测定结果(%ꎬn=2)样品编号黄蜀葵花(%)醇提浸膏/mg g-1总黄酮转移率(%)S13.6763.0879.07S23.7662.2981.17S33.9262.1180.01S44.0366.5976.83S53.8964.1279.94S64.5566.3984.26S75.1173.1681.25S84.2866.1381.89S94.3169.5583.91S104.6270.0483.00S115.0475.4187.15S124.4666.5788.07S134.7468.2187.42S144.6166.1485.01S155.5078.5587.48S1~S5平均3.8563.6479.41S6~S10平均4.5769.0582.86S11~S15平均4.8770.9887.022.4㊀金丝桃苷㊁异槲皮苷含量测定2.4.1㊀色谱条件㊀ZorbaxSB-C18(4.6mmˑ250mmꎬ5μm)ꎻ流动相:乙腈-0.1%磷酸溶液(15ʒ85)ꎬ流速1.0mL min-1ꎬ检测波长:360nmꎬ进样量:10μLꎬ柱温:35ħꎮ2.4.2㊀混合对照品溶液的制备㊀取金丝桃苷和异槲皮苷对照品适量ꎬ精密称定ꎬ加甲醇制成每1mL含金丝桃苷100μg㊁异槲皮苷60μg的混合溶液ꎬ即得ꎮ2.4.3㊀供试品溶液的制备㊀取样品粉末(过四号筛)0.2gꎬ精密称定ꎬ置25mL容量瓶中ꎬ加入甲醇15mL超声处理(功率100Wꎬ频率40kHz)30minꎬ放冷ꎬ加甲醇稀释至刻度ꎬ摇匀ꎬ滤过ꎬ取续滤液作为供试品溶液ꎮ取不同批次的醇提取样品0.15gꎬ置25mL量瓶中ꎬ精密称定ꎬ加甲醇20mLꎬ超声处理30minꎬ放冷ꎬ加甲醇至刻度ꎬ摇匀ꎬ离心10minꎬ取上清液作为供试品溶液ꎮ2.4.4㊀专属性试验㊀分别精密吸取混合对照品溶液㊁供试品溶液各10μLꎬ注入液相色谱仪ꎬ记录色谱图(见图3)ꎮ供试品溶液的色谱图中ꎬ在与对照品溶液的色谱图相应的位置上ꎬ有相同保留时间的色谱峰ꎬ且金丝桃苷峰㊁异槲皮苷峰与相邻峰之间的分离度均符合要求ꎮA.混合对照品溶液ꎻB.供试品溶液㊀1.金丝桃苷2.异槲皮苷图3㊀黄蜀葵花高效液相色谱图2.4.5㊀样品含量测定㊀分别取黄蜀葵花不同部位药材粉末及不同批次的醇提取样品ꎬ按 2.4.3 项下方法制备供试品溶液ꎬ按 2.4.1 项下色谱条件测定ꎬ按外标法以峰面积计算金丝桃苷㊁异槲皮苷含量ꎬ结果见表4ꎮ表4㊀不同开放程度黄蜀葵花及醇提浸膏金丝桃苷㊁异槲皮苷含量测定结果(%ꎬn=2)样品编号黄蜀葵花(%)醇提浸膏/mg g-1金丝桃苷异槲皮苷金丝桃苷异槲皮苷S10.6460.4319.9867.376S20.6340.3058.3636.675S30.7020.41210.8516.452S40.6670.3879.1845.134S50.6380.39910.5426.845S60.7530.4109.5387.318S70.8930.43210.5799.237S80.7210.4579.7448.465S90.7610.41810.0467.466S100.7480.43010.7537.430S110.8700.44113.5878.426S120.6980.46811.4257.167S130.9120.50712.0458.128S140.8950.48310.4588.385S150.8630.49112.8569.450S1~S5平均0.6570.3879.7856.496S6~S10平均0.7750.42910.1327.983S11~S15平均0.8480.47812.0748.311㊀㊀全开放的黄蜀葵花样品中金丝桃苷㊁异槲皮苷平均含量最高ꎬ半开放的黄蜀葵花中两成分平均含量略低于全开放的花ꎬ未开放的黄蜀葵花中两成分平均含量均最低ꎬ醇提浸膏中两成分含量趋势与药材基本一致ꎮ3 讨论与结论3.1㊀提取溶剂及方法考察㊀黄酮类成分是黄蜀葵花的有效部位ꎬ由于黄酮类成分在水中溶解度不高ꎬ多采用适当浓度的甲醇或乙醇作为溶剂ꎬ采用加热回流㊁超声或索氏等方法进行提取[12-13]ꎮ由于索氏和超声提取仅适合少量药材的提取ꎬ且甲醇的毒性较大ꎬ而乙醇具有价格低㊁易回收㊁污染小等优点ꎬ因此本研究采用的乙醇回流提取的方法最适合放大生产ꎮ在醇提取工艺研究中ꎬ以总黄酮的含量为指标ꎬ设计乙醇浓度㊁乙醇用量㊁提取时间㊁提取次数4个因素进行正交试验ꎬ考察对总黄酮提取率的影响ꎬ最终选定了最佳的提取工艺条件ꎮ3.2㊀药材性状的选择㊀黄蜀葵花药材醇提液浓缩静置后ꎬ提取浸膏上层有一层油状物ꎬ分析是由花托中的叶绿素及花蕊中的多糖㊁果胶等成分组成[14]ꎮ本研究通过试验对比发现未开放及半开放的黄蜀葵花药材醇提去油率较高ꎬ分析是由于未完全开放的花瓣将花蕊包裹ꎬ保留了较多的多糖及果胶成分ꎬ不利于有效部位的分离纯化ꎮ因此在对黄蜀葵花总黄酮有效部位分离纯化时ꎬ应优选完全开放的花进行提取ꎬ同时对药材的花托比例进行限定ꎮ3.3㊀含量测定指标的选择㊀目前对黄蜀葵花药材含量测定的文献报道多为单独测定总黄酮有效部位或单独测定金丝桃苷㊁异槲皮苷等单成分含量[15-16]ꎮ本研究不仅对黄蜀葵花药材不同部位的总黄酮总量进行了测定ꎬ同时对总黄酮中含量及活性最高的指标成分金丝桃苷㊁异槲皮苷进行了定量分析ꎬ结果表明黄蜀葵花中总黄酮含量较高时ꎬ金丝桃苷和异槲皮苷含量也较高ꎬ二者呈一定相关性ꎬ更全面的评价了黄蜀葵花药材的质量ꎬ为进一步研究有效部位与单成分之间的相关性和药理药效的机理提供了数据支持ꎮ3.4㊀不同开放程度药材含量分析㊀黄蜀葵花中总黄酮㊁金丝桃苷及异槲皮苷含量趋势为:黄色全开放花>黄色半开放花>偏绿色未开放花ꎮ全开放的黄蜀葵花ꎬ颜色为亮黄色ꎬ花瓣大而舒展ꎬ有效成分含量高ꎬ提取转移率高ꎬ去油率低ꎻ未开放的黄蜀葵花ꎬ花瓣卷曲呈螺旋状ꎬ由于其尚未开放即进行采摘ꎬ花朵接收的阳光光照不足ꎬ其外层花瓣呈浅绿色ꎬ有效成分含量偏低ꎬ提取转移率低ꎻ半开放的黄蜀葵花ꎬ其颜色为黄色ꎬ花瓣没有完全展开ꎬ有效成分的含量居于前两者之间ꎮ从上述结果可以看出ꎬ黄蜀葵花药材的质量与其开放程度密切相关ꎬ由于该花只有一天开放时间ꎬ因此采收时间宜在晴天的白天花朵完全开放后当天采摘ꎬ过早采摘未开放的花将影响药材的质量ꎮ在黄蜀葵花15个样品中ꎬS1~S5样品颜色较其他样品偏绿ꎬ同时各成分含量较其他样品偏低ꎬ说明黄蜀葵花中黄酮类成分的含量可能与其颜色有一定的相关性ꎬ有待进一步研究ꎮ3.5㊀结论㊀总黄酮㊁金丝桃苷和异槲皮苷作为黄蜀葵花中主要活性成分ꎬ其含量高低直接影响黄蜀葵花的内在质量及临床疗效ꎮ本研究以总黄酮有效部位㊁金丝桃苷及异槲皮苷和醇提转移率为检测指标ꎬ对不同开放程度的黄蜀葵花药材进行分析研究ꎬ结果表明ꎬ黄蜀葵花药材不同的开放程度对总黄酮㊁金丝桃苷和异槲皮苷的含量均有影响ꎬ亮黄色全开放花中总黄酮㊁金丝桃苷及异槲皮苷的含量最高ꎮ参考文献:[1]㊀国家药典委员会.中华人民共和国药典2015年版(一部)[S].北京:中国医药科技出版社ꎬ2015.[2]李时珍.本草纲目[M].北京:人民卫生出版社ꎬ1982:1046.[3]陈刚.黄蜀葵花的化学成分和降糖活性研究[D].北京:中国人民解放军军事医学科学院ꎬ2006.[4]梁文波ꎬ谭柳燕ꎬ严方明.中药材黄蜀葵的研究现状及存在问题[J].农业研究与应用ꎬ2012(5):48-52. 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黄蜀葵花黄酮类化合物的化学成分及药理作用研究进展
黄蜀葵花黄酮类化合物的化学成分及药理作用研究进展
黎晶晶;徐柏颐
【期刊名称】《安徽农业科学》
【年(卷),期】2017(045)007
【摘要】黄蜀葵花为锦葵科植物黄蜀葵的干燥花冠,民间应用历史悠久.现代药理学证实,黄酮类化合物为主要的活性物质.对黄蜀葵花黄酮类化合物的化学成分和药理作用的研究现状进行了综述,为黄蜀葵花黄酮类化合物的进一步研究和发展提供参考.
【总页数】5页(P120-124)
【作者】黎晶晶;徐柏颐
【作者单位】浙江医药高等专科学校,浙江宁波 315000;江苏苏中药业集团股份有限公司,江苏泰州 225500
【正文语种】中文
【中图分类】S.567.2
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5.苦参黄酮类化合物药理作用的研究进展 [J], 于娜(综述);范红艳(审校)
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黄蜀葵花总黄酮定量研究
黄蜀葵花总黄酮定量研究
钱芳;张芹
【期刊名称】《中国民族民间医药》
【年(卷),期】2015(000)023
【摘要】目的:用高效液相色谱法测定黄蜀葵花总黄酮中金丝桃苷的含量。
方法:色谱柱:依利特-C18柱(250×4.6 mm,5μm),以乙腈-0.1%磷酸溶液
为流动相进行梯度洗脱,流速:1.0ml /min,检测波长:360nm,柱温:30℃。
结果:金丝桃苷在11.4059~364.99μg/ml 范围内与峰面积的积分值呈现良
好的线性关系(r =1.0000),平均加样回收率97.14%,RSD1.86%(n =6)。
结论:HPLC法简便易行、结果准确、重复性好,可用于测定黄蜀葵花总黄
酮中金丝桃苷含量。
【总页数】2页(P14-15)
【作者】钱芳;张芹
【作者单位】江苏省中医院药学部,江苏南京 210029;江苏省中医院药学部,江
苏南京 210029
【正文语种】中文
【中图分类】R284.1
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5.黄蜀葵花总黄酮的质量标准及指纹图谱研究 [J], 张俊;章方珺;宋必卫
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酸水解以及物理化学常数的测定,分别鉴定为槲皮 素 -3- 洋 槐 糖 苷、槲 皮 素 -3'- 葡 萄 糖 苷 (Quercetin3'-glucoside)、金丝桃苷 (Hyperin)、槲皮素 (Quercetin) 及杨梅素 (myricetin)。这是国内最早对黄蜀葵花的 研 究,后 王 先 荣 等 利 用 色 谱 和 分 部 结 晶 方 法 对 黄 蜀 葵 花 进 行 成 分 分 离,根 据 物 理 化 学 性 质 和 波 谱 学手段对化合物进行结构鉴定。结果又新发现 2 个黄酮醇单糖苷,分别鉴定为棉皮素 -3'-O-β- 葡 萄 糖 苷 (Gossypetin-3'-O-β-glucoside )、异 槲 皮 苷 (Isoquercetin) [7]。
第14卷 第6期 2012 年 6 月
辽宁中医药大学学报
JOURNAL OF LIAONING UNIVERSITY OF TCM
Vol. 14 No. 6 Jun .,2012
黄蜀葵花总黄酮研究进展
周雷
(南京中医药大学附属医院,江苏省中医院内分泌科,江苏 南京 210029)
摘 要 :黄蜀葵花为锦葵科秋葵属植物黄蜀葵Abelmoschus manihot(L.)Medic. 的干燥花,民间应用历史悠久。
D 法所测定的结果相对准确,所以 D 法值得推广。 采收时间的不同对黄蜀葵花总黄酮的含量会
有影响 [16],黄蜀葵花的花期可分为花蕾期、开放期 和凋谢期。在不同的花期内采收,其总黄酮含量变 化很大,开放期的含量最高,凋谢期的含量最低,其 总黄酮含量约为开放期的 1/5。但在同一花期内任 一时间内采收,其总黄酮含量的变化不大。
不同的干燥方法对黄蜀葵花总黄酮的含量也 有影响。采收后如果采用自然干燥法,即将开放的 花置阳光下晒干后使用,晴天条件下的含量较高,阴 天则较低。如果采用烘干法,即把花放在热风循环 的烘房或烘箱烘干,须严格控制温度,温度过高,药 材干燥速度快,容易烘焦、变色,影响外观 ; 温度过低 则干燥时间长,总黄酮的含量低。所以,黄蜀葵花应 在开放的当天采收,采摘后立即干燥,用热风循环烘 箱或烘房于 60~80℃烘干,这样提取的总黄酮含量 较高,否则药材极容易变质,使总黄酮的含量降低。 3 药理作用
池玉梅等 [9] 以黄蜀葵花为分析对象,采用高效 液相 - 电喷雾 / 四极杆 - 飞行时间串联质谱 (HPLCESI/Q-TOF MS/MS),首 次 对 黄 蜀 葵 花 的 黄 酮 类 成 分进行了系统的分析。通过解析紫外光谱和二级 质谱,推测 HPLC 分离的黄蜀葵花中有 19 个黄酮醇 类 化 合 物。 其 中 HPLC 分 离 的 7 种 化 合 物 ( 金 丝 桃 苷、异槲皮苷、杨梅素、槲皮素 -3'-O- 葡萄糖苷、槲 皮素、棉皮素、木槿苷 ) 均与以往文献报道一致。而 李春梅等 [10-13] 从黄蜀葵花体积分数为 95% 的乙醇 提取物的大孔吸附树脂洗脱物中先后分离鉴定了
黄 蜀 葵 花 总 黄 酮 的 含 量 测 定 方 法 有 多 种,周 正华等 [15] 采用 4 种方法测定了黄蜀葵花总黄酮含 量,并且分别比较了各种测定方法的准确性。A 法 : 以 芦 丁 为 对 照 品、NaNO2-Al(NO3)3-NaOH 显 色 后 于 510nm 比色法测定 ; B 法 : 以金丝桃苷为对照品、 NaNO2-Al(NO3)3-NaOH 显 色 后 于 510nm 比 色 法 测 定 ; C 法 : 以金丝桃苷为对照品,紫外分光光度法于 258nm 测定 ;D 法 : 以金丝桃苷为对照品,加入 HACNaAC 缓冲液和 AlCl3 溶液显色,于 398nm 测定。由 于 以 NaNO2-Al(NO3)3-NaOH 显 色 时,槲 皮 素 -3'- 葡 萄糖苷、棉皮素 -3'- 葡萄糖苷和杨梅素这三个黄酮 类化合物不显色,在 510nm 处测定黄蜀葵花药材中 总黄酮的含量时,这 3 个成分的含量就没有计入总 黄酮的含量之中,而黄蜀葵花中槲皮素 -3'- 葡萄糖 苷的含量较高,所以 A、B 两法所测得的总黄酮含量 偏低,C 法测定的结果偏高,是因为黄蜀葵花所含鞣 质的量也较多,它们在 258nm 处有很强的紫外吸收, 会影响黄蜀葵花总黄酮含量的测定,最后得出结论
近年来研究表明黄蜀葵花总黄酮具有广泛的药理活性,文章对黄蜀葵花总黄酮的化学成分、含量测定方法及药理作
用的研究现状作一综述,为今后的研究和发展提供方向。
关键词 :黄蜀葵花总黄酮 ;化学成分 ;含量测定方法 ;药理作用
中图分类号 :R285
文献标识码 :A
文章编号 :1673-842X(2012) 06-0042-03
赖 先 银 等 [8] 从 黄 蜀 葵 花 乙 醇 提 取 物 中 石 油 醚 萃 取,后 又 经 硅 胶 柱 色 谱、SephadexLH-20 柱 色 谱、制 备 TLC 及 重 结 晶 等 多 种 方 法,分 离 得 到 新 的 黄 酮 类 化 合 物 杨 梅 素 -3'-O-β-D- 葡 萄 糖 苷(cannabiscitrin)、杨 梅 素 -3-O-β-D- 葡 萄 糖 苷 (myricetin-3-O-β-D-glucopyranoside)。
Key words :total flavone of Abelmoschus Manihot(L.)Medic(TFA) ;chemical composition ;method of determination ;pharmacological activity
黄蜀葵花 [Abelmoschl manihot (L.) Medic],又名 黄葵 (《说文》)、侧金盏、秋葵 (《群芳谱》)、棉花葵 (《植物名实图考》)、黄秋葵、金花捷报、水棉花、棉 花七、棉花篙、小棉花、溪麻、野芙蓉、野甲花 [1] 等,为 锦葵科秋葵属植物黄蜀葵的干燥花冠,最早记载于 北宋掌禹锡所著《嘉佑本草》,其分布广泛、资源丰 富,主产于江苏、安徽、江西、河北、河南、甘肃、山东、 四川及云贵地区。《本草纲目》记载 :其花气味甘、 寒、滑、无毒,主治小便淋及催生,治诸恶疮脓水久不 瘥者,作末敷之即愈,为疮家要药,消疽肿,浸油涂汤 火伤等 [2]。现代药理学证实黄蜀葵花主要含有黄酮 类、还原糖类、蹂酸类、长链烃类等化合物,黄酮类化 合物是其主要成分,其中又以金丝桃苷、异槲皮苷、 槲皮素 -3'- 葡萄糖苷的含量最高 [3-5]。目前对黄蜀 葵花化学成分的研究较多的集中于黄蜀葵花总黄酮 [Total flavone of Abelmoschus manihot(L.)Medic,TFA] 及其单体,近年来,随着分离提取方法的不断更新, 对黄蜀葵花总黄酮的研究日益深入,有关黄蜀葵花 总黄酮的化学成分、含量测定方法及药理作用的研 究取得了很大进展,黄蜀葵花总黄酮潜在的临床应 用价值已越来越被人们所关注,因此本文对上述研 究成果作简要概述,为该药物的进一步研究提供参 考资料。 1 化学成分
Chinese Medicine, Nanjing 210029, Jiangsu, China)
Abstract :Flos Abelmoschusmanihot has a long history of application.Recent studies show that total flavone of Abelmoschus manihot(L.)Medic has a wide range of pharmacological activity.This article is a review mainly on chemical composition, method of determination and pharmacologic action of total flavone of Abelmoschus manihot(L.)Medic, and it raises research and development direction.
收稿日期 :2011-12-10 基金项目 :江苏省自然科学基金项目(BK2008490) 作者简介 :周雷(1983-),男,江苏连云港人,医师,2009 级硕士研究生,研究方向 :内分泌疾病。
Hale Waihona Puke 4214 卷辽宁中医药大学学报
21 个黄酮类化合物单体,根据其理化性质以及光 谱学方法,特别是 NMR 方法,鉴定了它们的结构, 包括 10 个以槲皮素为母核的黄酮类化合物,分别 为 槲 皮 素 (quercetin,1)、金 丝 桃 苷 (hyperoside,2)、槲 皮 素 -3-O-β-D- 葡 萄 糖 苷 (quercetin-3-O-β-Dglucopyranoside,3)、槲 皮 素 -3-O-β-D-6''- 乙 酰 葡 萄 糖 苷 (quercetin-3-O-β-D-6''-acetylglucopyranoside,4)、槲皮素 -3-O- 刺槐糖苷 (quercetin-3-Orobinoside,5)、槲 皮 素 -3-O- 芸 香 糖 苷 (quercetin3-O-rutinoside,6)、槲 皮 素 -3-O-β-D- 木 糖 基 -(1 → 2)-β-D- 半 乳 糖 苷 [quercetin-3-O-β-Dxylopyranosyl(1 → 2)-β-D-galactopyranoside,7]、槲皮 素 -3'-O-β-D- 葡 萄 糖 苷 (quercetin-3'-O-β-Dglucopyranoside,8)、槲 皮 素 -7-O-β-D- 葡 萄 糖 苷 (quercetin-7-O-β-D-glucopyranoside,9) 和 槲 皮 素 3-O-[β-D- 木 糖 基 (1 → 2)-α-L- 鼠 李 糖 基 (1 → 6)]-β-D- 半 乳 糖 苷 {quercetin 3-O-[β-D-xylopyranosyl(1 → 2)-α-L-rhamnopyranosyl(1 → 6) ]-β-Dgalactopyranoside,10} ;8 个 以 杨 梅 素 为 母 核 的 黄 酮 类 化 合 物,分 别 为 杨 梅 素 (myricetin,11 )、杨 梅 素 -3-O-β-D- 葡 萄 糖 苷 (myricetin-3-O-β-Dglucopyranoside,12)、杨梅素 -3'-O-β-D- 葡萄糖苷 (cannabiscitrin,13)、杨 梅 素 -3-O-β-D- 半 乳 糖 苷 (myricetin-3-O-β-D-galactopyranoside,14)、杨梅素 3-O- 芸 香 糖 苷 (myricetin -3-O-rutinose,15)、杨 梅 素 -3-O- 刺 槐 糖 苷 (myricetin-3-O-robinoside,16)、 myricetin-3-O-β-D-xylopyranosy- ( 1 → 2) -β-Dglucopyranoside ( 17 )、myricetin-3-O-β-Dxylopyranosyl-(1 → 2) -β-D-galactopyranoside (18) 以 及 棉 皮 素 8-O-β-D- 葡 萄 糖 醛 酸 苷 (gossypetin 8-O-β-D-glucuronide,19)、棉 皮 素 -3-O-β-D- 葡 萄糖 -8-O-β-D- 葡萄糖醛酸 (gossypetin -3-O-βglucopyranoside-8-O-β-glucuronopyranoside,20)、 棉 皮 素 3'-O-β-D- 葡 萄 糖 苷 (gossypetin 3'-O-βD-glucopyranoside,21)。加上棉皮素与木槿苷,所以 迄今为止,黄蜀葵花中共发现了 23 个黄酮化合物单 体。 2 含量测定方法的比较及影响因素