遗传学实验 多倍体诱发
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诱变物质的微核检测技术
摘要人工诱导多倍体植物观察多倍体的特点,利用染色体分析的方法对多倍体细胞做出准确判断。
1.引言
微核:间期细胞的细胞质中一个或多个圆形或杏仁状结构。微核的折光率及细胞化学反应性质和主核一样,也具有合成DNA的能力。微核是染色体畸变的一种表现方式。
引起染色体断裂的因素分为物理因素和化学因素。物理因素包括:具有能量的各种射线,如α射线,β射线,γ射线,X-ray,中子,质子,UV等。化学因素包括:诱变剂和重金属等。经典断裂剂:X射线。诱变剂:环磷酰胺、氧化铬CrO3、叠氮化钠NaN3、甲基璜酸乙酯EMS、硫酸二乙酯。
微核发生率同作用因子的剂量呈正相关。微核技术获得的结果与通过中期畸变染色体计数所获结果相当。
2.实验材料
2.1实验材料
多倍体诱导的蒜根,1mol/L盐酸,改良苯酚品红,载玻片,盖玻片,解剖针,显微镜,刀片。
2.2实验方法
2.2.1材料的获取及处理
取材:
取大蒜发根至0.5-1cm,然后转入盛有0.15%秋水仙素水溶液的培养皿中继续培养24小时,待观察到根部有膨大时取出固定。与在水中培养的材料做对照。
图片来源:/webcourse/xibaoyichuan/jdsy/images/5-1.jpg 固定:
在卡诺固定液中固定24小时,移至70%乙醇中保存或备用。
解离:
解离植物的分生组织如根尖、茎尖等需要经过处理以便除去细胞之间的果胶层并使细胞壁软化,经解离的组织才能使压片步骤顺利进行。解离常用酸解法和酶解法。
①酸解法:固定后的材料用清水洗涤后,用1MHCl在60℃水浴中恒温处理5-10min。在酸解过程中一定要掌握好温度和时间,若解离不够,则压片不易分散。若解离太过,在下一步处理材料时由于材料过软而易丢失。然后水洗3次。
②酶解法:用10-20g/L的果胶酶,或与10-50g/L的纤维素酶混合使用。
本次实验采用酸解法。
染色:
切取根尖分生组织区,用改良苯酚品红染色15 min
2.2.2染液的制备
改良苯酚品红,其制备过程如下:
原液A 3g碱性品红溶于100ml 70%乙醇中。
原液B 取原液A 10 ml加入90 ml 5%的苯酚水溶液。
取原液B 45ml加入6ml 冰乙酸和6ml 37%的甲醛。(适合于植物原生质培养中的细胞核染色)取2-10ml染色液,加90-98ml 45%的醋酸1.8g山梨醇。(适合于细胞核的染色,只有细胞核及染色体被染成紫红色,而细胞质不着色)
2.2.3制片及镜检
压片:
将染色后的材料盖上盖玻片,在盖玻片上盖上两层吸水纸,用一个双面刀片,插到盖片与载片之间的一角,用左手食指压紧盖片,防止滑动,用右手持解剖针,用针柄轻敲盖片,使材料均匀分散开。然后将刀片轻轻撤出,再用针柄重敲盖片,使细胞分散压平。
镜检:
在制成的染色体玻片标本中,染色清晰而且分散良好的中期分裂相总是少数,所以,在压片之后需要认真地进行镜检。
镜检时先用低倍镜进行观察,找到好的视野后再转用高倍镜观察。
3.结果
16条染色体,有姐妹染色单体
16条染色体,无姐妹染色单体
32条染色体,无染色单体
64条染色体,无染色单体
4.讨论
1)微核监测的关键:
(1)材料的选择
应选择染色体条数少,个体大,便于统计,对污染物反应比较敏感的材料,应适宜于在当地生长。
在微核试验(MNT)中经常使用的小鼠品系CD-1、BDF1、ddY、MS/Ae系(小鼠是由瑞典学者Aeschbacher建立的对诱变作用高度敏感的新品系)。
(2)材料的处理
①巨大性:随着染色体加倍,细胞核和细胞变大,组织器官也变大。根、茎粗壮叶宽厚、色深、花大、色艳、气孔、花粉粒、果实、种子大
②可孕性低:多倍体特别是三倍体是高度不孕的。例如,无籽、种子皱缩如无籽香蕉,无籽葡萄,无籽西瓜,无籽柑橘,无球悬铃木。但风信子三倍体品种(2n=3X=24)表现高度可孕性。
③适应性强:植物多倍化不仅使植株基因活性及酶的差异性增强,而且还增强了植株的生态适应性、对逆境的抗耐性,所以分布地区较广。多倍体杜鹃多分布在我国西南山区,而二倍体只分布在平原。
④有机合成速率增加:多倍体有多套基因,新陈代谢旺盛,酶活性加倍,提高了有机物的合成速率。例如,多倍体甜菜,产糖量高;三倍体表现出明显的超亲优势;浆果类,贮存期延长;多倍体花卉花大香味浓。
⑤克服远缘杂交的不结实性
2.一张制片好的细胞染色体制片至少符合如下条件:
①在一张制片中应有较多的中期分裂相。
②染色体分散而不重叠。
③染色体不扭曲、断裂、主缢痕、随体清晰。
④制片基本上为一层平展的细胞,视野内的细胞都在一个平面上。
⑤染色体着色较深而细胞质不着色或着色很浅,背景清晰无过多杂质。
选择中期分裂相好的细胞观察,通过观察和计数中期染色体数目,确定细胞类型。