差速离心法和密度梯度离心法的区别
密度离心和差速离心
密度离心和差速离心
一、密度离心
所谓密度离心，指的是利用密度的不同结合离心力，使重物离心旋转，从而使不同密度的液体分离的一种分离工艺。
一般用来分离悬浮液、分离混合物中比密度差不多的液体，也可以分离溶质、悬浮物等。
密度离心的工艺特点有：
1、离心力大，易于将混合物中的不同密度的液体分离出来。
2、机械结构简单，操作简单，只需数十甚至几十分钟就可以实现混合物的分离。
3、操作温度较低，不受外界温度波动影响。
4、如果混合物中液体的密度有明显的差别，可以实现快速、高效的分离。
二、差速离心
所谓的差速离心，就是利用混合物中液体不同的摩擦系数，在两个不同速度的离心管中使它们运动，从而达到混合物的分离而发明的一种离心技术。
差速离心主要用于高粘度、低浓度的混合物的分离，如果混合物中的液体摩擦系数较小，可以使液体较快的分离出来。
差速离心的工艺特点有：
1、离心力小，能有效分离混合物中的低浓度、高粘度的液体。
2、机械结构简单，易于操作。
3、操作温度低，不受外界温度波动影响。
4、操作较简单，只需要数十分钟就可以实现混合物的分离。
细胞分离常用方法
细胞分离常用方法细胞分离是生物学和医学研究中的基础技术之一，它可以将复杂的生物样品中的细胞分离出来，进而进行单细胞研究、细胞培养、细胞分析等进一步实验。
细胞分离的方法有很多种，可以根据研究目的和实验要求来选择合适的方法。
下面将介绍几种常用的细胞分离方法。
1.酶消化分离法：这种方法是通过使用特定的酶来消化组织或细胞间的连接物质，使细胞从组织中解离出来。
常用的酶有胰蛋白酶、胰酶、胶原酶、玉米胚胎蛋白酶等。
该方法适用于从组织中分离细胞，如从肝脏中分离肝细胞。
2.离心法：离心法是利用离心仪的离心力来分离细胞。
一般分为差速离心和密度梯度离心两种。
差速离心适用于分离不同大小和形状的细胞，如红细胞和白细胞的分离；而密度梯度离心适用于细胞的分子量和密度有明显差异的情况，如分离淋巴细胞、单核细胞等。
3.过滤法：过滤法是利用不同孔径的滤膜将样品中的细胞分离出来。
根据细胞大小的不同，可以选择不同孔径大小的滤膜，常见的有0.22μm的滤膜。
过滤法适用于细胞数目较多且大小相似的情况，如血液中的白细胞。
4.磁珠分离法：磁珠分离法是利用磁珠的特殊性质和磁场来分离细胞。
磁珠表面可以特异性地结合上其中一种特定分子，如抗体。
通过与标记有磁珠的抗体的结合，可以选择性地将含有特定表面标记的细胞分离出来。
这种方法可以用于对细胞表面标记的特异性分离，如肿瘤细胞的分离。
5.流式细胞术：流式细胞术是通过细胞在流动溶液中的特定速度和流体动力学效应来分离细胞。
这种方法需要将细胞样品悬浮在含有细胞染料的缓冲液中，经过专用的流式细胞术仪器进行分析。
根据细胞性状、大小和表面标记的不同，可以选择性地将不同细胞分离出来。
上述方法是几种常见的细胞分离方法，不同的方法适用于不同的细胞类型和实验要求。
除了上述方法外，还有其他一些特殊的细胞分离方法，如电泳法、免疫磁珠法等。
在选择细胞分离方法时，需要综合考虑细胞类型、实验目的和设备条件等因素，选择合适的分离方法。
差速离心、密度梯度离心、超滤离心技术在骨髓间充质干细胞外泌体提取中的应用对比观察
差速离心㊁密度梯度离心㊁超滤离心技术在骨髓间充质干细胞外泌体提取中的应用对比观察罗靖莹ꎬ贺宏丽ꎬ郭阳ꎬ黄玮玮ꎬ黄晓波(电子科技大学附属医院/四川省人民医院ꎬ成都６１００７２)㊀㊀摘要:目的㊀观察差速离心㊁密度梯度离心㊁超滤离心技术在骨髓间充质干细胞(ＢＭＳＣｓ)外泌体提取中的应用ꎬ筛选外泌体最佳离心提取方法ꎮ方法㊀取ＢＭＳＣｓ培养４８ｈ后收集细胞上清ꎬ平均分成Ａ㊁Ｂ㊁Ｃ组ꎬ分别使用差速离心技术㊁密度梯度离心技术㊁超滤离心技术提取外泌体ꎻ记录各组外泌体提取时间ꎻ采用负染色技术观察各组外泌体形态ꎻ使用纳米颗粒跟踪分析仪测算各组外泌体浓度及大小ꎻ采用ＢＣＡ法测定外泌体总蛋白浓度ꎻ采用Ｗｅｓｔｅｒｎｂｌｏｔｔｉｎｇ法检测各组外泌体表面标志蛋白ＣＤ９㊁ＣＤ６３㊁Ａｌｉｘꎮ将肺微血管内皮细胞(ＰＭＶＥＣｓ)分成５组ꎬＥＣ组上室加入ＰＭＶＥＣｓ及培养基ꎻＬＰＳ组上室加入ＰＭＶＥＣｓ及含ＬＰＳ的培养基(构建内皮细胞损伤模型)ꎻＡ㊁Ｂ㊁Ｃ组上室加入方法同ＬＰＳ组ꎬ下室分别加入Ａ㊁Ｂ㊁Ｃ组外泌体ꎻ采用葡聚糖渗漏实验检测外泌体内皮细胞通透性(观察外泌体对内皮细胞的修复作用)ꎬ以内皮细胞通透指数表示ꎮ结果㊀Ａ㊁Ｂ㊁Ｃ组的外泌体的提取时间分别为(１８０ʃ８)㊁(２０３ʃ１０)㊁(４０ʃ５)ｍｉｎꎬＡ㊁Ｂ组外泌体的提取时间与Ｃ组相比ꎬＰ均<０.０５ꎮ各组外泌体均为大小不等的椭圆形或圆形的膜性结构ꎬ边界清晰ꎬ但仅Ａ组外泌体可见到典型的杯状结构ꎮＡ㊁Ｂ㊁Ｃ组的外泌体浓度分别为(４.４６ʃ０.３８)ˑ１０８/ｍＬ㊁(５.１１ʃ０.１６)ˑ１０８/ｍＬ㊁(２.１８ʃ０.１７)ˑ１０８/ｍＬꎬＡ㊁Ｂ组与Ｃ组外泌体浓度相比ꎬＰ均<０.０５ꎮＡ㊁Ｂ㊁Ｃ组的外泌体大小均为２０~１００ｎｍꎮＡ㊁Ｂ组外泌体总蛋白浓度及ＣＤ６３㊁Ａｌｉｘ的相对表达量均显著高于Ｃ组(Ｐ均<０.０５)ꎮＡ㊁Ｂ㊁Ｃ㊁ＬＰＳ㊁ＥＣ组的内皮细胞通透指数分别为２.１７ʃ０.１５㊁１.７７ʃ０.３２㊁２.３７ʃ０.４２㊁２.９３ʃ０.１５㊁１.００ʃ０.００ꎬＡ㊁Ｂ㊁Ｃ㊁ＬＰＳ组的内皮细胞通透指数与ＥＣ组相比ꎬＰ均<０.０５ꎻＡ㊁Ｂ组的内皮细胞通透指数与ＬＰＳ组相比ꎬＰ均<０.０５ꎮ结论㊀密度梯度离心技术虽耗时较长ꎬ但提取的外泌体纯度㊁浓度较高ꎬ对内皮细胞的修复作用较强ꎬ可以作为科研和临床研究的首选外泌体离心提取方法ꎮ㊀㊀关键词:外泌体ꎻ外泌体提取方法ꎻ差速离心技术ꎻ密度梯度离心技术ꎻ超滤离心技术ꎻ间充质干细胞ꎻ骨髓间充质干细胞ꎻ肺微血管内皮细胞㊀㊀ｄｏｉ:１０.３９６９/ｊ.ｉｓｓｎ.１００２￣２６６Ｘ.２０１９.１２.０１３㊀㊀中图分类号:Ｒ３３㊀㊀文献标志码:Ａ㊀㊀文章编号:１００２￣２６６Ｘ(２０１９)１２￣００４８￣０５基金项目:四川省医学科学院 四川省人民医院青年博士基金(２０１５ＢＳ０７)ꎮ通信作者:黄晓波(Ｅ￣ｍａｉｌ:ｄｒｈｕａｎｇｘｂ＠１６３.ｃｏｍ)[１２]ＳｔｏｌｆＡＭꎬＣａｒｄｏｓｏＣＣꎬＡｃｃｏＡ.Ｅｆｆｅｃｔｓｏｆｓｉｌｙｍａｒｉｎｏｎｄｉａｂｅｔｅｓｍｅｌｌｉｔｕｓｃｏｍｐｌｉｃａｔｉｏｎｓ:ａｒｅｖｉｅｗ[Ｊ].ＰｈｙｔｏｔｈｅｒＲｅｓꎬ２０１７ꎬ３１(３):３６６￣３７４.[１３]ＶｅｓｓａｌＧꎬＡｋｍａｌｉＭꎬＮａｊａｆｉＰꎬｅｔａｌ.Ｓｉｌｙｍａｒｉｎａｎｄｍｉｌｋｔｈｉｓｔｌｅｅｘｔｒａｃｔｍａｙｐｒｅｖｅｎｔｔｈｅｐｒｏｇｒｅｓｓｉｏｎｏｆｄｉａｂｅｔｉｃｎｅｐｈｒｏｐａｔｈｙｉｎｓｔｒｅｐｔｏｚｏｔｏｃｉｎ￣ｉｎｄｕｃｅｄｄｉａｂｅｔｉｃｒａｔｓ[Ｊ].ＲｅｎＦａｉｌꎬ２０１０ꎬ３２(６):７３３￣７３９.[１４]ＳｈｅｅｌａＮꎬＪｏｓｅＭＡꎬＳａｔｈｙａｍｕｒｔｈｙＤꎬｅｔａｌ.Ｅｆｆｅｃｔｏｆｓｉｌｙｍａｒｉｎｏｎｓｔｒｅｐｔｏｚｏｔｏｃｉｎ￣ｎｉｃｏｔｉｎａｍｉｄｅ￣ｉｎｄｕｃｅｄｔｙｐｅ２ｄｉａｂｅｔｉｃｎｅｐｈｒｏｐａｔｈｙｉｎｒａｔｓ[Ｊ].ＩｒａｎＪＫｉｄｎｅｙＤｉｓꎬ２０１３ꎬ７(２):１１７￣１２３.[１５]张红ꎬ章向成ꎬ朱大龙.炎性反应与糖尿病肾病[Ｊ].国际内分泌代谢杂志ꎬ２０１５ꎬ３５(１):４９￣５２.[１６]ＮｇｕｙｅｎＤꎬＰｉｎｇＦꎬＭｕＷꎬｅｔａｌ.Ｍａｃｒｏｐｈａｇｅａｃｃｕｍｕｌａｔｉｏｎｉｎｈｕ￣ｍａｎｐｒｏｇｒｅｓｓｉｖｅｄｉａｂｅｔｉｃｎｅｐｈｒｏｐａｔｈｙ[Ｊ].Ｎｅｐｈｒｏｌｏｇｙꎬ２０１０ꎬ１１(３):２２６￣２３１.[１７]郑寿焕ꎬ金光明ꎬ柳明洙.ＣＤ１４启动子￣１５９位点基因多态性与糖尿病肾病的相关性研究[Ｊ].中华内分泌代谢杂志ꎬ２００９ꎬ２５(４):４０９￣４１１.[１８]ＷｕＣＨꎬＨｕａｎｇＳＭꎬＹｅｎＧＣ.Ｓｉｌｙｍａｒｉｎ:ａｎｏｖｅｌａｎｔｉｏｘｉｄａｎｔｗｉｔｈａｎｔｉｇｌｙｃａｔｉｏｎａｎｄａｎｔｉｉｎｆｌａｍｍａｔｏｒｙｐｒｏｐｅｒｔｉｅｓｉｎｖｉｔｒｏａｎｄｉｎｖｉｖｏ[Ｊ].ＡｎｔｉｏｘｉｄＲｅｄｏｘＳｉｇｎａｌꎬ２０１１ꎬ１４(３):３５３￣３６６.[１９]ＺｈａｎｇＨꎬＺｈａｎｇＲꎬＣｈｅｎＪꎬｅｔａｌ.Ｈｉｇｈｍｏｂｉｌｉｔｙｇｒｏｕｐｂｏｘ１ｉｎ￣ｈｉｂｉｔｏｒｇｌｙｃｙｒｒｈｉｚｉｃａｃｉｄａｔｔｅｎｕａｔｅｓｋｉｄｎｅｙｉｎｊｕｒｙｉｎｓｔｒｅｐｔｏｚｏｔｏｃｉｎ￣ｉｎｄｕｃｅｄｄｉａｂｅｔｉｃｒａｔｓ[Ｊ].ＫｉｄｎｅｙＢｌｏｏｄＰｒｅｓｓＲｅｓꎬ２０１７ꎬ４２(５):８９４￣９０４.[２０]Ｇａｒｃｉａ￣ＧａｒｃｉａＰＭꎬＧｅｔｉｎｏ￣ＭｅｌｉａｎＭＡꎬＤｏｍｉｎｇｕｅｚ￣ＰｉｍｅｎｔｅｌＶꎬｅｔａｌ.Ｉｎｆｌａｍｍａｔｉｏｎｉｎｄｉａｂｅｔｉｃｋｉｄｎｅｙｄｉｓｅａｓｅ[Ｊ].ＷｏｒｌｄＪＤｉａｂｅｔｅｓꎬ２０１４ꎬ５(４):４３１￣４４３.[２１]ＦａｌｌａｈｚａｄｅｈＭＫꎬＤｏｒｍａｎｅｓｈＢꎬＳａｇｈｅｂＭＭꎬｅｔａｌ.Ｅｆｆｅｃｔｏｆａｄｄｉ￣ｔｉｏｎｏｆｓｉｌｙｍａｒｉｎｔｏｒｅｎｉｎ￣ａｎｇｉｏｔｅｎｓｉｎｓｙｓｔｅｍｉｎｈｉｂｉｔｏｒｓｏｎｐｒｏｔｅｉｎｕ￣ｒｉａｉｎｔｙｐｅ２ｄｉａｂｅｔｉｃｐａｔｉｅｎｔｓｗｉｔｈｏｖｅｒｔｎｅｐｈｒｏｐａｔｈｙ:ａｒａｎｄｏｍ￣ｉｚｅｄꎬｄｏｕｂｌｅ￣ｂｌｉｎｄꎬｐｌａｃｅｂｏ￣ｃｏｎｔｒｏｌｌｅｄｔｒｉａｌ[Ｊ].ＡｍＪＫｉｄｎｅｙＤｉｓꎬ２０１２ꎬ６０(６):８９６￣９０３.(收稿日期:２０１８￣１２￣０４)８４ＣｏｍｐａｒｉｓｏｎｏｆｄｉｆｆｅｒｅｎｔｉａｌｃｅｎｔｒｉｆｕｇａｔｉｏｎꎬｄｅｎｓｉｔｙｇｒａｄｉｅｎｔｃｅｎｔｒｉｆｕｇａｔｉｏｎꎬａｎｄｕｌｔｒａｆｉｌｔｒａｔｉｏｎｏｆｃｅｎｔｒｉｆｕｇａｔｉｏｎｉｎｅｘｔｒａｃｔｉｏｎｏｆｅｘｏｓｏｍｅｓｆｒｏｍｂｏｎｅｍａｒｒｏｗｍｅｓｅｎｃｈｙｍａｌｓｔｅｍｃｅｌｌｓＬＵＯＪｉｎｇｙｉｎｇꎬＨＥＨｏｎｇｌｉꎬＧＵＯＹａｎｇꎬＨＵＡＮＧＷｅｉｗｅｉꎬＨＵＡＮＧＸｉａｏｂｏ(ＴｈｅＡｆｆｉｌｉａｔｅｄＨｏｓｐｉｔａｌｏｆＵｎｉｖｅｒｓｉｔｙｏｆＥｌｅｃｔｒｏｎｉｃＳｃｉｅｎｃｅａｎｄＴｅｃｈｎｏｌｏｇｙ/ＳｉｃｈｕａｎＰｒｏｖｉｎｃｉａｌＰｅｏｐｌｅ'ｓＨｏｓｐｉｔａｌꎬＣｈｅｎｇｄｕ６１００７２ꎬＣｈｉｎａ)㊀㊀Ａｂｓｔｒａｃｔ:Ｏｂｊｅｃｔｉｖｅ㊀Ｔｏｏｂｓｅｒｖｅｔｈｅａｐｐｌｉｃａｔｉｏｎｏｆｔｈｅｄｉｆｆｅｒｅｎｔｉａｌｃｅｎｔｒｉｆｕｇａｔｉｏｎꎬｄｅｎｓｉｔｙｇｒａｄｉｅｎｔｃｅｎｔｒｉｆｕｇａｔｉｏｎａｎｄｕｌｔｒａｆｉｌｔｒａｔｉｏｎｏｆｃｅｎｔｒｉｆｕｇａｔｉｏｎｉｎｔｈｅｅｘｔｒａｃｔｉｏｎｏｆｅｘｏｓｏｍｅｓｆｒｏｍｂｏｎｅｍａｒｒｏｗｍｅｓｅｎｃｈｙｍａｌｓｔｅｍｃｅｌｌｓ(ＢＭＳＣｓ)ꎬａｎｄｔｏｆｉｎｄｏｕｔｔｈｅｏｐｔｉｍａｌｍｅｔｈｏｄ.Ｍｅｔｈｏｄｓ㊀Ａｆｔｅｒｃｕｌｔｕｒｉｎｇｆｏｒ４８ｈꎬｔｈｅｓｕｐｅｒｎａｔａｎｔｓｏｆＢＭＳＣｓｗｅｒｅｃｏｌｌｅｃｔｅｄａｎｄｄｉｖｉｄｅｄｉｎｔｏｔｈｅｇｒｏｕｐｓＡꎬＢａｎｄＣ.Ｔｈｅｅｘｏｓｏｍｅｓｗｅｒｅｅｘｔｒａｃｔｅｄｂｙｄｉｆｆｅｒｅｎｔｉａｌｃｅｎｔｒｉｆｕｇａｔｉｏｎꎬｄｅｎｓｉｔｙｇｒａｄｉｅｎｔｃｅｎｔｒｉｆｕｇａｔｉｏｎꎬａｎｄｕｌ￣ｔｒａｆｉｌｔｒａｔｉｏｎｃｅｎｔｒｉｆｕｇａｔｉｏｎꎬｒｅｓｐｅｃｔｉｖｅｌｙ.Ｔｈｅｅｘｔｒａｃｔｉｏｎｔｉｍｅｏｆｅａｃｈｇｒｏｕｐｗａｓｒｅｃｏｒｄｅｄ.Ｔｈｅｍｏｒｐｈｏｌｏｇｙｏｆｅｘｏｓｏｍｅｓｉｎｅａｃｈｇｒｏｕｐｗａｓｏｂｓｅｒｖｅｄｂｙｎｅｇａｔｉｖｅｓｔａｉｎｉｎｇｔｅｃｈｎｉｑｕｅꎻｔｈｅｃｏｎｃｅｎｔｒａｔｉｏｎａｎｄｓｉｚｅｏｆｅｘｏｓｏｍｅｓｗｅｒｅｍｅａｓｕｒｅｄｂｙｎａｎｏｐａｒ￣ｔｉｃｌｅｔｒａｃｋｉｎｇａｎａｌｙｚｅｒꎻｔｈｅｃｏｎｃｅｎｔｒａｔｉｏｎｏｆｔｏｔａｌｐｒｏｔｅｉｎｗａｓｄｅｔｅｒｍｉｎｅｄｂｙＢＣＡｍｅｔｈｏｄꎻｔｈｅｓｕｒｆａｃｅｍａｒｋｅｒｐｒｏｔｅｉｎｓＣＤ９ꎬＣＤ６３ꎬＡｌｉｘｏｆｅｘｏｓｏｍｅｓｗｅｒｅｄｅｔｅｃｔｅｄｂｙＷｅｓｔｅｒｎｂｌｏｔｔｉｎｇ.Ｐｕｌｍｏｎａｒｙｍｉｃｒｏｖａｓｃｕｌａｒｅｎｄｏｔｈｅｌｉａｌｃｅｌｌｓ(ＰＭＶＥＣｓ)ｗｅｒｅｄｉ￣ｖｉｄｅｄｉｎｔｏｆｉｖｅｇｒｏｕｐｓ.ＰＭＶＥＣｓａｎｄｍｅｄｉｕｍｗｅｒｅａｄｄｅｄｔｏｔｈｅｕｐｐｅｒｃｈａｍｂｅｒｏｆｔｈｅＥＣｇｒｏｕｐ.ＰＭＶＥＣｓａｎｄＬＰＳ￣ｃｏｎｔａｉ￣ｎｉｎｇｍｅｄｉｕｍｗｅｒｅａｄｄｅｄｔｏｔｈｅｕｐｐｅｒｃｈａｍｂｅｒｏｆｔｈｅＬＰＳｇｒｏｕｐ(ｔｈｅｅｎｄｏｔｈｅｌｉａｌｃｅｌｌｉｎｊｕｒｙｍｏｄｅｌ)ꎻＴｈｅｓｕｂｓｔａｎｃｅｓａｄｄｅｄｔｏｔｈｅｕｐｐｅｒｃｈａｍｂｅｒｏｆｇｒｏｕｐｓＡꎬＢａｎｄＣｗｅｒｅｔｈｅｓａｍｅａｓｔｈｏｓｅｏｆｔｈｅＬＰＳｇｒｏｕｐꎬａｎｄｔｈｅｌｏｗｅｒｃｈａｍｂｅｒｗａｓａｄｄｅｄｗｉｔｈｔｈｅｅｘｏｓｏｍｅｓꎬｒｅｓｐｅｃｔｉｖｅｌｙ.Ｔｈｅｐｅｒｍｅａｂｉｌｉｔｙｏｆｅｘｏｓｏｍｅｓｗａｓｄｅｔｅｃｔｅｄｂｙｄｅｘｔｒａｎｌｅａｋａｇｅｔｅｓｔ(ｔｏｏｂｓｅｒｖｅｔｈｅｅｆｆｅｃｔｏｎｔｈｅｒｅｐａｉｒｍｅｎｔｏｆｅｎｄｏｔｈｅｌｉａｌｃｅｌｌｓ).Ｒｅｓｕｌｔｓ㊀ＴｈｅｅｘｔｒａｃｔｉｏｎｔｉｍｅｏｆｅｘｏｓｏｍｅｓｉｎｔｈｅｇｒｏｕｐｓＡꎬＢａｎｄＣｗａｓ(１８０ʃ８)ꎬ(２０３ʃ１０)ａｎｄ(４０ʃ５)ｍｉｎꎬｒｅｓｐｅｃｔｉｖｅｌｙ.ＴｈｅｅｘｔｒａｃｔｉｏｎｔｉｍｅｏｆｅｘｏｓｏｍｅｓｉｎｔｈｅｇｒｏｕｐｓＡａｎｄＢｗａｓｓｉｇｎｉｆｉｃａｎｔｈｉｇｈｅｒｔｈａｎｔｈａｔｏｆｔｈｅｇｒｏｕｐＣ(Ｐ<０.０５).ＴｈｅｅｘｏｓｏｍｅｓｏｆｅａｃｈｇｒｏｕｐｗｅｒｅｅｌｌｉｐｔｉｃａｌｏｒｃｉｒｃｕｌａｒｍｅｍｂｒａｎｏｕｓｓｔｒｕｃｔｕｒｅｓｏｆｖａｒｙｉｎｇｓｉｚｅｓｗｉｔｈｃｌｅａｒｂｏｕｎｄａｒｉｅｓꎬｂｕｔｏｎｌｙｉｎｔｈｅｇｒｏｕｐＡꎬｗｅｆｏｕｎｄｔｙｐｉｃａｌｃｕｐ￣ｌｉｋｅｓｔｒｕｃｔｕｒｅ.Ｔｈｅｅｘｏｓｏｍｅｃｏｎｃｅｎ￣ｔｒａｔｉｏｎｓｉｎｔｈｅｇｒｏｕｐｓＡꎬＢꎬａｎｄＣｗｅｒｅ(４.４６ʃ０.３８)ˑ１０８/ｍＬꎬ(５.１１ʃ０.１６)ˑ１０８/ｍＬꎬａｎｄ(２.１８ʃ０.１７)ˑ１０８/ｍＬꎬｒｅｓｐｅｃｔｉｖｅｌｙꎬｗｉｔｈｓｔａｔｉｓｔｉｃａｌｌｙｓｉｇｎｉｆｉｃａｎｔｄｉｆｆｅｒｅｎｃｅ(ａｌｌＰ<０.０５).Ｔｈｅｅｘｏｓｏｍｅｓｏｆｅａｃｈｇｒｏｕｐｗｅｒｅ２０ｔｏ１００ｎｍｉｎｓｉｚｅ.ＴｈｅｔｏｔａｌｐｒｏｔｅｉｎｃｏｎｃｅｎｔｒａｔｉｏｎａｎｄｔｈｅｒｅｌａｔｉｖｅｅｘｐｒｅｓｓｉｏｎｏｆＣＤ６３ａｎｄＡｌｉｘｉｎｔｈｅｇｒｏｕｐｓＡａｎｄＢｗｅｒｅｓｉｇｎｉｆｉｃａｎｔｌｙｈｉｇｈｅｒｔｈａｎｔｈｏｓｅｉｎｔｈｅｇｒｏｕｐＣ(ａｌｌＰ<０.０５).ＴｈｅｐｅｒｍｅａｂｉｌｉｔｙｉｎｄｅｘｅｓｏｆｅｎｄｏｔｈｅｌｉａｌｃｅｌｌｓｉｎｔｈｅｇｒｏｕｐｓＡꎬＢꎬＣꎬＬＰＳｇｒｏｕｐａｎｄＥＣｇｒｏｕｐｗｅｒｅ２.１７ʃ０.１５ꎬ１.７７ʃ０.３２ꎬ２.３７ʃ０.４２ꎬ２.９３ʃ０.１５ꎬａｎｄ１.００ʃ０.００ꎬｒｅｓｐｅｃｔｉｖｅｌｙꎻｓｉｇｎｉｆｉ￣ｃａｎｔｄｉｆｆｅｒｅｎｃｅｗａｓｆｏｕｎｄｉｎｔｈｅｐｅｒｍｅａｂｉｌｉｔｙｏｆｅｎｄｏｔｈｅｌｉａｌｃｅｌｌｓｂｅｔｗｅｅｎｔｈｅｇｒｏｕｐＥＣａｎｄｇｒｏｕｐｓＡꎬＢꎬＣａｎｄＬＰＳ(ａｌｌＰ<０.０５)ａｓｗｅｌｌａｓｂｅｔｗｅｅｎｔｈｅｇｒｏｕｐＬＰＳａｎｄｇｒｏｕｐｓＡａｎｄＢ(Ｐ<０.０５).Ｃｏｎｃｌｕｓｉｏｎ㊀Ｉｔｔａｋｅｓａｌｏｎｇｅｒｔｉｍｅｆｏｒｄｅｎ￣ｓｉｔｙｇｒａｄｉｅｎｔｃｅｎｔｒｉｆｕｇａｔｉｏｎｔｅｃｈｎｏｌｏｇｙｔｏｅｘｔｒａｃｔｔｈｅｅｘｏｓｏｍｅｓꎬｂｕｔｔｈｅｅｘｔｒａｃｔｅｄｅｘｏｓｏｍｅｓｈａｖｅｈｉｇｈｅｒｐｕｒｉｔｙꎬｃｏｎｃｅｎｔｒａ￣ｔｉｏｎꎬａｎｄｓｔｒｏｎｇｅｒｒｅｐａｉｒｉｎｇｅｆｆｅｃｔｏｎｅｎｄｏｔｈｅｌｉａｌｃｅｌｌｓ.Ｔｈｅｒｅｆｏｒｅꎬｄｅｎｓｉｔｙｇｒａｄｉｅｎｔｃｅｎｔｒｉｆｕｇａｔｉｏｎｔｅｃｈｎｏｌｏｇｙｃｏｕｌｄｂｅａｐｒｅ￣ｆｅｒｒｅｄｃｅｎｔｒｉｆｕｇａｌｅｘｔｒａｃｔｉｏｎｍｅｔｈｏｄｆｏｒｓｃｉｅｎｔｉｆｉｃｒｅｓｅａｒｃｈａｎｄｃｌｉｎｉｃａｌｒｅｓｅａｒｃｈ.Ｋｅｙｗｏｒｄｓ:ｅｘｏｓｏｍｅｓꎻｅｘｏｓｏｍｅｓｅｘｔｒａｃｔｅｄｍｅｔｈｏｄꎻｄｉｆｆｅｒｅｎｔｉａｌｃｅｎｔｒｉｆｕｇａｔｉｏｎꎻｄｅｎｓｉｔｙｇｒａｄｉｅｎｔｃｅｎｔｒｉｆｕｇａｔｉｏｎꎻｕｌｔｒａ￣ｆｉｌｔｒａｔｉｏｎｃｅｎｔｒｉｆｕｇａｔｉｏｎꎻｍｅｓｅｎｃｈｙｍａｌｓｔｅｍｃｅｌｌｓꎻｂｏｎｅｍａｒｒｏｗｍｅｓｅｎｃｈｙｍａｌｓｔｅｍｃｅｌｌｓꎻｐｕｌｍｏｎａｒｙｍｉｃｒｏｖａｓｃｕｌａｒｅｎｄｏｔｈｅ￣ｌｉａｌｃｅｌｌｓ㊀㊀间充质干细胞(ＭＳＣｓ)作为一种具有多向分化潜能的细胞ꎬ因其在再生医学领域和临床试验中对各种疾病的治疗效果受到广泛关注ꎮ骨髓间充质干细胞(ＢＭＳＣｓ)常被作为细胞再生的理想供体细胞ꎬ主要的作用机制包括归巢㊁调节免疫㊁转分化及旁分泌[１~４]ꎮ外泌体是一种由脂质双分子层包裹的膜性囊泡ꎬ大小通常在２０~１００ｎｍꎮ研究[５~９]显示ꎬ外泌体广泛存在于尿液㊁胸腹腔积液㊁乳汁㊁唾液等体液中ꎬ而且很多细胞可以分泌外泌体ꎬ如ＭＳＣｓ㊁血细胞㊁内皮细胞㊁神经细胞㊁肿瘤细胞等ꎻ外泌体内含有各种蛋白质㊁脂类和ｍＲＮＡ㊁ｍｉＲＮＡ㊁ＤＮＡ片段等遗传物质ꎬ细胞间可以通过外泌体交换信息㊁相互作用ꎬ且免疫排斥风险较低ꎬ在各种病理状态及炎症反应中发挥着重要的作用ꎮ内皮细胞和上皮细胞受损是炎症反应中至关重要的环节ꎬ已证实ＭＳＣｓ可以通过外泌体修复受损的内皮细胞[１０]ꎮ外泌体体积小且不稳定ꎬ因此如何快速有效地分离和提取外泌体是目前面临的主要挑战ꎮ分离和提取外泌体的方９４法主要有离心法㊁免疫磁珠法㊁ＰＥＧ沉淀法㊁试剂盒法等ꎬ其中常用的离心法主要有差速离心技术㊁密度梯度离心技术和超滤离心技术[１１]ꎮ差速离心技术主要是依据粒子大小和密度设置不同的离心力ꎬ通过平衡沉降原理来分离外泌体ꎮ密度梯度离心技术通常采用蔗糖作为分离介质ꎬ与重水一起配置成１.１~１.１９ｇ/ｍＬ的密度垫ꎬ根据不同沉降系数物质在离心力作用下的分层分布ꎬ以此分离出外泌体[１２]ꎮ超滤离心技术是在一定压力下使溶质通过不同孔径的滤膜ꎬ从而筛选出外泌体ꎮ２０１８年６月２日~２０１８年９月１日ꎬ本研究观察了差速离心㊁密度梯度离心㊁超滤离心技术在ＢＭＳＣｓ外泌体提取中的应用ꎬ筛选外泌体最佳离心提取方法ꎮ１ 材料与方法１.１㊀细胞㊁试剂及仪器㊀ＢＭＳＣｓ㊁肺微血管内皮细胞(ＰＭＶＥＣｓ)购自美国ｓｃｉｅｎｃｅｌｌ公司ꎬＤＭＥＭ/Ｆ１２培养基㊁胎牛血清(ＦＢＳ)购自美国Ｇｉｂｃｏ公司ꎬ抗ＣＤ９㊁ＣＤ６３㊁Ａｌｉｘ㊁ＧＡＰＤＨ购自Ｒ＆Ｄ公司ꎬ山羊抗兔ＩｇＧ￣ＨＲＰ㊁山羊抗鼠ＩｇＧ￣ＨＲＰ购自美国Ａｂｃａｍ公司ꎬＢＣＡ蛋白试剂盒购自凯基公司ꎬ透射电子显微镜购自Ｐｈｉｌｉｐｓ公司ꎬ细胞恒温培养箱购自美国Ｔｈｅｒｍｏ公司ꎬ超速离心机购自Ｂｅｃｋｍａｎ公司ꎬ荧光酶标仪购自美国Ｔｈｅｒｍｏ公司ꎮ１.２㊀细胞培养㊁分组及外泌体的提取㊀ＢＭＳＣｓ㊁ＰＭＶＥＣｓ分别在３７ħ㊁５％ＣＯ２细胞培养箱中ꎬ用含有１０％胎牛血清(ＦＢＳ)和５％双抗的ＤＭＥＭ/Ｆ１２培养基进行培养ꎮ取第４~５代ＢＭＳＣｓ培养至６０％~７０％融合时ꎬ更换为无血清培养基ꎬ继续培养４８ｈ后收集细胞上清３６０ｍＬꎬ平均分成Ａ㊁Ｂ㊁Ｃ组ꎬ每组１２０ｍＬꎬ分别使用差速离心技术㊁密度梯度离心技术㊁超滤离心技术提取外泌体ꎮ记录各组外泌体提取时间ꎮ①差速离心技术提取外泌体ꎮ取Ａ组细胞上清以３０００ˑｇ离心２０ｍｉｎꎬ去除细胞碎片和大分子物质ꎬ在４ħ条件下１０００００ˑｇ离心６０ｍｉｎꎬ弃上清ꎬ加入４ħ的ＰＢＳ重悬ꎬ然后在４ħ条件下１０００００ˑｇ离心６０ｍｉｎꎬ将沉淀物用２００μＬ预冷的ＰＢＳ重悬ꎬ用０.２２μｍ滤过膜过滤ꎬ即得ＢＭＳＣｓ外泌体ꎮ②密度梯度离心技术提取外泌体ꎮ取Ｂ组细胞上清以３００ˑｇ离心１０ｍｉｎꎬ去除细胞碎片和大分子物质ꎬ１００００ˑｇ离心３０ｍｉｎꎬ去除微泡ꎬ延离心管壁缓慢加入４ｍＬ３０％蔗糖溶液ꎬ形成一单层ꎬ在４ħ条件下１０００００ˑｇ离心９０ｍｉｎꎬ弃上清ꎬ将蔗糖层重悬于ＰＢＳ中ꎬ再在４ħ条件下１０００００ˑｇ离心９０ｍｉｎꎬ将获得的沉淀物重悬于２００μＬ预冷的ＰＢＳ中ꎬ即得ＢＭＳＣｓ外泌体ꎮ③超滤离心技术提取外泌体ꎮ在超滤离心管中加入ＰＢＳ缓冲液ꎬ室温条件下３０００ˑｇ离心１５ｍｉｎꎬ去除甘油和其他保存剂ꎻ取Ｃ组细胞上清以１７０００ˑｇ离心１５ｍｉｎꎬ然后加入超滤离心管中以３０００ˑｇ离心３０ｍｉｎꎬ用２００μＬＰＢＳ重悬超滤膜上的沉淀物ꎬ即得ＢＭＳＣｓ外泌体ꎮ１.３㊀Ａ㊁Ｂ㊁Ｃ组外泌体形态观察㊀采用负染色技术ꎮ向载样铜网上分别加入提取的Ａ㊁Ｂ㊁Ｃ组外泌体混悬液２０μＬꎬ室温静置３ｍｉｎ后用滤纸吸干液体ꎬ再加入３０μＬ的３％磷钨酸溶液负染５ｍｉｎꎬ滤纸吸干㊁晾干ꎬ透射电镜下观察各组外泌体形态ꎮ１.４㊀Ａ㊁Ｂ㊁Ｃ组外泌体浓度及大小测算㊀取Ａ㊁Ｂ㊁Ｃ组外泌体悬液１００μＬ稀释于２ｍＬＰＢＳ内ꎬ使用纳米颗粒跟踪分析仪(Ｎａｎｏｓｉｇｈｔ)测算各组外泌体浓度ꎬ并根据每个粒子的布朗运动与斯托克斯￣爱因斯坦(Ｓｔｏｋｅｓ￣Ｅｉｎｓｔｅｉｎ)方程测算各组外泌体大小ꎮ１.５㊀Ａ㊁Ｂ㊁Ｃ组外泌体总蛋白及表面标志蛋白ＣＤ９㊁ＣＤ６３㊁Ａｌｉｘ的检测㊀①采用ＢＣＡ法测定Ａ㊁Ｂ㊁Ｃ组外泌体总蛋白浓度ꎮ②采用Ｗｅｓｔｅｒｎｂｌｏｔｔｉｎｇ法检测Ａ㊁Ｂ㊁Ｃ组外泌体表面标志蛋白ＣＤ９㊁ＣＤ６３㊁Ａｌｉｘꎮ取Ａ㊁Ｂ㊁Ｃ组外泌体悬液１００μＬꎬ加入ＲＩＰＡ裂解液于冰上裂解１０ｍｉｎꎬ使用超声破碎外泌体后于４ħ条件下１５０００ˑｇ离心１０ｍｉｎꎬ制得各组外泌体蛋白样本ꎮ取各组外泌体蛋白样本与上样缓冲液混合煮沸５ｍｉｎ使蛋白变性ꎬ然后进行ＳＤＳ￣ＰＡＧＥ电泳ꎬ半干时转至ＰＶＤＦ膜上ꎬ用５％脱脂奶粉封闭ꎬ加入一抗ꎬ４ħ过夜ꎬＴＢＳＴ清洗３次ꎬ加入相应二抗ꎬ室温孵育１ｈꎬＴＢＳＴ清洗３次ꎬ以ＧＡＰＤＨ为内参ꎬＥＣＬ化学发光系统检测各组外泌体表面标志蛋白ＣＤ９㊁ＣＤ６３㊁Ａｌｉｘ灰度值ꎬ计算各组外泌体表面标志蛋白ＣＤ９㊁ＣＤ６３㊁Ａｌｉｘ的相对表达量ꎮ外泌体表面标志蛋白的相对表达量＝外泌体表面标志蛋白灰度值/ＧＡＰＤＨ灰度值ꎮ１.６㊀外泌体内皮细胞通透性检测㊀采用１００ｎｇ/ｍＬ的脂多糖(ＬＰＳ)干预ＰＭＶＥＣｓ６ｈ构建内皮细胞损伤模型ꎮ采用Ｔｒａｎｓｗｅｌｌ小室进行葡聚糖渗漏实验ꎮ将ＰＭＶＥＣｓ分成５组ꎬＥＣ组上室加入１ˑ１０５个ＰＭＶＥＣｓ以及１００μＬ完全培养基ꎻＬＰＳ组上室加入１ˑ１０５个ＰＭＶＥＣｓ以及１００μＬ含１００ｎｇ/ｍＬＬＰＳ的完全培养基ꎻＡ㊁Ｂ㊁Ｃ组上室加入方法０５同ＬＰＳ组ꎬ下室分别加入Ａ㊁Ｂ㊁Ｃ组外泌体１００μｇꎬ用不含酚红㊁血清的培养基重悬至４００μＬꎮ各组上室弃上清ꎬ加入不含酚红㊁血清的培养基配制的ＦＩＴＣ￣葡聚糖(４０ｋＤａꎬ０.５ｍｇ/ｍＬ)１００μＬꎬ下室加入等浓度无ＦＩＴＣ标记的葡聚糖１００μＬꎬ３７ħ㊁５％ＣＯ２㊁避光条件下培养４０ｍｉｎꎬ吸取上㊁下室液体各１００ｕＬꎬ在激发光波长４９０/４８５ｎｍ㊁发射光波长５２５/５３０ｎｍ处ꎬ采用荧光酶标仪检测荧光强度ꎬ计算内皮细胞通透系数ꎮ内皮细胞通透系数＝([Ａ]/ｔ)ˑ(１/Ａ)ˑ(ｖ/[Ｌ])ꎮ其中[Ａ]为下室荧光强度ꎻｔ为时间ꎬ单位为ｓꎻＡ为滤过面积ꎬ单位为ｃｍ２ꎻｖ为下室液体量ꎻ[Ｌ]为上室荧光强度ꎮ各组外泌体内皮细胞通透性以各组内皮细胞通透指数表示ꎮ各组内皮细胞通透指数＝各组内皮细胞通透系数/ＥＣ组内皮细胞通透系数ꎮ１.７㊀统计学方法㊀采用ＳＰＳＳ２０.０统计软件ꎮ计量资料以 ｘʃｓ表示ꎬ比较用单因素方差分析ꎮＰ<０.０５为差异有统计学意义ꎮ２㊀结果２.１㊀Ａ㊁Ｂ㊁Ｃ组外泌体提取时间比较㊀Ａ㊁Ｂ㊁Ｃ组的外泌体的提取时间分别为(１８０ʃ８)㊁(２０３ʃ１０)㊁(４０ʃ５)ｍｉｎꎬＡ㊁Ｂ组外泌体的提取时间与Ｃ组相比ꎬＰ均<０.０５ꎻＡ组外泌体的提取时间与Ｂ组相比ꎬＰ>０.０５ꎮ２.２㊀Ａ㊁Ｂ㊁Ｃ组外泌体形态比较㊀如图１所示ꎬ各组外泌体均为大小不等的椭圆形或圆形的膜性结构ꎬ边界清晰ꎬ但仅Ａ组外泌体可见到典型的杯状结构ꎮ图１㊀透射电镜下各组外泌体形态２.３㊀Ａ㊁Ｂ㊁Ｃ组外泌体浓度及大小比较㊀Ａ㊁Ｂ㊁Ｃ组的外泌体浓度分别为(４.４６ʃ０.３８)ˑ１０８/ｍＬ㊁(５.１１ʃ０.１６)ˑ１０８/ｍＬ㊁(２.１８ʃ０.１７)ˑ１０８/ｍＬꎬＡ㊁Ｂ组与Ｃ组外泌体浓度相比ꎬＰ均<０.０５ꎻＡ组与Ｂ组外泌体浓度相比ꎬＰ>０.０５ꎮＡ㊁Ｂ㊁Ｃ组的外泌体大小均为２０~１００ｎｍꎮ２.４㊀Ａ㊁Ｂ㊁Ｃ组外泌体总蛋白浓度及表面标志蛋白ＣＤ９㊁ＣＤ６３㊁Ａｌｉｘ的表达比较㊀如表１所示ꎬＡ㊁Ｂ组外泌体总蛋白浓度及ＣＤ６３㊁Ａｌｉｘ的相对表达量均显著高于Ｃ组(Ｐ均<０.０５)ꎮ表１㊀Ａ㊁Ｂ㊁Ｃ组外泌体表面标志蛋白ＣＤ９㊁ＣＤ６３㊁Ａｌｉｘ的表达比较( ｘʃｓ)组别总蛋白(μｇ/ｍＬ)ＣＤ９ＣＤ６３ＡｌｉｘＡ组３３１.３３ʃ２４.１７﹡６.４７ʃ１.０７１８.４７ʃ０.８３﹡２６.７３ʃ０.７６﹡Ｂ组３５０.０６ʃ３０.７４﹡７.４０ʃ０.５６２６.３０ʃ０.８２﹡３７.７０ʃ２.６５﹡Ｃ组１９８.４２ʃ１８.９６５.５３ʃ１.１９９.７５ʃ０.４４１８.１３ʃ１.２７㊀㊀注:与Ｃ组相比ꎬ﹡Ｐ<０.０５ꎮ２.５㊀Ａ㊁Ｂ㊁Ｃ㊁ＬＰＳ㊁ＥＣ组内皮细胞通透指数比较㊀Ａ㊁Ｂ㊁Ｃ㊁ＬＰＳ㊁ＥＣ组内皮细胞通透指数分别为２.１７ʃ０.１５㊁１.７７ʃ０.３２㊁２.３７ʃ０.４２㊁２.９３ʃ０.１５㊁１.００ʃ０.００ꎬＡ㊁Ｂ㊁Ｃ㊁ＬＰＳ组的内皮细胞通透指数与ＥＣ组相比ꎬＰ均<０.０５ꎻａ㊁ｂ组的内皮细胞通透指数与ＬＰＳ组相比ꎬＰ均<０.０５ꎻ其余各组间相比ꎬＰ均>０.０５ꎮ３㊀讨论㊀㊀ＢＭＳＣｓ是成体干细胞的一种ꎬ具有高度自我更新能力和多向分化潜能ꎬ且具有免疫调节作用ꎬ是组织工程学中常用的种子细胞ꎬ其对临床上常见的急性肺损伤/急性呼吸窘迫综合征㊁心肌梗死㊁糖尿病㊁肝肾功能衰竭等多种疾病的治疗效果受到了广泛的关注ꎮ随着研究的深入进展ꎬ研究人员发现ＭＳＣｓ主要是通过旁分泌机制进行组织器官的保护[１３]ꎮ胞外囊泡(ＥＶ)被认为是细胞间信息交流和物质传递的新机制[１４]ꎮ根据粒径大小和分泌机制的不同ꎬＥＶ可分为１００~１０００ｎｍ的微泡(ＭＶ)和２０~１００ｎｍ的外泌体ꎮ研究[１５]显示ꎬ外泌体易获取㊁易储存ꎬ无致瘤性ꎬ在再生医学㊁器官移植㊁疾病诊断和药物传递等方面发挥了不可或缺的作用ꎬ但目前并无标准的分离提取技１５术ꎬ如何提高浓度㊁保证纯度㊁维持活性㊁节约时间ꎬ是目前临床亟需解决的问题ꎮ㊀㊀本研究首先采用差速离心技术㊁密度梯度离心技术和超滤离心技术提取ＢＭＳＣｓ外泌体ꎬ随后对分离提取的外泌体进行了比较ꎮ各组外泌体提取时间对比显示ꎬ超滤离心技术提取外泌体用时最少ꎻ通过透射电镜和Ｎａｎｏｓｉｇｈｔ观察到ꎬ３种方法均可以分离出大小不等的椭圆形或圆形的膜性结构ꎬ大小在２０~１００ｎｍꎻ通过ＢＣＡ蛋白定量法和ＮＴＡ公式计算出ꎬ密度梯度离心技术提取的外泌体总蛋白和外泌体浓度最高ꎬ差速离心技术其次ꎬ超滤离心技术最低ꎻ３种方法提取的外泌体均可表达特异性表面标志物ＣＤ９㊁ＣＤ６３㊁Ａｌｉｘꎬ差速离心技术和密度梯度离心技术ＣＤ６３和Ａｌｉｘ的表达明显高于超滤离心技术ꎬ说明超滤离心技术分离出来的外泌体浓度和纯度均较低ꎮ㊀㊀ＰＭＶＥＣｓ既是急性肺损伤时的受害者ꎬ也是启动者ꎬ在急性呼吸窘迫综合征(ＡＲＤＳ)发生时ꎬＰＭ￣ＶＥＣｓ的通透性显著升高ꎮ本研究通过ＬＰＳ干预ＰＭＶＥＣｓ构建了内皮细胞损伤模型ꎬ观察各离心技术提取的外泌体对受损内皮细胞的修复作用ꎬ结果显示ꎬ与ＬＰＳ组相比ꎬＡ㊁Ｂ组外泌体内皮细胞通透指数显著下降ꎬ说明差速离心技术和密度梯度离心技术提取的外泌体具有更强的内皮细胞修复能力ꎬ可能与差速离心技术和密度梯度离心技术提取的外泌体浓度和纯度更高有关ꎬ但后期仍需研究更多的内皮细胞功能实验验证ꎮ㊀㊀差速离心技术步骤简单ꎬ产物纯度高ꎮ但差速离心技术也有一定的缺点ꎬ反复的离心提纯过程会造成外泌体丢失及影响囊膜的完整性ꎬ且易形成聚合物[１６]ꎻ密度梯度离心技术提取产物更纯ꎬ且不影响外泌体的活性ꎬ但是准备工作繁琐ꎬ程序复杂且耗时长ꎮ超滤离心技术过程简单㊁速度快ꎬ但可能存在杂蛋白污染ꎬ部分外泌体也可能黏附于滤膜上导致产物损失以及活性丧失[１７]ꎮ㊀㊀综上所述ꎬ密度梯度离心技术虽耗时较长ꎬ但提取的外泌体纯度㊁浓度较高ꎬ对内皮细胞的修复作用较强ꎬ可以作为科研和临床研究的首选外泌体离心提取方法ꎮ参考文献:[１]ＥｓｒｅｆｏｇｌｕＭ.Ｒｏｌｅｏｆｓｔｅｍｃｅｌｌｓｉｎｒｅｐａｉｒｏｆｌｉｖｅｒｉｎｊｕｒｙ:ｅｘｐｅｒｉ￣ｍｅｎｔａｌａｎｄｃｌｉｎｉｃａｌｂｅｎｅｆｉｔｏｆｔｒａｎｓｆｅｒｒｅｄｓｔｅｍｃｅｌｌｓｏｎｌｉｖｅｒｆａｉｌｕｒｅ[Ｊ].ＷｏｒｌｄＪＧａｓｔｒｏｅｎｔｅｒｏｌꎬ２０１３ꎬ１９(４０):６７５７￣６７７３. [２]ＢｈａｓｉｎＡꎬＳｒｉｖａｓｔａｖａＭＶꎬＭｏｈａｎｔｙＳꎬｅｔａｌ.Ｓｔｅｍｃｅｌｌｔｈｅｒａｐｙ:ａｃｌｉｎｉｃａｌｔｒｉａｌｏｆｓｔｒｏｋｅ[Ｊ].ＣｌｉｎＮｅｕｒｏｌＮｅｕｒｏｓｕｒｇꎬ２０１３ꎬ１１５(７):１００３￣１００８.[３]ＬａｉＲＣꎬＴａｎＳＳꎬＴｅｈＢＪꎬｅｔａｌ.ＰｒｏｔｅｏｌｙｔｉｃｐｏｔｅｎｔｉａｌｏｆｔｈｅＭＳＣｅｘｏｓｏｍｅｐｒｏｔｅｏｍｅ:ｉｍｐｌｉｃａｔｉｏｎｓｆｏｒａｎｅｘｏｓｏｍｅ￣ｍｅｄｉａｔｅｄｄｅｌｉｖｅｒｙｏｆｔｈｅｒａｐｅｕｔｉｃｐｒｏｔｅａｓｏｍｅ[Ｊ].ＩｎｔＪＰｒｏｔｅｏｍｉｃｓꎬ２０１２ꎬ２０１２:９７１９０７.[４]ＳｉｎｇｈＭꎬＧｕｐｔａＳꎬＲａｗａｔＳꎬｅｔａｌ.Ｍｅｃｈａｎｉｓｍｓｏｆａｃｔｉｏｎｏｆｈｕｍａｎｍｅｓｅｎｃｈｙｍａｌｓｔｅｍｃｅｌｌｓｉｎｔｉｓｓｕｅｒｅｐａｉｒｒｅｇｅｎｅｒａｔｉｏｎａｎｄｔｈｅｉｒｉｍ￣ｐｌｉｃａｔｉｏｎｓ[Ｊ].ＡｎｎＮａｔｌＡｃａｄＭｅｄＳｃｉ(Ｉｎｄｉａ)ꎬ２０１７ꎬ５３(２):１０４￣１２０.[５]ＬｉＰꎬＫａｓｌａｎＭꎬＬｅｅＳＨꎬｅｔａｌ.Ｐｒｏｇｒｅｓｓｉｎｅｘｏｓｏｍｅｉｓｏｌａｔｉｏｎｔｅｃｈ￣ｎｉｑｕｅｓ[Ｊ].Ｔｈｅｒａｎｏｓｔｉｃｓꎬ２０１７ꎬ７(３):７８９￣８０４. [６]ＣｌａｒｋＤＪꎬＦｏｎｄｒｉｅＷＥꎬＬｉａｏＺꎬｅｔａｌ.Ｒｅｄｅｆｉｎｉｎｇｔｈｅｂｒｅａｓｔｃａｎｃｅｒｅｘｏｓｏｍｅｐｒｏｔｅｏｍｅｂｙｔａｎｄｅｍｍａｓｓｔａｇｑｕａｎｔｉｔａｔｉｖｅｐｒｏｔｅｏｍｉｃｓａｎｄｍｕｌｔｉｖａｒｉａｔｅｃｌｕｓｔｅｒａｎａｌｙｓｉｓ[Ｊ].ＡｎａｌＣｈｅｍꎬ２０１５ꎬ８７(２０):１０４６２￣１０４６９.[７]ＹｕＢꎬＺｈａｎｇＸꎬＬｉＸ.Ｅｘｏｓｏｍｅｓｄｅｒｉｖｅｄｆｒｏｍｍｅｓｅｎｃｈｙｍａｌｓｔｅｍｃｅｌｌｓ[Ｊ].ＩｎｔＪＭｏｌＳｃｉꎬ２０１４ꎬ１５(３):４１４２￣４１５７. [８]叶冬熳ꎬ于韬.肿瘤外泌体的提取与鉴定[Ｊ].现代肿瘤医学ꎬ２０１８ꎬ２６(２０)ꎬ３３４１￣３３４３.[９]ＣｈａｎＢＤꎬＷｏｎｇＷＹꎬＬｅｅＭＭꎬｅｔａｌ.Ｅｘｏｓｏｍｅｓｉｎｉｎｆｌａｍｍａｔｉｏｎａｎｄｉｎｆｌａｍｍａｔｏｒｙｄｉｓｅａｓｅ[Ｊ].Ｐｒｏｔｅｏｍｉｃｓꎬ２０１９ꎬ１３:ｅ１８００１４９. [１０]ＧｏｎｇＭꎬＹｕＢꎬＷａｎｇＪꎬｅｔａｌ.Ｍｅｓｅｎｃｈｙｍａｌｓｔｅｍｃｅｌｌｓｒｅｌｅａｓｅｅｘ￣ｏｓｏｍｅｓｔｈａｔｔｒａｎｓｆｅｒｍｉＲＮＡｓｔｏｅｎｄｏｔｈｅｌｉａｌｃｅｌｌｓａｎｄｐｒｏｍｏｔｅａｎ￣ｇｉｏｇｅｎｅｓｉｓ[Ｊ].Ｏｎｃｏｔａｒｇｅｔꎬ２０１７ꎬ８(２８):４５２００￣４５２１２. [１１]贺娇ꎬ许泼实.外泌体提取方法及鉴定分析研究进展[Ｊ].中华实用诊断与治疗杂志ꎬ２０１８ꎬ３２(７):７１８￣７２１.[１２]ＰａｌｍａＪꎬＹａｄｄａｎａｐｕｄｉＳＣꎬＰｉｇａｔｉＬꎬｅｔａｌ.ＭｉｃｒｏＲＮＡｓａｒｅｅｘｐｏｒ￣ｔｅｄｆｒｏｍｍａｌｉｇｎａｎｔｃｅｌｌｓｉｎｃｕｓｔｏｍｉｚｅｄｐａｒｔｉｃｌｅｓ[Ｊ].ＮｕｃｌｅｉｃＡｃｉｄｓＲｅｓꎬ２０１２ꎬ４０(１８):９１２５￣９１３８.[１３]ＭａｒｃｏｎｉＳꎬＣａｓｔｉｇｌｉｏｎｅＧꎬＴｕｒａｎｏＥꎬｅｔａｌ.Ｈｕｍａｎａｄｉｐｏｓｅ￣ｄｅ￣ｒｉｖｅｄｍｅｓｅｎｃｈｙｍａｌｓｔｅｍｃｅｌｌｓｓｙｓｔｅｍｉｃａｌｌｙｉｎｊｅｃｔｅｄｐｒｏｍｏｔｅｐｅｒｉｐｈ￣ｅｒａｌｎｅｒｖｅｒｅｇｅｎｅｒａｔｉｏｎｉｎｔｈｅｍｏｕｓｅｍｏｄｅｌｏｆｓｃｉａｔｉｃｃｒｕｓｈ[Ｊ].ＴｉｓｓｕｅＥｎｇＰａｒｔＡꎬ２０１２ꎬ１８(１１￣１２):１２６４￣１２７２.[１４]ＴｅｔｔａＣꎬＧｈｉｇｏＥꎬＳｉｌｅｎｇｏＬꎬｅｔａｌ.Ｅｘｔｒａｃｅｌｌｕｌａｒｖｅｓｉｃｌｅｓａｓａｎｅ￣ｍｅｒｇｉｎｇｍｅｃｈａｎｉｓｍｏｆｃｅｌｌ￣ｔｏ￣ｃｅｌｌｃｏｍｍｕｎｉｃａｔｉｏｎ[Ｊ].Ｅｎｄｏｃｒｉｎｅꎬ２０１３ꎬ４４(１):１１￣１９.[１５]杨君君ꎬ陈诚ꎬ杨柳ꎬ等.大鼠骨髓间充质干细胞来源的胞外囊泡分离与鉴定[Ｊ].细胞与分子免疫学杂志ꎬ２０１８ꎬ３３(１０):１３８１￣１３８４.[１６]ＬｉｎａｒｅｓＲꎬＴａｎａＳꎬＧｏｕｎｏｕＣꎬｅｔａｌ.Ｈｉｇｈ￣ｓｐｅｅｄｃｅｎｔｒｉｆｕｇａｔｉｏｎｉｎ￣ｄｕｃｅｓａｇｇｒｅｇａｔｉｏｎｏｆｅｘｔｒａｃｅｌｌｕｌａｒｖｅｓｉｃｌｅｓ[Ｊ].ＪＥｘｔｒａｃｅｌｌｖｅｓｉｃｌｅｓꎬ２０１５ꎬ４:２９５０９.[１７]ＷｉｔｗｅｒＫＷꎬＢｕｚáｓＥＩꎬＢｅｍｉｓＬＴꎬｅｔａｌ.Ｓｔａｎｄａｒｄｉｚａｔｉｏｎｏｆｓａｍｐｌｅｃｏｌｌｅｃｔｉｏｎꎬｉｓｏｌａｔｉｏｎａｎｄａｎａｌｙｓｉｓｍｅｔｈｏｄｓｉｎｅｘｔｒａｃｅｌｌｕｌａｒｖｅｓｉｃｌｅｒｅｓｅａｒｃｈ[Ｊ].ＪＥｘｔｒａｃｅｌｌＶｅｓｉｃｌｅｓꎬ２０１３ꎬ２:２０３６０.(收稿日期:２０１８￣１１￣２９)２５。
高中生物中差速离心法和密度梯度离心法的应用
高中生物中差速离心法和密度梯度离心法的应用
离心是生物学实验中重要的操作步骤之一，差速离心法和密度梯度离心法是应用广泛的离心技术。
差速离心法是通过调节离心机转速和时间，使不同大小或密度的细胞或组分沉淀到不同位置，从而分离它们。
差速离心法常用于分离细胞器，如线粒体、叶绿体等。
另外，差速离心法还可以用于分离血液中的不同细胞，如白细胞、红细胞等。
密度梯度离心法是利用不同密度溶液的分层原理，分离不同大小或密度的细胞或组分。
密度梯度离心法常用于分离病毒、蛋白质、核酸等大分子。
例如，在DNA纯化过程中，可以将细胞裂解液加入密度梯度离心管中，经过离心后，DNA会在离心管的不同位置沉淀下来。
以上两种离心方法在生物学研究中具有广泛的应用，可以帮助科学家们分离和纯化不同的细胞组分，进一步研究它们的结构和功能，有助于我们更好地理解生命的奥秘。
- 1 -。
溶酶体分离
溶酶体分离溶酶体是一种细胞的细胞器，主要存在于真核细胞中。
它是一种被膜包围的小囊泡，含有多种水解酶，能够分解细胞内的废弃物和降解被吞噬的外来物质。
溶酶体在维持细胞内环境稳定、细胞代谢和细胞凋亡等生理过程中起着重要的作用。
为了研究溶酶体的功能和结构，科学家们发展了多种溶酶体分离方法。
溶酶体的分离方法可以分为两类：差速离心法和密度梯度离心法。
差速离心法是通过不同细胞器的沉降速度差异来实现分离的。
密度梯度离心法则是利用不同细胞器的密度差异进行分离。
差速离心法中，最常用的是差速离心法。
首先，需要从细胞中分离出溶酶体，这可以通过破碎细胞的方式实现。
一般来说，细胞可以用高压均质仪或超声波破碎，研磨细胞也是一种可行的方法。
然后，用不同的离心速度把破碎的细胞离心，根据细胞器的大小和密度的不同，不同的细胞器会沉降到管底的位置，最后可以用吸管吸取特定纯化的细胞器。
密度梯度离心法则是通过制备密度梯度离心试管来实现。
首先，将离心试管内注入由高到低梯度的离心液，通常常用的是葡聚糖或硅胶等溶液。
然后将破碎的细胞悬浮液缓慢地注入到离心试管中，并开始离心。
在离心过程中，不同密度的细胞器会停留在密度梯度的不同位置，从而实现了细胞器的分离。
最后，用注射器从离心试管中收集分离的细胞器。
通过这些分离方法，科学家们可以获得纯度较高的溶酶体样品，从而方便开展溶酶体的功能和结构研究。
这对于进一步揭示溶酶体在细胞代谢和细胞过程中的作用具有重要意义。
总结一下，溶酶体是一种功能重要的细胞器，可以通过差速离心法和密度梯度离心法进行分离。
差速离心法是根据不同细胞器的沉降速度差异进行分离，而密度梯度离心法则是通过不同细胞器的密度差异进行分离。
通过这些方法，科学家们可以获得纯净的溶酶体样品，从而有助于研究溶酶体的功能和结构。
高中课本中涉及离心技术比较
高中课本中涉及离心技术比较离心技术：是利用旋转运动产生的离心力,根据物质的沉降系数或浮力密度的差别进行物质的分析、分离、浓缩和提纯的一种技术。
功能：Ø分离、纯化样品;Ø对已纯化的样品进行结构和性质的分析。
主要分两种类型：制备性离心技术和分析性离心技术一、制备性离心技术：是以分离纯化生化物质、细胞、亚细胞粒子为目的离心技术。
1、差速离心法（差速沉降离心法）Cellhomogenate细胞匀浆pelletcontains颗粒包含nucleicytoskeletons细胞骨架mitochondriallysosomes peroxisomes线粒体溶酶体过氧化物酶体microsomessmall vesicles 微粒小囊泡ribosomesviruses large macromolecules核糖体病毒大分子fractionation高中课本涉及的细胞器的获取分离通过差速离心法获得。
2、密度梯度离心法（密度梯度区带离心法）此法可以用于DNA复制分离、病毒颗粒的分离等。
二、分析性超速离心技术：与制备性超速离心不同的是：分析性超速离心主要是为了研究生物大分子的沉降特性和结构，而不是专门收集某一特定组份。
因此它使用了特殊的转子和检测手段，以便连续监视物质在一个离心场中的沉降过程。
分析性超速离心的应用：⒈测定生物大分子的相对分子重量测定相对分子重量主要有三种方法：沉降速度、沉降平衡和接近沉降平衡。
其中应用最广的是沉降速度，超速离心在高速中进行，这个速度使得任意分布的粒子通过溶剂从旋转的中心辐射地向外移动，在清除了粒子的那部分溶剂和尚含有沉降物的那部分溶剂之间形成一个明显的界面，该界面随时间的移动而移动，这就是粒子沉降速度的一个指标，然后用照相记录，即可求出粒子的沉降系数。
⒉生物大分子的纯度估计静分析性超速离心已广泛地应用于研究DNA 制剂、病毒和蛋白质的纯度。
用沉降速度的技术来分析沉降界面是测定制剂均质性的最常用方法之一，出现单一清晰的界面一般认为是均质的，如有杂质则在主峰的一侧或二侧出现小峰。
差速离心法和密度梯度离心法的区别
差速离心法和密度梯度离心法的区别教学问题：高中生物必修1中研究细胞器的分离方法是差速离心法，必修2中研究DNA复制方式——半保留复制的方法是密度梯度离心法，两者之间有什么区别？一、差速离心法差速离心法是交替使用低速和高速离心，用不同强度的离心力使具有不同质量的物质分级分离的方法。
此法适用于混合样品中各沉降系数差别较大组分的分离。
1．工作原理通常两个组分的沉降系数差在10倍以上时可以用此法分离。
例如某样品中有大、中、小三个组分，用差速离心法分离时，把样品放在离心管内，先按大组分的沉降系数选择离心转速和离心时间，当离心结束时正好使大组分全部沉降到离心管底部，这时中小组分中的一部分也会沉降到底部。
若原始样品液中三个组分的含量相等，则在原始样品液中大组分占总组分量的三分之一。
通过一次离心后分离出的大组分沉淀占总组分量约90%。
如要进一步提纯可以把此沉淀物再溶解，再按大组分的沉降条件离心，得到大组分的第二次离心沉淀。
通过多次对沉淀和上清液差速离心，可以把三个沉降系数有差别的组份分离提纯，所以这个方法又称为分步离心法。
2．差速离心法的优缺点差速离心法的优点是样品的处理量较大，可用于大量样品的初分离。
其缺点是分离复杂样品和要求分离纯度较高时，离心次数多，操作繁杂。
由于沉淀的多次清洗、溶解、再沉淀，容易引起中间损失，所以离心分辨力差。
实际分离时由于离心时的对流、扩散和收取沉淀时的污染，对于一些沉降系数相差不大的组分无法进行完全的分离提纯。
产品的纯度和回收率都达不到上述理论值。
因此差速离心法主要用于大量样品的初步分离提纯。
二、密度梯度离心法密度梯度离心法又称为区带离心法，可以同时使样品中几个或全部组分分离，具有良好的分辨率。
离心时先将样品溶液置于一个由梯度材料形成的密度梯度液体柱中，离心后被分离组分以区带层分布于梯度柱中。
1．工作原理不同颗粒之间存在沉降系数差时，在一定离心力作用下，颗粒各自以一定速度沉降，在密度梯度不同区域上形成区带的方法。
分离细胞器的方法
分离细胞器的方法细胞器是细胞内的重要结构，它们在细胞的生存和功能执行中起着至关重要的作用。
分离细胞器是细胞生物学和生物化学研究中的重要操作，可以帮助科研人员更好地了解细胞器的结构和功能。
下面将介绍几种常用的分离细胞器的方法。
一、差速离心法。
差速离心法是一种常用的分离细胞器的方法，通过利用细胞器的不同密度来进行分离。
首先，需要将细胞悬液置于离心管中，然后进行低速离心，使细胞器沉淀到离心管底部。
接下来，将上清液转移到另一个离心管中，进行高速离心，这样可以将不同密度的细胞器分离出来。
通过这种方法，可以获得相对纯净的细胞器样品。
二、梯度离心法。
梯度离心法是利用密度梯度离心离心细胞器的方法。
首先，需要制备密度梯度离心液，然后将细胞悬液均匀地加在离心管上，进行超速离心。
在离心过程中，不同密度的细胞器会在密度梯度中分层沉淀，从而实现分离。
这种方法可以得到高纯度的细胞器。
三、超声破碎法。
超声破碎法是一种利用超声波对细胞进行破碎，分离细胞器的方法。
首先，将细胞悬液置于超声破碎仪中，经过超声波的作用，细胞膜会破裂，释放出细胞器。
然后，通过差速离心或梯度离心的方法，可以将细胞器分离出来。
这种方法操作简单，适用于一些对纯度要求不高的实验。
四、亲和层析法。
亲和层析法是利用生物分子之间的特异性相互作用来分离细胞器的方法。
通过将含有特定亲和基质的层析柱与混合细胞器悬液一起进行层析，利用细胞器与亲和基质之间的特异性结合来实现细胞器的分离。
这种方法可以得到高纯度的细胞器样品，适用于对细胞器纯度要求较高的实验。
五、离心上清法。
离心上清法是一种简单快捷的分离细胞器的方法。
首先，将细胞悬液进行差速离心，将上清液收集起来。
然后，通过连续的离心步骤，可以逐渐将不同密度的细胞器分离出来。
这种方法操作简单，适用于一些对纯度要求不高的实验。
总结。
以上介绍了几种常用的分离细胞器的方法，每种方法都有其特点和适用范围。
在实际操作中，可以根据实验的需要选择合适的方法进行细胞器的分离，以获得满意的实验结果。
密度梯度离心与差速离心的区别
密度梯度离心与差速离心的区别
密度梯度离心属于密度萃取，是根据溶质和溶液的密度差异来实现分离的，是在高细胞压力的作用下，在容积较大的离心管中利用液体单位体积的重量（密度）差异进行分离；而差速离心是基于离心力的不同，即根据溶质的分子量和浓度的差异，从而使得这一溶液的相对离心力差异改变而实现分离，利用的是两液体的离心力差异。
2、分离效率不同
密度梯度离心的效率一般比较低，它主要利用液体单位体积的重量差异，物质分子量的差异较小，溶液浓度的差异也较小，因此分离效率不会高。
而差速离心可以实现高密度的湍流而高速度的分离，分离效率更高。
三、应用不同
密度梯度离心主要用于对分子量大的物质进行分离，如生物体分离，尤其是细胞分离，可以达到更高的精度；而差速离心可以用于分离分子量小的有机物，如分离水溶性有机物、抗体和抗原之间的结合等。
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密度梯度离心和差速离心的区别
密度梯度离心和差速离心的区别
密度梯度离心和差速离心的区别：1、定义不同；2、原理不同；3、转速不同；4、密度不同。
差速离心法是用不同强度的离心力使具有不同质量的物质分级分离，密度梯度离心中单一样品组份的分离是借助于混合样品穿过密度梯度层的沉降或上浮来达到的。
区别一：定义不同
差速离心法：差速离心主要就是实行逐渐提升Vergt速度的方法拆分相同大小的细胞器。
初始的Vergt速度较低，使很大的颗粒下陷到管底，大的颗粒仍然漂浮在上清液中。
搜集结晶，转用较低的Vergt速度Vergt悬浮液，将较小的颗粒下陷，以此类推，达至拆分相同大小颗粒的目的。
密度梯度离心法：用一定的介质在离心管内形成一连续或不连续的密度梯度，将细胞混悬液或匀浆置于介质的顶部，通过重力或离心力场的作用使细胞分层、分离。
区别二：原理相同
差速离心法：物体围绕中心轴旋转时会受到离心力f的作用。
当物体的质量为 m、体积为v、密度为d、旋转半径为r、角速度为（弧度数/秒）时，可得：f=mω2r 或者
f=v.d.ω2r 。
密度梯度离心法：相同颗粒之间存有沉降系数高时，在一定离心力促进作用下，颗粒各自以一定速度下陷，在密度梯度相同区域上构成区带的方法。
区别三：转速不同
差速离心法：用多个Vergt输出功率。
密度梯度离心法：只用一个离心转速。
区别四：密度相同
差速离心法：是适用于混合样品中各沉降系数差别较大组分。
密度梯度Vergt：用此方法的物质密度存有一定差异的。
高中生物中差速离心法和密度梯度离心法的应用
高中生物中差速离心法和密度梯度离心法的应用
差速离心法和密度梯度离心法是生物学中常用的离心技术。
差速离心法可以用于分离细胞和细胞器，根据它们在不同离心力下，不同的沉降速率进行分离。
密度梯度离心法则可以用于分离不同密度的生物分子，例如DNA、RNA和蛋白质等。
在高中生物学中，学生可以通过实验学习这些离心技术的应用。
例如，使用差速离心法可以分离出细胞质和线粒体等细胞器，进一步研究它们的结构和功能；使用密度梯度离心法可以分离出DNA、RNA 和蛋白质等生物分子，进行进一步的分析和研究。
此外，这些离心技术还可以应用于医学和生物工程领域。
例如，差速离心法可以用于分离血细胞和血浆，对于研究血液疾病和制备血液制品非常重要；密度梯度离心法可以用于纯化生产工业用途的蛋白质和酶等生物产品。
总之，差速离心法和密度梯度离心法是生物学中非常重要的离心技术，其应用广泛，包括教育、研究和工业等领域。
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密度梯度离心和差速离心的应用
密度梯度离心和差速离心的应用密度梯度离心和差速离心，这听起来就像科学家们的魔法一样！想象一下，有一堆不同的小玩意儿，咱们要把它们一层一层地分开。
这时候，密度梯度离心就像是一位高超的厨师，把各种食材层层叠叠地摆放在一起。
每种物质都有自己独特的“味道”，所以在离心的过程中，它们会根据自己的密度慢慢下沉。
嘿，像个美味的蛋糕，每一层都是独一无二的哦！差速离心就像一场竞赛，大家在同一个赛道上比拼。
那些密度更高的小家伙们在离心的加速度下，会比轻的那群更快到达终点。
就好比在运动会上，重的选手得加倍努力才能跑得快，轻的选手却像风一样飞奔。
分离的结果就是，咱们可以轻松搞定各种细胞、病毒，甚至大分子，真是太酷了。
说到应用，密度梯度离心在生物科学中可谓是大显神通。
研究者们常常需要分离细胞器、DNA或者RNA，密度梯度离心简直就是个得力助手。
想象一下，细胞内的线粒体、内质网像一群小精灵，它们各自待在不同的层次。
用这个方法，研究者们可以轻松找到所需的“小精灵”，就像寻宝游戏一样刺激。
差速离心在生物医学研究中也是不可或缺的。
比如说，分离血液中的白细胞和红细胞，这就需要这项技术。
白细胞和红细胞在体内的密度不一样，差速离心能把它们分得一清二楚。
就像是在选队员，白细胞高高在上，红细胞默默无闻地待在下面，绝对是一场精彩的视觉盛宴。
在临床上，这两种方法也大显身手。
实验室里，科学家们可以利用密度梯度离心来提取病原体，分离病毒，做个准确的检测。
这简直是生命科学界的“神奇魔法”，每一次实验都像是在探索未知的世界。
大家都知道，病毒这个小东西可难对付了，没点本事可干不了。
密度梯度离心就像是为他们量身定做的解决方案，帮助科学家们一次又一次地打败这些顽固的小家伙。
而差速离心在药物开发中的作用也不容小觑。
比如，药物中的活性成分要分离出来，咱们就得靠这招。
能否把药物中的有效成分准确分离出来，直接影响疗效。
就像做菜，要确保每种调料的比例恰到好处，才能做出美味佳肴。
高中生物科学方法(2) 差速离心法与密度梯度离心法
高中生物科学方法(2)差速离心法与密度梯度离心法同位素标记法与荧光标记法一、差速离心法与密度梯度离心法1．差速离心法(1)概念：差速离心主要是采取逐渐提高离心速率分离不同大小颗粒的方法。
(2)原理：在分离细胞中的细胞器时，将细胞膜破坏后，形成由各种细胞器和细胞中其他物质组成的匀浆，将匀浆放入离心管中，采取逐渐提高离心速率的方法分离不同大小的细胞器。
(3)具体操作：起始的离心速率较低，让较大的颗粒沉降到管底，小的颗粒仍然悬浮在上清液中。
收集沉淀，改用较高的离心速率离心上清液，将较小的颗粒沉降，以此类推，达到分离不同大小颗粒的目的。
2．密度梯度离心法(1)概念：密度梯度离心法又称为区带离心法，可以同时使样品中几个或全部组分分离，具有良好的分辨率。
(2)原理：不同颗粒之间存在沉降系数差时，在一定离心力作用下，颗粒各自以一定速度沉降，在密度梯度不同区域上形成区带的方法。
(3)操作：离心时先将样品溶液置于一个由梯度材料形成的密度梯度液体柱中，离心后被分离，组分以区带层分布于梯度柱中。
3．密度梯度离心法和差速离心法的区别(1)差速离心法是用不同强度的离心力使具有不同质量的物质分级分离，密度梯度离心中单一样品组分的分离是借助于混合样品穿过密度梯度层的沉降或上浮来达到的。
(2)差速离心用两个甚至更多的转速，而密度梯度离心只用一个离心转速。
(3)差速离心是适用于混合样品中各沉降系数差别较大组分，而密度梯度离心的物质是密度有一定差异的。
二、同位素标记法与荧光标记法1．同位素标记法(1)同位素：同一元素中，质子数相同、中子数不同的原子互为同位素。
常用的同位素有：具有放射性的同位素：14C、32P、3H、35S等；还有不具有放射性的同位素：15N、18O等。
(2)同位素的特点：物理性质可能有差异，但组成的化合物化学性质相同。
(3)同位素标记法①概念：用物理性质特殊的同位素标记特定的原子，追踪化学反应中特定原子的去向。
②应用方法：标记特征化合物作为反应的原料，检测特征元素的去向，从而探究生化反应过程。
分离细胞器的方法
分离细胞器的方法分离细胞器是生物学研究中常用的实验方法之一，它可以帮助科学家们更好地了解不同细胞器的功能和结构，进一步揭示细胞的工作机理。
本文将介绍几种常见的细胞器分离方法。
一、细胞裂解法细胞裂解法是最常用的细胞器分离方法之一，其基本原理是通过破坏细胞膜，释放细胞器到细胞质中。
常见的细胞裂解方法有三种：机械裂解、超声波裂解和温和洗脱。
机械裂解是通过机械力破碎细胞，如玻璃棒破碎、高压均质器等。
超声波裂解是利用超声波的机械能来破坏细胞膜，释放细胞器。
温和洗脱是将细胞置于温和的缓冲液中，使细胞膜溶解，释放细胞器到溶液中。
二、差速离心法差速离心法是一种通过不同离心速度来分离不同细胞器的方法，其原理是根据细胞器的大小和密度的不同，使其在不同的离心速度下沉积和分离。
离心过程中，较重的细胞器会沉积到离心管底部，而较轻的细胞器则会沉淀到上层。
通过逐步增加离心速度，可以分离得到不同种类的细胞器。
三、密度梯度离心法密度梯度离心法是一种根据细胞器密度差异来分离细胞器的方法，其基本原理是将细胞或细胞裂解液加载到具有密度梯度的离心管中，通过离心使不同密度的细胞器均匀分布在密度梯度上。
离心后，细胞器会沉积到相应密度梯度的位置上，从而实现分离。
常用的密度梯度物质包括葡聚糖、硝基苯基乙醇和碘巴比妥酸钠等。
四、冷冻断裂法冷冻断裂法属于特殊的细胞分离方法，它的原理是通过将生物样品迅速冷冻至极低温度，然后通过冷冻样品的断裂面来分离细胞器。
冷冻断裂法可以保持细胞的原始结构和组织，使科学家们能够观察到细胞器的真实形态和互相之间的关系。
冷冻断裂法在电子显微镜下应用较为广泛。
综上所述，细胞器分离方法有很多种，科学家们可以根据实验需求选择适合的方法。
这些方法可以帮助我们深入研究细胞器的功能和结构，对于揭示细胞的工作机理和相关疾病的病理过程具有重要的意义。
希望通过不断改进和创新，能够开发出更加高效和准确的细胞器分离方法，为生物学研究提供更好的工具和技术支持。
试验室离心机离心方法 试验室离心机操作规程
试验室离心机离心方法试验室离心机操作规程试验室离心机分别方法不一，适用场合也不尽相同。
目前主流的离心分别方法紧要是差速离心法和区带离心法，其实在试验室离心技术制备超离心法一文中有提及两种离心方法，今日笔者对这两种方法的原理及应用介绍进试验室离心机分别方法不一，适用场合也不尽相同。
目前主流的离心分别方法紧要是差速离心法和区带离心法，其实在试验室离心技术制备超离心法一文中有提及两种离心方法，今日笔者对这两种方法的原理及应用介绍进行补充和完善。
1. 差速离心法：很多具有生物活性的生物大分子和亚细胞器是不稳定的，需要低温高速离心，常用的是差速离心法。
通过离心后倒出上清液和沉淀分开，把分别出来的上清液再增大转速离心，分别出第二部分沉淀，这样不断增大转速，逐级分别出所需要的物质。
利用这种方法可以有效地分别大小上差别较大的颗粒，但不能分别大小相像的颗粒，而且所分别出来的组分往往是不均一的，杂有其他种类的颗粒。
2.区带离心法：其中又可以分为两种：速率区带离心和等密度速率区带离心。
1）速率区带离心法：这是将小量悬液放在一平缓的密度梯度液上，用此梯度液来稳定颗粒的沉降。
由于离心，颗粒离开起始区带而移动，移动的速度是由颗粒的大小、形状和它们所受试验室离心机的离心力来决议的。
离心一段时间历，各种颖粒将依照它们的相对速度移动而各个分开，成为一系列区带。
用这种方法我们可以将沉降速度差为20%或者更大的颗粒。
2）等密度区带离心法：这是将要分别的颗粒悬液放至密度梯度液上，或者实际上将颗粒溶于制作梯度的溶液中。
通过离心，颗粒或者上浮或者下沉，达到与它们本身密度相同的液体处在这里它们没有重量，不管离心多长时间，它们再也不移动了。
这些颗粒可成为一系列区带，每种颗粒在它本身的密度区。
所以，这是一种利用颗粒浮密度的大小分别颗粒大小的方法。
使用的介质通常是氯化铯（Cscl）和硫酸铯（Cs2SO4）。
前者适合于DNA分别，后者适合于RNA分别。
离心分离的几种方法.doc
离心分离的几种方法1.离心分离的几种方法A．差速离心：逐次增加离心力，每次可沉降样品溶液中的一些组份。
差速离心是一种最常用的方法。
在这种方法中，离心管在开始时装满了均一的样品溶液。
通过在一定速度下一定时间的离心后，就可得到两个部份：沉淀和上清液。
通常在第一次离心时把大部分不需要的大粒子沉降去掉。
这时所需的组份大部分仍留在上清液中。
然后将收集到的上清液以更高速度离心，把所需的粒子沉积下来。
离心的时间要选择得当，使大部份不需要的更小的粒子仍留在上清液中。
对于得到的沉淀和上清液可以进行进一步的离心，直到达到所需要的分离纯度为止。
差速离心的特点是操作简单，但分离纯度不高。
B．密度梯度离心法：可以同时使样品中几个或全部组份分离，具有很好的分辨率。
1）速率区带法（rate zonal）：根据样品中不同粒子所具有的不同的尺寸大小及沉降速度（S）。
大致步骤如下：在离心管中装入密度梯度溶液，溶液的密度从离心管顶部至底部逐渐增加（正梯度）。
将所需分离的样品小心地加至密度梯度溶液的顶部。
样品在梯度溶液表面形成一负梯度。
由于不同大小的粒子在离心力作用下，在梯度中移动的速度不一样，所以经过离心后会形成几条分开的样品区带。
注意：样品粒子的密度必须大于梯度液注中任一点的密度。
离心过程必须在区带到达管子底部前停止。
2）等密度离心法（isopycnic）：根据粒子的不同密度来分离。
离心过程中，粒子会移至与它本身密度相同的地方形成区带。
密度样度的选择要使梯度的范围包括所有待分离粒子的密度。
样品可以在密度梯度液粒上面或均匀分布在密度梯度中。
经离心后，样品粒子达到它们的平衡点。
注意：平衡后粒子的分离完全由其密度决定，与时间无关，此时再改变离心转速，只能改变区带的相对位置。
2.密度梯度分析法1）梯度介质性质与选择：梯度物质的选择原则是满足分离方法的基本要求，一个理想的密度材料标准它应是：·所形成的溶液密度应包括所需要的密度范围。
【干货分享】外泌体提取的3种超速离心方法（内含赠书福利）
献中具体的各阶段离⼼⼒和时间⼤同⼩异，主要可以参考参考⽂献1。
超速离⼼提取外泌体流程⽰意图可见进阶版中的第1-5步。
基于蔗糖垫的超速离⼼如果对外泌体的纯度要求较⾼，但⼜不想做密度梯度离⼼那么⿇烦，⼤家可以⽤基于蔗糖垫的超速离⼼⽅法。
这⾥以提取细胞上清中外泌体为例，给⼤家详细提供⼀个protocol蔗糖垫⽰意图新鲜收集细胞上清，以300 g、4度、离⼼10 min，去除细胞、死细胞，离⼼后取上清；10 min，去除细胞碎⽚，离⼼后取上清；注：常有⼩伙伴问细胞上清不能及时处理，该怎么保存。
此步骤后的上清可于提取外泌体为佳；若需长期保存，可冻存于-80度，解冻时4度慢融。
切记不经⼀⼆步离⼼去除细胞、死细胞、细胞碎⽚就直接保存，会严重影响后⾯提取的外泌体的组分。
度、离⼼30 min，去除⼤膜泡，离⼼后取上清；就在于密度梯度怎么弄了。
碘克沙醇密度梯度离⼼⼯作流程⽰意图密度梯度的制作⽬前主要利⽤蔗糖或者碘克沙醇（iodixanol）。
以碘克沙醇为例，可以买到OptiPrep density gradient medium，按照40%、20%、10%、5%配好，⼩⼼依次铺到离⼼管中，最上层加浓缩的细胞上清或⾎浆/清。
在5-10-20-40%碘克沙醇密度梯度中，外泌体主要富集在第6、7个fractions中有⼩伙伴会对⽤什么类型转⼦有疑问。
超速离⼼常⽤两种转⼦：⽔平转⼦和固定⾓转⼦。
⽔平转⼦也叫⽔平转头（如下图左）。
在离⼼过程中，离⼼管与轴之间的⾓度从开始 0°变成⽔平转⼦90°，停⽌时⼜成为0°。
固定⾓转⼦也叫定⾓转⼦、定⾓转头（如下图右）。
在离⼼过程中，离⼼管与轴之间的⾓度是固固定⾓转⼦定的，通常在20°到45°之间。
离⼼时，样品会⾸先沉淀到离⼼管侧壁，然后下滑⾄离⼼管的外侧底部聚集。
⽔平转⼦（左）与定⾓转⼦（右）这2种转⼦区别，⼤家看下⾯的图解就明⽩了。
所以，普通超速离⼼既可以⽤定⾓转⼦也可以⽤⽔平转⼦，如果离⼼管透明度不⾼，定⾓的离⼼最后沉淀在管底的侧⾯，有易于观察的优势（外泌体量多可⾁眼观察时）；但是主要还是看个⼈习惯。
离心方法的选用
离心方法的选用所分离的颗粒大小和密度相差较大:常速、高速离心;若从样品液中分离2种以上大小和密度不同的颗粒：差速离心;超速离心:差速离心法和密度梯度离心法，后者又分速率区带离心和等密度离心。
1、差速离心采用不同离心速度与时间，使不同沉降速度的颗粒分批分离；差速离心法：原理：采用逐渐增加离心速度或低速和高速交替进行离心，使沉降速度不同的颗粒在不同的分离速度及不同的离心时间下分批分离的方法，称为差速离心法。
当以一定离心力在一定的离心时间内进行离心时，在离心管底部就会得到最大和最重颗粒的沉淀，分出的上清液在加上转速下再进行离心，又得到第二部分较大、较重颗粒的“沉淀”及含小和轻颗粒“上清液”，如此，多次离心处理，即能把液体中的不同颗粒较好分开。
这时所得沉淀是不纯的，需经再悬浮和再离心（2—3次），才能得到较纯颗粒。
常用于从组织匀浆中分离细胞和病毒。
2、密度梯度离心又称速率—区带离心,沉降系数较接近的物质分离的方法；原理：不同颗粒之间存在沉降系数差时，在一定离心力作用下，颗粒各自以一定速度沉降，在密度梯度不同区域上形成区带的方法。
介质梯度应预先形成，介质的最大密度要小于所有样品颗粒的密度。
常用的有蔗糖、甘油；密度梯度液的制备用梯度混合器，形成由管口到管底逐步升高的密度梯度；操作：离心前将样品小心铺放在密度梯度溶液表面，离心形成区带。
离心后不同大小、不同形状、有一定沉降系数差异的颗粒在密度梯度液中形成若干条界面清楚的不连续区带；可用来分离核酸、蛋白质、核糖体亚基及其它成分。
3、等密度离心原理：当不同颗粒存在浮力密度差时，在离心力场下，在密度梯度介质中，颗粒或向下沉降，或向上浮起，一直移动到与它们各自的密度恰好相等的位置上形成区带，从而使不同浮力密度的物质得到分离；区别:离心介质、密度梯度范围与密度梯度离心不同，欲分离的颗粒密度处于离心介质密度范围内。
介质有：氯化铯、硫酸铯、溴化铯、三碘苯衍生物等。
操作：介质溶液与样品液混合均匀，足够时间离心。
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差速离心法和密度梯度离心法的区别
教学问题：高中生物必修1中研究细胞器的分离方法是差速离心法，必修2中研究DNA复制方式——半保留复制的方法是密度梯度离心法，两者之间有什么区别？
一、差速离心法
差速离心法是交替使用低速和高速离心，用不同强度的离心力使具有不同质量的物质分级分离的方法。
此法适用于混合样品中各沉降系数差别较大组分的分离。
1．工作原理
通常两个组分的沉降系数差在10倍以上时可以用此法分离。
例如某样品中有大、中、小三个组分，用差速离心法分离时，把样品放在离心管内，先按大组分的沉降系数选择离心转速和离心时间，当离心结束时正好使大组分全部沉降到离心管底部，这时中小组分中的一部分也会沉降到底部。
若原始样品液中三个组分的含量相等，则在原始样品液中大组分占总组分量的三分之一。
通过一次离心后分离出的大组分沉淀占总组分量约90%。
如要进一步提纯可以把此沉淀物再溶解，再按大组分的沉降条件离心，得到大组分的第二次离心沉淀。
通过多次对沉淀和上清液差速离心，可以把三个沉降系数有差别的组份分离提纯，所以这个方法又称为分步离心法。
2．差速离心法的优缺点
差速离心法的优点是样品的处理量较大，可用于大量样品的初分离。
其缺点是分离复杂样品和要求分离纯度较高时，离心次数多，操作繁杂。
由于沉淀的多次清洗、溶解、再沉淀，容易引起中间损失，所以离心分辨力差。
实际分离时由于离心时的对流、扩散和收取沉淀时的污染，对于一些沉降系数相差不大的组分无法进行完全的分离提纯。
产品的纯度和回收率都达不到上述理论值。
因此差速离心法主要用于大量样品的初步分离提纯。
二、密度梯度离心法
密度梯度离心法又称为区带离心法，可以同时使样品中几个或全部组分分离，具有良好的分辨率。
离心时先将样品溶液置于一个由梯度材料形成的密度梯度液体柱中，离心后被分离组分以区带层分布于梯度柱中。
1．工作原理
不同颗粒之间存在沉降系数差时，在一定离心力作用下，颗粒各自以一定速度沉降，在密度梯度不同区域上形成区带的方法。
介质梯度应预先形成，介质的最大密度要小于所有样品颗粒的密度。
常用的有蔗糖、甘油。
密度梯度液的制备用梯度混合器，形成由管口到管底逐步升高的密度梯度。
2．密度梯度离心法的优缺点
密度梯度离心法的优点是分离效果好，可一次性获得较纯净颗粒，适应范围广，颗粒不会挤压变形，能保持颗粒活性。
缺点是离心时间长，需要制备惰性梯度介质溶液，操作严格，不易掌握。
三、密度梯度离心法和差速离心法的区别
1．差速离心法是用不同强度的离心力使具有不同质量的物质分级分离，密度梯度离心中单一样品组份的分离是借助于混合样品穿过密度梯度层的沉降或上浮来达到的。
2．差速离心用两个甚至更多的转速，而密度梯度离心只用一个离心转速。
3．差速离心是适用于混合样品中各沉降系数差别较大组分，而密度梯度离心的物质是密度有一定差异的。