临床微生物标本采集及运送PPT课件
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下呼吸道（痰培养）标本
18
采集的临床指征
咳嗽咳痰是下呼吸道感染最常见的症状。 咯血包括泡沫血痰、鲜血和痰中带血等 呼吸困难，呼吸急促或哮喘，常伴有胸痛 发热伴WBC增高尤其是中性粒细胞或CRP明 显增高 胸部影像学检查提示感染可能
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标本采集
痰（咳出的） 痰（诱导的） 支气管标本
血培养
5
采集的临床指征
一般患者出现以下一种体征时可作为采
血的重要指征： 发热（≥38℃）或（低温 ≤36℃）
寒战 白细胞增多（特别有“核左移”未成熟的或杆状核白细胞） 皮肤黏膜出血、昏迷、多器官衰竭、血压降低、CRP升高及呼 吸快
特殊患者（如血液病）出现粒细胞减少（成熟的多形核白细胞
使肉汤无法有效中和血中的抑制物质（补体、抗体、抗生 素）。血量与培养液的比例以 1：10为宜，但对已接受抗 菌药物长达 10 天以上的患者， 采血量与培养基的比例 应为 1：20 或大于 1：20 为宜。 成人 儿童 婴幼儿 10~15ml 3~5ml 1~2ml
骨髓
1~2ml
7
8
常规消毒病人采血部位， 抽一定量血液后，另换一 无菌针头，消毒接种瓶口 后将血液接种在瓶内（一 瓶需氧，一瓶厌氧），轻 轻摇匀。
口腔标本 1. 用棉签清 除口腔病灶 表面的分泌 物、碎屑， 扔掉 采集指 2. 用第二根 拭子采取病 南 灶的标本， 避免碰到其 它组织 鼻标本 1. 用经盐水 湿润的拭子 插入鼻孔约 2cm 2. 将拭子贴 着鼻黏膜转 动 咽喉标本 1. 用一压舌 板压住舌 2. 用无菌拭 子在后咽部、 扁桃体及发 炎部位采集 标本 鼻咽标本 1.将一藻酸钙 拭子经鼻腔轻 轻插入鼻咽喉 部 2. 缓慢转动拭 子5秒钟吸收分 泌物 3. 取出拭子并 床边接种或将 拭子放入运送 培养基
16
采集注意事项
采集标本应于抗生素治疗前，以晨起进食前为宜， 取样前数小时内不得用消毒药物漱口或涂抹病灶 部位。 取样部位应准确，反复涂抹数次，避免接触口腔、 舌粘膜和唾液。 口腔表面组织的标本不适于细菌学评价。 咽拭子禁用于会厌发炎患者。 检查白喉棒状杆菌，应取疑为白喉假膜边缘部的 分泌物；扁桃体部位标本取扁桃体小窝处为宜。
21
标本质量
22
合格标本的判断标准
外观：观察颜色、粘 度、有无血丝或脓。 若标本为水状且很明 显是唾液，则应拒收。 为了判定是否来自下 呼吸道的痰，需检查 是否为合格的痰标本：
WBC>25个/低倍视野，
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24
注意事项
在抗生素应用前采集痰标本 对于细菌性肺炎，痰标本送检每天1次，连 续2~3天；不建议24h内多次采集，除非痰 液外观形状改变 怀疑分枝杆菌感染者，应连续收集3天清晨 痰液送检，也可收集24h痰液。
＜1000×109/L）、血小板减少等，或同时具备上述几种体征 的临床可疑菌血症应采集血培养 新生儿菌血症，进行血培养同时应增加尿液和脑脊液培养 对入院危重感染患者在未进行系统性抗菌药物治疗之前，应及
6
采血量：
血液中细菌和真菌的检出率依赖于足够的血量，但并非越
多越好，超过一定数量的采血量会稀释培养基内的肉汤，
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自然咳痰法
以晨痰为佳。采集标本前应用清水漱口或用牙 刷（不用牙膏）清洁口腔和牙齿，有假牙者应 取下假牙（为减少口腔正常菌群污染标本）， 用力咳出呼吸道深部的痰（非后鼻部分泌物、 非唾液），痰液直接吐入无菌容器中，尽快送 检。否则有的细菌（如肺炎链球菌、流感嗜血 杆菌）在外界可能死亡。不能及时送检的标本， 室温保存≤2h。
1. 在护士指导下 取标本 2. 先用清水清洗 或漱口 采集指南 3. 深咳痰以获得 深部痰，放入无 菌痰杯中 4. 不能取鼻后液
1. 先刷洗牙龈和 舌 2. 再用清水漱口 3. 用雾化器使患 者吸入约25ml 310％的无菌盐水 4. 采集诱导的痰 液放入无菌痰杯
1. 由临床医生操 作采集 2. 抽吸物或洗出 物放入痰采集容 器中 3. 将刷取物放入 装有盐Βιβλιοθήκη Baidu的无菌 容器中
标本采集
9
采集要点：
1. 2. 3. 4. 每一对血培养应当从身体的不同部位采集 用来培养的血应当是静脉血而不是动脉血 尽量避免从静脉导管中抽血 皮肤和瓶子的消毒非常关键
10
采集时机：
应在病人发病初期或发热高峰到来之前采集。 一般情况下应尽量选择在使用抗菌药之前进行， 在24h内采集2-3份血培养（一次静脉采血注 入到多个培养瓶中应视为单份血培养）。如患 者已经应用抗菌药物进行治疗，应在下一次用 药之前采血培养。
2
临床标本的分类
带菌体液 无菌体液
痰液
咽拭子 尿液 粪便
血液
脑脊液 关节腔积液 胸腹水、胆汁
其他类别
其他类别
3
1.
2. 3.
4.
5.
6.
7.
8.
发现感染应及时采集微生物标本作病原学检查，二、 三级医院微生物标本送 检率不应低于70%。 尽量在抗菌药物使用前采集标本。 标本采集时应严格执行无菌操作，减少或避免机体正 常菌群及其他杂菌污染。 标本采集后应立即送至实验室。床边接种可提高病原 菌检出率。 以棉拭子采集的标本如咽拭、肛拭或伤口拭子，宜采 用插入运送培养基送检。 混有正常菌群的标本如咳痰、尿液、伤口拭子，不可 置肉汤培养基内送检。 盛标本容器须经灭菌处理，但不得使用消毒剂。 4 送检标本应注明来源和检验目的，使实验室能正确选
临床微生物标 本采集、转运 与处理
1
微生物标本规范化采集的重要性
正确采集、处理与运送细菌培养的标本直接关系到 致病菌培养的正确性与阳性率的高低，是临床细菌 检验成功的关键。
标本质量的好坏直接影响诊断结果的正误，不当的 标本可导致假阴性、假阳性结果的出现，因此标本 采集与处理的规范化是准确、及时地向临床提供重 要的临床感染信息的基础。 好的微生物检验标本可提升实验室工作效率及病患 照顾质量，降低医疗成本。
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采血套数
检测灵敏度
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血培养瓶的运送
采集后的血培养瓶应立即送检（室温 <24h） 如不能立即送检，需室温保存或置 35°~37°孵箱中，切勿冷藏
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上呼吸道标本
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采集的临床指征
怀疑上呼吸道感染时如发热、咽部疼痛等，尤 其是怀疑化脓性链球菌感染或念珠菌感染时进 行咽拭子培养。
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标本采集
下呼吸道（痰培养）标本
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采集的临床指征
咳嗽咳痰是下呼吸道感染最常见的症状。 咯血包括泡沫血痰、鲜血和痰中带血等 呼吸困难，呼吸急促或哮喘，常伴有胸痛 发热伴WBC增高尤其是中性粒细胞或CRP明 显增高 胸部影像学检查提示感染可能
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标本采集
痰（咳出的） 痰（诱导的） 支气管标本
血培养
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采集的临床指征
一般患者出现以下一种体征时可作为采
血的重要指征： 发热（≥38℃）或（低温 ≤36℃）
寒战 白细胞增多（特别有“核左移”未成熟的或杆状核白细胞） 皮肤黏膜出血、昏迷、多器官衰竭、血压降低、CRP升高及呼 吸快
特殊患者（如血液病）出现粒细胞减少（成熟的多形核白细胞
使肉汤无法有效中和血中的抑制物质（补体、抗体、抗生 素）。血量与培养液的比例以 1：10为宜，但对已接受抗 菌药物长达 10 天以上的患者， 采血量与培养基的比例 应为 1：20 或大于 1：20 为宜。 成人 儿童 婴幼儿 10~15ml 3~5ml 1~2ml
骨髓
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常规消毒病人采血部位， 抽一定量血液后，另换一 无菌针头，消毒接种瓶口 后将血液接种在瓶内（一 瓶需氧，一瓶厌氧），轻 轻摇匀。
口腔标本 1. 用棉签清 除口腔病灶 表面的分泌 物、碎屑， 扔掉 采集指 2. 用第二根 拭子采取病 南 灶的标本， 避免碰到其 它组织 鼻标本 1. 用经盐水 湿润的拭子 插入鼻孔约 2cm 2. 将拭子贴 着鼻黏膜转 动 咽喉标本 1. 用一压舌 板压住舌 2. 用无菌拭 子在后咽部、 扁桃体及发 炎部位采集 标本 鼻咽标本 1.将一藻酸钙 拭子经鼻腔轻 轻插入鼻咽喉 部 2. 缓慢转动拭 子5秒钟吸收分 泌物 3. 取出拭子并 床边接种或将 拭子放入运送 培养基
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采集注意事项
采集标本应于抗生素治疗前，以晨起进食前为宜， 取样前数小时内不得用消毒药物漱口或涂抹病灶 部位。 取样部位应准确，反复涂抹数次，避免接触口腔、 舌粘膜和唾液。 口腔表面组织的标本不适于细菌学评价。 咽拭子禁用于会厌发炎患者。 检查白喉棒状杆菌，应取疑为白喉假膜边缘部的 分泌物；扁桃体部位标本取扁桃体小窝处为宜。
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标本质量
22
合格标本的判断标准
外观：观察颜色、粘 度、有无血丝或脓。 若标本为水状且很明 显是唾液，则应拒收。 为了判定是否来自下 呼吸道的痰，需检查 是否为合格的痰标本：
WBC>25个/低倍视野，
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注意事项
在抗生素应用前采集痰标本 对于细菌性肺炎，痰标本送检每天1次，连 续2~3天；不建议24h内多次采集，除非痰 液外观形状改变 怀疑分枝杆菌感染者，应连续收集3天清晨 痰液送检，也可收集24h痰液。
＜1000×109/L）、血小板减少等，或同时具备上述几种体征 的临床可疑菌血症应采集血培养 新生儿菌血症，进行血培养同时应增加尿液和脑脊液培养 对入院危重感染患者在未进行系统性抗菌药物治疗之前，应及
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采血量：
血液中细菌和真菌的检出率依赖于足够的血量，但并非越
多越好，超过一定数量的采血量会稀释培养基内的肉汤，
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自然咳痰法
以晨痰为佳。采集标本前应用清水漱口或用牙 刷（不用牙膏）清洁口腔和牙齿，有假牙者应 取下假牙（为减少口腔正常菌群污染标本）， 用力咳出呼吸道深部的痰（非后鼻部分泌物、 非唾液），痰液直接吐入无菌容器中，尽快送 检。否则有的细菌（如肺炎链球菌、流感嗜血 杆菌）在外界可能死亡。不能及时送检的标本， 室温保存≤2h。
1. 在护士指导下 取标本 2. 先用清水清洗 或漱口 采集指南 3. 深咳痰以获得 深部痰，放入无 菌痰杯中 4. 不能取鼻后液
1. 先刷洗牙龈和 舌 2. 再用清水漱口 3. 用雾化器使患 者吸入约25ml 310％的无菌盐水 4. 采集诱导的痰 液放入无菌痰杯
1. 由临床医生操 作采集 2. 抽吸物或洗出 物放入痰采集容 器中 3. 将刷取物放入 装有盐Βιβλιοθήκη Baidu的无菌 容器中
标本采集
9
采集要点：
1. 2. 3. 4. 每一对血培养应当从身体的不同部位采集 用来培养的血应当是静脉血而不是动脉血 尽量避免从静脉导管中抽血 皮肤和瓶子的消毒非常关键
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采集时机：
应在病人发病初期或发热高峰到来之前采集。 一般情况下应尽量选择在使用抗菌药之前进行， 在24h内采集2-3份血培养（一次静脉采血注 入到多个培养瓶中应视为单份血培养）。如患 者已经应用抗菌药物进行治疗，应在下一次用 药之前采血培养。
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临床标本的分类
带菌体液 无菌体液
痰液
咽拭子 尿液 粪便
血液
脑脊液 关节腔积液 胸腹水、胆汁
其他类别
其他类别
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2. 3.
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发现感染应及时采集微生物标本作病原学检查，二、 三级医院微生物标本送 检率不应低于70%。 尽量在抗菌药物使用前采集标本。 标本采集时应严格执行无菌操作，减少或避免机体正 常菌群及其他杂菌污染。 标本采集后应立即送至实验室。床边接种可提高病原 菌检出率。 以棉拭子采集的标本如咽拭、肛拭或伤口拭子，宜采 用插入运送培养基送检。 混有正常菌群的标本如咳痰、尿液、伤口拭子，不可 置肉汤培养基内送检。 盛标本容器须经灭菌处理，但不得使用消毒剂。 4 送检标本应注明来源和检验目的，使实验室能正确选
临床微生物标 本采集、转运 与处理
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微生物标本规范化采集的重要性
正确采集、处理与运送细菌培养的标本直接关系到 致病菌培养的正确性与阳性率的高低，是临床细菌 检验成功的关键。
标本质量的好坏直接影响诊断结果的正误，不当的 标本可导致假阴性、假阳性结果的出现，因此标本 采集与处理的规范化是准确、及时地向临床提供重 要的临床感染信息的基础。 好的微生物检验标本可提升实验室工作效率及病患 照顾质量，降低医疗成本。
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采血套数
检测灵敏度
12
血培养瓶的运送
采集后的血培养瓶应立即送检（室温 <24h） 如不能立即送检，需室温保存或置 35°~37°孵箱中，切勿冷藏
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上呼吸道标本
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采集的临床指征
怀疑上呼吸道感染时如发热、咽部疼痛等，尤 其是怀疑化脓性链球菌感染或念珠菌感染时进 行咽拭子培养。
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标本采集