RT-PCR实验报告课件
rtpcr实验报告
rtpcr实验报告RT-PCR实验报告一、引言RT-PCR(逆转录聚合酶链反应)是一种常用的分子生物学技术,用于检测和分析RNA样本中的特定基因表达水平。
本实验旨在通过RT-PCR技术,对目标基因在不同组织或条件下的表达进行定量分析,以进一步了解其功能和调控机制。
二、实验材料与方法1. 材料:- RNA样本:从不同组织或条件下提取的总RNA。
- RT-PCR试剂盒:包括逆转录酶、聚合酶、引物等。
- DNA分子量标记物:用于测定PCR产物的大小。
- 离心管、PCR管、PCR仪等实验器材。
2. 方法:(1)RNA提取:采用某种RNA提取试剂盒,按照说明书提取不同组织或条件下的总RNA。
(2)逆转录反应:将提取的RNA模板与逆转录酶、引物和其他试剂混合,进行逆转录反应,将RNA转录为cDNA。
(3)PCR扩增:将逆转录反应产生的cDNA作为模板,与引物和PCR试剂混合,进行PCR扩增。
(4)电泳分析:将PCR产物与DNA分子量标记物一同进行琼脂糖凝胶电泳,根据PCR产物的大小判断目标基因的表达水平。
三、实验结果与讨论通过以上实验步骤,我们成功地获得了目标基因在不同组织或条件下的表达数据,并进行了初步的分析和讨论。
1. RT-PCR结果分析我们首先进行了RNA提取和逆转录反应,得到了各组织或条件下的cDNA样本。
然后,我们设计了特异性引物,进行了PCR扩增。
最后,通过琼脂糖凝胶电泳,观察到了PCR产物的带型。
根据PCR产物的带型,我们可以初步判断目标基因在不同组织或条件下的表达水平。
比如,在组织A中,我们观察到了明显的PCR产物带,说明该基因在组织A中高表达;而在组织B中,PCR产物带较弱,说明该基因在组织B中低表达。
2. RT-PCR结果验证为了验证实验结果的准确性,我们进行了重复实验和对照实验。
通过对照实验,我们可以排除PCR扩增的假阳性结果。
通过重复实验,我们可以评估实验的重复性和稳定性。
在重复实验中,我们发现,不同实验之间的PCR产物带型一致,表明实验结果具有较好的重复性。
实验二 RT-PCR
RT-PCR是指将逆转录(Reverse Transcription; RT)反应和PCR (Polymerase Chain Reaction)反 应组合在一起的方法。
RT-PCR的原理
RT-PCR将以RNA为模板的cDNA合成同PCR结合在一起,提供了一种分 析基因表达的快速灵敏的方法。RT-PCR用于对表达信息进行检测或定量。另
PCR引物设计
1.
2.
3. 4. 5. 6.
7.
Байду номын сангаас
一对引物,与3′端互补 长度:15~30个核苷酸 碱基分布随机 引物内、引物间不应有互补序列 引物与非特异扩增区无同源性 3′端必须互补 5′端可游离
PCR反应的特点
特异性强: 灵敏度高:PCR产物的生成量是以指数方式增 加的,能将皮克(pg=10- 12)量级的起始待测模 板扩增到微克(g=-6)水平 简便、快速:PCR反应一般在2~4 小时完成扩 增反应。扩增产物一般用电泳分析,不一定要 用同位素,无放射性污染、易推广。 对标本的纯度要求低:不需要分离病毒或细菌 及培养细胞,DNA 粗制品及总RNA均可作为扩 增模板。可直接用临床标本如血液、体腔液、 洗嗽液、毛发、细胞、活组织等粗制的DNA扩 增检测。
㈠ ㈡ ㈢ ㈣ ㈤ 筑巢PCR 多重PCR 不对称PCR 共享引物PCR 锚定PCR ㈥ ㈦ ㈧ ㈨ ㈩ 彩色PCR 原位PCR 定量PCR 差异显示PCR 重组PCR
【实验试剂】
RevertAidTM First Strand cDNA Synthesis Kit
(RevertAidTM M-MuLV Reverse Transcriptase;
退火温度的优化
延伸
RTPCR(共47张PPT)
实时荧光定量PCR 原理 -------Ct值
Ct值的定义:
PCR扩增过程中,扩增产物的荧光信号达到设定的阈值时所经 过的扩增循环次数
C(t) value
纵轴:荧光信号量
实时荧光定量PCR 原理 -------Ct值的重现性
横轴:PCR反映循环数
Ct值的特点:
EXON 1 EXON 1
INTRON 2 EXON 2
EXON 2
DNA RNA
PRIMER PREMIER 5.0
上机操作
点击
运行程序
保存
结果分析
难以查找原因。
• Buffer and dNTPs Ex:扩增效率
实时荧光定量PCR定义
• Template
cDNA
Real-time PCR
Real-time PCR
引物设计
• 总原则与普通PCR相同 –避免引物二聚体,避免二级结构 • 尽量小些 (70 - 300bp) • 目标区段位置:考虑目标剪接体 • 推荐做跨intron设计
实时荧光定量PCR法
染料法举例
SYBR Green法研究CDK6 在
肺癌组织标本中的表达差异
实验步骤
流程示意图
TaqMan法举例
材料准备
从正常肺组织中提取的总 RNA 从肺癌组织中提取的 总RNA
-Trizol 最常用 -裂解液 (氰酸胍,异硫氰酸呱, SDS) -液氮
-RNA保存液
小心DNA污染! -使用DEPC处理相关器材
TaqMan法
优缺点
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实时荧光定量PCR原理 相对定量
以各自样本中内参(housekeeping)基因为标杆,
RTPCR实验报告课件
逆转录pcrrt-pcr)和及时为反转录rcr ( reverse transcription pcrpcr ( real time pcr)共同的缩写。
逆转录pcr ,或许称反转录pcr(reversetranscription-pcr, rt-pcr) ,是聚合酶链式反响 (pcr) 中,一条 rna 链被逆转录成为互补 dna ,再以此为模板经过的一种宽泛应用的变形。
在pcr 进行dna 扩增。
rt-pcr由一条rna 单链转录为互补dna(cdna) 称作“逆转录” ,由依靠rna 的dna 聚合酶(逆转录酶)来达成。
随后,dna 的另一条链经过脱氧核苷酸引物和依靠rna 的dna 聚合酶达成,随每个循环倍增,即往常的pcr 。
原来的rt-pcr的指数扩增是一种很敏捷的技术,于遗传病的诊疗,并且能够用于定量监测某种rna 模板被rna 酶 h 降解,留下互补dna 。
能够检测很低拷贝数的rna 。
rt-pcr宽泛应用rna的含量。
(检测基因表达的方法,拜见northern blot 法。
)rt-pcr 作“ 定量有时也会指代及时pcr ” (quantitative pcr)pcr(real-time pcr)。
为了与逆转录或许rtq-pcr(real-time quantitative pcr)pcr 相差别,往常被写。
及时pcr及时为基础进行pcr(real-time pcr)dna 的定量剖析。
,属于定量pcrreal time pcr( q-pcr)的一种,以一准时间内dna 的增幅量的定量使用萤光色素,当前有二种方法。
一种是在ds dna 中插入特异的萤光色素;另一种使用一种能与增幅dna 序列中特定寡核酸序列相联合的一种萤光探针(probe )。
real time pcr 与reverse transcription pcr 相联合,能用微量的rna 来找出特准时间、细胞、组织内的特别表达的遗传基因。
RT-PCR及其产物电泳分析ppt课件
RT mix的成分:RNasin、5×RT反应缓冲液、2.5mM dNTPs、Oligo(dT)16、逆转
录酶(MMLV)
9
;.
实验步骤
(4)标记一个洁净的200μL反应管,向其中依次加入:
ddH2O 2×PCR mix
Primer mix cDNA模板
6 μL 10 μL 2 μL 2 μL
20 μL (5)混合均匀后,离心30S,使反应成份均匀富集于管底。
泳道2:靶DNA扩增; 泳道3:阴性对照
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RT-PCR检测人β-actin基因表达(扩增产物长度
260 bp)
;.
问题及解决方法
➢ 无PCR产物
1. 确保mRNA无降解。 2. 确保酶未失活。 3. 确保引物无降解。 4. 重新设置退火温度。 5. 重新设置变性温度。
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;.
问题及解决方法 ➢ PCR产物呈拖尾现象
1. 提高退火温度。 2. 减少Taq DNA聚合酶的用量。 3. 试用二步法进行PCR扩增。 4.调节Mg2+浓度,使之最优化。Taq DNA聚合酶发挥活性需要Mg2+参与,通过Mg2+介导与模板
DNA、引物及dNTP结合。通常Mg2+浓度为0.5~2.5mM,Mg2+浓度过高,将引起非特异扩 增产物增多;反之,Mg2+浓度过低则导致产量降低。 5. 减少延伸时间。 6. 减少循环次数。 7. 设计新的引物。 8.采用热启动法进行PCR。
ቤተ መጻሕፍቲ ባይዱ
10 PCR mix的成分:PCR反应缓冲液、2.5 mM dNTPs、Taq DNA聚合酶
;.
实验步骤 (6)在PCR仪上设置反应循环参数:
本次实验为:94 ℃ 20 s,56 ℃ 20 s,72 ℃ 20 s,循环数为26,最后于72 ℃充分延伸5 min 后,终止反应。 (7)置反应管于PCR仪上进行热循环。 (8)反应完毕后,取5 μLPCR产物,于1.5 %琼脂糖凝胶电泳检测结果。
rtpcr实验报告
rtpcr实验报告标题:rtpcr实验报告摘要:本实验使用了rtpcr技术对特定基因进行检测,通过分析实验结果,得出了基因表达水平的定量数据。
实验结果表明,该基因在不同条件下的表达水平存在显著差异,为进一步研究该基因在生物学过程中的作用提供了重要参考。
引言:rtpcr(reverse transcription polymerase chain reaction)是一种常用的分子生物学技术,可以用于检测特定基因的表达水平。
通过rtpcr实验,我们可以定量分析基因在不同组织、不同条件下的表达情况,从而深入研究基因在生物学过程中的作用。
材料与方法:1. 样本准备:收集不同组织或细胞系的样本,提取总RNA。
2. 反转录:使用反转录酶将RNA转录成cDNA。
3. pcr扩增:设计引物,进行实时荧光定量pcr扩增。
4. 数据分析:利用实时pcr仪器收集数据,进行定量分析。
结果:通过rtpcr实验,我们得到了不同组织或细胞系中特定基因的表达水平数据。
实验结果显示,在不同条件下,该基因的表达水平存在显著差异。
例如,在刺激条件下,基因的表达水平明显上调;而在抑制条件下,基因的表达水平则显著下调。
这些数据为我们进一步探究该基因在生物学过程中的作用提供了重要参考。
讨论:rtpcr实验结果表明,特定基因在不同条件下的表达水平存在显著差异。
这表明该基因可能在特定生物学过程中发挥重要作用,或者受到外部环境的调控。
进一步的研究可以探究该基因在细胞信号传导、代谢调控等方面的作用机制,为相关疾病的治疗提供理论依据。
结论:通过rtpcr实验,我们成功地分析了特定基因在不同条件下的表达水平。
实验结果表明,该基因在生物学过程中可能发挥重要作用,为进一步研究该基因的功能和调控机制提供了重要参考。
这项研究为深入探究基因在生物学过程中的作用提供了重要的实验基础。
实时荧光定量PCR(qPCR,RT-PCR)的原理及应用ppt课件
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实时荧光定量PCR的定义
PCR技术和荧光检测技术的结合
通过荧光染料或荧光标记的特异性探针,对PCR产物进行 标记跟踪,实时在线监控反应过程,通过仪器和相应的软 件分析结果,对待测样品的初始模板进行定量或定性分析。
5
RT-PCR技术的原理及试验流程
6
RT-PCR技术的原理及试验流程
7
RT-PCR技术的原理及试验流程
RT-PCR反应体系
模板
4.5μl
Tag mixture
5.0μl
F(F’)
0.25μl
R(R’)
0.25μl
rt pcr实验报告
rt pcr实验报告RT-PCR实验报告引言:RT-PCR(逆转录聚合酶链式反应)是一种常用的分子生物学技术,用于检测和定量RNA的表达水平。
本实验旨在通过RT-PCR方法分析目标基因在不同组织和条件下的表达情况,从而深入了解其功能和调控机制。
材料与方法:1. 细胞或组织样本:选择不同类型的细胞或组织样本,如肝脏、肺、肌肉等。
2. RNA提取试剂盒:使用RNA提取试剂盒提取样本中的总RNA。
3. 逆转录试剂盒:使用逆转录试剂盒将RNA转录为cDNA。
4. PCR试剂盒:使用PCR试剂盒进行聚合酶链式反应。
5. 热循环仪:使用热循环仪进行PCR反应。
实验步骤:1. 样本处理:将细胞或组织样本收集并保存在合适的条件下,以保持RNA的完整性。
2. RNA提取:按照RNA提取试剂盒的说明书进行操作,提取样本中的总RNA。
3. RNA浓度和纯度检测:使用紫外-可见光分光光度计检测RNA的浓度和纯度,确保提取到高质量的RNA。
4. 逆转录反应:按照逆转录试剂盒的说明书进行操作,将RNA转录为cDNA。
5. PCR反应:按照PCR试剂盒的说明书进行操作,设置合适的引物和反应条件,进行PCR反应。
6. 凝胶电泳:将PCR产物与DNA分子量标准品一同加载到琼脂糖凝胶上,进行电泳分离。
7. 凝胶图像分析:使用凝胶图像分析软件测量PCR产物的带的强度,并进行定量分析。
结果与讨论:通过RT-PCR实验,我们成功地分析了目标基因在不同组织和条件下的表达情况。
以下是实验结果的一些典型示例:1. 基因在不同组织中的表达差异:我们选择了肝脏、肺和肌肉作为研究对象,分别提取了这些组织中的总RNA,并进行了RT-PCR分析。
结果显示,目标基因在肝脏中的表达水平最高,肺次之,肌肉最低。
这表明目标基因在不同组织中的表达存在差异,可能与其功能和组织特异性有关。
2. 基因在不同条件下的表达调控:我们进一步研究了目标基因在不同条件下的表达调控。
《RTPCR技术原理》课件
RTPCR是一种常用的遗传学分析技术,通过在实验室中模拟自然界的PCR过 程,扩增DNA片段,从而实现对基因的分析和研究。
RTPCR技术原理
什么是RTPCR技术
RTPCR技术是一种基于PCR扩增原理开发而来的遗传学分析方法,可以高效地复制和研究 DNA序列。
RTPCR技术的优点
RTPCR技术具有高灵敏度、高特异性、高通量和快速等优点,成为现代分子生物学研究中 不可或缺的工具。
RTPCR技术利用PCR反应中的循环式 扩增机制,快速复制目标DNA序列, 从而使其在检测中能够得到可靠的结 果。
RTPCR技术原理
RTPCR技术的应用领 域
RTPCR技术在医学领域被 广泛应用于疾病诊断、遗 传性疾病筛查、药物研发 等方面。
RTPCR在食品安全领 域的应用
RTPCR技术可以用于检测 食品中的致病菌、转基因 成分、有害物质等,保障 食品安全。
RTPCR技术原理
1
RTPCR反应体系组成
2
RTPCR反应体系包括RNA、逆转录酶、
引物、酶、核酸酶和缓冲液等多种组
分,以保证反应的高效、特异性和稳
3
Байду номын сангаас
定性。
RTPCR流程介绍
RTPCR技术包括反转录和PCR两个基 本步骤,通过这两个步骤可以将RNA 转录为cDNA并扩增目标DNA序列。
RTPCR放大机制
2 RTPCR技术的发展趋势
RTPCR技术将更加智能化、快速化、低成本化,实现更高效的基因分析和诊断。
3 RTPCR技术的未来应用简述
RTPCR技术有望在个性化医疗、精准农业和环境污染治理等领域得到更广泛的应用。
RTPCR技术原理
《RTPCR技术原理》课件
缺点
对操作人员要求较高
RTPCR技术的操作较为复杂,需要经过专 业培训的操作人员才能保证结果的准确性
。
成本较高
RTPCR技术需要昂贵的仪器和试剂 ,导致检测成本较高,可能限制其
在资源有限地区的普及。
A
B
C
D
可能出现交叉污染
在操作过程中,如果样品或试剂受到污染 ,可能会导致交叉污染,影响检测结果的 准确性。
《rtpcr技术原理》ppt课 件
目录 CONTENT
• RTPCR技术概述 • RTPCR技术原理 • RTPCR实验操作流程 • RTPCR技术的优缺点 • RTPCR技术的应用实例
01
RTPCR技术概述
RTPCR技术定义
实时荧光定量PCR(Real-Time PCR)是一种在PCR反应过程中,通过荧光信号 检测DNA片段的扩增情况,并实时监测其变化的技术。
2000年
ABI公司推出高分辨率熔解曲线分析 技术,提高了SNP分型和突变检测的 准确性。
2004年
基于焦磷酸测序原理的实时荧光定量 PCR技术问世,提高了检测通量和灵 敏度。
RTPCR技术的应用领域
基因表达分析
突变检测
通过比较不同组织或不同处理条件下基因 的表达水平,研究基因的表达调控机制。
用于检测DNA序列中的点突变、插入和缺 失等变异,用于遗传病、肿瘤等疾病的诊 断和监测。
基因突变检测
总结词
RTPCR技术能够高效地检测基因突变,为遗传性疾病的诊断和治疗提供依据。
详细描述
基因突变是许多遗传性疾病的诱因,RTPCR技术通过对特定基因的扩增和荧光 检测,能够快速、准确地检测出基因突变位点及类型。这有助于遗传性疾病的 早期诊断和针对性治疗,为患者提供更好的医疗方案。
rt pcr实验报告
rt pcr实验报告《RT-PCR实验报告》摘要:本实验旨在利用逆转录聚合酶链式反应(RT-PCR)技术对特定基因进行定量分析。
通过逆转录将RNA转录成cDNA,然后利用PCR技术扩增目标基因,最终通过实时荧光信号检测目标基因的表达水平。
实验结果表明,该技术能够准确、快速地检测目标基因的表达水平,为基因表达研究提供了重要的技术手段。
引言:逆转录聚合酶链式反应(RT-PCR)是一种常用的分子生物学技术,广泛应用于基因表达分析、病毒检测、基因型鉴定等领域。
其原理是利用逆转录酶将RNA转录成cDNA,然后利用PCR技术扩增目标基因,最终通过实时荧光信号检测目标基因的表达水平。
本实验旨在利用RT-PCR技术对特定基因进行定量分析,为基因表达研究提供重要的技术支持。
材料与方法:1. 提取RNA:从细胞或组织中提取总RNA,使用逆转录酶将RNA转录成cDNA。
2. PCR扩增:设计特异性引物,利用PCR技术扩增目标基因。
3. 实时荧光检测:利用实时PCR仪检测PCR反应过程中的荧光信号,得到目标基因的表达水平。
结果与讨论:实验结果显示,利用RT-PCR技术可以准确、快速地检测目标基因的表达水平。
与传统的Northern blot和原位杂交技术相比,RT-PCR技术具有灵敏度高、操作简便、快速等优点,适用于大规模基因表达分析。
因此,RT-PCR技术在基因表达研究中具有广泛的应用前景。
结论:本实验利用RT-PCR技术对特定基因进行定量分析,结果表明该技术能够准确、快速地检测目标基因的表达水平,为基因表达研究提供了重要的技术手段。
未来,我们将进一步优化实验条件,扩大样本量,深入研究基因表达的调控机制,为相关疾病的诊断和治疗提供更多的理论和实验依据。
柯萨奇病毒的RT-PCR实验.ppt
cDNA于-20℃ 冰箱冻存。
聚合酶链反应(PCR) 配液:25ul体系
2×mix PrimerA(100ug/ml) PrimerS(100ug/ml) cDNA ddH2O
12.5 × 1ul× 1ul× 1ul× 9.5ul×
反应程序:
95℃ 95℃ 60℃ 72℃ 72℃ 4℃
5min 15sec 20sec 20sec 10min 保存
⑸缓冲溶液:保证DNA聚合酶催化时所需的适当的溶 液pH值
PCR技术类似于DNA的天然复制过程,其特异性依赖于与 靶序列两端互补的寡核苷酸引物。PCR由变性--退火--延伸三 个基本反应步骤构成: ①模板DNA的变性:模板DNA经加热至93℃左右一定时间后, 使模板DNA双链或经PCR扩增形成的双链DNA解离,使之成 为单链,以便它与引物结合,为下轮反应作准备; ②模板DNA与引物的退火(复性):模板DNA经加热变性成单 链后,温度降至55℃左右,引物与模板DNA单链的互补序列 配对结合; ③引物的延伸:DNA模板--引物结合物在TaqDNA聚合酶的 作用下,以dNTP为反应原料,靶序列为模板,按碱基配对与 半保留复制原理,合成一条新的与模板DNA 链互补的半保留 复制链。重复循环变性--退火--延伸三过程,就可获得更多的 “半保留复制链”,而且这种新链又可成为下次循环的模板。 每完成一个循环需2~4分钟,2~3小时就能将待扩目的基因 扩增放大几百万倍。到达平台期(Plateau)所需循环次数取决 于样品中模板的拷贝。
Types of RT-PCR Reactions
Standard RT-PCR usually with one-step (recommended)
– Sensitive and specific
实验六_RT-PCR(扩增)
过氧化物酶体增殖体激活受体(PPAR)属于核激素受体超家族成员, 过氧化物酶体增殖体激活受体(PPAR)属于核激素受体超家族成员,是类固醇 /甲状腺/维甲酸受体一种,该受体调控多种脂类代谢关键基因的表达,广泛参与脂 甲状腺/维甲酸受体一种,该受体调控多种脂类代谢关键基因的表达, 肪的吸收、运输、生成、分解( 氧化和ω氧化),是调控脂类代谢的重要因子。 ),是调控脂类代谢的重要因子 肪的吸收、运输、生成、分解(β氧化和ω氧化),是调控脂类代谢的重要因子。 PPAR有 三种亚型,其中PPARα主要在肝脏中表达。PPARa被激活后可 PPARα主要在肝脏中表达 PPAR有α、β和γ三种亚型,其中PPARα主要在肝脏中表达。PPARa被激活后可 在多个水平上增加脂肪酸的分解,PPARa与其配体结合后, 在多个水平上增加脂肪酸的分解,PPARa与其配体结合后,能增加肝脏的脂肪酸转运 与其配体结合后 蛋白、脂肪酸移位酶、乙酰辅酶A合成酶的表达、促进肝的脂肪酸摄取; 蛋白、脂肪酸移位酶、乙酰辅酶A合成酶的表达、促进肝的脂肪酸摄取;影响脂肪酸 和胆固醇在血浆中的转运;增加载脂蛋白AI、 AII的转录 的转录, 和胆固醇在血浆中的转运;增加载脂蛋白AI、 AII的转录,水解富含甘油三酯的极 AI 低密度脂蛋白(VLDL)。 低密度脂蛋白(VLDL)。 (VLDL)
5min
94 ℃
30s
55 ℃
30s
72 ℃
1min 72 ℃
10min
4 ℃
1h
34 Cycle
反应结束后,向每管中加入3uL溴酚兰,混匀, 18uL进行琼脂糖凝胶电泳 3uL溴酚兰 进行琼脂糖凝胶电泳。 反应结束后,向每管中加入3uL溴酚兰,混匀,取18uL进行琼脂糖凝胶电泳。
四 实验结果
RTPCR常见问题分析ppt课件
精选版课件ppt
26
问题五:信号高于预期,在低 于预期的循环中即可检出产物?
1、 反应中加的样品太多:降低模板的浓度。 2、 模板或PCR残余污染:隔离污染来源,更换试
剂,使用专用的精致移液器。在无DNA区域准备 反应,使用抗气溶胶的吸头。
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问题六:电泳后出现意外的条带 RNA?
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1.引物和模版 的非特异性 退火
对策
1.避免引物3’端含有2 个到3个dG或dC’
2.在第一链合成中使用 基因特异性引物,而 不是随即引物或 oligo(dT)。
3.在开始几个循环使用 较高的退火温度,然 后使用较低的退火温 度。
4.使用热启动Taq DNA 酶进行PCR,提高反 应的特异性。
火的GSP;对于>1kb的RT-
PCR产物,保持反应温 度≤65℃。不要在高于 37℃时使用M-MLV;如 果不需要全长cDNA, 在第一链反应中使用
随机引物;
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13
7.引物或模板 对残余的RNA 模板敏感
8.靶序列在分 析的组织中不 表达
9.PCR没有起 作用
在PCR前用RNaseH处理。
30
问题九: 扩增产物滞留在加样 孔中
有可能是由于模板量过高而导致PCR结果产生了 高分子量的DNA胶状物。建议将第一链结果至少 稀释100倍再进行二次扩增。
另外,在二次PCR时使用的退火温度如果比引物 的Tm值低5℃,可以将退火温度适当增高或进行 热启动以提高特异性
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Thank You!
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精选版课件ppt
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定量RT-PCR原理49页PPT
56、极端的法规,就是极端的不公。 ——西 塞罗 57、法律一旦成为人们的需要,人们 就不再 配享受 自由了 。—— 毕达哥 拉斯 58、法律规定的惩罚不是为了私人的 利益, 而是为 了公共 的利益 ;一部 分靠有 害的强 制,一 部分靠 榜样的 效力。 ——格 老秀斯 59、假如没有法律他们会更快乐的话 ,那么 法律作 为一件 无用之 物自己 就会消 灭。— —洛克
60、人民的幸福是至高无个的法。— —西塞 罗
William P. Halford:
是否只有竞争性RT-PCR才能精确定量?
非竞争性RT-PCR
目前主要采用荧光实时RT-PCR,放 射性标记核苷酸的方法已基本淘汰。
实时RT-PCR
实时RT-PCR就是在PCR扩增的每一个循 环后分别检测其PCR产量,借助计算机数据 处理,可以描绘出PCR扩增循环过程中PCR产 物变化曲线。
根据PCR 变化曲线计算出目标靶基因 分子数。
传统RT-PCR与实时RT-PCR的流程比较
荧光定量RT-PCR基本流程
荧光测定的光学原理图
反射镜
光源 滤光镜
夫累舍尔透镜 96孔透镜组
双色镜
多元镜
96孔板
滤镜轮
CCD 相机
Molecular Beacon Method
Dye Incorporation Method
amplifications (FAM™) in replicates of 5
18S ribosomal RNA endogenous control amplifications (VIC™) showing all 20 sample wells
Detection of mRNA splice variants
基因表达检测RTPCR-PPT课件
Total RNA
3l (2-5g)
RNase-free DNase
1l (1u / l)
10× DNase buffer
1 l
add DEPC-treated ddH2O
5 l
4. Incubate at 37℃ for 15 min, then 70℃ for 10 min.
操作步骤(二)Reverse Transcriptase Reaction
鼠白血病毒反转录酶 M-MLV:
单链多肽,具有聚合酶和较弱的RNase H活性 (或RNase H-),最适反应条件:37 °C, pH8.3,
禽成髓细胞反转录酶 AMV
2条多肽链,具有聚合酶活性和较强的RNase H活 性,最适反应条件41-45 °C,pH8.3比pH7.6活 性高
RNase H: 催化DNA-RNA杂合体的RNA部分的降解,产生不同 链长带3‘羟基和5’磷酸末端的寡核苷酸。
3. 检测 0.5×TBE
电泳
In 1× MOPS 80 —150V 40 min —1h30min
有溴化乙锭存在时,电泳后28S rRNA和18S rRNA 在紫外灯下应当很清楚的看得到,还应当有一条由 tRNA,5.8S rRNA和5S rRNA组成的较模糊的迁移较 快的带。如果RNA没有降解, 28S rRNA的亮度应当是 18S rRNA的2倍,且这两条带都没有弥散现象。
水冲洗);
防止外源RNase污染的主要措施(二):
5. 准备所有的溶液和缓冲液时,使用无RNA酶的玻 璃器皿,DEPC处理过的水,用于RNA的化学药品 使用专用药勺或直接敲击瓶底分离,可能的话, 用0.1%的DEPC在37ºC处理溶液1小时后在 15psi(1.05kg/cm2高压蒸气灭菌15min。
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逆转录pcrrt-pcr 为反转录rcr (reverse transcription pcr)和实时pcr (real time pcr )共同的缩写。
逆转录pcr ,或者称反转录pcr(reverse transcription-pcr, rt-pcr) ,是聚合酶链式反应(pcr) 的一种广泛应用的变形。
在rt-pcr 中,一条rna 链被逆转录成为互补dna,再以此为模板通过pcr 进行dna 扩增。
由一条rna 单链转录为互补dna(cdna) 称作“逆转录”,由依赖rna 的dna 聚合酶(逆转录酶)来完成。
随后,dna 的另一条链通过脱氧核苷酸引物和依赖rna 的dna 聚合酶完成,随每个循环倍增,即通常的pcr 。
原先的rna 模板被rna 酶h 降解,留下互补dna。
rt-pcr 的指数扩增是一种很灵敏的技术,可以检测很低拷贝数的rna 。
rt-pcr 广泛应用于遗传病的诊断,并且可以用于定量监测某种rna 的含量。
(检测基因表达的方法,参见northern blot 法。
)rt-pcr 有时候也会指代实时pcr(real-time pcr) 。
为了与逆转录pcr 相区别,通常被写作“定量pcr ”(quantitative pcr) 或者rtq-pcr(real-time quantitative pcr) 。
实时pcr实时pcr(real-time pcr) ,属于定量pcr (q-pcr )的一种,以一定时间内dna 的增幅量为基础进行dna 的定量分析。
real time pcr 的定量使用萤光色素,目前有二种方法。
一种是在ds dna 中插入特异的萤光色素;另一种使用一种能与增幅dna 序列中特定寡核酸序列相结合的一种萤光探针(probe )。
real time pcr 与reverse transcription pcr 相结合,能用微量的rna 来找出特定时间、细胞、组织内的特别表达的遗传基因。
这两种rt pcr 的组合又被称之为“定量rt-pcr (quantitative rt-pcr )”rt-pcr 技术相关试剂oligo: 多聚体,相当于mrna 引物amv (m-mlv):逆转录酶dntp :脱氧核苷酸rnase :rna 酶抑制剂pcr buffer :rt-pcr 缓冲液mgcl2 :2 价镁离子pcr 各步骤的目的(一)预变性:破坏dna 中可能存在的较难破坏的二级结构。
使dna 充分变性,减少dna 复杂结构对扩增的影响,以利于引物更好的和模板结合,特别是对于基因组来源的dna 模板,最好不要吝啬这个步骤。
此外,在一些使用热启动taq 酶的反应中,还可激活taq 酶,从而使pcr 反应得以顺利进行。
(二)变性-- 退火-- 延伸循环:①模板dna 的变性:模板dna 经加热至93℃左右一定时间后,使模板dna 双链或经pcr 扩增形成的双链dna 解离,使之成为单链,以便它与引物结合,为下轮反应作准备;②模板dna 与引物的退火( 复性) :模板dna 经加热变性成单链后,温度降至55℃左右,引物与模板dna 单链的互补序列配对结合;③引物的延伸:dna 模板-- 引物结合物在taqdna 聚合酶的作用下,以dntp 为反应原料,靶序列为模板,按碱基配对与半保留复制原理,合成一条新的与模板dna 链互补的半保留复制链。
(三)pcr 仪扩增循环后72 度延伸10 分钟用pcr 仪扩增时,( 变性. 退火, 延伸) 循环完成后, 继续72 度延伸了10 分钟的原因:1. 延伸时间取决于待扩增dna 片段的长度。
(当然是在反应体系一定的条件下)例如,使用taqdna 聚合酶,72 度时的碱基掺入率为35-100bp/s ,因此延伸速率为1kb/min 。
2. 根据延伸速率推得,扩增1kb 以内的dna 片段1min 即可,而3-4kb 则需要3-4min ,依次照推。
通常在最后一轮要适当的将延伸时间延长至4-10min ,这样做是使pcr 反应完全以提高扩增产量。
3. 继续72 度延伸了10 分钟除了可以使pcr 反应完全以提高扩增产量外,还有一个作用是:在用普通taq 酶进行pcr 扩增时在产物末端加 a 尾的作用,可以直接用于ta 克隆的进行。
什么是半定量pcr半定量反转录-聚合酶链反应(semi-quantitative reverse transcription and polymerase chain reaction ,sqrt-pcr )是近年来常用的一种简捷、特异的定量rna 测定方法,通过mrna 反转录成cdna,再进行pcr 扩增,并测定pcr 产物的数量,可以推测样品中特异mrna 的相对数量。
以半定量rt-pcr 为基础建立起来的mrna 含量测定技术,较含内标化的rt-pcr 定量测定的mrna 的方法更为简便可行。
这种方法不另设‘内标准, 排除了俩对不同引物之间的相互抑制和灵敏读差异,而且具有明显的剂量-效益关系和良好的重复性。
步骤: 1. 抽提rna,2. 反转录获得cdna,3. 以cdna 为模板做pcr 注意:步骤1,rna 抽提质量一定要好,注意污染。
内参的选择,常用的有βactin 和gapdh 俩中。
步骤3,半定量rt-pcr 应该再两管中进行,既内参和目的基因各一管,这样便于控制,做图的时候可以放在一各泳道里跑!指数期和平台期一定要摸清楚!半定量rt-pcr 与荧光定量real-time pcr 最大的区别就在于semi-pcr 需要跑电泳根据条带亮度的强弱来判断模板拷贝数的高低或者是表达量的高低而real-time pcr 则无需电泳可以实时监测整个pcr 的全程并且由给出的ct 值及standard curve 来判断gene 拷贝数的高低。
所以由上可见semi-pcr 不如real-time pcr 精确。
至于rt 应该指reverse transcription 。
为了便于区分我们更偏好使用qpcr 来特指real-time pcr同时要注意realtime-pcr 的定性问题,有时候你扩增出来的很有可能只是引物二聚体。
所以要利用melting curve ,如果是第一次做一个目的基因的realtime-pcr ,还是要在2%的琼脂糖凝胶中进行电泳,以确定与你要扩增的目的基因大小一致。
rt-pcr 只能通过模板pcr 后扩增的结果间接的反应初始模板的量。
而realtime-pcr 的结果直接可以看到初始模板的量。
所以,realitime-pcr 更精确些。
篇二:rt-pcr 实验方法逆转录pcr (rt-pcr)实验四逆转录pcr (rt-pcr) 【实验目的】1.了解用逆转录pcr 法获取目的基因的原理。
2.学习和掌握逆转录pcr 的技术和方法。
【实验原理】聚合酶链式反应(pcr )过程利用模板变性,引物退火和引物延伸的多个循环来扩增dna 序列。
因为上一轮的扩增产物又作为下一轮扩增的模板,是一个指数增实验四逆转录pcr (rt-pcr)【实验目的】1 .了解用逆转录pcr 法获取目的基因的原理。
2 .学习和掌握逆转录pcr 的技术和方法。
【实验原理】rt-pcr 技术灵敏而且用途广泛,可用于检测细胞中基因表达水平、表达差异,细胞中rna 病毒的含量和直接克隆特定基因的cdna 序列。
rt-pcr 比其他包括northern 印迹、rnase 保护分析、原位杂交及s1 核酸酶分析在内的rna 分析技术,更灵敏,更易于操作。
rt-pcr 的基本原理(图 4.1 )。
首先是在逆转录酶的作用下从rna 合成cdna ,即总rna中的mrna 在体外被反向转录合成dna 拷贝,因拷贝dna 的核苷酸序列完全互补于模板mrna,称之为互补dna(cdna);然后再利用dna 聚合酶,以cdna 第一链为模板,以四种脱氧核苷三磷酸(dntp )为材料,在引物的引导下复制出大量的cdna 或目的片段。
在rt 时,有 3 种引物可选择(表 4.1) 。
用1)和2)方法,理论上是扩增的所有的cdna,还要用此产物做pcr 的模板继续扩增。
如果用3)方法,先要去/retype/zoom/7b17bdaf89eb172ded63b7a3?pn=2&x=0&y=1268&raww=535&rawh=340&o=png_6_0_0_135_265_601_383_892.979_1262.879&type=pic&aimh=305.04672897196264&md5sum=388ad1889e15cfe390decc00721a2ce0&sign=8ccc656492&zoom=&png=48793-106221&jpg=0-0"target="_blank"> 点此查看由图 4.1 不难看出,随机引物法是三种方法中特异性最低的。
引物在整个转录本的多个位点退火,产生短的,部分长度的cdna。
这种方法经常用于获取 5 末端序列及从带有二级结构区域或带有逆转录酶不能复制的终止位点的rna 模板获得cdna。
为了获得最长的cdna,需要按经验确定每个rna 样品中引物与rna 的比例。
随机引物的起始浓度范围为50 到250ng 每20μl 反应体系。
因为使用随机引物从总rna 合成的cdna 主要是核糖体rna ,所以模板一般选用poly(a)+rna 。
oligo(dt) 起始比随机引物特异性高。
它同大多数真核细胞mrna 3 端所发现的poly(a)尾杂交。
因为poly(a)+rna 大概占总rna 的1 %到2%,所以与使用随机引物相比,cdna 的数量和复杂度要少得多。
因为其较高的特异性,oligo(dt) 一般不需要对rna 和引物的比例及poly(a)+ 选择进行优化。
建议每20μl 反应体系使用0.5 μg oligo(dt) 。
oligo(dt)12-18适用于多数rt-pcr 。
基因特异性引物(gsp)对于逆转录步骤是特异性最好的引物。
gsp 是反义寡聚核苷,可以特异性地同rna 目的序列杂交,而不象随机引物或oligo(dt) 那样同所有rna 退火。
用于设计pcr 引物的规则同样适用于逆转录反应gsp 的设计。
gsp 可以同与mrna 3 最末端退火的扩增引物序列相同,或gsp 可以设计为与反向扩增引物的下游退火。
已经制备好的双链cdna 和一般dna 一样,可以插入到质粒或噬菌体中,为此,首先必需有适当的接头(linker) ,接头可以是在pcr 引物上增加限制性内切酶识别位点片段,经pcr 扩增后再克隆入相应的载体;也可以利用末端转移酶在载体和双链cdna 的末端接上一段寡聚dg 和dc 或dt 和da 尾巴, 退火后形成重组质粒, 并转化到宿主菌中进行扩增。