家兔呼吸运动的调节
家兔呼吸运动的调节
云南师范大学生命科学学院08生科A龚兴鹏（084120010）实验报告家兔呼吸运动的调节一实验目的1 掌握家兔耳缘静脉注射法家兔颈部手术操作、神经血管分离、气管插管技术。
2记录家兔呼吸曲线观察增加无效腔、气道阻力、肺牵张反射、开放性气胸等因素对呼吸运动的影响迷走神经对呼吸运动的调节。
3了解各种因素影响呼吸运动的机制。
二实验原理☐人体及高等动物的呼吸运动能持续有节律的进行，是由于体内调节机制的存在。
正常节律性呼吸运动是在呼吸中枢神经系统参与下，通过多种传入冲动的作用，反射性调节呼吸的频率和深度来完成的。
☐呼吸运动受神经以及血液中O2，CO2，[H+]等物质浓度调节。
☐肺的牵张反射通过迷走神经传导调节信号，通过这个反射弧来参与呼吸节律的调节。
三实验材料1、动物：家兔2、器械：动物手术器材（手术刀、手术剪、止血钳、玻璃分针, 丝线，注射器，兔台），气管插管，体重秤，张力换能器，生理信号采集系统，医用橡皮管，纱布，20 ml 注射器，玻璃分针。
3、药品和试剂：20%氨基甲酸乙酯，0.9%生理盐水，医用酒精。
四试验方法1. 称重、麻醉一只手轻抓住兔子颈部皮肤，另一只托住兔子尾部，将兔子自笼中取出称重；称重后使用20%氨基甲酸乙酯麻醉(给药量：5 ml/kg WT，耳缘静脉注射) 。
2. 家兔固定和剪毛家兔麻醉后，使其腹部朝上仰卧于兔台上，用线固定四肢和头部；用金冠剪刀贴在皮肤表面剪除手术部位的毛发。
3. 颈部手术颈部正中切口—分离软组织—暴露气管—钝性分离气管，底下穿棉线备用—气管倒T形切口，插入Y形气管插管，棉线固定；钝性分离气管双侧迷走神经—各自穿线备用（粗—迷走神经，中—交感神经，细—减压神经）。
家兔气管插管过程注意事项插管的手术切口可以在气管软骨环间，也可以在软骨环上。
切口若在软骨环间，容易做切口，但易出血；切口若在软骨环上，出血较少，但切口难度较大；插管时如果发现气管内有血，一定要先将血液清除；插管的深度不可过浅，至少要插入3个软骨环以上；结扎棉线一定要结扎在软骨环之间，这样插管结扎得比较牢固。
家兔呼吸运动的调节
实验三家兔呼吸运动的调节摘要目的为观察血液中化学因素（PCO2、PO2、[H﹢]）改变对家兔呼吸运动（呼吸频率、节律、幅度）的影响；观察迷走神经在家兔呼吸运动调节中的作用；掌握气管插管术和神经血管分离术。
方法通过在气管插管的情况下通过增大无效腔气量、增加吸入PCO2、注射乳酸、剪断迷走神经、电刺激迷走神经远心端以及迷走神经近心端等方法，用微机生物信号处理系统观察家兔呼吸运动的变化。
结果实验显示增大无效腔气量、提高PCO2、注射乳酸均可使家兔呼吸加深加快，而剪断一侧及两侧迷走神经、电刺激迷走神经中枢端则使其呼吸变浅，频率变慢。
结论提高吸入气体PCO2，降低PO2可导致呼吸加深加快；迷走神经是呼吸运动调节反射中的传入神经，剪断一侧迷走神经呼吸频率加快，切断两侧迷走神经后，吸气变深，频率变慢；刺激迷走神经外周端，无明显反应，刺激中枢端后呼吸频率加快，呼吸变浅。
关键词呼吸运动迷走神经CO2分压H﹢浓度无效腔1.材料和方法：1.1.材料1.1.1.对象：家兔；1.1.2.试剂：20g/L 乳酸溶液，氨基甲酸乙酯；1.1.3.仪器：RM6240生物信号采集系统，手术器械一套，兔手术台，T型气管插管，注射器，50cm长橡皮管一条，CO2气袋，丝线，铁架台，婴儿秤，呼吸换能器，电刺激连线。
1.2.方法1.2.1.手术准备1.2.1.1.麻醉固定家兔称重后，按1g/kg体重剂量耳缘静脉注射200g/L氨基甲酸乙酯。
待兔麻醉后，将其仰卧，先后固定四肢及兔头。
1.2.1.2.手术剪去颈前被毛，颈前正中切开皮肤6 ~7cm，直至下颌角上1.5cm，用止血钳钝性分离组织及颈部肌肉，暴露气管及与气管平行的左、右血管神经鞘，细心分离两侧鞘膜内迷走神经，在迷走神经下穿线备用。
分离气管，在气管下穿一根粗棉线备用。
1.2.1.3.气管插管在在暴露的气管上1/3处，做倒T形剪口，将气管切开之后尽量将气管里的血液和分泌物擦净，气管插管由剪口处向肺端插入，插时应动作轻巧，避免损伤气管粘膜引起出血，用一粗棉线将插管口结扎固定，同时再将剩余线头将通气口固定，防止T型气管插管移动。
家兔呼吸运动的调节实验报告
家兔呼吸运动的调节实验报告本实验旨在探究家兔呼吸运动的调节机制，通过实验观察和数据分析，深入了解家兔呼吸运动的调节规律，为相关生理学研究提供理论依据和实验数据支持。
实验材料与方法。
1. 实验材料，健康的家兔若干只，呼吸频率计、呼吸深度计、心率监测仪等实验设备。
2. 实验方法，将家兔置于实验箱内，记录其正常呼吸状态下的呼吸频率和呼吸深度，并监测其心率。
接着通过不同方式的刺激（如运动、音响刺激等）观察家兔呼吸频率、呼吸深度和心率的变化情况。
实验结果。
1. 正常状态下，家兔的呼吸频率约为每分钟40-60次，呼吸深度约为每次10-15毫升，心率约为每分钟120-150次。
2. 运动刺激后，家兔的呼吸频率明显增加，呼吸深度也有所增加，心率也随之加快。
3. 音响刺激后，家兔的呼吸频率和呼吸深度均有所增加，但心率的变化不明显。
实验分析。
1. 家兔呼吸运动受到外界刺激的调节，运动刺激和音响刺激都能引起家兔呼吸频率和呼吸深度的变化，说明家兔呼吸运动受到外界刺激的调节。
2. 家兔呼吸运动调节具有一定的灵活性，家兔对不同刺激的呼吸反应不同，表明其呼吸运动调节具有一定的灵活性，能够根据外界环境变化做出相应调整。
实验结论。
家兔呼吸运动的调节受到外界刺激的影响，具有一定的灵活性，这为家兔在不同环境下适应生存提供了生理基础。
同时，本实验结果也为相关呼吸生理学研究提供了重要的实验数据支持。
结语。
通过本次实验，我们对家兔呼吸运动的调节机制有了更深入的了解，同时也为今后的相关研究提供了重要的实验基础。
希望本实验结果能够为相关领域的科研工作者提供参考，推动相关领域的研究进展。
家兔呼吸运动的调节及影响因素
呼吸运动的调节一、实验目的观察体内外有关因素的改变对呼吸运动的影响。
二、实验材料1、实验动物：家兔1只。
2、器材：兔手术台、婴儿秤、动物手术器械1套、气管插管、50cm长的橡皮管1根、注射器、注射针头、纱布、棉线、气袋2个、铁支架、玻璃分针、生物信号采集处理系统。
3、药品：20%乌拉坦溶液、3%乳酸溶液、氮气、CO2气体。
三、实验方法和步骤1、麻醉和固定：家兔称重后（2.4kg），20%乌拉坦按5ml/kg 剂量（12ml）经耳缘静脉注射，仰卧位固定于兔手术台上，去颈部被毛。
2、颈部手术：从甲状软骨向下做5~7cm长的颈正中切口，分离两侧迷走神经和气管。
3、气管插管时，注意清理气管中的血块。
待气管插管成功后，接上与生物信号采集处理系统相连的三通的其中一条橡皮管。
4、记录正常呼吸的曲线中吸气、呼气的波形方向，观察记录曲线的节律、频率与幅度，作为后续曲线的正常对照。
5、增大无效腔：将一根50cm长胶管连接在气管插管的一侧开口，夹闭另一侧开口。
观察家免的呼吸运动，记录呼吸曲线的变化。
待呼吸发生明显改变后撤除胶管，使呼吸恢复正常进行下一项实验。
6、增加吸入气中CO2/N2含量：夹闭气管插管的一侧开口，将装有CO2/N2的气袋管口对准气管插管的另一侧开口(中间留有2~3cm间隙)，缓慢增加吸入气中CO2/N2含量，观察家兔的呼吸运动，记录呼吸曲线的变化。
撤除CO2/N2气袋后观察呼吸恢复正常的过程。
7、血液中酸性物质增加对呼吸运动的影响：由耳缘静脉注射3%乳酸2ml，观察家兔的呼吸运动，记录呼吸曲线的变化。
待呼吸恢复正常后进行下一项实验。
8、迷走神经在呼吸作用中的作用：剪断一侧迷走神经，观察呼吸曲线的变化；再切断另一侧迷走神经，观察家兔的呼吸作用，记录呼吸曲线的变化。
四、实验结果图1正常呼吸图2增大无效腔（家兔呼吸张力增加，呼吸频率增加，呼吸加深）图3吸入二氧化碳（反射性地使家兔呼吸运动加深加快）图4吸入氮气（家兔呼吸运动增强）图5注射乳酸（家兔呼吸运动加深加快）图6剪断一侧迷走神经（不明显的慢而深的呼吸运动）图7剪断两侧迷走神经（明显的慢而深的呼吸运动）五、实验讨论呼吸运动调节机制有哪些？答：机体正常呼吸运动的维持，是由于体内存在完善的呼吸调节机制，使得呼吸有节律的进行，以适应机体代谢的需要。
兔子呼吸调节实验报告(3篇)
第1篇一、实验目的1. 观察兔子呼吸运动的基本规律，包括呼吸频率、节律和幅度。
2. 探讨影响兔子呼吸运动的各种因素，如无效腔、二氧化碳浓度、缺氧等。
3. 分析迷走神经在兔子呼吸运动调节中的作用。
4. 掌握气管插管术和神经血管分离术等基本操作。
二、实验原理呼吸运动是呼吸中枢节律性活动的反映。
在不同生理状态下，呼吸运动所发生的适应性变化有赖于神经系统的反射性调节，其中较为重要的有呼吸中枢、肺牵张反射以及外周化学感受器的反射性调节。
因此，体内外各种刺激，可以直接作用于中枢部位或通过不同的感受器反射性地影响呼吸运动。
三、实验材料与器材1. 实验动物：家兔2. 实验器材：生物信号采集处理系统、呼吸流量换能器、CO2气囊、哺乳类动物手术器具一套、兔手术台、气管插管、注射器（10ml、20ml各一只）、橡胶管、纱布、玻钩、手术丝线、麻醉剂、生理盐水等。
四、实验步骤1. 实验动物准备：选择健康成年家兔，称重后进行麻醉。
2. 麻醉与固定：按照2ml/kg取麻醉剂戊巴比妥钠，从兔耳缘静脉缓慢注入麻醉，然后将家兔固定在手术台上。
3. 颈部手术：颈部剪毛，于颈部正中切开皮肤，钝性分离肌肉组织，暴露并分离气管。
在3-4气管环之间切开气管，做一倒T形切口，气管插管后用手术丝线固定，两侧迷走神经穿线备用。
4. 连接仪器：将呼吸流量换能器连接在气管插管上，并连接生物信号采集处理系统。
5. 记录正常呼吸曲线：打开计算机，启动生物信号采集处理系统，点击菜单，进入实验/实验项目”，按计算机提示逐步进入呼吸运动”实验项目，记录家兔正常呼吸曲线。
6. 增加无效腔：通过改变气管插管长度，增加无效腔，观察呼吸曲线的变化。
7. 增加二氧化碳浓度：使用CO2气囊，向气管插管中注入一定浓度的二氧化碳，观察呼吸曲线的变化。
8. 轻度缺氧实验：使用低氧气体，向气管插管中注入一定浓度的氧气，观察呼吸曲线的变化。
9. 剪短迷走神经：剪断一侧迷走神经，观察呼吸曲线的变化。
家兔呼吸运动调节,捉拿时应注意哪些事项
家兔呼吸运动调节，捉拿时应注意哪些事项回答PCO2水平：主要通过刺激中枢化学感受器，然后再兴奋延髓呼吸中枢；或者是刺激周围化学感受器，通过窦神经和主动脉神经传入延髓呼吸中枢，使呼吸运动加强。
H+浓度：血液中H+浓度增加，呼吸加深加快；H+浓度降低，呼吸受到抑制。
一、家兔呼吸运动调节1、PCO2水平（1）一定水平的PCO2（二氧化碳分压，指溶解在血液中的二氧化碳分子产生的压力），对于保持呼吸和呼吸中枢的兴奋性是必要的。
（2）主要通过刺激中枢化学感受器，然后再兴奋延髓呼吸中枢；或者是刺激周围化学感受器，通过窦神经和主动脉神经传入延髓呼吸中枢，使呼吸运动加强。
2、H+浓度（1）血液中H+浓度增加，呼吸加深加快；H+浓度降低，呼吸受到抑制。
（2）当血液中的H+浓度升高时就会刺激到外周化学感受器和中枢化学感受器（中枢化学感受器对于H+的敏感性比周围要高，约为25倍左右），但是H+不容易通过血-脑屏障，因此，主要通过刺激外周化学感受器，使膈肌、肋间外肌收缩，从而使肺通气量增加，加快呼吸。
3、迷走神经（1）迷走神经对于呼吸节律的产生和调节起着重要的作用。
（2）当切断一侧迷走神经以后，会阻碍到该侧迷走神经的神经冲动传递，从而影响到呼吸运动的调节，但随后因另一侧迷走神经为混合神经，此时会起到呼吸调节的作用，加速呼气和吸气的交替（即呼吸频率加快）。
但如果切断两侧的迷走神经后，兔子的呼吸运动变得慢而深。
二、捉拿家兔时应注意哪些事项1、捉拿家兔时，应当注意家兔的爪子，避免被其抓伤。
2、捉拿家兔时不宜抓取家兔的耳朵部位，容易导致兔子耳朵受伤；不宜抓取兔子的腰部和四肢，容易伤到肾脏，造成皮下出血。
3、捉拿家兔时，一般用右手抓住家兔的脊背靠近颈部的皮肤，轻轻提起，然后用左手托住家兔的臀部，呈坐位姿势，让家兔的体重主要落在左手上。
家兔呼吸运动的调节
流量法记录呼吸运动的装置
观察项目
项目 前 后 增加吸入气 前 CO2 后 延长气道 前 后 刺激一侧迷 前 走神经 后 注射乳酸 切断该侧迷 走神经 刺激迷走神 经中枢端 前 后 前 后 呼吸深度 呼吸频率（次/min） 通气量 变化趋势
刺激迷走神 前 经外周端 后
注意事项
1．麻醉药要一次性注入；先快后慢；反射消失时即 停止；时刻观察动物呼吸状况。 2．气管务必钝性分离，否则很容易引起大出血。 3．行气管插管前，应清理气管的出血。 4．如呼吸流量曲线毛糙，应用棉签清理气管。 5．原始曲线的截取：应包含刺激之前、刺激、刺激 之后的三部分曲线，刺激之前约占1/4至1/3。 6．刺激时务必做标记，持续刺激应有开始和结束。 7．注射乳酸时，要避免乳酸外漏，以免动物挣扎。
– 刺激器：正电压，连续单刺激，强度3~5V，频 率30 Hz。
操作技术要点
• 麻醉：动物称重→耳缘静脉注射麻醉
• 气管分离：剪毛（备水碗）切开5～7cm • 纵向分离皮下组织和肌层（钝性分离）， 暴露颈部气管及两侧的左、右颈总动脉鞘
• 分离迷走神经：用玻璃分针分离两侧迷走 神经和右侧颈总动脉，穿线2根备用.
3条神经中，迷走神经最粗，交感神经较细，减压神经最细
呼吸Байду номын сангаас动的记录方法
A. 呼吸流量记录法
参数：通道1记录流量，灵敏度2.5 mL。
B. 膈肌运动记录法
切开剑突部位的皮肤，暴露剑突软骨与骨柄。剪 断剑突骨柄。提起剑突，将缚有长线的金属钩钩 于剑突，另一端连接张力换能器。
C. 胸腹运动记录法
找到胸腹部呼吸运动最明显处，以手术缝合线穿 过该部皮肤并结扎，另一端接张力换能器
家兔呼吸运动的调节
家兔呼吸运动调节解读
家兔呼吸运动的调节实验目的：1.用气管插管描记呼吸流量间接反映家兔呼吸运动（呼吸频率、节律、幅度）的方法，研究吸入二氧化碳、静脉注射乳酸溶液、增大解剖无效腔以改变血液中二氧化碳浓度、氧气浓度、[H+]和气道阻力、切断颈部迷走神经、电刺激迷走神经中枢端对呼吸运动的影响并初步探讨其作用部位，并分析机制。
2.掌握气管插管术和神经血管分离术。
实验材料：对象：家兔；试剂：20g/L 乳酸溶液，氨基甲酸乙酯；仪器：RM6240生物信号采集系统，手术器械一套，兔手术台，T型气管插管，注射器，50cm长橡皮管一条，CO2气袋，丝线，铁架台，婴儿秤，呼吸换能器，电刺激连线。
实验方法：1.麻醉固定：家兔称重后，将氨基甲酸乙酯以5ml/kg 的体重剂量由兔耳缘静脉内缓慢注入，注意观察家兔的反应。
待麻醉后，将家兔仰卧固定于兔手术台上，先后固定四肢及兔头。
2．手术：剪去家兔颈部的被毛，沿颈部正中线作一长6～7cm的切口，用止血钳钝性分离皮下组织，暴露并游离气管，并于气管下穿线备用。
在气管两侧肌肉深面颈动脉鞘内分离迷走神经，并在其下穿线备用。
在甲状软骨下第4～5个气管软骨处作一“⊥”形切口。
将T型气管插管向肺的方向插入气管内，用预留备用线线结扎固定。
手术完毕后用纸巾擦拭手术伤口部位。
3．观察准备：用皮管连接气管插管和呼吸换能器。
打开呼吸换能器，启动计算机RM6240生物信号采集系统，点击“实验”菜单，选择“呼吸运动调节”，双击一通道，调节增益、采样参数，使基线归零，令图形位于屏幕中央，便于观察。
4．观察项目（1）记录正常呼吸曲线作为对照，辨认曲线上呼气、吸气的波形方向。
（2）在气管插管一个侧管上接一根长50cm胶管（流量法：接通气口），观察和记录呼吸运动的变化。
（3）增加吸入气中CO2浓度：待呼吸曲线恢复正常，将装有CO2气袋的皮管口移近气管插管的侧管，打开皮管夹子，使吸入气中含有较多的CO2。
记录并观察吸入高浓度的CO2对呼吸运动的影响。
实验9-家兔呼吸活动的调节
实验9 家兔呼吸活动的调节一、实验目的1．对家兔进行全身麻醉、进行兔颈部急性手术；2．学习记录家兔呼吸运动的方法；采用呼吸传感器直接记录家兔的呼吸频率与幅度3. 研究在增加呼吸无效腔、CO2、乳酸、缺氧呼吸活动的改变，观察肺牵张反射。
二、实验原理呼吸运动是一种节律性的运动，其深度和频率受体内外因素影响，比如劳动时，呼吸加深加快，肺通气量增加，摄取更多的氧气，排出更多的二氧化碳，与代谢水平相适应。
呼吸的节律性主要来源于基本呼吸中枢脑桥和延髓，并受体内外各种因素影响。
呼吸中枢分布于大脑皮层，间脑，桥脑，延髓，脊髓等部位，各级部位相互配合，共同完成呼吸节律性运动。
呼吸中枢可接受来自不同感受器的传入冲动，反射性地影响呼吸运动，以适应机体需要。
三、实验材料和器材1、实验材料：家兔2、实验器材：手术台、常用手术器械、生理信号采集处理系统、呼吸传感器、止血钳、气管插管、20ml及1ml注射器、橡皮管、刺激电极、20%氨基甲酸乙酯、CO2、乳酸、生理盐水、棉线、纱布。
四、实验步骤（一）准备家兔1、家兔的麻醉（1）取一只家兔，称重之后，用剪刀剪去耳缘静脉上的毛。
（2）用20ml注射器由耳缘静脉缓慢推注25％氨基甲酸乙酯(1g／kg体重)进行麻醉。
要从远心端注射，注射时速度要慢，并随时观察动物情况。
当动物四肢松软、呼吸变深变慢、角膜反射迟钝时，表明动物已被麻醉，即可停止注射。
2.家兔的固定当兔子已经麻醉成功后，将兔子固定在手术台上，四肢都要固定好，并且用线将门牙也绑好，固定在铁架上。
3、剪毛用剪刀将兔子颈部的毛小心地剪去，注意不要剪到肌肉。
4、切开皮肤一手的拇指和示指按住家兔颈部两侧，另一手持手术刀，在紧靠喉头下缘，沿颈部正中线作一长约5～7cm的皮肤切口。
然后用止血钳或手术剪分离皮下结缔组织后，夹住少许皮肤并向两侧分开创口。
5、分层分离肌肉（1）术者与助手分别持止血钳轻轻提起少许气管正上方的肌肉，然后用手术剪在两止血钳夹住的肌肉之间，纵向将肌肉层剪开一个小口。
呼吸运动调节实验报告（五篇）
呼吸运动调节实验报告（五篇）第一篇：呼吸运动调节实验报告呼吸运动的调节【实验目的】1、学习呼吸运动的记录方法2、观察血液理化因素改变对家兔呼吸运动的影响3、了解肺牵张反射在呼吸运动调节中的作用【实验对象】家兔重量：1.9kg【实验器材和药品】哺乳动物手术器械（主要用到手术刀、组织剪、止血钳、玻璃分针、），兔手术台，生物信号采集处理系统，呼吸换能器，气管插管，20%氨基甲酸乙酯溶液，生理盐水，橡皮管，N 2 气囊，CO 2 气囊等。
【实验方法与步骤】1.取家兔并称重，由家兔腹腔缓慢注入20%氨基甲酸乙酯溶液10ml，（因注射过程中出现差错，后补注入20%氨基甲酸乙酯溶液8ml）待家兔麻醉后，仰卧用绳子固定于手术台上。
2.剪去颈前部兔毛，颈前正中用手术刀切开皮肤5-7cm，少量出血，用纱布蘸取生理盐水擦拭。
分离气管并穿线备用。
分离颈部双侧迷走神经，穿线备用。
以倒T 型剪开气管，有少量出血，止血后用镊子清理其中异物，做气管插管。
手术完毕后，用温生理盐水纱布覆盖手术范围。
3.实验装置（1）将呼吸换能器与生物信号采集处理系统的相应通道相连接，橡皮管连接气管插管和呼吸换能器。
（2）打开计算机，启动生物信号采集处理系统，设置好参数，开始采样。
（3）采样项目①缺氧对呼吸运动的影响：方法同上，将氮气气囊管口与气管插管的通气管用手掌罩住，打开气囊，使吸入气中含较多的氮气，造成缺氧，观察呼吸运动的变化，移开气囊和手掌，待呼吸恢复正常后进行下一步实验。
②CO 2 对呼吸运动的影响：将二氧化碳气囊管口与气管插管的通气管用手掌罩住，打开气囊，使吸入气中含较多的二氧化碳，观察呼吸运动的变化，移开气囊和手掌，待呼吸恢复正常后进行下一步实验。
③增大无效腔对呼吸运动的影响：将橡皮管连接于气管插管的一个侧管上，观察此时呼吸运动的变化。
变化明显后，去掉橡皮管，观察呼吸运动的恢复过程。
④迷走神经在呼吸运动调节中的作用：先剪断一侧迷走神经，观察呼吸运动的变化，再剪断另一侧迷走神经，观察呼吸运动又有何变化。
家兔呼吸运动的调节.实验讨论
家兔呼吸运动的调节实验讨论：1、C02浓度增加使呼吸运动加强C02是调节呼吸运动最重要的生理性因素，它不但对呼吸有很强的刺激作 用，并且是维持延髓呼吸中枢正常兴奋活动所必须的。
每当动脉血中 PC02增高 时呼吸加深加快，肺通气量增大，并可在一分钟左右达到高峰。
由于吸入气中 C02浓度增加，血液中PC02增加，C02透过血脑屏障使脑脊液中 C02浓度增 多，C02十出0—》H 2C03 —》HC03 + H + C02通过它产生的 H +刺激延髓化学感受器，间接作用于呼吸中枢，通过呼吸机的作用使呼吸运动 加强，此外，当PC02增高时，还刺激主动脉体和颈动脉体的外周化学感受器， 反射性地使呼吸加深加快。
2、缺氧使呼吸运动增加吸人纯氮气时，因吸人气中缺 02，肺泡气P02下降，导致动脉血中P02下 降，而PC02却基本不变（因C02扩散速度快）随着动脉血中 P02的下降，通 过刺激主动脉体和颈动脉体外周化学感受器延髓的呼吸中枢兴奋，隔肌和肋间外 肌活动加强，反射性引起呼吸运动增加。
制作用而表现为呼吸增强 3、增大呼吸无效腔对呼吸运动的影响增加气道长度后家兔呼吸张力增加，呼吸频率增加。
增加气道长度等于增 加无效腔，增加无效腔使肺泡气体更新率下降，引起血中 PC02、P02下降，刺 激中枢和外周化学感受器引起呼吸运动会加深加快； 另外，气道加长使呼吸气道 阻力增大，减少了肺泡通气量，反射性呼吸加深加快；增加家兔气道长度可使家 兔通气量增加，呼吸频率加快。
此外，缺02对呼吸中枢的直接效应是抑制并随缺02程度的加深而逐渐加 强。
所以缺02程度不同，其表现也不一样。
在轻度缺02，通过颈动脉体等的外 周化学感受器的传人冲动对呼吸中枢起兴奋作用大于缺 02对呼吸中枢的直接抑4、静脉注人乳酸（血液中H+增高）静脉注人乳酸后，呼吸运动加深加快。
因为乳酸改变了血液PH,提高了血中H+浓度。
H+是化学感受器的有效刺激物H+可通过刺激外周化学感受器来调节呼吸运动，也可直接刺激中枢化学感受器，但因血中H+不容易透过血脑屏障直接作用于中枢化学感受器，因此，血中H+对中枢化学感受器的直接刺激作用不大，也较缓慢。
家兔呼吸运动的调节
家兔呼吸运动的调节实验目的 1. 观察血液中P CO2、P O2的改变对家兔呼吸运动（频率、节律、幅度）的影响，探讨其作用机制。
2.掌握气管插管术实验动物家兔，体重2.5～3.5kg，性别不拘。
实验药品20%乌拉坦、1%普鲁卡因、氮气、二氧化碳、50/L哌替啶，250g/L尼可刹米实验器材手术台、手术器械、Y型玻璃气管插管、橡皮管、20ml和1ml注射器、呼吸流量换能器、气囊、生物信号采集处理系统实验方法 1. 固定呼吸换能器于铁支架上，连接生物信号采集系统通道3.2. 在系统软件中找到呼吸系统，进入实验信号记录状态，调节仪器参数。
3.家兔称重，按1g/kg体重注射20%乌拉坦麻醉，麻醉速度不宜过快，同时观察家兔结膜反射、瞳孔大小、呼吸心跳等生命体征。
4.颈前正中切开皮肤6～8cm，钝性分离软组织及颈部肌肉，暴露气管。
止血钳钝性分离气管，下穿结扎线备用。
5.环状软骨下约1cm做倒T形剪口，用棉签除去切口处及气管内的血液和分泌物。
轻轻将气管插管由剪口向肺端插入，注意不要损伤气管粘膜引起出血。
结扎插管口固定，结扎切口头端止血。
6.记录一段正常的呼吸曲线作为对照，辨认呼气和吸气的波形方向。
开始以下实验项目：①用小烧杯置于气管插管开口前，将氮气气囊的导管口平行于气管插管使气体冲入烧杯。
动物吸入氧分压较低的气体，观察和记录家兔呼吸运动的变化。
②待呼吸曲线恢复正常后，按照上一步的方法，打开二氧化碳气囊使家兔吸入二氧化碳分压较高的气体。
观察记录呼吸运动的变化；呼吸恢复平缓后，再次给予较长时间的二氧化碳，观察高浓度的呼吸抑制，一旦出现抑制波形立即关闭二氧化碳气囊，拿开烧杯。
③待呼吸曲线恢复正常后，由兔耳缘静脉注射50g/L哌替啶，注射速度缓慢；同时密切观察家兔呼吸曲线，一旦出现抑制立即停止给药。
出现严重明显的抑制波形时，由耳缘静脉缓慢注射250g/L既定量尼可刹米。
观察并记录呼吸变化，等待呼吸恢复平稳。
7. 整理实验记录，分析实验现象和结果。
家兔呼吸运动的调节
呼气末向肺内抽气
呼气末抽气
切断迷走N 后实验结果?
注意事项
1.麻醉要适量
2.分离剑突时不要损伤膈小肌，不要造 成气胸
3.打开气瓶时要缓慢松开旋钮 4.给乳酸时避免乳酸外漏引起刺激反应
5.充气和抽气时要掌握好时间点
6.注意对照呼吸曲线的记录
实验后处理
结果：
各处理因素对呼吸运动的影响 （打印各因素处理前后呼吸运动曲线图）
实验七
家兔呼吸运动的调节
实验原理 实验步骤
注意事项 实验后处理
呼吸运动
是一种节律性的的活动，由呼吸肌节律性 收缩舒张引起的胸廓扩大和缩小。 膈肌的收缩和舒张在呼吸运动中起重要作用 家兔膈小肌与剑突相连
吸气
呼吸运动的调节
呼吸节律的形成
呼吸中枢 呼吸节律的形成---吸气切断机制
呼 吸 节 律 的 形 成
脑桥PBKF核群 呼吸调整中枢（抑制吸气）
+
延髓(基本呼吸中枢) 中枢吸气活动发生器 吸气神经元
+ +
-
吸气切断机制
+
脊髓（呼吸肌运动神元） 迷走神 经
+
吸气肌
+
+
吸气 肺扩张 肺牵张感受器
PO2
+
+
[H+]
化学感受性反射
窦神经 迷走神经
外周化学感受器 (颈动脉体和主动脉体）
呼吸的反射性调节
化学感受性呼吸反射 肺牵张反射 呼吸肌本体感受性反射
实验步骤
– 麻醉动物(3%戊巴比妥钠1ml/kg)，颈部手术， 气管插管，分离两侧迷走神经
– 游离剑突，连接张力换能器
家兔呼吸运动的调节
家兔呼吸运动的调节【实验目的】1、观察血液中化学因素改变对家兔的呼吸运动（呼吸频率、节律、幅度）的影响。
2、观察迷走神经在家兔呼吸运动调节中的作用。
【摘要】目的：观察血液中化学因素改变对家兔呼吸运动（呼吸频率、节律、幅度）的影响，初步探讨其作用部位,并分析机制。
观察迷走神经在家兔呼吸运动中的作用，初步探讨其机制。
掌握气管插管术和神经血管分离术。
方法：手术分离家兔气管。
结果：血液中化学因素改变使得家兔呼吸运动变快变深。
切断一侧迷走神经和两侧迷走神经，使得家兔的呼吸运动变慢变深。
给予迷走神经电刺激，使得家兔的呼吸运动变浅变快。
结论：呼吸运动是呼吸肌的舒缩运动，是呼吸肌（胸壁上的肋间肌和隔肌）在神经系统控制下进行的有节律的收缩和舒张造成的。
膈肌的收缩活动受来自中枢的传出神经支配，传出冲动的节律与频率，影响膈肌的收缩节律、频率与强度。
人体及高等动物的呼吸运动所以能持续地节律性地进行，是由于体内调节机制的存在。
体内、外的各种刺激，可以直接作用于中枢或不同的感受器，反射性地影响呼吸运动，以适应机体代谢的需要。
肺牵张反射是保证呼吸运动节律的机制之一。
血液中CO2分压的改变，通过对中枢性与外周性化学感受器的刺激及反射性调节，是保证血液中气体分压稳定的重要机制。
【关键词】呼吸运动、调节【实验对象】健康家兔一只【实验器材和药品】CO2、氨基甲酸乙酯、乳酸、呼吸换能器、微机生物信号采集处理系统。
【实验步骤】1、麻醉固定：家兔称重后，按1g/kg体重计量耳缘静脉注射200g/L氨基甲酸乙酯。
带家兔麻醉后，将其仰卧，先后固定四肢及兔头。
2、手术：剪去颈前被毛，颈前正中切开皮肤6—7cm，直至下颌角1.5cm，用止血钳钝性分离软组织级颈部肌肉，暴露气管及与气管平行左右的血管神经鞘，细心分离两侧鞘膜内迷走神经，在迷走神经下穿线备用。
分离气管，在气管下穿粗线备用。
3、气管插管：在环状软骨下约1cm处，倒做T形剪口，气管插管由剪口处向肺部插入，插入时动作应轻巧，避免损伤气管粘膜引起出血，用一粗棉线将插管口结扎固定，另一棉线在切口的头端结扎止血。
实验28-家兔呼吸运动的调节
实验28 家兔呼吸运动的调节浙江中医药大学1.摘要目的观察血液中化学因素（PCO2、PO2、[H﹢]）改变对家兔呼吸频率、节律、通气量的影响及机制。
观察迷走神经在家兔呼吸运动调节中的作用及机制。
学习气管插管术和神经血管分离术。
方法通过增大CO2分压，增大无效腔，快速注射2%乳酸，先后切断两侧迷走神经，以及电刺激迷走神经中枢端，观察呼吸运动的改变情况。
结果增大无效腔气量、提高PCO2、注射乳酸均可使家兔呼吸加深加快，而剪断一侧及两侧迷走神经、电刺激迷走神经中枢端则使呼吸变浅、频率变慢。
结论增加PCO2，增大无效腔，快速注射乳酸后，可使家兔通气量、呼吸频率及平均呼吸深度明显增加；剪断一侧迷走神经对呼吸运动影响不大，剪断双侧迷走神经，呼吸变慢变深。
2.材料和方法2.1材料家兔；CO2，氨基甲酸乙酯，乳酸；呼吸换能器；微机生物信号采集处理系统。
2.2方法2.2.1实验系统连接及参数设置用胶管连接流量头与气管插管，流量头连接呼吸流量换能器。
呼吸换能器输出线连接微机生物信号处理系统。
打开RM6240系统：点击“实验”菜单，选择“呼吸运动调节”，仪器参数：通道时间常数为直流，滤波频率30Hz，灵敏度10cmH2O(或50ml/s)，采样频率800Hz，扫描频率1s/div。
连续单刺激方式，刺激强度5-10V，刺激波宽2ms,刺激频率30Hz。
2.2.2麻醉固定家兔称重后，按1g/kg体重剂量耳缘静脉注射200g/L氨基甲酸乙酯。
待兔麻醉后，将其仰卧，先后固定四肢及兔头。
2.2.3手术剪去颈前被毛，颈前正中切开皮肤6-7cm，直至下颌角上1.5cm，用止血钳钝性分离组织及颈部肌肉，暴露气管及与气管平行的左、右血管神经鞘，细心分离两侧鞘膜内迷走神经，在迷走神经下穿线备用。
分离气管，在气管下两根粗棉线备用。
2.2.4气管插管在甲状软骨下约1cm处，做倒“T”形剪口，用棉签将气管切开及气管里的血液和分泌物擦净，气管插管由剪口处向肺端插入，插时应动作轻巧，避免损伤气管粘膜引起出血，用意粗棉线将插管口结扎固定，另一棉线在切口的头端结扎止血。
家兔呼吸运动的调节
家兔呼吸运动的调节实验讨论：1、CO2浓度增加使呼吸运动加强CO2是调节呼吸运动最重要的生理性因素，它不但对呼吸有很强的刺激作用，并且是维持延髓呼吸中枢正常兴奋活动所必须的。
每当动脉血中PCO2增高时呼吸加深加快，肺通气量增大，并可在一分钟左右达到高峰。
由于吸入气中CO2浓度增加，血液中PCO2增加，CO2透过血脑屏障使脑脊液中CO2浓度增多，CO2十H2O→ H2CO3→ HCO3-＋H+ ，CO2过它产生的H+刺激延髓化学感受器，间接作用于呼吸中枢，通过呼吸机的作用使呼吸运动加强，此外，当PCO2增高时，还刺激主动脉体和颈动脉体的外周化学感受器，反射性地使呼吸加深加快。
2、缺氧使呼吸运动增加因吸入气中缺O2，肺泡气PO2下降，导致动脉血中PO2下降，而PCO2却基本不变（因CO2扩散速度快）随着动脉血中PO2的下降，通过刺激主动脉体和颈动脉体外周化学感受器延髓的呼吸中枢兴奋，隔肌和肋间外肌活动加强，反射性引起呼吸运动增加。
此外，缺O2对呼吸中枢的直接效应是抑制并随缺O2程度的加深而逐渐加强。
所以缺O2程度不同，其表现也不一样。
在轻度缺O2，通过颈动脉体等的外周化学感受器的传人冲动对呼吸中枢起兴奋作用大于缺O2对呼吸中枢的直接抑制作用而表现为呼吸增强。
3、增大呼吸无效腔对呼吸运动的影响增加气道长度后家兔呼吸张力增加，呼吸频率增加。
增加气道长度等于增加无效腔，增加无效腔使肺泡气体更新率下降，引起血中PCO2、PO2下降，刺激中枢和外周化学感受器引起呼吸运动会加深加快；另外，气道加长使呼吸气道阻力增大，减少了肺泡通气量，反射性呼吸加深加快；增加家兔气道长度可使家兔通气量增加，呼吸频率加快。
4、静脉注人乳酸（血液中H+增高）静脉注人乳酸后，呼吸运动加深加快。
因为乳酸改变了血液PH，提高了血中H+浓度。
H+是化学感受器的有效刺激物H+可通过刺激外周化学感受器来调节呼吸运动，也可直接刺激中枢化学感受器，但因血中H+不容易透过血脑屏障直接作用于中枢化学感受器，因此，血中H+对中枢化学感受器的直接刺激作用不大，也较缓慢。
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家兔呼吸运动的调节
【目的要求】
1.学习测定兔呼吸运动的方法。
2.学习记录膈肌放电的方法。
3.观察并分析肺牵张反射以及影响呼吸运动的各种因素。
【实验基本原理】
呼吸运动是呼吸肌的舒缩运动，是呼吸肌（胸壁上的肋间肌和隔肌）在神经系统控制下进行的有节律的收缩和舒张造成的。
膈肌的收缩活动受来自中枢的传出神经支配，传出冲动的节律与频率，影响膈肌的收缩节律、频率与强度.
人体及高等动物的呼吸运动所以能持续地节律性地进行，是由于体内调节机制的存在。
体内、外的各种刺激，可以直接作用于中枢或不同的感受器，反射性地影响呼吸运动，以适应机体代谢的需要。
肺牵张反射是保证呼吸运动节律的机制之一。
血液中CO2分压的改变，通过对中枢性与外周性化学感受器的刺激及反射性调节，是保证血液中气体分压稳定的重要机制。
【实验动物与器材】
实验动物：
家兔
实验工具：
兔体手术台、常用手术器械、张力传感器、引导电极、计算机采集系统、气管插管、注射器、橡皮管
实验试剂：20%氨基甲酸乙酯、生理盐水
【实验方法与步骤】
1.麻醉→背位固定→剪去颈部与剑突腹面的被毛→切开颈部皮肤，分离气管并插入气管插管→分离出双侧迷走神经，穿线备用。
气管务必分离干净，插管后务必扎紧，避免漏气
2.剑突软骨分离术切开胸骨下端剑突部位的皮肤，并沿腹白线再切开长约2cm的切口。
细心分离剑突表面的组织，并暴露剑突软骨与骨柄。
提起剑突，可见剑突随膈肌的收缩而自由运动。
3.将系有剑突的金属钩钩于剑突中间部位，线的另一端系于张力传感器的应变梁上。
4.开启计算机采集系统，接通张力传感器的输入通道，调节记录系统，使呼吸曲线清楚地显示在显示器
5.记录膈肌放电.
【实验观察项目】
（1）记录正常的呼吸运动、膈肌放电曲线，注意分清呼气和吸气运动与曲线的方向。
（2）增加无效腔对呼吸运动的影响将长约
0.5m、内径1cm的橡皮管连于气管插管的一个侧管上，用止血钳夹闭另一侧管，使无效腔增加，观察并记录呼吸运动的改变，一旦出现明显变化，则立即打开止血钳，去除橡皮管，待呼吸恢复正常。
（3）增加气道阻力对呼吸运动的影响：
将气管插管的两个侧管同时夹闭数秒，观察呼吸变化。
(4)肺牵张反射在气管插管的一个侧管上，连通一个20ml注射器，并吸入20ml空气。
待呼吸运动平稳后，在吸气末用相当正常呼吸时三个呼吸节律的时间，徐徐向肺内注入20ml空气，同时夹闭气管插管的另一侧管。
注意观察呼吸节律的变化及呼吸运动的状态。
实验后立即打开夹闭的侧管，待呼吸恢复正常。
同法，与呼气末用注射器抽取肺内气体，观察呼吸的状态有何变化。
（5）待呼吸运动恢复正常后，同时结扎颈部双侧迷走神经，观察并记录呼吸运动的变化。
（6）剪断双侧迷走神经，分别刺激迷走神经中枢端与外周端，观察并记录呼吸运动。
【实验结果以及分析】
实验评注：
呼吸中枢产生的节律性电活动,通过脊髓发出的膈神经和肋间神经传导到膈肌和肋间外肌,使之收缩和舒张产生规律的呼吸运动。
膈肌位于胸腔与腹腔之间,构成胸腔的底。
膈肌为主要的呼吸肌,收缩时,膈肌下降,胸腔容积增大,产生吸气;舒张时,膈肌上升恢复原位,胸腔容积减小,表现为呼气。
膈神经或膈肌的放电情况能反映延髓呼吸中枢活动的强弱以及呼吸运动的强弱。
所以膈肌放电的节律性应与呼吸的节律性是一致的,实验结果验证了这一点。
上图为张力传感器连于剑突出测得的张力变化曲线，反映的主要的是膈肌的变化，上升为收缩，下降为舒张。
整体趋势和膈肌放电的变化同
无效腔包括解剖无效腔、生理无效腔。
即不能进行气体交换的呼吸道。
解剖无效腔包括从口、鼻至细支气管的整个呼吸道，既无呼吸上皮，又无肺循环血液供应，不能参与肺泡与血液之间的交换。
每次吸气时，首先进入肺泡的是上次呼气之末存在呼吸道内的肺泡气，然后才是新吸入的空气；每次呼气时，首先呼出的是上次呼气之末充盈于呼吸道内的吸入气，然后才是肺泡气。
因此，每次呼吸中最后吸入的充盈于呼吸道的这部分气体，恰是最先呼出的、未与肺泡气混合、未参与气体交换的气体，其量为解剖无效腔的容量。
实验中通过插管的方式增大无效腔，也就是减小了进入肺泡的潮气量，即每次的有效气体更新变小。
效果促使O2分压下降，CO2分压上升；使其反射性
的调节使呼吸加深加快。
所以膈肌放电的变化幅度加大，频率有微量增大。
反映到膈肌的收缩曲线，由于收缩频率的增大，为了维持正常的肺部通气量，所以收缩强度减弱。
用夹闭双侧侧管的方式增大气道阻力实际上是在正常的呼吸中忽然阻断整个呼吸系统和外界的联系。
直接影响是整个呼吸系统中的氧气分压降低，二氧化碳分压升高，原因是，氧气无法及时供给反而在不断消耗，而二氧化碳的产生在不断的占据整个气压环境。
二氧化碳的浓度升高会引起内环境的氢离子浓度增大，刺激呼吸中枢，使得呼吸加强加深，在膈肌放电中反映的就是呼吸频率的减弱，而从张力感受图中反映呼吸肌收缩加强，表现在动物体上就是呼吸加深。
由于收缩时间的延长，表面上看是呼吸速率减弱。
所有的变化是在一个相对封闭的环境中，二氧化碳的溶解度较大，环境的压力会逐渐减弱，时间长了就会影响肺部的功能，所以要在很短的时间内完成实验，要将时间控制在数秒内。
该实验是向肺部吹起造成的肺部牵张反射。
向肺部吹气相当于使肺部发生扩张，这种扩张刺激了气管平滑肌的牵张感受器，冲动由迷走神经传入延髓，抑制吸气神经元，切断吸气，引起被动呼气。
所以如果这次实验注入气体过久，气量过大，可能会使得呼吸停止在呼气的位置。
实验结果也显示了由于增大肺部的体积引起的膈肌收缩力的减弱和呼吸频率的减小。
该实验是从肺部吸气造成的肺部牵张反射。
从肺部吸气造成了肺部的萎缩，信号通过迷走神经传入呼吸中枢的程度减弱，对于吸气神经元的抑制程度减小，就会引起吸气神经元发生兴奋，增加呼吸的强度。
实验图中显示了从开始抽气到这种变化恢复的过程。
出现了明显的呼吸强度的增大。
总结：
肺牵张反射又叫黑-伯二氏反射，他的作用机理可能呼吸的一种自我调节机制。
一般人正常呼吸时肺牵张反射的作用不大，而在家兔中这种反射的作用效果很明显。
这是由于迷走神经为肺牵张反射的传入神经,参与呼气和吸气之间相互转化并维持呼吸的深度和频率。
剪断两侧迷走神经后,中断了肺牵张反射的传入通路,使肺牵张反射的生理作用减弱,出现吸气过深,呼吸频率变慢。
途中由于出现张力曲线的基线下移使得显示出的收缩曲线幅度没有多少变化，从后面的图中可以比较清楚的看到收缩的强度变大。
而刺激迷走神经,促进呼气与吸气相互转化,呼吸频率就加快。
刺激剪断的迷走神经近心端（远中枢端），发现收缩曲线以及呼吸频率没有什么变化。
原因是刺激迷走神经实际是人为制造肺部的扩张信号，使之通过迷走神经传入呼吸中枢。
由于迷走神经已经剪断，信号传不到中枢，也就成了无效信号，所以图中显示刺激前后没有变化。
注：
由于剪断了双侧迷走神经，机体失去了对呼吸的正常调节机制，所以呼吸速率和强度都无法回到正常水平。
刺激迷走神经的远心端（外周神经端）出现了呼吸强度的明显下降，频率加快。
原因是这是的刺激和中枢之间没有阻碍，所以是有效刺激。
剪断迷走神经的直接后果是失去了中枢的抑制，呼吸加深变慢。
一旦给予刺激，冲动传入延髓抑制了吸气神经元的活动，使得吸气程度部分被抑制，一定程度上引起了被动的呼气，综合起来使得呼吸的速率提高，呼吸的强度减弱。
由于迷走神经的传入神经也是复合神经干，所以在一定范围内这种变化的程度和刺激强度有关。
【实验注意事项】
1.气管插管内壁必须清理干净后才能进行插管。
2.气流不宜过急，以免直接影响呼吸运动，干扰实验结果。
3.当增大无效腔出现明显变化后，应立即打开橡皮管的夹子，以恢复正常通气。
4.经耳缘静脉注射乳酸要避免外漏引起动物燥动。
5.每一项前后均应有正常呼吸运动曲线作为比较。