脑脊液标本采集(腰穿法)与转运SOP
临床检验标本采集、运输、保存操作规程
临床检验标本米集、运输、保存操作规程目录第一章体液标本的采集、运输、保存操作规程一、尿液标本采集、运输、保存二、脑脊液标本采集、运输、保存三、浆膜腔积液标本采集、运输、保存四、阴道分泌物标本采集、运输五、分泌物革兰阴性双球菌检测标本采集、运输六、精液标本采集、运输、保存七、前列腺液标本采集、运输、保存八、粪便采集、运输、保存第二章血液一般检验的标本采集、运输、保存操作规程一、未梢血标本采集二、静脉血采集、运输、保存第三章生化检验标本采集、运输、保存操作规程第四章免疫学检验标本采集、运输、保存操作规程第五章化学发光免疫分析项目标本采集、运输、保存操作规程第六章血气分析标本采集、运输、保存操作规程第七章凝血功能四项检测标本采集、运输、保存操作规程第八章微量元素检测标本采集、运输、保存操作规程第九章临床微生物学检验标本采集、运输、保存操作规程第一节尿液标本的采集、运输和保存第二节粪便标本的采集、运输和保存第三节上呼吸道标本的采集、运输和保存第四节痰标本的采集、运输和保存第五节化脓和创伤标本的采集、运输和保存第六节脑脊液标本的采集、运输和保存第七节胆汁标本的采集、运输和保存第八节胸水标本的采集、运输和保存第九节腹水标本的采集、运输和保存第十节生殖道标本的采集、运输和保存第十一节血液及骨髓标本的采集、运输和保存第十章液基薄层细胞学检查标本采集、运输、保存操作规程刖百在临床工作中，检验标本的分析结果是临床医生诊断疾病、制订治疗方案的重要依据，而标本采集及送检工作的合格与否直接影响检验结果的真实性，进而影响疾病的诊治工作。
为了进一步提高检验结果的准确性和可靠性，除了要求检验科提高检验质量水平■外，还要求临床医护人员正确采集标本。
为确保标本的正确米集、运输和保存，检验科特编写了临床检验标本米集、运输、保存操作规程，要求医护人员严格按操作规程采集、运输和保存标本。
第一章体液标本的采集、运输、保存操作规程―、尿液标本采集、运输、保存1 .尿液干化学测定：尿液比重、pH值、尿胆原、胆红素、潜血、酮体、蛋白质、白细胞、业硝酸盐、葡萄糖、抗坏血酸。
12-腰椎穿刺术的SOP
腰椎穿刺术的SOP
一、目的：建立腰椎穿刺术标准操作规程，确保腰椎穿刺术的规范性。
二、范围：本规程适用于腰椎穿刺。
三、规程：
（一）术前准备
1.病人准备
（1）解释穿刺的目的意义。
（2）术前排空大小便。
2.物品准备消毒盘、2％普鲁卡因，治疗包，无菌手套，腰穿针，标本瓶等。
3.环境准备清理探视人员，关闭门窗，调节适宜室温。
（二）操作要点
1.协助病人侧卧于硬板床上，背部与床板垂直，低头双手抱膝，脊柱尽量后突。
2.取腰3-4椎间隙为穿刺点，也可取上或下一椎间隙。
3.常规消毒皮肤，带手套，铺洞巾。
4.局麻至皮肤深达韧带，垂直缓慢进针，掌握落空点。
5.放液前接测压器，测初压后，收集2～5ml脑脊液送检查。
6.鞘内注药前应先放出同等量的脑脊液，然后再注入药物。
7.术毕将针芯插入再拔针，敷料覆盖。
（三）术后护理
1.术后协助病人躺好，去枕平卧4～6小时，颅内压高者平卧24小时颅内压低者取头低位。
2.监测生命体征，严密观察病人反应及穿刺点有无出血。
发现异常，及时处理。
四、参考依据：《诊断学》第五版。
五、附件：无。
脑脊液常规检查标准操作手册
脑脊液常规检查标准操作手册1。
目的：建立脑脊液常规检查的标准化操作;2.范围：适用于脑脊液的常规检查(物理检查、蛋白定性、细胞检查）;3。
标本采集：3。
1 标本种类：脑脊液，由临床医师进行腰椎穿刺采集，必要时可从小脑延脑池或侧脑室穿刺获得.3.2 标本要求:将脑脊液分别收集于3个无菌试管中，第一管作细菌培养，第二管作化学分析和免疫学检查，第三管作一般性状及显微镜检查.每管收集1-2毫升。
3。
3 遇高蛋白标本时可采用EDTA K2抗凝。
4.标本储存:立即送检。
5。
标本运输：室温运输。
5.标本拒收标准:污染，久置标本。
6。
器材试剂：5％苯酚溶液：取纯苯酚25ml，加蒸馏水至500ml，用力振摇，置37℃温箱内1—2天,待完全溶解后，置棕色瓶内保存.细胞计数板;显微镜。
7.物理检查：7。
1 目测脑脊液颜色与透明度：（1)观察颜色。
(2）观察透明度。
（3）观察凝块或薄膜：收集脑脊液于试管内,静置12-24小时,正常脑脊液不形成薄膜、凝块和沉淀物。
7.2 结果判断与分析：7。
2.1颜色：正常脑脊液是无色透明的液体。
在病理情况下，脑脊液可呈不同颜色改变：(1）红色：常由于各种出血引起。
脑脊液中出现多量的红细胞,主要由于穿刺损伤出血、蛛网膜下腔或脑室出血引起。
前者在留取三管标本时，第一管为血性，以后两管颜色逐渐变淡，红细胞计数结果也依次减少，经离心后上清液呈无色透明.当蛛网膜下腔或脑室出血时,三管呈均匀红色,离心后上清液显淡红色或黄色。
红细胞在某些脑脊液中5分钟后，即可出现皱缩现象，因此红细胞皱缩现象不能用以鉴别陈旧性或新鲜出血。
(2)黄色:可因出血、梗阻、郁滞、黄疸等引起。
陈旧性蛛网膜下腔或脑室出血，由于红细胞缺乏蛋白质和脂类对膜稳定性的保护，很易破坏、溶解，出血4-8小时即可出现黄色.停止出血后,这种黄色仍可持续3周左右。
椎管梗阻如髓外肿瘤，格林—巴利综合征，当脑脊液蛋白质量超过1。
5g/L时，颜色变黄，其黄色程度与蛋白质含量呈正比。
临床脑脊液检查采集送检顺序规范及采集注意事项
临床脑脊液检查采集送检顺序规范及采集
注意事项
脑脊液检查采集送检顺序规范
由于穿刺伤，第一管可能含有血碎片、组织液和污染的皮肤微生物，可能在培养中产生错误的结果，第一管不应该被用于微生物学检查，它最适合用于化学和免疫学检测。
如果仅获得少量脑脊液病情必须使用单个管收集，必须首先用于微生物检测，以确保无菌培养，再进行细胞计数，如果有足够的剩余量，可以做化学和免疫学检测。
脑脊液采集注意事项
1）采集顺序
第一管：化学和免疫学检查
第二管：细菌性检查
第三管：细胞计数和分类（常规检查）
如疑有肿瘤可再留一管：脱落细胞学检查。
2）送检时间
最好于抗生素使用之前，收集标本后，常温下15分钟至1小时内送到实验室，脑脊液标本不可放置冰箱保存。
2、脑脊液细菌培养的局限性
细菌培养是诊断中枢神经系统感染的金标准，但是也有很多的局限性，主要表现为两个方面：假阴性和假阳性。
造成假阴性和假阳性的原因，首先细菌培养和鉴定药敏试验与检查者的经验能力直接相关；
假阴性主要的影响因素：培养标本放置时间过长，培养条件不正
确等；
假阳性的结果：主要是由于污染，污染来源两个方面，一是临床采取标本时，由于操作的不严格造成附近正常菌群的污染，另外一种是实验室操作时造成的污染。
3、寡克隆区带的应用是什么？
临床上对于中枢神经系统疾病，特别是脱髓鞘病的诊断主要依赖影像学检查和临床表现进行分析，但由于脱髓鞘性疾病在早期病理学改变并不明显，影像学检查和常规并不能有效的及时发现。
一般脑脊液IgG的增加发生较早，所以对患者血清和CSF同时进行电泳以检测寡克隆区带是否存在，也是早期诊断脱髓鞘疾病的一种检测指标。
脑脊液标本采集(腰穿法)与转运SOP
脑脊液标本采集（腰穿法）与转运SOP文件编号：持有部门：医院感染管理科医务部护理部检验科各临床科室修订时间：年月执行日期：年月日具体内容：一、采集方法1．由临床医师以无菌方法收集脑脊液。
2．标本采集步骤（1）术者洗手，戴帽子、口罩。
（2）协助患者卧位。
嘱患者侧卧于硬板床上，背部与床间垂直，头向前胸部屈曲，两手抱膝紧贴腹部，使躯干呈弓形，或由助手在术者对面一手抱住患者的头部，另一手挽住患者双下肢腘窝处，并用力抱紧，使脊柱尽量后凸以增宽椎间隙，以便于进针。
（3）确定穿刺点。
以髂后上棘连线与后正中线的交会处为穿刺点，一般取第3—4腰椎棘突间隙，有时也可在上一或下一腰椎间隙进行。
（4）皮肤消毒。
用消毒棉签，以穿刺点为中心，由内向外螺旋形涂擦（棉签必须也要同时旋转），直径约5㎝，作用时间至少30s。
应注意消毒过的地方不能重复涂抹，穿刺部位经消毒后不得再触摸。
如果病人穿刺部位的皮肤不够清洁，则需再消毒一遍。
（5）局部麻醉。
术者打开腰穿包，戴无菌手套，在穿刺部位覆盖洞巾，抽取2%利多卡因（用量可因病人的具体情况而定），自皮肤到椎间韧带行局部麻醉。
（6）穿刺。
术者用左手固定穿刺点皮肤，右手持穿刺针以垂直背部的方向缓慢刺入，成人进针深度约为4—6㎝，儿童为2—4㎝，当针头穿过韧带与硬脑膜时，可感到阻力突然消失，有落空感，此时可将针芯慢慢抽出（以防脑脊液迅速流出，造成脑疝），即可见脑脊液流出。
（7）收集。
取脑脊液2—5ml，按检验需要量（细菌培养≥1ml，真菌≥2ml，抗酸杆菌≥2ml）注入无菌试管内。
（8）术毕，将针芯插入后一起拔出穿刺针，覆盖消毒纱布（24小时后可去除），用胶布固定。
并协助患者去枕俯卧（如有困难，则平卧4—6小时），以免引起术后低颅内压性头痛。
（9）送检。
填写申请单时，应注明标本来源、检验目的、采样时间和抗菌药物使用情况等相关信息。
二、标本运送1．已采集的标本应视为潜在性生物危险品，均应置于防渗漏、相对密封的容器中收集、存储与转运。
脑脊液常规检测标准操作规程
脑脊液常规检测标准操作规程1.【检验目的】为了使脑脊液常规检验方法标准化，特制定本规程。
2.【职责】2.1实验室工作人员均应熟知并严格遵守本SOP，室负责人监督落实。
2.2本SOP的改动，可由任一使用本SOP的工作人员提出，并报经下述人员批准签字：室负责人、科主任。
3.【样本类型及实验前准备】3.1样本类型：新鲜脑脊液3.2患者准备：患者处于安静状态精神、体力、情绪等因素的影响较小。
3.3容器添加剂类型：可用EDTA盐抗凝3.4实验试剂：苯酚 (饱和石碳酸溶液)3.5标本的采集和保存3.5.1腰椎穿刺成功后立即测定脑脊液压力，然后留取脑脊液标本于3个无菌试管，每个试管1-2ml。
第一管做病原微生物学检验，第二管做化学和免疫学检验，第三管做理学和细胞学检验。
标本采集后立即送检，并于1h内检验完毕。
因放置过久，可造成细胞破坏、葡萄糖等物质分解、细菌溶解等，影响检验结果。
脑脊液标本应尽量避免凝固和混入血液。
若混入血液应注明，进行细胞计数时应做校正。
3.5.2收到标本后应立即检验。
久置可致细胞破坏，影响细胞计数及分类检查；葡萄糖含量降低；病原菌破坏或溶解。
3.5.3细胞计数管应避免标本凝固，遇高蛋白标本时，可用EDTA盐抗凝。
4.【测定原理】脑脊液中球蛋白与苯酚结合，可形成不溶性蛋白盐而下沉，产生白色浑浊或沉淀，即潘氏（Pandy）试验。
5.【操作步骤】5.1一般性状.：主要观察颜色与透明度，可记录为水样透明（白细胞200/μl或红细胞400/μl可致轻微混浊）白雾状混浊，微黄混浊、绿黄混浊、灰白混浊等。
颜色①红色如标本为血性、为区别珠网膜下隙出血或穿刺损伤，应注意以下情况。
将血性脑脊液使管离心沉淀（1500r/min），如上层液体呈黄色，隐血试验阳性，多为珠网膜下隙出血，且出血时间已超过4h，约90%患者为12h内发生出血。
如上层液体澄清无色，红细胞均沉管底，多为穿刺损伤或因病变所致的新鲜出血。
红细胞皱缩，不仅见于陈旧性出血，在穿刺外伤引起出血时也可以见到。
脑脊液常规检查标准操作程序
脑脊液常规检查标准操作程序1 检验目的鉴别诊断及预后观察神经系统疾病及其并发症。
2 检测原理一般性状检查采用目测法；细胞学检查采用显微镜手工检查法。
3 性能参数脑脊液常规检查是手工试验，目前还没有试验性能指标。
4 标本采集与接收4.1 脑脊液标本由临床医生进行腰椎穿刺采集，必要时可从小脑延脑池或侧脑室穿刺获得。
第一管作细菌学检查，第二管作化学或免疫学检查，第三管作常规检查。
4.2 标本采集后要立即送检，因为放置时间过久，其性质可能发生改变，可能影响检验结果。
采集的脑脊液标本应尽量避免混入血液。
5 设备和试剂5.1 仪器：复星公司 ACT-2000 超高倍显微镜系统，Sysmex XT-4000i 分析仪。
5.2 试剂：冰醋酸。
5.3 设备：血细胞计数池。
6 容器和添加剂脑脊液常规检查试验的容器为消毒的玻璃试管，一般情况下无任何添加剂(如遇高蛋白标本时，可用 EDTA 盐抗凝)。
7 操作步骤7.1 检验申请单及标本的审核整理脑脊液常规检验申请条码及标本，审核合格后，对脑脊液检验申请单姓名和标本标识进行复查，确认一致后进行检测。
7.2 一般性状检查：脑脊液的颜色和透明度测量采用目测法。
7.3 细胞计数7.3. 1 手工法：对澄清的脑脊液混匀后用滴管直接滴入一次性计数板，用低倍镜计数全部方格内细胞数；混浊或带血的脑脊液可用细胞稀释液或者生理盐水稀释后加入事先准备好的管壁带有冰乙酸的小试管中，混匀后滴入一次性计数板内，用低倍镜计数全部方格内细胞数。
7.3.2 仪器法：取混匀好的标本直接在 XT-4000i 上用体液模式进行检测，并记录结果。
7.3.3 有核细胞分类计数7.3.3.1 直接分类法：如果白细胞数不超过 0.015×109/L，可不分类计数；如超过 0.015×109 /L 应分类计数。
在高倍镜下根据细胞核的形态分别计数单核细胞(包括淋巴细胞和单核细胞)与多核细胞，计数100 个白细胞，以百分比表示。
脑脊液采集作业指导书
脑脊液采集作业指导书1. 引言脑脊液采集是一项非常重要的医学操作，用于诊断和治疗各种神经系统疾病。
本指导书旨在提供详细的脑脊液采集操作步骤和注意事项，以确保采集的准确性和安全性。
2. 准备工作在进行脑脊液采集之前，必须进行充分的准备工作，以确保整个过程的顺利进行。
以下是一些准备工作的步骤和注意事项：2.1 检查操作器材在开始脑脊液采集前，务必检查所有操作器材的完整性和清洁度。
确保针头、管路、收集容器等器材都是干净的，并且没有任何损坏。
2.2 准备工作区域选择一个安静、整洁的工作区域进行脑脊液采集。
确保操作台面干净，并放置所需的器材和消毒用品。
2.3 术前准备让患者了解整个脑脊液采集过程，并解答其可能有的疑问。
确保患者处于舒适的姿势，并准备好必要的术前药物。
3. 脑脊液采集步骤以下是一般的脑脊液采集步骤，注意，具体操作步骤可能会因不同医疗机构的标准而有所差异，请按照医疗机构的具体要求进行操作：3.1 无菌操作•手部消毒：使用含70%酒精的洗手液洗手，保持双手清洁和干燥。
•佩戴手套：在进行脑脊液采集之前，戴上无菌手套。
3.2 麻醉•局部麻醉：选定脑脊液采集点，使用局部麻醉药物麻醉。
3.3 采集•穿刺：将脑脊液采集针插入患者的脊椎间隙或者蛛网膜下腔。
•采集：连接采集器具，收集脑脊液样本。
•采集完成后，注意封闭和标记采集的样本。
3.4 处理采集针•将采集针丢弃到医疗废物箱中，确保安全处置。
3.5 结束操作•清洁和消毒：清洁操作区域，丢弃使用过的器材，并进行必要的消毒操作。
•记录操作日志：记录脑脊液采集的详细信息，包括采集日期、操作者和采集样本的特征。
4. 注意事项在进行脑脊液采集时，需要特别注意以下事项：4.1 无菌操作确保在整个脑脊液采集过程中，保持无菌操作。
避免任何可能导致交叉感染的行为。
4.2 麻醉药物在使用麻醉药物时，务必按照准确的剂量和方法进行操作。
避免过量使用或者使用错误的麻醉药物。
4.3 采集点选择在选择脑脊液采集点时，需要仔细考虑患者的具体情况。
腰椎穿刺术SOP
腰椎穿刺术的标准操作规程拟定部门：拟定人：审核人：批准人：拟定日期：审核日期：批准日期：公布日期：生效日期：1.目的：规范我院腰椎穿刺术的操作。
2.范围：我院腰椎穿刺术的操作规范。
3.定义：腰椎穿刺术(1umbar puncture)常用于检查脑脊液的性质，对诊断脑膜炎、脑炎、脑血管病变、脑瘤等神经系统疾病有重要意义。
也可测定颅内压力和了解蛛网膜下腔是否阻塞等，有时也用于鞘内注射药物。
4.内容：4.1方法4.1.1侧卧于硬板床上，背部与床面垂直，头部尽量向前胸屈曲，两手抱膝紧贴腹部，使躯干尽可能弯曲呈弓形；或由助手在术者对面用一手挽患者头部，另一手挽双下肢腘窝处并用力抱紧，使脊柱尽量后凸以增宽椎间隙，便于进针。
4.1.2确定穿刺点，通常以双侧髂嵴最高点连线与后正中线的交会处为穿刺点，此处,相当于第3～4腰椎棘突间隙，有时也可在上一或下一腰椎间隙进行。
4.1.3常规消毒皮肤后戴无菌手套、盖洞巾，用2％利多卡因自皮肤到椎间韧带作逐层局部麻醉。
4.1.4术者用左手固定穿刺点皮肤，右手持穿刺针以垂直背部、针尖稍斜向头部的方向缓慢刺入，成人进针深度约4～6cm，儿童约2～4cm。
当针头穿过韧带与硬脑膜时，有阻力突然消失落空感。
此时可将针芯慢慢抽出(以防脑脊液迅速流出，造成脑疝)，可见脑脊液流出。
4.1.5放液前先接上测压管测量压力。
正常侧卧位脑脊液压力为70～180mmH2O(0.098kPa～10mmH2O)或40～50滴／分钟。
若继续作Queckenstedt试验，可了解蛛网膜下腔有无阻塞。
即在测初压后，由助手先压迫一侧颈静脉约10s，再压另一侧，最后同时按压双侧颈静脉。
正常时压迫颈静脉后，脑脊液压力立即迅速升高一倍左右，解除压迫后10～20s，迅速降至原来水平，称为梗阻试验阴性，示蛛网膜下腔通畅；若压迫颈静脉后，不能使脑脊液压升高，则为梗阻试验阳性，示蛛网膜下腔完全阻塞；若施压后压力缓慢上升，放松后又缓慢下降，示有不完全阻塞。
脑脊液标本采集运送检验流程
脑脊液标本采集运送检验流程下载温馨提示:该文档是我店铺精心编制而成，希望大家下载以后，能够帮助大家解决实际的问题。
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脑脊液采集作业指导书
脑脊液采集作业指导书1. 引言脑脊液采集是一种常见的医学检查方法，通过采集脑脊液样本，可以对脑脊液中的成分进行分析，从而帮助医生诊断和治疗疾病。
本指导书旨在为医护人员提供脑脊液采集的操作指导，确保采集过程的安全、准确和有效。
2. 术语和缩写•脑脊液：指人体脑室和脊髓腔中的液体•脑脊液采集：指通过穿刺技术采集脑脊液样本•LP：Lumbar Puncture，腰穿术，脑脊液采集的一种方式3. 脑脊液采集的适应症脑脊液采集常用于以下情况的诊断和治疗： - 脑膜炎的诊断和治疗 - 脑脊液压力异常的评估 - 脑脊液中病原体的检测，如细菌、病毒等4. 脑脊液采集的准备工作在进行脑脊液采集之前，需要进行以下准备工作： 1. 与患者进行充分沟通，解释采集过程和注意事项 2. 确定采集的部位和方式，常用的方式有LP（腰穿术）和CT引导下的颅内穿刺 3. 准备好所需的器材和药品，包括穿刺针、采集管、消毒液等 4. 安排好采集时的人员，包括医生和护士等5. 脑脊液采集的操作步骤5.1 LP（腰穿术）1.请患者侧卧位，腰部弯曲，将脊柱的棘突暴露出来2.消毒穿刺部位，通常在L3-L4或L4-L5之间3.使用无菌技术，戴好手套，拿起穿刺针并进行麻醉（局部麻醉或全麻）4.进行穿刺，穿刺角度为15-30度，深度约4-5cm5.当感觉到穿刺针进入脊髓腔时，慢慢收集脑脊液样本6.采集足够的脑脊液样本后，缓慢将穿刺针拔出7.使用无菌纱布和透明敷料进行包扎和固定5.2 CT引导下的颅内穿刺1.将患者放置在CT机上，并确保头部固定2.消毒穿刺部位，通常在颅骨骨缝处3.使用无菌技术，戴好手套，准备好穿刺针和导引针4.使用CT引导进行穿刺，确保准确进入脑室5.当感觉到穿刺针进入脑室时，慢慢收集脑脊液样本6.采集足够的脑脊液样本后，缓慢将穿刺针拔出7.使用无菌纱布和透明敷料进行包扎和固定6. 脑脊液采集的注意事项•在脑脊液采集过程中，要确保操作者和患者的安全，遵循无菌操作规范•在采集过程中，注意观察患者的反应，如出现头痛、恶心、呕吐等不适症状，应立即停止采集•采集完成后，要嘱咐患者卧床休息，并密切观察患者的病情变化7. 结束语本指导书为医护人员提供了脑脊液采集的作业指导，希望能够帮助大家正确、安全地进行脑脊液采集操作。
脑脊液采集与转运标准操作规程
脑脊液采集与转运标准操作规程一、适应证临床出现不明原因的头痛、发热、脑膜刺激征（颈强直，克氏征、布氏征阳性）、脑神经病理征象、脑积水、脑性低钠血症等症状或体征，怀疑中枢神经系统感染时应送检脑脊液培养标本, 并同时送检血培养标本。
二、脑脊液的采集及运送1.脑脊液的采集2.选择腰3〜腰4椎间隙，双侧骼后上嵴最高点连线与脊柱中线相交处为穿刺点（婴幼儿可选择腰4〜腰5或腰5〜骶1椎间隙作为穿刺进针点）3.佩戴无菌手套，使用皮肤消毒剂对腰椎穿刺点及其周围15 cm区域的皮肤消毒，待消毒剂干燥后（约1分钟）再以75%乙醇擦拭两遍。
4.覆盖无菌孔巾，待消毒剂彻底挥发后，用1%〜2%利多卡因在穿刺点行皮内、皮下浸润麻醉，然后垂直缓慢进针棘突间隙，边回吸边注药，回吸注意无回血，充分麻醉后拔针。
5.左手固定麻醉点，右手进针，对准椎间隙刺入皮下，针尖斜向与脊柱平行，穿刺针穿过皮肤、皮下组织、棘上韧带、棘间韧带、黄韧带、硬脊膜，有落空感进入蛛网膜下腔，采集脑脊液分别放入3个无菌螺帽管中，做好标本标记。
脑脊液一般采集3管，第1管脑脊液用于生化检验，第2管用于微生物检验，第3管可以用于细胞学、分子核酸检验等检查；如果仅采集了1管，应首先送微生物检验；最小标本量要求：细菌≥1 ml,真菌≥2 ml.分枝杆菌≥25 ml,病毒≥2 ml；如送检T - SPOT TB,还需注意添加肝素抗凝。
6.运送：室温或保温送检，室温下不超过15分钟，切勿冷藏。
临床怀疑脑膜炎奈瑟菌、流感嗜血杆菌等苛养菌感染时，标本应注意保温运送；若怀疑厌氧菌感染，可将脑脊液直接注入血厌氧培养瓶中，迅速送检。
三、注意事项1.怀疑患者细菌性脑膜炎时，应立即采集脑脊液标本和2-4套血培养标本，并应在抗菌药物使用前采集。
2.怀疑分枝杆菌、隐球菌或慢性脑膜炎时，可多次采集脑脊液标本。
3.如怀疑存在颅内压增高时，应先行头颅CT检查，必要时，可先予以脱水治疗再行穿刺。
4.申请单应注明标本来源、标本采集时间、送检目的、临床诊断等。
脑脊液标本采集、运送和验收
脑脊液标本采集、运送和验收关键词：对照品标准品 atcc 北京标准物质网一、采集指征出现下列临床症状时应考虑采集脑脊液标本：①发热等全身性感染症状：②头痛、喷射状呕吐、小儿前囟饱满等颅内压升高症状：③颈项强直的脑膜刺激症状；④神经麻痹征等。
一般由结核杆菌、隐球菌、病毒等引起的非化脓性脑膜炎起病缓慢、症状较轻，而由结核杆菌以外的细菌引起的化脓性脑膜炎大多起病急骤、症状明显、死亡率较高。
一岁以下的婴幼儿临床症状不明显和特异，仅有发热或体温过低、抽搐或伴有呕吐。
二、标本的采集脑脊液采集应由医生操作，腰椎穿刺操作简单且危险性小，临床最为常用。
方法如下：1．2％碘酒严格消毒采集部位。
2．用带L3～L4，L4～L5，L5～S1。
通管丝的针头插入。
3．进入蛛网膜下腔后，移去通管丝，留取脑脊液标本于3个无菌试管中，每个试管1～2ml。
第管做痫原生物学检验，第二管做生化或免疫检验，第三管做细胞学检验。
注意：为提高细菌培养的阳性率，应在抗生素治疗前采集标本，采集试管不应含防腐剂，进行脑脊液培养的同时，建议同时送血培养。
采集过程中应严格遵守无菌操作程序，防止污染。
如果用于检测细菌，脑脊液的量应不少于1ml，如果用于检测真菌或抗酸杆菌，脑脊液的量应不少于2ml。
三、标本的运送由于引起脑膜炎的主要致病菌包括脑膜炎奈瑟菌、肺炎链球菌、流感嗜血杆菌等苛养菌，易产生自溶酶和对外环境抵抗力弱，对寒冷和干燥均非常敏感，标本放置时间延长可因细菌自溶或不能耐受外环境而死亡，导致培养阴性。
因此脑脊液标本采集后应尽快(不超过1小时)送至实验室，若不能及时送检应放置室温，时间不超过24小时(延迟送检有可能影响苛养菌的检出)，切勿放冰箱，送检时应注意保温，防止干燥，避免日光直射。
脑脊液如果用于病毒检测应保存于4℃立即送达实验室。
四、标本的验收1．检查容器是否破裂、渗漏或有明显污染，条码信息是否正确，或者标签与申请单是否相符。
2．标本量是否足够(不少于1ml)，是否延迟送检或环境温度低时未采取保温措施。
检验标本采集运输指南【范本模板】
检验标本采集运输指南博兴县医院检验科2011年11月重要警示语将每一份标本都看作是无法重新获得、唯一的标本，必须小心地：采集、保存、转运。
按照时间顺序，从临床医生开出医嘱开始，到分析检验报告发回的步骤，包括：检验申请、患者准备、原始样品采集、运送到实验室完成分析前的质量控制.大部分工作都是医生、护士、运输人员、检验人员共同协调完成。
在实验室检测以外空间完成的分析前的质量管理最易出现问题。
临床反馈不满意的检验结果,60%报告最终可溯源到标本质量不合格。
可靠的检验结果，第一个环节必须依赖于标本的高质量.要获得高质量的标本：临床医生：应主动明确地告之患者如何配合好护理人员和检验人员：采集好、检测好标本运输人员：及时快速规范转运好标本在实验室进行检测、检验结果审核、报告数据发回.一、采集标本前质量保证、对策（一）加强沟通，合理选项医生应认真、完整地填写检验申请单,特别是:患者服药史、特殊病理变化、留取标本、送检标本的时间等。
（二）患者准备，至关重要医护人员应了解在标本采集前影响结果的非病理性因素(药物、饮食、运动、治疗、生理变化、生活环境和习性、标本采集时间）正确指导患者，采取切实措施，规范采集标本前患者的一切行为，保证采集的标本符合疾病的实际情况,留取合格的标本。
应告之患者：试验名称、所需标本类型、为什么要检测、检测报告时间、如何获得结果。
（三）采集前准备：1、条码生成与粘贴。
2、合格的采血人员。
3、标准化的采血程序。
4、合格的采血器材。
二.标本基本类别全血、血浆、血清、尿液、粪便、脑脊液、心包积液、胸腔积液和腹腔积液关节积液、前列腺液和精液、痰其他(包括乳汁、泪液、房水、唾液、脓液和各种分泌物等）各种穿刺物[血液标本的采集］一.血液标本基本要求保持标本完整性：控制各种干扰因素保持标本新鲜:最好的尺度是时间拒绝不合格血标本：脂血、溶血、凝固等二。
标本采集的时间（一）随机和急诊标本随机和急诊标本是指无时间限定或无法规定时限而必须采集的血和尿等标本，一般无法让患者进行准备.此类标本主要是门诊、急诊和抢救病人必须做的一些检查标本,或在体内代谢相对较稳定的检查物质，或受体内外干扰较小的检查物质。
脑脊液标本微生物检验
• 1. 涂片检查 (1) 一般细菌涂片检查： 例如：革兰阴性、凹面相对的球菌， 可能是脑膜炎奈瑟菌；链状排列的革兰阳 性球菌；长丝状等多形态性的革兰阴性杆 菌，可能是流感嗜血杆菌。 (2)结核分枝杆菌涂片检查 抗酸染色 (3)新生隐球菌涂片检查 墨汁染色 （4）真菌培养 22度和35 度培养
• 2. 报告方式 • （1）涂片检查：革兰染色：查找一般细菌， 尤其脑膜炎奈瑟菌、肺炎链球菌和 链球菌 多见。 • 革兰染色镜检报告“C内（外）G-双球菌， 形似脑膜炎奈瑟菌”“G+双球菌，形似肺 炎链球菌” • 抗酸染色报告：“找到抗酸• 培养3天，仍无菌生长者报告 “培养3天无细菌生长”。 • 查见细菌报告"检出XX细菌"， 报告菌名和药敏结果。
操 作 流 程
（二）、脑脊液标本
• 1、腰穿法采集脑脊液3—5ml打入血培养 瓶中或放入无菌试管中，立即送检； 2、注意保温，不可置冰箱保存，因为会使 病原菌死亡，尤其是脑膜炎奈瑟氏菌、肺 炎链球菌及流感嗜血杆菌； 3、脑脓肿吸出物尚须检测厌氧菌和寄生虫 • 培养基选择：普通血培养瓶、厌氧血培养 瓶、血平皿、中国蓝平皿、流感嗜血杆菌 平皿。
操 作 流 程 图
（二）检验方法和操作流程
• 1. 涂片检查 (1) 一般细菌涂片检查： 例如：革兰阴性、凹面相对的球菌，可能 是脑膜炎奈瑟菌；链状排列的革兰阳性球菌； 长丝状等多形态性的革兰阴性杆菌，可能是流 感嗜血杆菌。 (2)结核分枝杆菌涂片检查 (3)新生隐球菌涂片检查 • 2. 分离培养 • 3. 报告方式 培养48小时，仍无菌生长者报
脑脊液检验标准操作程序SOP文件
脑脊液中球蛋白与苯酚结合，可形成不溶性蛋白盐而下沉，产生白色浑浊或沉淀。
[试剂组成]
5%苯酚溶液
[操作步骤]
取试剂2-3ml，置于小试管内，用毛细管滴入脑脊液1-2滴，立即观察结果。
[结果判断]
阴性：清晰透明，不显雾状。
极弱阳性（+-）：微呈白雾状，在黑色背景下，才能看到。
弱阳性（+）：灰白色云雾状。
（2）脑脊液葡萄糖降低：常见于急性化脓性脑膜炎、结核性脑膜炎、霉菌性脑膜炎、神经梅毒、脑瘤、低血糖等。
4、氯化物测定
[正常参考值]
成入：120-132mmol/L；
儿童：111-123mmol/L；婴儿：110-122mmol/L。
[临床意义]
（1）增高：见于慢性肾功能不全、肾炎、尿毒症、浆液性脑膜炎及生理盐水静脉滴注时。
6、细菌及寄生虫检查
[正常参考值]阴性。
[临床意义]
（1）脑脊液中有细菌，可引起细菌性脑膜炎。如急性化脓性脑膜炎常由脑膜炎奈瑟菌、肺炎链球菌、溶血性链球菌、葡萄球菌等引起；病程较慢的脑膜炎常由结核杆菌、新型隐球菌等引起。
（2）脑脊液中若发现血吸虫卵或肺吸虫卵等，可诊断为脑型血吸虫病或脑型肺吸虫病等。
（3）乳白色：见于化脓性脑膜炎。
（4）微绿色：见于绿脓假单胞菌性脑膜炎、甲型链球菌性脑膜炎。
（5）褐色或黑色：见于中枢神经系统的黑色素瘤、黑色素肉瘤等。
2、透明度检查
[正常参考值]清晰透明。
[临床意义]
（1）微混：常见于乙型脑炎、脊髓灰质炎、脑脓肿(未破裂者)。
（2）混浊：常见于化脓性脑膜炎、结核性脑膜炎等。
脑脊液检验
版序：2005-01
页码：第2页，共7页
脑脊液检验技术要求
脑脊液检验技术要求1 标本采集、转运和贮存1.1 实验室应与临床共同讨论并制订脑脊液标本采集和处理的标准操作程序。
1.2 临床医生应在申请单上注明脑脊液标本采集部位（如腰椎或脑室）的相关信息。
1.3 脑脊液标本采集宜使用无菌试管（用于细胞学检查的标本不宜使用玻璃材质的容器），若能采集足量标本，应将其分装至3～4支试管，每管宜取3mL～5mL，一般无需使用抗凝剂。
1.4 第1管用于化学和免疫学检查（如蛋白质、葡萄糖等），第2管用于微生物学检查，第3管用于细胞计数和分类计数。
如需要做其它检查（细胞病理学检查等），宜采集第4管标本。
若第1管混有穿刺出血，不可用于以蛋白质检查作为主要依据的疾病诊断（如多发性硬化症）。
1.5 若无法采集足量标本，可不进行分装，由医生决定检查项目；若需要进行微生物学检查，宜优先进行，再尽快进行其他检查。
1.6 脑脊液标本应在室温条件下尽快运送，细胞计数和分类计数宜在1h内完成检查，以免细胞破损。
只有用于蛋白质和核酸分析的标本，可贮存于冷冻条件下（—20℃以下）。
1.7 脑脊液微生物学检查标本不可冷藏，在室温条件下立即送检或在患者床旁接种。
2 理学检查脑脊液理学检查主要包括颜色、透明度和凝固性等。
实验室应规定脑脊液理学检查指标描述和报告的规范用语。
3 化学和免疫学检查3.1 脑脊液化学检查主要包括葡萄糖、蛋白质、氯化物、酶学测定和蛋白电泳等，免疫学检查主要包括免疫球蛋白、髓鞘碱性蛋白测定等。
3.2 实验室应注意各项目不同原理检测方法的灵敏度和特异度差异，选择适宜的方法开展检测。
3.3 进行脑脊液葡萄糖、白蛋白和免疫球蛋白测定时，宜同时检测血清中的相应物质，计算脑脊液/血清葡萄糖比值、脑脊液/血清白蛋白商（Q alb）、脑脊液/血清IgG商（Q IgG）及IgG指数（即Q IgG与Q alb比值）。
4 细胞学检查4.1 手工法细胞计数4.1.1 宜使用标注容积的血细胞定量计数板进行细胞计数，包括细胞总数、红细胞计数、有核细胞计数和有核细胞分类计数。
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脑脊液标本采集（腰穿法）与转运SOP
文件编号：
持有部门：医院感染管理科医务部护理部检验科各临床科室
修订时间：年月
执行日期：年月日
具体内容：
一、采集方法
1．由临床医师以无菌方法收集脑脊液。
2．标本采集步骤
（1）术者洗手，戴帽子、口罩。
（2）协助患者卧位。
嘱患者侧卧于硬板床上，背部与床间垂直，头向前胸部屈曲，两手抱膝紧贴腹部，使躯干呈弓形，或由助手在术者对面一手抱住患者的头部，另一手挽住患者双下肢腘窝处，并用力抱紧，使脊柱尽量后凸以增宽椎间隙，以便于进针。
（3）确定穿刺点。
以髂后上棘连线与后正中线的交会处为穿刺点，一般取第3—4腰椎棘突间隙，有时也可在上一或下一腰椎间隙进行。
（4）皮肤消毒。
用消毒棉签，以穿刺点为中心，由内向外螺旋形涂擦（棉签必须也要同时旋转），直径约5㎝，作用时间至少30s。
应注意消毒过的地方不能重复涂抹，穿刺部位经消毒后不得再触摸。
如果病人穿刺部位的皮肤不够清洁，则需再消毒一遍。
（5）局部麻醉。
术者打开腰穿包，戴无菌手套，在穿刺部位覆盖洞巾，抽取2%利多卡因（用量可因病人的具体情况而定），自皮肤到椎间韧带行局部麻醉。
（6）穿刺。
术者用左手固定穿刺点皮肤，右手持穿刺针以垂直背部的方向缓慢刺入，成人进针深度约为4—6㎝，儿童为2—4㎝，当针头穿过韧带与硬脑膜时，可感到阻力突然消失，有落空感，此时可将针芯慢慢抽出（以防脑脊液迅速流出，造成脑疝），即可见脑脊液流出。
（7）收集。
取脑脊液2—5ml，按检验需要量（细菌培养≥1ml，真菌≥2ml，抗酸杆菌≥2ml）注入无菌试管内。
（8）术毕，将针芯插入后一起拔出穿刺针，覆盖消毒纱布（24小时后可去除），用胶布固定。
并协助患者去枕俯卧（如有困难，则平卧4—6小时），以免引起术后低颅内压性头痛。
（9）送检。
填写申请单时，应注明标本来源、检验目的、采样时间和抗菌药物使用情况等相关信息。
二、标本运送
1．已采集的标本应视为潜在性生物危险品，均应置于防渗漏、相对密封的容器中收集、存储与转运。
2．标本采集后应在15分钟内送检。
三、注意事项
1．在标本的采集过程中，须严格执行无菌操作规程。
2．标本绝不可以冷藏或冷冻处理。
3．如疑似对低温敏感的脑膜炎奈瑟菌、肺炎链球菌或流感嗜血杆菌感染的标本，则需在采样前准备好35－37℃的保温设施，立即送检。