生理科学实验——medlab 生物信号采集处理系统_图文
生理科学实验设计家兔呼吸运动调节
生理科学实验设计——家兔呼吸运动的调节09级31班第四小组麦华浩莫世杰刘文荣罗国华王辉赵宏伟一：实验目的：（1）熟悉家兔耳缘静脉注射法、家兔颈部手术操作、神经血管分离、气管插管技术。
（2）记录家兔呼吸曲线观察一氧化碳（CO）、纯氧，走神经对呼吸运动的调节及了解其机理。
（3）熟悉Medlab生物信号处理系统、保护电极、氧气瓶，张力换能器在实验中的作用及使用注意事项。
二：立题依据：一氧化碳中毒机理是一氧化碳与血红蛋白的亲合力比氧与血红蛋白的亲合力高200～300倍，它进入人体后会和血液中的血红蛋白结合，使血红蛋白不能与氧气结合，从而造成人体组织缺氧。
急性中毒时，轻者会出现头痛、头晕、耳鸣、心悸、恶心、呕吐、无力，重者会出现心肌损害、脑椎体系损害、昏迷、休克甚至死亡。
及时强制吸氧，置换一氧化碳，能避免死亡。
临床表现主要为缺氧，其严重程度与HbCO的饱和度呈比例关系。
轻者有头痛、无力、眩晕、劳动时呼吸困难，HbCO饱和度达10%—20%。
症状加重，患者口唇呈樱桃红色，可有恶心、呕吐、意识模糊、虚脱或昏迷，HbCO饱和度达30%—40%。
重者呈深度昏迷，伴有高热、四肢肌张力增强和阵发性或强直性痉挛，HbCO饱和度>50%。
患者多有脑水肿、肺水肿、心肌损害、心律失常和呼吸抑制，可造成死亡。
二氧化碳（CO2）是调节呼吸运动最重要的生理性化学因素。
很早就知道，在麻痹的动物或人，当动物血液Pco2降到很低水平时，可出现呼吸暂停。
因此，一定水平的Pco2对维持呼吸中枢的基本活动是必需的。
CO2刺激呼吸运动是用过两条途径实现的：一是通过刺激中枢化学感受器再兴奋呼吸中枢；二是刺激外周化学感受器，冲动经窦神经和迷走神经传入延髓，反射性地使呼吸加深﹑加快，肺通气量增加。
CO2在呼吸调节中经常起作用，动脉血Pco2在一定范围内升高，可加强对呼吸的刺激作用氧中毒机理当吸入性PO2过高时，活性氧产生增加，反可引起组织，细胞损伤，称为氧中毒。
生理科学创新性实验第一组
2.3大量静脉输入液体、利尿剂强化利 尿促进药物经肾脏排出，加大药物的排泄 量
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6
▪ 3.静脉应用纳洛酮 常用0.8—1.2mg/d静滴，兴奋呼吸中枢，减 少巴比妥类药物对呼吸中枢的抑制作用。 (本实验采用呼吸兴奋药加强呼吸解救）
▪ 4.对症支持治疗 包括维持血压、呼吸和体温，昏迷患者预防感
▪ 4、观察记录家兔在注射苯巴比妥之前呼气相， 吸气相，呼吸幅度和频率，血压等各项指标。
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12
▪ 5、给家兔第二次从耳缘静脉注射苯巴比妥 15mg/kg，观察并记录上述指标的变化，待 中毒症状明显后，然后立即从耳缘静脉注射 美解眠50mg，静脉注射后，每20min追加 25mg直至家兔呼吸曲线趋于正常停药，同 时从右侧颈外静脉滴注生理盐水以稀释血药
浓度同时增加尿量的排出以降低苯巴比妥的
浓度。若同时伴有血压下降等微循环障碍， 应从耳缘静脉注射0.01%去甲肾上腺素 0.1ml/kg。
▪ 6、按上述步骤操作后看上述指标是否恢复
正常。
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四、创新性
▪ 利用Medlab系统同时观察家兔呼吸指数与血压，直观 明了，利于观察相应变化
▪ 实验通过苯巴比妥麻醉，可以观察其麻醉效果
生理科学设计性实验——
家兔急性苯巴比妥中毒及其解救
组 别: 10级临床05班第1 组
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1
一、实验目的：
▪ 学习制备家兔急性苯巴比妥中毒动物模型 的方法，观察急性苯巴比妥中毒时动物的 一般表现，掌握急性苯巴比妥中毒的发病 原理及其抢救方法。同时了解掌握呼吸兴 奋药美解眠的药理作用，观察其对呼吸运 动的影响。
染等。
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不同麻醉药对小鼠缺氧耐受性的影响及机制研究
不同麻醉药对小鼠缺氧耐受性的影响及机制研究目的研究不同麻醉药物（戊巴比妥钠、三溴乙醇、乌拉坦和水合氯醛）对小鼠缺氧耐受性的影响及相关机制。
方法小鼠随机分成6组：生理盐水对照组、普萘洛尔对照组、戊巴比妥钠组、三溴乙醇组、乌拉坦组、水合氯醛组。
腹腔注射给药，缺氧瓶法测定小鼠缺氧耐受时间及耗氧率，并利用生物信号采集处理系统记录心率变化。
观察常温下不同药物对小鼠缺氧耐受时间的影响，并分析缺氧耐受时间与耗氧率、心率之间的关系。
结果戊巴比妥钠、三溴乙醇、乌拉坦和水合氯醛均显著延长小鼠的缺氧耐受时间（P＜0.01），其中三溴乙醇和水合氯醛作用明显高于其他组。
戊巴比妥钠、三溴乙醇、乌拉坦和水合氯醛均降低小鼠的耗氧率（P＜0.05），其中三溴乙醇和水合氯醛的降低作用最显著。
三溴乙醇、水合氯醛除降低小鼠耗氧率外，还显著降低小鼠心率（P＜0.05）。
结论缺氧耐受性与耗氧率和心率有关。
戊巴比妥钠、乌拉坦可通过降低小鼠耗氧率增强缺氧耐受性，而三溴乙醇和水合氯醛通过降低耗氧率和降低心率增强小鼠缺氧耐受性。
标签：麻醉药；缺氧耐受性；小鼠缺氧是常见的病理生理过程，缺氧耐受性差的器官如心、脑等，更容易发生缺血-再灌注损伤（ischemia reperfusion injury），心脑血管疾病手术特别是冠脉搭桥术和心脏移植手术等的广泛开展，均涉及缺血-再灌注过程。
近年来研究显示，麻醉药除了其麻醉效能外，还能明显减轻缺血再灌注损伤，但其机制复杂，尚不完全清楚[1-3]。
目前研究主要集中在离体细胞和单个器官上，关于麻醉药预处理对全身缺血缺氧损伤的保护作用研究很少[4]。
因此，研究麻醉药物对机体缺氧耐受性的影响具有重要临床意义，本实验拟通过不同麻醉药物对小鼠缺氧耐受性的影响及相关机制研究，以期为临床相关缺血-再灌注疾病的治疗提供理论依据，对于改善患者预后具有重要价值。
1 材料与方法1.1 动物和试剂健康成年ICR（institute of cancer research）小鼠，体重（20±2）g，购自苏州大学实验动物中心。
生理学实验课件 蛙类神经干动作电位的引导及其传导速度、不应期的测定
上相幅值 刺激
伪迹
mV
0
-35
潜下伏相期幅值
时程
刺激伪迹：刺激形成的电变化在神经干表面 的传导，可作为刺激开始的标志。
S
R1
R2 R3
R4
神经干
神经干
标本屏蔽盒
S1 S2
R1 R2 R3 R4
神经干动作电位传导速度测定原理：
V=s/t
通道1 通道2 通道3
t1
t t2
神经干动作电位不应期的测定原理：
三、测定神经干动作电位的传导速度、不应期
实验报告封面
班级： 组别： 姓名： 学号：
日期： 温度：
蛙类神经干动作电位的引导及传导速度、不应期的测定 一、实验目的 二、实验材料及步骤 略（详见《生理科学实验》P83～P87） 三、结果
图1 1通道神经干双相动作电位
表1 蛙类神经干动作电位的引导及传导速度、不应期的测定结果
5-3
本实验中相关数据的记录
•阈刺激 •最大刺激强度 •双相动作电位上下相幅值 •双相相动作电位上下相时程 •动作电位潜伏期（t1、t2) •动作电位间隔时间（t）
实验后数据处理：
• 打印1通道双相动作电位的图谱； • 按表5-2列出实验结果的相关数据； • 分析实验结果，并写出实验报告。
图1 1通道双相动作电位
相呼应。
预习：
实验二 影响血液凝固的因素； 实验三 红细胞渗透脆性的测定。 要点: 各种处理因素对血液凝固的影响及其原理；
红细胞渗透脆性的测定方法，渗透性溶血的 原理。
S
中枢端
R1
R2 R3
R4
神经干
神经干
外周端
标本屏蔽盒
S1 S2
神经干动作电位及其传导速度的测定
实验3 神经干动作电位及其传导速度的测定【目的】应用微机生物信号采集处理系统和电生理实验方法，测定蛙类坐骨神经干的单相、双相动作电位和其中Ａ类纤维冲动的传导速度，并观察机械损伤、药物对神经兴奋和传导的的影响。
【原理】用电刺激神经，在负刺激电极下的神经纤维膜内外产生去极化，当去极化达到阈电位时，膜产生一次在神经纤维上可传导的快速电位反转，此即为动作电位(action potential, AP)。
神经纤维膜外，兴奋部位膜外电位相对静息部位呈负电性质，当神经冲动通过以后，膜外电位又恢复到静息时水平。
如果两个引导电极置于兴奋性正常的神经干表面，兴奋波先后通过两个电极处，便引导出两个方向相反的电位波形，称为双相动作电位。
如果两个引导电极之间的神经纤维完全损伤，兴奋波只通过第一个引导电极，不能传至第二个引导电极，则只能引导出一个方向的电位偏转波形，称为单相动作电位。
神经干由许多神经纤维组成，故神经干动作电位与单根神经纤维的动作电位不同，神经干动作电位是由许多不同直径和类型的神经纤维动作电位叠加而成的综合性电位变化，称复合动作电位，神经干动作电位幅度在一定范围内可随刺激强度的变化而变化。
动作电位在神经干上传导有一定的速度。
不同类型的神经纤维传导速度不同，神经纤维越粗则传导速度越快。
蛙类坐骨神经干以Aa类纤维为主，传导速度大约30～40m/s。
测定神经冲动在神经干上传导的距离（s）与通过这段距离所需时间（t），可根据n＝s/t求出神经冲动的传导速度。
【预习要求】1．仪器设备知识参见第二章第三节 RM6240微机生物信号采集处理系统（或第四节PcLab和MedLab微机生物信号采集处理系统）。
2．实验理论实验动物知识参见第三章第一节生理科学实验常用实验动物的种类，第四章第一节动物实验的基本操作；统计学知识参见第五章第四节常用统计指标和方法；生理学教材中兴奋性、兴奋的概念，静息电位和动作电位的形成机制，动作电位传导原理及神经纤维的分类。
生理实验
2008年考研动物生理试验实验一蛙坐骨神经腓肠肌标本制备[目的] 熟悉蛙 (或蟾蜍) 的坐骨神经腓肠肌标本的制备方法，初步掌握几项基本实验操作。
[原理] 蛙类的一些基本生命活动和生理功能与温血动物相类似，而其组织在离体状态下，易于控制和掌握，所以蛙类的神经一肌肉标本常用以研究兴奋性、兴奋过程、刺激的一些规律和特性。
[实验动物] 蛙 (或蟾蜍)[器材及药品] 解剖器械，锌铜弓，培养皿，烧杯，任氏液，棉花线。
[方法及步骤] 1．破坏脑脊髓：取蛙或蟾蜍一只，用蛙针从枕骨大孔垂直插入，向前伸人颅腔，捣毁脑髓；向后插入椎管，捣毁脊髓。
如果蛙处于瘫痪状态，表示脑和脊髓完全破坏。
然后沿两侧腹部将蛙横断为上下两半。
并将前半段弃去，保留后半段备用。
2．剥离皮肤：先剪去尾椎末端及泄殖腔附近的皮肤，然后从脊柱的断端撕下皮肤，将其全部剥去，直至趾端。
除去内脏，将标本放在滴有任氏液的蛙玻璃板上。
将手及使用过的解剖器械洗净。
3．分离标本为两部分：沿脊柱正中线将标本匀称地剪成左右两半，一半浸入盛有任氏液的烧杯中备用，另一半作进一步剥制。
4．分离坐骨神经：在大腿背侧的半膜肌与股二头肌之间用玻璃分针分离出坐骨神经。
注意：分离时要仔细用剪刀剪断坐骨神经的分支，向上分离至基部，向下分离到腘窝。
保留与坐骨神经相连的一小块脊柱，将分离出来的坐骨神经搭于腓肠肌上；去除膝关节周围以上的全部大腿肌肉，刮净股骨上附着的肌肉，保留的部分就是坐骨神经及股骨。
5．分离腓肠肌：在跟键上扎一线，提起结线，剪断结线后的跟腱，腓肠肌即可分离出来。
此时在膝关节下方将其他所有组织全部剪去，到此为止，带有股骨的坐骨神经腓肠肌标本制备完成。
6.标本的检验：将坐骨神经腓肠肌标本放置在蛙玻璃板上，用锌铜弓刺激坐骨神经，若腓肠肌迅速发生收缩反应，说明标本机能良好，制备成功。
应及时移放入盛有任氏液的培养皿中，供实验之用。
[注意事项]1．剥制标本时，切忌用金属器械牵拉或触碰神经干。
实验指导书(生理学部分)
实验项目一：常用实验动物的基本操作（一）实验动物的抓握、固定和处死方法1、小鼠抓取固定方法小鼠温顺，一般不会咬人，抓取时先用右手抓取鼠尾提起，置于鼠笼或实验台向后拉，在其向前爬行时，用左手拇指和食指抓住小鼠的两耳和颈部皮肤，将鼠体置于左手心中，把后肢拉直，以无名指按住鼠尾，小指按住后腿即可。
有经验者直接用左手小指钩起鼠尾，迅速以拇指和食指、中指捏住其耳后颈背部皮肤亦可。
这种在手中固定方式，能进行实验动物的灌胃、皮下、肌肉和腹腔注射以及其他实验操作。
如进行解剖、手术、心脏采血和尾静脉注射时，则需将小鼠作一定形式的固定，解剖手术和心脏采血等均可使动物先取背卧位（必要时先行麻醉），再用大头针将鼠前后肢依次固定在腊板上。
2、小鼠的处死方法可采用颈椎脱臼法。
此法是将实验动物的颈椎脱臼，断离脊髓致死，为大、小鼠最常用的处死方法。
操作时实验人员用右手抓住鼠尾根部并将其提起，放在鼠笼盖或其他粗糙面上，用左手拇指、食指用力向下按压鼠头及颈部，右手抓住鼠尾根部用力拉向后上方，造成颈椎脱臼，脊髓与脑干断离，实验动物立即死亡。
（二）动物血细胞计数方法材料和用品（1）器材：细胞计数板、细口滴管、绸布。
（2）试剂：0.4％台盼蓝。
（3）材料：血细胞悬液。
实验原理细胞计数一般用血细胞计数板，按白细胞计数方法进行计数。
细胞计数时，先将培养细胞或血细胞稀释成细胞悬液，然后将细胞悬液滴入细胞计数板内，计数计数板上计数室四大格内的细胞数。
根据计数室的容积及稀释倍数，即可计算出细胞浓度。
实验步骤：图5－1 血细胞计数板1．采血及稀释用1ml移液管吸取0.38ml白细胞稀释液放入小试管内备用，另用5ml移液管吸取3.98ml红细胞稀释液放入小试管内备用。
用酒精棉球消毒兔的耳缘静脉采血部位，用刺血针刺破血管，让血液自然流出，擦去第一滴血，待流出第二滴血时，用一次性毛细血管分2次准确吸取20ul、和20ul，将血液分别吹入盛有白、红细胞稀释液的小试管内，用滴管放在试管底部轻轻吹出血液，用上清液冲洗毛细取血管2～3次，轻轻摇动，使液体充分混匀。
生理科学实验设计书
【实验目的】1、观察家兔高镁血症的症状。
2、了解钙镁拮抗的原理并学习用氯化钙缓解高镁血症的方法。
【立题依据】镁镁是人体必需的矿物元素，因为镁在人体的含量较多，故被成为常量元素。
正常成人身体总镁含量约25克，其中60％-65％存在于骨，齿，27％分布于软组织。
镁主要分布于细胞内，细胞外液的镁不超过1％。
它的主要生理功能是：激活人体多种酶的活性；维护骨骼生长和神经肌肉的兴奋性；维护胃肠道和激素的功能。
如果镁缺乏，对上述功能会发生影响，可导致血清钙下降；神经肌肉兴奋性亢进；对血管功能可能有潜在的影响（有人报告低镁血症患者可有房室性早搏，房颤以及室速和室颤，半数有血压升高；可能是绝经后妇女骨质疏松症的一种危险因素；也有研究表明镁耗竭可导致胰岛素抵抗（与糖尿病有关）。
镁在粗粮，绿叶蔬菜，坚果中含量丰富，而肉类，淀粉食物和牛奶中镁的含量属中等。
-------资料来自《健康与生活》高镁血症病因高镁血症以急性或慢性肾功能衰竭多见，但一般肾功能衰竭患者血镁大多仍能维持正常或正常偏高水平，且无高镁血症导致的症状。
如果一时摄入过多(如使用抗酸剂)或经其他途径进入体内过多(例如肌注硫酸镁等)，则有可能出现明显高镁血症并出现症状。
此外，甲状腺素可抑制肾小管镁重吸收、促进尿镁排出，故某些黏液性水肿的患者可发生高镁血症。
醛固酮也有抑制肾小管镁重吸收、促进尿镁排出的作用，故Addison病患者可有高镁血症。
-------资料来自《百度百科》镁的生理作用：高镁血症主要由机体内镁摄入过多或排出减少所致，血清镁浓度高于 1.25mmol/L （2.5mEq/L）时为高镁血症。
高镁血症的临床表现与血清镁升高的幅度及速度均有关。
短时间内迅速升高者临床症状较重。
一般早期表现为食欲不振、恶心、呕吐、皮肤潮红、头痛、头晕等，因缺乏特异性，容易忽视。
当血清镁浓度迅速升高，可出现神经-肌肉及循环系统的明显改变。
1.对神经-肌肉的影响:故表现为呼吸肌无力和中枢抑制状态。
动物生理学心脏生理功能实验
实验报告课程名称：动物生理学实验名称：心脏生理功能实验同组学生姓名：一、实验目的和要求1、学习蟾蜍心电图的描记方法，了解动物正常心电图的波形。
2、观察蟾蜍心脏各部位兴奋与收缩的顺序及额外刺激对心脏收缩的影响从而加深对心肌生理特性的认识。
3、通过几种不同的方法来观察蛙的心搏的起点，以及心脏不同部位传导系统的装自动节律性高低。
订4、说明心电记录的容积导电原理。
线二、实验内容和原理1.在动物进化过程中，虽然心脏的结构和功能不断变化、逐渐完善，但心肌细胞的基本电活动却大同小异。
整个心脏的综合电变化也可以通过心脏周围的导电组织传导到动物体表，如将引导电极置于体表的不同部位时通过可仪器记录出来。
动物的心电图与人的心电图相似，基本包括P波、QRS波群和T波。
但在某些动物心电图的QRS波群中，Q波较小或缺如；在变温动物中，心率受温度和其它因素的影响较大。
2.心肌细胞有效不应期长。
在心动周期的不同时期给予额外刺激，或无反应而心律不变；或引起期前收缩，期前收缩之后通常出现一个代偿间歇。
3.心脏的特殊传导系统具有自动节律性，但各部分的自动节律性高低不同。
蛙的心搏起点是静脉窦(哺乳动物是窦房结)，自动节律性也以静脉窦(窦房结)为最高。
正常心脏的每次博动都由静脉窦(窦房结)发出沿心房传至房室结，再由房室结经房室束传至心室肌肉。
若阻断心脏的正常传导，则出现不同的收缩障碍。
三、主要仪器设备M edlab生物信号采集系统，张力换能器（30g或50g），两栖类手术器械，培养皿，任氏液，鳄鱼夹，蛙扳，解剖针，大头针，蟾蜍，手术缝线。
四、操作方法和实验步骤1．Medlab生物信号采集系统的准备记录方式：记录仪；通道：3，×200。
2．用解剖针破坏蛙(或蟾蜍)脑和脊髓后，将蛙背向下，四肢用大头针固定在蛙板上，暴露心脏，认清心脏各部位并于窦房沟处穿一线备用。
3．将接有导线的鳄鱼夹，固定在右前肢和两后肢的大头针上，为了导电良好，可在鳄鱼夹和大头针之间缠以任氏液浸湿过的脱脂棉。
设计实验1——高渗葡萄糖溶液对蛙坐骨神经干动作电位的影响
高渗葡萄糖溶液对蛙坐骨神经干动作电位的影响设计者：。
临床医学本科。
级。
班指导老师：。
一、实验目的：观察不同浓度的高渗葡萄糖溶液对蛙坐骨神经干动作电位的影响二、立题依据根据文献报道，高渗葡萄糖溶液对神经干动作电位的幅值有明显的、可逆的、减小的作用，对传导速度有减慢作用。
一般认为高渗葡萄糖溶液的作用机制有两方面：一方面，高渗透压导致神经脱水，神经纤维脱水后，直径变小，电阻变大，从而导致其传导动作电位的机能下降，甚至出现神经传导阻滞。
同时，由于神经细胞处于高渗状态下，细胞内外渗透压差异变小，水份从细胞外向细胞内转移，以至细胞内外离子浓度发生变化，细胞外钠离子浓度变小，细胞内钠浓度变大，细胞内外钠离子浓度差别减少，当神经细胞受刺激，产生冲动时，钠离子内流减少，而导致神经干动作电位幅值减小。
另一方面，葡萄糖作为一种能源物质，进入细胞后，神经传导机能增强。
不过由于葡萄糖作为一种大分子物质，不易通过细胞膜，被吸收量取决于细胞内外的离子浓度差及膜对它的通透性。
本实验用电生理学方法，对高渗葡萄糖溶液影响蛙离体坐骨神经干的复合动作电位的幅度和速度进行观察，分析其影响动作电位的原理。
主要参考文献：1、祁金顺尚改萍李文朝王黎敏李俊峰. 高渗盐液对蟾蜍坐骨神经干C 纤维动作电位的影响，中国应用生理学杂志，1995，11(1)：44-462、缪利英彭炜瑛元晓冬. Medlab 在神经干动作电位及传导速度测定实验中的应用，杭州医学高等专科学校学报，2002，23(3)：68-703、李荣林王瑞. 钾和钠离子对神经干动作电位的影响. 山西医学院学报，1995，26（4）：350-3514、李洪敬. 阳极电紧张对蟾蜍坐骨神经动作电位幅值的影响. 信阳师范学院学报（自然科学版），1996，19（1）：60-63三、实验方案实验材料：青蛙、Medlad生物信号采集处理系统、神经标本屏蔽盒、动作电位引导输入线、电刺激输出线、蛙类解剖手术器械、滤纸、丝线、棉线、滴管、林格液、50％葡萄糖溶液、20％甘露醇注射液实验分组对照1组：0.25mol/L甘露醇溶液对照2组：0.5mol/L甘露醇溶液对照3组：1mol/L甘露醇溶液对照4组：2mol/L甘露醇溶液实验1组：0.25mol/L葡萄糖溶液实验2组：0.5mol/L葡萄糖溶液实验3组：1mol/L葡萄糖溶液实验4组：2mol/L葡萄糖溶液观察指标：神经干双相动作电位幅度、传导速度实验步骤：1、制备蛙类坐骨神经－胫腓神经标本2、连接实验装置，设置实验参数见教材77－78页3、将分离好的神经干标本放置于神经标本屏蔽盒的电极上，启动刺激器，从零开始逐渐增加强度，仔细观察双相动作电位，适当调整刺激强度至波形最佳，并记录其正常状态下动作电位的幅值（A）与时程（D）。
实验2 不同频率的刺激对肌肉收缩的影响
实验报告实验2 不同频率的刺激对肌肉收缩的影响黄加力（浙江中医药大学2010中医学七年制1班某组，20101150113）目的：本实验在保持刺激时间恒定的条件下，逐步增加或减小对蟾蜍坐骨神经的刺激强度(脉冲振幅)和改变电脉冲刺激频率，观察记录腓肠肌收缩收缩张力，分析探讨刺激强度和刺激频率与骨骼肌收缩张力的关系。
学习微机生物信号采集处理系统的使用。
材料：蟾蜍；任氏液；微调固定器；张力换能器；微机生物信号采集处理系统。
方法：1．实验系统连接和参数设置换能器的输出端与生物信号采集处理系统的输入通道相连。
启动RM6240或PcLab（MedLab）系统软件，进入系统软件窗口，设置仪器参数：（1）RM6240系统：点击“实验”菜单，选择生理科学实验菜单中的“刺激强度对骨骼肌收缩的影响”或“刺激频率对骨骼肌收缩的影响”项目。
系统进入信号记录状态。
仪器参数：通道模式张力，采样频率400Hz~1KHz，扫描速度1s/div，灵敏度10~30g，时间常数直流，滤波频率100Hz。
（2）PcLab（MedLab）系统：点击“文件”菜单的“打开配置”，选择“刺激强度对骨骼肌收缩的影响”或“刺激频率对骨骼肌收缩的影响”项目。
系统进入信号记录状态。
仪器参数：放大倍数100~200，耦合方式DC（下限频率DC），上限频率10Hz，采样间隔1~5ms。
2．蟾蜍坐骨神经腓肠肌在体标本制备（1）毁脑脊髓参见实验1。
（2）剥去一侧下肢自大腿根部起的全部皮肤，然后将标本俯卧位固定于蛙板上。
（3）在大腿背内侧的股二头肌与半膜肌之间，纵向分离坐骨神经至腘窝处，并在神经下穿线备用。
然后分离腓肠肌的跟腱，穿线结扎，并连同扎线将跟腱剪下，一直将腓肠肌分离至膝关节。
在膝关节旁钉一大头针，折弯压住膝关节，至此在体标本制备完成。
（4）将腓肠肌跟腱的扎线固定在张力换能器悬臂梁上，不宜太紧，此连线应与桌面垂直，调节微距调节器，将前负荷调至2~5g。
（5）把穿好线的坐骨神经轻轻提起，放在刺激电极上，应保证神经与刺激电极接触良好。
实训一 刺激与反应
2. 剪除躯干前部、内脏及剥皮：用左手拇指和食指捏住蟾蜍腰 部，在其骶髂关节水平以上1～2cm处用粗剪刀剪断脊柱，使蟾蜍头与内 脏自然下垂,剪去头部、前肢及所有内脏(注意勿损伤坐骨神经)，留下
两后肢、部分脊柱及由它发出的坐骨神经。左手捏脊柱断端（注意不要 握住和压迫神经），右手捏住其上的皮肤边缘，向下剥掉全部后肢皮 肤。
3. 分离两腿：用手术镊夹住脊柱并将标本提起，将背面向上，使 尾骨上翘，用粗剪刀剪去尾骨尖（注意勿损伤坐骨神经），然后沿中线 用将脊柱剪为两半，并从耻骨联合中央剪开两侧大腿，这样两腿即完全 分离。将两条腿浸于盛有任氏液的培养皿中。
4. 分离坐骨神经：将一条蟾蜍的小腿背侧和脊柱腹侧向上，用刨 钉固定于蛙板上。用玻璃分针沿脊柱向下分离坐骨神经，再循坐骨神经 沟（股二头肌及半膜肌之间的裂缝处），用玻璃分针小心分离，剪断坐 骨神经的所有分支，直至膝关节处。神经完全暴露后，用粗剪刀剪下一 段与神经相连的脊柱，并剪除全部大腿肌肉，用粗剪刀将股骨刮干净， 然后在股骨中部剪去上段股骨，保留的部分就是坐骨神经小腿标本。
③继续增加刺激强度（阈上刺激），观察肌肉收缩反应是否也相应 增大（即生物信号采集处理系统上记录的曲线是否相应增高）。
④继续增加刺激强度，直至肌肉收缩曲线不再继续升高为止。找出 刚能引起肌肉出现最大收缩的最小刺激强度（最大刺激强度）。
2. 观察刺激频率对骨骼肌收缩的影响 ①选择实验项目： 点击“实验”菜单，选中“常用生理学实验/刺 激频率对骨骼肌收缩的影响”。 ②记录观察：启动记录按钮，用最大刺激强度的连续刺激，刺激频 率按1 Hz、2 Hz、3 Hz、4Hz 、5 Hz、10Hz、15 Hz、20 Hz、25 Hz、 30 Hz逐渐增加，分别记录不同频率时的肌肉收缩曲线，观察不同频率 时的肌肉收缩变化。 【实训注意事项】 1. 毁损脑脊髓时，防止蟾蜍耳后毒液射入眼内。 2. 制备标本时尽量避免手和金属器件触碰坐骨神经和腓肠肌。 3．随时用任氏液湿润坐骨神经-腓肠肌标本，使标本具有良好的兴 奋性。 4．做腓肠肌最大收缩时，刺激强度不宜太大，否则会损伤神经。 5．在观察刺激频率对腓肠肌收缩的影响时，一次连续刺激不要超 过10s，在肌肉收缩后，应间隔30s后再作下一次刺激。 【知识拓展】
1生理学实验
（1）刺激系统：是对欲研究的对象施加刺激，引起其生 理功能变化（即产生兴奋）的一套仪器设备。多种刺激 因素，如光、声、电、温度、机械及化学因素都可兴奋 组织，使其产生生理活动的变化。但生理实验中应用最 多的还是电刺激，因为电刺激较容易控制、对组织没有 或损伤很小，引导方便，可重复使用。电刺激系统包括 电子刺激器、刺激隔离器和各种电极。 （2）引导、换能系统：生理功能变化的信号只有用一定 的议器设备显示、记录下来才有研究的价值。因此需要 有一定的装置能将其引导到显示、记录仪器上。若生理 信号是电信号引导系统可能是引导电极。包括记录单细 胞活动的玻璃微电极和记录一群细胞电活动的金属电极 。若生理现象为其他能量形式时，如机械收缩、压力、 振动、温度和某种化学成分变化等，都需要将原始生理 信号转换为电的信号加以引导，这就是各种形式的换能 器。
Pclab 生物医学信号采集处理系统
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作业
预习坐骨神经-腓肠肌标本的制备。 预习坐骨神经-腓肠肌标本的制备。 预习动作电位和神经干不应期形成原理。 预习动作电位和神经干不应期形成原理。 请查阅大量相关材料设计一个实验测量神 经干动作电位及其速度。 经干动作电位及其速度。
（3）信号调节放大系统：有的生理信号较为微弱，尚需 进行适当的放大。信号调节系统是一种放大器或放大器 的组合，对信号基线的位置和输出信号幅度的高低（增 益，信号的Y轴）进行调节。最原始的经典仪器是各式 各样的杠杆、玛利式气鼓、各种检压计等、现代仪器设 备包括示波器、记录仪中的放大器部分和专用的前置放 大器、微电极放大器等。 （4）显示与记录系统有用纸带记录、显示屏记录或显示 信号的仪器。通过调节相关的旋钮调节走纸速度或扫描 速度（信号的X轴）将信号扩展开来。记纹鼓是一种较 为原始的经典记录仪。 由于计算机技术的发展。计算机生物信号采集处理 系统已在生理学实验中广泛应用，有替代刺激器、放大 器、示波器和记录仪的趋势。
机能实验设计
机能实验设计机能学实验设计不同浓度乙醇对家兔离体小肠平滑肌活动的影响班级：临床1302学号：132203118姓名：秦佳睿课题名称：不同浓度乙醇对家兔离体小肠平滑肌活动的影响设计思路中华酒文化从杜康酿酒至今已有数千年的历史，酒文化的形式发展也从单一的独自品味酌酒演变成当下形式多样的“酒文化”。
劝酒敬酒更是在“酒文化”的特色之一。
然而，当下有很多人在“享受”酒文化乐趣的同时，过度饮酒导致健康损害，引发事故悲剧的现状，也令人十分担忧。
乙醇进入人体，能产生多方面的破坏作用。
它使神经系统从兴奋到高度抑制，严重地破坏神经系统的正常功能。
据临床观察和流行病学调查表明，乙醇摄入过多可导致心肌病变、胃炎、溃疡等，还可使高血压病的发病率升高【1】【2】。
常饮酒的人喉癌及消化道癌发病率明显增加。
【3】【4】消化道是乙醇进入人体最先受刺激的部位，有报道，乙醇进入胃内可造成胃粘膜损伤【5】。
乙醇对心肌细胞钠离子跨膜内流有一定抑制用,对心肌细胞内贮存的钙离子释放有显著抑制作用。
因认为乙醇对心肌细胞收缩的抑制作用可能是通过改变肌水平或肌浆对钙离子的转运而实现的【6】,但不影响细胞外跨膜内流。
乙醇对小肠平滑肌的抑制作用可能与乙醇抑制钠离子、钙离子转运有关。
本实验以家兔离体小肠为标本，观察不同浓度乙醇对离体小肠平滑肌的影响，进一步了解乙醇与人体健康的关系。
一、材料和方法（一）实验对象及分组选用体重为2-3kg健康家兔15只，雌雄不拘。
（二）材料1、器械：恒温浴槽装置一套（麦氏浴槽、恒温控制仪、氧气）、万能支架、双凹夹、烧杯、1ml注射器、手术器械。
2、仪器：生物信号采集处理系统、张力换能器。
3、药品：台式液、乌拉坦、不同浓度乙醇(5%、10%、15%、17.5%)。
【厂家批号】▲麦氏浴槽: 北京凯辉盛达科技发展有限公司 ,KMYC▲恒温控制仪：博宇创智（北京）科技发展有限公司,XD861-A▲万能支架：北京凯辉盛达科技发展有限公司,KWNJ-2▲双凹夹：北京凯辉盛达科技发展有限公司,KHDJ▲注射器：江苏治宇医疗器材有限公司,1ml▲手术器械：深圳市瑞沃德生命科技有限公司,RWD▲生物信号采集处理系统：南京美易科技有限公司,MedLab－U/8c502▲张力换能器：北京众实迪创科技发展有限责任公司,ZS▲台式液：南京森贝伽生物科技有限公司,SBJ-0213▲乌拉坦：上海麦恪林生化科技有限公司,U820333▲无水乙醇：上海高朗化工科技有限公司,L05002（三）实验步骤与方法1、家兔离体小肠平滑肌标本的制备家兔在实验前24h 禁止进食，自由饮水。
休克实验报告
家兔失血性休克及其抢救实验人员5人第2组班一、实验目的1. 复制家兔失血性休克模型，观察少量失血和大量失血对家兔动脉血压、心率、皮肤和粘膜颜色的影响。
探讨其发生机制。
2. 用颈外静脉输血和输液的方法抢救失血性休克，观察抢救过程中家兔动脉血压、心率、皮肤和粘膜颜色的变化。
二、实验材料和方法实验器械：兔手术台，常规手术器械，注射器，动脉夹，动脉插管，电刺激连线，血压换能器，三通管，铁架台，棉线，纱布实验仪器：电脑，RM6240生物信号采集系统实验药品：20%氨基甲酸乙酯，肝素，生理盐水0.1ml/10g三、实验对象家兔1只由浙江中医药大学动物实验中心提供四、实验步骤1、仪器调试：首先打开电脑，选择MedLab生物信号处理系统；从第1、2、3通道中选择1个通道，记录动脉血压(记录平均动脉血压、收缩压、舒张压和脉压)。
其次将血压换能器连接线与相应的通道相连，检查换能器是否正常,加肝素溶液排除空泡，先清零，血压0mmH2、家兔称重、麻醉和固定取家兔一只，称重：2.8Kg ，用20%氨基甲酸乙酯以5ml /Kg（体重）, 耳缘静脉缓慢注射麻醉, 共注射14ml, 至呼吸深而慢、反射迟钝（角膜反射、夹肢反射）为止。
把兔子以背位固定法固定。
3、麻醉起效后手术颈部手术——左颈总动脉、右颈外静脉、右颈总动脉插管（1）颈部备皮，作颈部，正中3～5cm切口，左右颈总动脉分离，穿线标记，备用。
（2）左颈总动脉插管术---测血压动脉插管及换能器肝素化，左颈总动脉远心端结扎，近心端动脉夹夹闭，动脉前壁倒“V”切口动脉插管插入，结扎固定。
放开动脉夹记录正常动脉血压(平均血压、脉压差、心率)。
（3）右颈外静脉插管术—输血输液排掉输液管中的空气。
右颈静脉近心端动脉夹夹闭，远心端结扎，静脉前壁倒“V”切口，输液管插入，固定。
缓慢输液，保持通畅。
（4）. 右颈总动脉插管术——失血造模用肝素抗凝剂排掉50ml注射器（其中保留少许肝素液）和动脉插管中空气，右颈总动脉远心端结扎，近心端动脉夹夹闭，动脉前壁倒“V”切口动脉插管插入，结扎固定。
呼吸运动的调节实验教案
4、启动MedLab生物信号采集处理系统,点击菜单“实验/常用生理学实验”，选择“呼吸运动的调节”，调用己设置好仪器参数的文件，开始采样观察。
5.观察项目
首先观察正常呼吸曲线。
(l)增加吸入气中的C02浓度:将装有C02的球胆通过一细塑料管插入气管套管一侧管中.打开球胆的夹子.使一部分C02随着吸气进入气管注意，一旦呼吸有所变化应迅速停止CO2的吸入,吸入过量的CO2会造成兔的死亡。观察吸入高浓度的C02对呼吸运动的影响,及去掉CO2球胆后呼吸运动的恢复过程.
在巡视中发现问题和解答学生提的问题，启发和指导学生解决问题。
实验结果记录和分析：将记录到的各种实验观察项目呼吸运动曲线进行比较并进行分析。
介绍预期结果和解释，比较并分析实验结果与预期结果不同之处。
实验结果与预期结果不符，可能原因：气管插管侧管与气囊或长橡皮管相连处密封不良有漏气；静脉注射乳酸溶液，药物漏出剂量不够。
呼吸节律respiratory rhythm缺氧hypoxia(anoxia)
吸气切断机制inspiratory off-switch mechanism
肺牵张反射pulmonary stretch reflex or hering-Breuer reflex
40min
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南昌大学医学院教案
实验原理呼吸运动是一种节律性活动,其深度和频率能随机体活动水平而改变.正常情况下的节律性活动是呼吸中枢节律性活动的反映,肺牵张反射是保证呼吸节律的机制之一。随生理状态的不同,其呼吸所发生的适应性变化,是由于各种剌激直接作用于呼吸中枢,或间接地通过各种化学感受器而引起.最终由呼吸中枢通过支配呼吸肌的传出神经,引起呼吸肌产生不同水平的收缩,使呼吸运动随之而改变,以维持血液中正常的O2和CO2的含量。