标准曲线制作考马斯亮蓝法测蛋白质含量
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标准曲线制作—考马斯亮蓝法测蛋白质含量
一、标准曲线
一般用分光光度法测物质的含量,先要制作标准曲线,然后根据标准曲线查出所测物质的含量。因此,制作标准曲线是生物检测分析的一项基本技术。
二、蛋白质含量测定方法
1、凯氏定氮法
2、双缩脲法
3、Folin-酚试剂法
4、紫外吸收法
5、考马斯亮蓝法
三、考马斯亮蓝法测定蛋白质含量—标准曲线制作
(一)、试剂:
1、考马斯亮蓝试剂:
考马斯亮蓝G—250 100mg溶于50ml 95%乙醇,加入100ml 85% H
3PO
4
,
加蒸馏水稀释至1000ml,滤纸过滤。最终试剂中含0.01%(W/V)考马斯亮蓝
G—250,4.7%(W/V)乙醇,8.5%(W/V)H
3PO
4
。
2、标准蛋白质溶液:
纯的牛血清血蛋白,预先经微量凯氏定氮法测定蛋白氮含量,根据其纯度同0.15mol/LNaCl配制成100ug/ml蛋白溶液。
(二)、器材:
1、722S型分光光度计使用及原理
2、移液管使用
(三)、标准曲线制作:
1、
2、以A
595nm 为纵坐标,标准蛋白含量为横坐标(六个点为10ug、20 ug、30 ug、
40 ug、50 ug、60 ug),在坐标轴上绘制标准曲线。
1)、利用标准曲线查出回归方程。
2)、用公式计算回归方程。
3)、或用origin作图,测出回归线性方程。即A
595nm
=a×X( )+6
一般相关系数应过0.999以上,至少2个9以上。
4)、绘图时近两使点在一条直线上,在直线上的点应该在直线两侧。
(四)、蛋白质含量的测定:
样品即所测蛋白质含量样品(含量应处理在所测围),依照操作步骤1操作,
测出样品的A
595nm
,然后利用标准曲线或回归方程求出样品蛋白质含量。
一般被测样品的A
595nm 值在0.1—0.05之间,所以上述样品如果A
595nm
值太大,
可以稀释后再测A
595nm
值,然后再计算。(五)、注意事项:
1、玻璃仪器要洗涤干净。
2、取量要准确。
3、玻璃仪器要干燥,避免温度变化。
4、对照:用被测物质以外的物质作空白对照。
药品的配制(磷酸缓冲液的配制)
一、药品的配制步骤
(一)、实验准备:
1、准备所需的药品和玻璃仪器。
2、洗涤。(怎样洗涤算干净?)
(二)、计算:
1、百分比浓度计算:
1)、G/V比
例如配1% NaCl,称1g NaCl溶于100ml 水。
2)、V/V比:
例如配75%乙醇100ml,75%×100%=100%×X, X=75ml。取75ml无水乙醇,加25ml蒸馏水。
乙醇:乙醚:丙酮=2:1:2配500ml,各取200 ml,100 ml,200 ml混合。3)G/V比:用的较少,如计算灰分中某种元素如Fe的含量。
2、摩尔浓度计算:注:药品的分子量一般在标签中注明。
1)、0.1M或0.1mol/L NaCl配100ml。
M=质量/体积(L)称取NaCl0.1×0.1×40=0.4g 摩尔数=G(g)/摩尔质量2)、0.1mMNaCl配100ml
mM=毫摩尔数/体积(L)称取NaCl 0.1×0.1×40=0.4g
毫摩尔数=G(mg)/摩尔质量
3)、0.1uNaCl配100ml
mM=微摩尔数/体积(L)称取NaCl0.1×0.1×40=0.4mg
微摩尔数=G(ug)/摩尔质量称取NaCl0.1×0.1×40=0.4ug
3、混合溶液配制的计算:
如配3uMEDTA,2.25mM NBT以及60uM 溶液100ml,用50mM磷酸缓冲液配制。
注意:1、分别标定体积计算
2、分别配制再混合,但总体积不能为100ml
(三)、标量:
1、根据需要选择不同量程的天平根据要求去不同精度的测量器,如量筒或移液
管。
2、电子分析天平的使用。
(四)、溶解:
1、根据药品配置要求选择溶剂。蒸馏水,双蒸水,无离子水等。
2、只能用烧杯溶解。注意加入溶剂只能加入总体积的2/3左右,剩余溶剂洗涤
烧杯三次左右,直到洗涤干净。
小常识:药品标签中一般标识有药品的溶解性能和分子式,可根据分子式和所学的常识判断药品的结构和性质特点(包括溶解性质)。
如酸碱两性物质的配制(AA、蛋白质、核苷酸等)如果溶解性能不好可以用稀酸或稀碱促进溶解,但pH应在被要求的围。
3、加热促进溶解,但注意应在配制的围有的药品还需水溶加热较好。如:配0.1%
的淀粉,水裕加热(温度在80-90。C),过量会糊化。
(五)、定容:
1、用容量瓶定容;
2、用玻璃棒引流或用小漏斗;
3、用溶剂加入到接近刻度,然后用滴管加入到刻度。要求刻度与液体凹面相切
为止(眼睛可视);
4、上下窑洞容量瓶几次,混合均匀即可。(注意不再定容了,防止溶液漏掉。) (六)、装入试剂瓶,贴上标签。
标签应注明以下容:药品浓度、名称、配制人、配制日期等。
(七)、清理实验场所。