植物中活性氧的检测方法
植物体内氧自由基含量,过氧化氢,丙二醛,脯氨酸的测定
植物体内氧自由基含量的测定一、目的生物体内的一部分氧分子,在参与酶促或非酶促反应时,若只接受一个电子,会转变为超氧阴离子自由基(O2-)。
O2-既能与体内的蛋白质和核酸等活性物质直接作用,又能衍生为H2O2羟自由基(·OH)、单线态氧(1O2)等。
·OH可以引发不饱和脂肪酸脂质(RH)过氧化反应,产生一系列自由基,如:脂质自由基(·R)、脂氧自由基(RO·)、脂过氧自由基(ROO·)和脂过氧化物(ROOH),自由基积累过多时会对细胞膜及许多生物大分子产生破坏作用。
本实验主要掌握植物体内氧自由基的测定原理及方法。
二、原理在生物体中,氧作为电子传递的受体,得到单电子时,生成超氧阴离子自由基(O2-)。
利用羟胺氧化的方法可以测定生物系统中O2-含量。
O2-与羟胺反应生成NO2-,NO2-在对氨基苯磺酸和α-萘胺的作用下,生成粉红色的偶氮染料(对-苯磺酸-偶氮-α-萘胺)。
取生成物在530nm波长处测定吸光度(A)值,根据A530值可以算出样品中O2-含量。
反应式如下:NH2OH + 2O2-+ H+→ NO2-+ H2O2 + H2O三、材料、仪器设备及试剂1. 材料:花生、绿豆、大豆黄化幼苗的下胚轴及其他植物叶片。
2. 仪器设备:高速冷冻离心机;分光光度计;恒温水浴锅;研钵;试管;移液管;试管架;移液管架;洗耳球等。
3. 试剂配制:50 mmol·L-1磷酸缓冲液(pH7.8)1 mmol·L-1盐酸羟胺17 mmol·L-1对氨基苯磺酸(以冰醋酸:水 = 3 :1配制)7 mmol·L-1α-萘胺(以冰醋酸:水 = 3 :1配制)50nmol·ml-1NaNO2母液四、实验步骤1. 提取液制备称取1g植物叶片放入冰浴的研钵中,加入50mmol·L-1磷酸缓冲液(pH7.8)5ml, 研磨成匀浆,在1000r/min,4℃下离心10min,取上清液再以15000r/min,4℃下离心20min,第二次上清液即为样品提取液。
植物中活性氧的检测方法
植物中活性氧的检测方法
祁艳;王冬梅
【期刊名称】《生物技术通报》
【年(卷),期】2007(000)005
【摘要】主要对超氧阴离子自由基(O2-·)、过氧化氢(H2O2)等活性氧的检测方法,包括化学发光法、分光光度法、荧光染色法,EPR波谱学方法、DAB组织染色法和电子显微技术检测法等进行了综述,并简单介绍了最近发展起来的一些新技术.【总页数】4页(P72-75)
【作者】祁艳;王冬梅
【作者单位】河北农业大学生命科学学院,保定,071001;河北农业大学生命科学学院,保定,071001
【正文语种】中文
【中图分类】Q94
【相关文献】
1.植物中活性氧信号转导及其检测方法研究进展 [J], 赵晓玉;薛娴;卢存福;林金星;万迎朗
2.植物中活性氧的作用 [J], 陈璐瑶
3.活性氧在植物体中的有益作用 [J], 黄家华;吕曼芳;李元强;蒋恒洁;卓声莹;温荣芬;覃祥林
4.植物与病原菌互作中活性氧的检测方法 [J], 徐晓晖;孙骏威;郭泽建
5.浙江大学梁岩研究员团队揭示胞内受体激酶RIPK在植物多层免疫系统中调控活性氧迸发的分子机制 [J],
因版权原因,仅展示原文概要,查看原文内容请购买。
植物叶片中过氧化氢含量测定方法的改进
5、离心:将反应后的离心管放入离心机中,离心10分钟,分离出上层清液。 6、检测:将上层清液滴加到光电倍增管上,记录光子数。
7、结果计算:根据光子数计算过氧化氢浓度。
三、注意事项
1、实验过程中要保持温度和pH值的稳定,以免影响实验结果。 2、选取的植物组织要健康、无病虫害,以保证实验结果的可靠性。
二、实验步骤
1、准备试剂和设备:准备好过氧化物酶、底物、缓冲液、离心管、离心机、 光电倍增管等。
2、样品处理:选取健康的植物组织,用蒸馏水冲洗干净,然后用滤纸吸干 表面水分。将组织切成小块,放入离心管中。
3、添加试剂:向离心管中加入适量的缓冲液、过氧化物酶和底物,充分混 合均匀。
4、反应:将离心管放入37℃恒温摇床中反应30分钟。
本次演示旨在探讨一种快速测定植物叶片叶绿素含量的方法,为相关研究提 供参考。
方法介绍
目前,测定植物叶片叶绿素含量的方法主要包括分光光度法、光谱法、荧光 法等。其中,分光光度法是最常用的方法之一。本实验采用分光光度法中的 Arnon-Noory公式,通过测量叶片在663nm和645nm处的吸光度来计算叶绿素含量。 该公式已被广泛应用于叶绿素含量的快速测定。
3、测量吸光度:将研磨好的匀浆倒入比色杯中,加入适量的80%丙酮溶液, 充分摇匀后,在分光光度计上分别测量663nm和645nm处的吸光度。
4、数据处理:根据Arnon-Noory公式计算叶绿素含量。
1、不同植物的叶绿素含量存在 差异
2、不同部位的叶片叶绿素含量 也有所不同
结论
通过实验,我们探讨了一种快速测定植物叶片叶绿素含量的方法,并发现不 同植物及不同部位叶片的叶绿素含量存在差异。这些差异可能是由植物本身的生 物学特性、环境因素等共同作用的结果。
活性氧检测试验方案
活性氧检测试验方案活性氧(reactive oxygen species,ROS)是一个广泛存在于植物、动物和微生物细胞中的有害物质,在细胞内氧化还原反应中扮演重要角色。
活性氧包括超氧阴离子(O2-)、过氧化氢(H2O2)、羟基自由基(·OH)等,具有强氧化性。
活性氧在正常细胞代谢和维持细胞信号传导途径中发挥重要作用,但在细胞内过量生成会对细胞结构和功能造成损害,引发细胞衰老和死亡,促进炎症反应,以及导致一系列疾病的发生,包括心血管疾病、癌症、神经退行性疾病等。
活性氧检测是研究活性氧与细胞过程和疾病发生关系的重要手段。
常用的活性氧检测方法包括荧光探针染色法、电子自旋共振(electronspin resonance,ESR)法、流式细胞仪法、化学法等。
下面是一种基于荧光探针的活性氧检测实验方案,具体步骤如下:材料:1.细胞培养样本(如细胞系或原代细胞)2.活性氧检测荧光探针(如2',7'-二氯二羟苯基-4'-巯基吡啶,DCFH-DA)3.PBS(磷酸缓冲盐溶液)4.离心管5.无菌1.5mL离心管6.显微镜玻片7.荧光显微镜8.细胞培养基实验步骤:1.把细胞培养在合适的培养基中,保持在37°C的恒温培养箱中,条件合适时使其达到对照组的80%~90%接种度。
2.将细胞分装到离心管中,每支40mL细胞悬液。
3.加入DCFH-DA溶液,终浓度为10mM,使细胞充分吸收荧光探针。
将培养管放入37°C恒温培养箱中孵育30分钟以进行探针进入细胞。
4.将细胞洗涤剂去除,用PBS洗涤细胞3次以除去多余探针。
5.加入1mL的PBS溶液,留出0.5mL的悬液放入1.5mL离心管中,以进行离心。
去除上清液,避免细胞牵涉。
6.加入1.5mLPBS溶液,留出0.5mL的悬液放入1.5mL离心管中离心,去除上清液。
7.将取得的细胞悬液滴在显微镜玻片上,并加盖玻片。
在荧光显微镜下观察细胞活性氧的荧光信号强度。
植物体内氧自由基含量,过氧化氢,丙二醛,脯氨酸的测定
植物体内氧自由基含量的测定一、目的生物体内的一部分氧分子,在参与酶促或非酶促反应时,若只接受一个电子,会转变为超氧阴离子自由基(O2-)。
O2-既能与体内的蛋白质和核酸等活性物质直接作用,又能衍生为H2O2羟自由基(·OH)、单线态氧(1O2)等。
·OH可以引发不饱和脂肪酸脂质(RH)过氧化反应,产生一系列自由基,如:脂质自由基(·R)、脂氧自由基(RO·)、脂过氧自由基(ROO·)和脂过氧化物(ROOH),自由基积累过多时会对细胞膜及许多生物大分子产生破坏作用。
本实验主要掌握植物体内氧自由基的测定原理及方法。
二、原理在生物体中,氧作为电子传递的受体,得到单电子时,生成超氧阴离子自由基(O2-)。
利用羟胺氧化的方法可以测定生物系统中O2-含量。
O2-与羟胺反应生成NO2-,NO2-在对氨基苯磺酸和α-萘胺的作用下,生成粉红色的偶氮染料(对-苯磺酸-偶氮-α-萘胺)。
取生成物在530nm波长处测定吸光度(A)值,根据A530值可以算出样品中O2-含量。
反应式如下:NH2OH + 2O2-+ H+→ NO2-+ H2O2 + H2O三、材料、仪器设备及试剂1. 材料:花生、绿豆、大豆黄化幼苗的下胚轴及其他植物叶片。
2. 仪器设备:高速冷冻离心机;分光光度计;恒温水浴锅;研钵;试管;移液管;试管架;移液管架;洗耳球等。
3. 试剂配制:50 mmol·L-1磷酸缓冲液(pH7.8)1 mmol·L-1盐酸羟胺17 mmol·L-1对氨基苯磺酸(以冰醋酸:水 = 3 :1配制)7 mmol·L-1α-萘胺(以冰醋酸:水 = 3 :1配制)50nmol·ml-1NaNO2母液四、实验步骤1. 提取液制备称取1g植物叶片放入冰浴的研钵中,加入50mmol·L-1磷酸缓冲液(pH7.8)5ml, 研磨成匀浆,在1000r/min,4℃下离心10min,取上清液再以15000r/min,4℃下离心20min,第二次上清液即为样品提取液。
检测植物提取物的抗氧化活性,哪种方法更快捷?
检测植物提取物的抗氧化活性,哪种方法更快捷?在植物提取物检测项目中,抗氧化活性是重要的评价指标之一。
抗氧化活性评价主要是通过试验了解提取物的抗衰老、抗疲劳、抗炎等生物活性的检测项目。
以槐米为例,由于含有丰富的黄酮、皂苔和苗醇等生物活性物质,槐米被公认为是目前最具有抗氧化活性潜力的农业废弃物之一。
槐米中提取的芦丁,具有良好的抗氧化活性,此外在降血清胆固醵、降血压、降血脂、降血糖和提高免疫力等多方面具有良好的功效。
所以,以槐米为资源开发以芦丁、榔皮素等为代表的抗氧化活性物质可以广泛地应用到食品、保健品和药品工业领域,形成高附加值产品用。
因此,抗氧化活性也就成为评价植物提取物产品开发和质量控制的关键指标之一。
主流抗氧化活性评价方法介绍目前,植物提取物中抗氧化活性评价方法主要根据受试对象可以分为体内法和体外法二大类。
体内方法以丙二醛、超氧化物歧化酶、谷胱昔肽等为指标,测定其含量来评价体内抗氧化活性的高低。
体外抗氧化评价体系则以自由基清除法、氧化还原法为主。
体内方法的优势是更接近人体结果,但一般费时费力,且只能反映某一指标活性的高低。
体外方法则很好地弥补了体内法的缺点。
其中,11-二苯基-2-三硝基苯胧(DPPH)法是应用最广泛的抗氧化测定方法。
必须注意的是,常规的比色皿模式的DPPH测定法将DPPH溶液与样品直接混合,因此检测得到的是样品总的抗氧化活性。
然而,植物提取物原料通常是多元抗氧化活性物质混合物。
当这些物质混合在一起被DPPH法测定的时候,相互之间可能存在抗氧化拮抗或协同的效应,导致检测评估结果偏低或者偏高。
此外,在很多评价任务中,仅仅测定混合物样品的总抗氧化性常规的抗氧化活性评价方法基于DPPH分子与自由基混合后体系的颜色变化,利用紫外-可见分光光度计监测其吸光度值变化可以实现对样品中总抗氧化活性的定量分析。
但必须注意的是,这种抗氧化评价方法有一个固有的缺点:检测选择性差。
更确切地说,当样品中含有两种或者两种以上的抗氧化活性物质的时候,分析结果无法区分每一种物质的抗氧化活性高低。
活性氧的检测方法
展。直到 1969 年 McCord 和 Fridovich[ 1] 发现 了清 除 超氧 化物 自由 基的 超氧 物 岐化 酶 ( SOD) 并研究其生物学作用, 提出了氧毒性 的超氧化物自由基学说后 , 人们才开始逐步 认识到自由 基在生物 体内存在 的危害 , 同 时 , 由于分子生物学的迅猛发展, 研究短寿 命的自由基的方法有所突破, 带动自由基生 物学的发展 , 使自由基生物学这门学科渗透 到医学、 植物生理学、 病理学等许多学科中, 显示出其极大的发展前景。 生物学、 医学最先研究活性氧的方法, 有脉冲射解 、 快速停流 、 顺磁共振和自旋 搜集技术 [
[ 3] .
第2期
陈惠萍等:
活性氧的检测方法
15
SOD 作用的底物 , 故原则上许多检 测 SOD 的方 法, 如化 学 发光、 NBT ( 氮 蓝四 唑 ) 还 原、 细胞色素、 连苯三酚、 肾上腺素都可以用 来检测生物系统的 O2. , 但干扰因素很多, 实 际应 用时困难不 少[ 4~ 6] 。 1976 年 Elest ner 等 提出用羟胺氧化反应来检测生物材料 的 O 2. 。此法灵敏 度高, 专一性好 , 药 剂价 廉。能同时检测大量样品。但叶绿素等色 素含量严重影响比色测定。王爱国等 为 了消除这些干扰 , 对实验步骤进行了改进, 并在分离时以乙醚取代正丁醇 , 检测了四季 豆幼苗叶片 叶绿体在光 暗下衰老 过程 O2 产生速率, 其结果与 McRac 等
1
、 水稻
[ 17]
、 眉豆
[ 18]
等植物上观察到
的现象类似。 4
1
O2 的检测 早在 1930 年 , M ulliken 通过 分子轨道
的计算就已 预言单 线态氧的 存在, 但 直至 1963 年 Khan 和 Kasa 发现 可以 用 NaOCl 和 H 2 O2 反应来产 生单线态氧才 使该领域 研究 得以迅速发展。用于1 O 2 检测的 方法 有化学发光法、 猝灭剂抑制法、 在2 H 2 O 中延 长寿命法、 产物分析法等几种方法 。其 1 中最直接的检 测方法是观察 O2 的化学发 光, 这种方法需要聚集较大量的1 O2 才能检 测出来。使用1 O 2 猝灭剂抑制 1 O2 参与的反 应, 最常使用的是类胡萝卜素, 它以物理方 式或猝灭 1O 2 而自 身并不发生任 何化学反 应。此外还有叔胺、 维生素 E 、 氮化合物、 四 甲基 乙烯、 2, 5
实验九 植物体中活性氧的组织化学定位
植物体中活性氧的组织化学定位——荧光探针法一、实验目的1.掌握活性氧(ROS)在植物生长发育及逆境响应中的重要作用。
2.掌握荧光探针法测ROS 的组织定位。
二、实验原理酯化形式的H2DCF(2',7'-二氯二氢荧光素)可以穿过细胞膜,自由进入细胞。
当进入细胞后,荧光染料H2DCFDA(2',7'-二氯二氢荧光素二乙酸酯)被细胞内的酯酶脱去乙酰基,形成H 2 DCF,困在细胞中,无荧光的后者随后被过氧化物氧化成具有富含高荧光的DCF。
DCF的生成速率可以被荧光计、荧光显微镜和激光共聚焦显微镜等检测。
H2DCFDA是Molecular probes(Invitrogen)和CALBIOCHEM生产的最常见的ROS 荧光探针,它检测的是活细胞中的总的ROS。
三、实验材料、试剂和仪器1.实验材料:Col-0 生态型拟南芥幼苗(分别用平板和垂直板培养)。
2.实验试剂:①荧光探针2',7'-dichlorodihydrofluorescein diacetate(H2DCFDA, CAL BIOCHEM), NADPH 氧化酶抑制剂DPI(CALBIOCHEM)均配成5mg/ml 的贮存液(溶解在DMSO中,摩尔浓度分别为10.26和15.89 mmol/L),-80℃条件下避光贮存;②Tris-HCl缓冲液。
3.实验仪器:荧光显微镜、抽气泵、脱色摇床、1.5mL离心管、单面刀片、牙签、载玻片、盖玻片、移液枪等。
四、实验步骤1.拟南芥培养将拟南芥种子(Col-0)表面灭菌,用无菌水清洗3次,然后放在有固体MS培养基(pH5.8)的培养皿中培养,先在4℃春化2d,然后转移到生长室中。
生长室光照时数16h/8h(白天/黑夜),光照强度150μmol.m-2.s -2的,培养温度22~23℃。
2. DCFDA 荧光探针测定ROS总含量对照组实验:取室温条件下的拟南芥主根距根尖0.5cm切段,25℃下黑暗中在10μM 过氧化氢荧光探针H2DCFDA中培育1h;用10mM的Tris-HCl缓冲液中漂洗2次,每次15min;漂洗后,立即做成临时玻片在激光共聚焦显微镜上进行荧光发光观察(激发光495nm,发射光515nm)。
活性氧检测试验方案
活性氧检测试验方案活性氧检测是一种用于评估物质或生物体中产生的活性氧(ROS)水平的方法。
ROS是一类极具活性的氧化物质,可在正常细胞代谢中产生,并参与多种生理过程。
然而,当ROS的产生超过细胞的抗氧化能力时,就会导致氧化应激,对细胞和组织造成损害,并与一系列疾病的发生和发展相关。
为了测量活性氧的水平,可以使用一系列的试剂和方法。
以下是一个可能的活性氧检测实验方案:实验材料:1.活体组织样本(例如细胞培养物、小鼠肝脏组织等)2.PBS缓冲液3.DCFDA(二氟荧光二乙酸盐)染料溶液4.活性氧产生剂(例如H2O2)5.抗氧化剂(例如维生素C)6.血红素(免疫染色用)实验步骤:1.准备工作:a.将DCFDA溶液按照说明书的要求稀释到适当的浓度。
b.用PBS缓冲液洗涤和预处理样本,去除可能影响实验结果的其他物质。
2.观察基础水平:a.取一小部分样本,不加任何试剂,放入显微镜观察台下。
b.使用适当的增强型荧光显微镜观察样本的荧光强度和分布。
3.活性氧产生实验:a.取适量的样本放入显微镜观察台下。
b.添加一定浓度的活性氧产生剂(例如H2O2),混匀。
c.立即在显微镜观察荧光信号的变化。
d.记录荧光信号的强度和分布。
4.抗氧化剂实验:a.取适量的样本放入显微镜观察台下。
b.添加一定浓度的抗氧化剂(例如维生素C),混匀。
c.立即在显微镜观察荧光信号的变化。
d.记录荧光信号的强度和分布。
5.数据分析:a.使用图像分析软件测量荧光信号的平均强度和荧光染色的面积。
b.对每个样本的数据进行统计分析,如平均值、标准误差等。
c.使用统计学方法(如t检验或方差分析)比较不同处理组之间的差异。
总结:通过以上步骤,可以获得活性氧的水平,评估其在不同条件(如活性氧产生剂和抗氧化剂的存在与否)下的变化。
这个实验方案可以用于研究活性氧在细胞和组织中的作用,以及评估抗氧化剂的功效。
活性氧的检测方法
活性氧的检测方法
活性氧的检测方法有多种,常用的方法有以下几种:
1. 化学反应法:通过活性氧与某些化学试剂(如氧化还原剂、荧光探针等)发生反应,生成有颜色或荧光的产物,再利用光谱仪或荧光光谱仪测定其吸光度或荧光强度,从而间接测定活性氧的含量。
2. 电化学法:利用电化学方法,如电极或电化学传感器,测定活性氧的产生量或消耗量,从而反映活性氧的含量。
3. 生物学方法:利用活性氧对生物体的影响进行测定,如细胞毒性实验、DNA 损伤实验等。
4. 光生光化学方法:利用活性氧对某些光敏染料或光敏细胞的氧化反应,通过测定产生的光信号,来定量测定活性氧的含量。
5. 磁共振法:通过核磁共振技术,利用活性氧与某些标记剂(如自由基捕获剂)的相互作用,从而测定活性氧的含量。
需要注意的是,不同的活性氧种类具有不同的化学性质和反应特点,因此选择合适的检测方法需要根据具体的活性氧种类和实验需求进行选择。
活性氧测定的基本原理与方法
活性氧测定的基本原理与方法活性氧测定是指测定细胞或生物体中活性氧分子的浓度,活性氧是一类具有高度活性的氧分子,包括一氧化氮(NO)、超氧化物自由基(O2-)、羟基自由基(•OH)和过氧化物自由基(ROO•)等。
活性氧在生物体内的生成与清除是维持生物体正常代谢的重要环节,但过多的活性氧会对细胞结构和功能产生损害,甚至引发疾病。
1.超氧自由基(O2-)测定方法:超氧自由基的测定通常采用还原性品质荧光法。
超氧自由基与荧光染料2,7-二氨基苯基荧光素(DHE)反应生成有荧光属性的产物。
通过测定荧光强度来反映细胞或生物体中超氧自由基的浓度。
2.羟基自由基(•OH)测定方法:羟基自由基的测定通常使用t-Butanol为指示剂,通过和羟基自由基发生反应形成酚类产物,并通过分光光度计测定反应后酚类产物的吸光度来测定羟基自由基的浓度。
3.过氧化氢(H2O2)测定方法:过氧化氢是常见的活性氧物种之一,可以通过酶法或化学法进行测定。
其中酶法常采用过氧化酶(catalase)催化过氧化氢与4-氨基安替比林(4-AAP)反应生成有色产物,并通过分光光度计测定反应后产物的吸光度来测定过氧化氢的浓度。
4.一氧化氮(NO)测定方法:一氧化氮是一种重要的信号分子,在体内具有多种生理功能。
目前常用的一氧化氮测定方法是Griess法。
该方法将一氧化氮转化为一种比较稳定的化合物(例如亚硝酸盐),再通过与N-(1-Naphthyl)ethylenediamine反应生成有色产物,通过分光光度计测定反应后产物的吸光度来测定一氧化氮的浓度。
除了上述方法外,还有许多其他常用的活性氧测定方法,如电子自旋共振(ESR)法、化学发光法、荧光法等。
总之,活性氧测定方法可以根据具体的活性氧物种的特性和试剂的选择进行优化,通过测定与活性氧反应后的产物或信号来反映活性氧的浓度。
这些方法在生物医学研究和临床实践中具有重要的应用价值,可用于研究活性氧在生物体内的生成与清除机制,为研究相关疾病的发生机制和寻找相关的治疗方法提供参考。
活性氧测定各种方法及原理
评述与进展 活性氧测定的基本原理与方法林金明3 屈 锋 单孝全(中国科学院生态环境研究中心,北京100085)摘 要 综述了过氧化氢(H 2O 2)、一重态氧(1O 2)、超氧阴离子自由基(・O -2)以及羟自由基(・OH )等活性氧的测定方法。
侧重介绍活性氧的化学反应法、捕捉法和直接测定法的基本原理和最新的进展情况,并比较了这几种方法的各自特点。
关键词 活性氧,化学发光,自由基,评述 2001211208收稿;2002205205接受本文系中国科学院“百人计划”和国家杰出青年科学基金资助项目(N o.20125514)1 活性氧氧是生命运动过程中不可缺少的一种气体,人们一旦处于缺氧或者供氧不足的环境中,就会感到憋气的痛苦甚至死亡。
所以,自从1770年代初英国人Joseph Priestley 发现氧以来,氧一直被人们认为是一种对人体百益而无一害的气体。
可是,科学技术迅速发展起来的今天,我们知道,不管是空气中的氧还是水中的溶解氧都具有较高的氧化性,与一般的金属铁一样,处于空气中的人体各部位都在不断地受到氧的腐蚀而“生锈”,当然这种腐蚀与铁不同,它体现在人体的细胞水平上。
特别是人体各种器官随着年龄的增大不断地老化更是这种腐蚀“生锈”的直观表现。
1969年McC ord 与Fridovich 1发现,在生化反应过程中O 2获得一个电子还原生成超氧自由基(O -2),进而经过红血球的分离精制后获得O -2的清除灭活酶,并命名为超氧化物歧化酶(superoxide dismultase ,S OD )。
这一发现激发了大批的科学研究者致力于O -2的生成过程、反应活性、毒性、生理和病理等等各方面的研究,去探索解明S OD 在生理学上的意义。
同时由O -2衍生出来的过氧化氢(H 2O 2)、羟自由基(・OH )、激发态氧(一重态氧或称单线态氧,1O 2)也受到了人们的重视。
近10多年来,活性氧在人体内的作用受到人们极大的关注,报道了大量有关活性氧,特别是超氧自由基和羟自由基与机体细胞的许多功能活动以及各种疾病,如癌、动脉硬化、糖尿病、心脑血栓、缺氧再灌注综合症、感染以及衰老效应等相关的研究论文和著作2~8,引起人们对活性氧的普遍兴趣,从而激发了人们更深入地去研究活性氧的各种特性,开发各种相关的抗氧化、抗衰老物质,在医学和分子生物学领域已成为一项广泛引起重视的研究课题。
植物中活性氧的检测方法_祁艳
生物技术通报BIOTECHNOLOGYBULLETIN·技术与方法·2007年第5期收稿日期:2007-03-30基金项目:国家自然科学基金资助项目(No.30671244);植物生理学与生物化学国家重点实验室开放课题资助项目(No.PPB04006);河北省自然科学基金资助项目(No.303180;No.C2005000220)作者简介:祁艳(1981-),女,山西人,硕士,研究方向:植物抗病生理通讯作者:王冬梅,E-mail:dongmeiwang63@hotmail.com由于活性氧(reactiveoxygenspecies,ROS)具有很高的反应活性,它们可以与许多不同的化合物发生反应,根据反应生成物或者反应物的变化程度可以间接地对ROS进行定量或者定性分析。
通常采用的方法有化学发光法、紫外-可见吸收分光光度法、荧光染色法及DAB组织染色法等,电子显微技术检测法也受到研究者的青睐。
活体中ROS的直接检测对于解释生命机体的各种生理反应有着重要的意义。
目前能够用于解决该问题的方法比较有限,已报道的有电子顺磁共振技术(electronparamagneticresonance,EPR),又称电子自旋共振技术(electronspinresonance,ESR)。
EPR是一种检测自由基的波谱学方法,可以直接检测O2-·,·OH等活性氧自由基及参与其形成的过渡金属离子的化学变化[1,2],因此该法受到植物界工作者的广泛关注。
下面对目前实验室中所用到的检测植物体内ROS的方法逐一进行介绍。
1植物体内ROS的检测方法1.1化学发光法化学发光法是活性氧检测中常用的实验技术,其原理是化学发光试剂与活性氧反应生成激发态的产物,产物中的电子经非辐射性跃迁回到基态而放出光子。
常用的化学发光试剂有鲁米诺(luminol)、光泽精(lucigenin)、甲壳动物荧光素(如海萤荧光素)等。
实验报告十 单光子分析仪与植物细胞活性氧检测
课程名称:生物仪器分析 指导老师: 成绩:_______________________ 实验名称:单光子分析仪与植物细胞活性氧检测 实验类型:探究一、实验目的和要求(必填) 二、实验内容和原理(必填) 三、主要仪器设备(必填) 四、操作方法和实验步骤(必填)五、实验数据记录和处理 六、实验结果与分析 七、讨论、心得一、实验目的和要求1、了解并掌握单光子分析仪的原理。
2、掌握用单光子分析仪测定植物活性氧的方法。
二、实验内容和原理 内容:1、用单光子分析仪测定植物活性氧。
2、同时制作对照组。
原理:1、植物产生活性氧原理植物与病原物互作后的信号传递激活了包括活性氧 (AOS :active oxide species)的生成和其它各类防卫反应。
活性氧进发(oxidative burst)被认为是过敏反应(HR :hypersensitive response)的特征性反应,也是植物对病原物应答的最早期反应之一。
AOS 主要由病原菌诱导产生,其中非亲和病菌诱导AOS 进发强烈且持续时间长。
植物在处于一些逆境(stress)条件下,(例如:低温、紫外光),也能产生AOS 。
植物体内主要的AOS 是:超氧阴离子(•O 2-)、过氧化氢(H 2O 2)、羟自由基(•OH-)。
它们之间可以相互转变。
其中•OH-极为活泼,能与有机化合物作用产生自由基链反应,氧化细胞质膜成分,使酶失活、核酸降解,从而导致细胞损坏,组织坏死,产生过敏反应。
植物具有完整的体系来调节活性氧的生成和积累,确保有效信号传导,这样既可使植物能抑制病菌 的感染和再度侵入,又能使自身少受氧化胁迫。
2、化学发光法检测活性氧H 202可以氧化化学发光试剂如发光氨(鲁米诺)并释放出光子(photon),根据发光强弱得以定量测定。
该方法是测定光子数而非反应的化学产物,在植物活性氧检测中应用也相当广泛。
3、单光子分析仪原理单光子分析仪组成:图像增强器、锥形光导纤维束、读出相机 图像增强器组成:输入窗口、光电阴极、MCP 、荧光屏工作原理:光电阴极将输入的光子转换为光电子,通过MCP 将光电子增强,荧光屏将增强的光电子重新转换为光子,做到将微弱的光增强的原理。
活性氧的检测方法
甲基 呋喃、 9, 10 二 苯基
2
酮。O2 的寿命在 H 2 O 中比在 H 2 O 中长得 多, 故在 H 2 O 中寿命延长法可以确定某个 反应是否产生1 O 2 或有1 O2 的参与。产物分 析法也可以用于1 O2 的检测。有人认为1 O2 的检测比其它活性氧困难。在微粒体等完 整细 胞器中检测 1 O2 已 获得成功。但 在植 物方面, 尤其是完整叶绿体中 O2 的检测仍 然不完善。蒋 明义等 [ 20] 参照 Chakraborty 和 T ripat hy [ 21] 所采用的方法 , 以 H is( 组氨 酸) 作为1 O2 的分子捕获 剂, 用分 光光度法 检测 NDA( 对亚硝基二甲基苯胺) 的漂白反 应作 为1 O2 产生的指标。检测了水稻 叶绿 体中1 O 2 的产生 , 实验证实, 在- 0. 8MP a 渗 透胁迫及 250 mol. m
用电子自
旋共振检测结果规律相似。这两者各有优 点, 电子自旋共振法虽操作相对简便, 但所 用仪器昂贵, 而羟胺氧化法所需费用则要低 得多。运用羟胺氧化法时还必须严格控制 反应系统 pH< 8. 0, 并尽可能降低反应中的 溶解氧及铁含量 , 这样测出的 O 2. 产生速率 才更接近实际水平。 2 OH 的检测 由于 OH 是生 物 体 内最 活 泼 的活 性 氧, 寿命极短, 故给检测带来了困难。过去 人们主要是根据 SOD 和 CAT 对其产生的 抑制作用以及 OH 清除剂 ( 如乙醇 、 甘露 醇、 叔丁醇、 苯甲酸钠、 生育酚等) 对其产 生的 清除作用 等来估测 OH 水平。此 外, 还可用 DMPO ( 5, 5 二 甲基 1 吡咯 啉 N 氧化物 ) 作为自旋捕获剂进行电子顺 磁共振 ( EPR ) 自旋捕获以及检测蛋氨酸 形成乙烯的速率等估测 OH 的产生[
活性氧检测试验方案
活性氧检测试验方案活性氧检测试验方案一:实验原理活性氧检测试剂盒(Reactive Oxygen Species Assay Kit)是一种利用荧光探针DCFH-DA进行活性氧检测的试剂盒。
DCFH-DA本身没有荧光,可以自由穿过细胞膜,进入细胞内后,可以被细胞内的酯酶水解生成DCFH。
而DCFH不能通透细胞膜,从而使探针很容易被装载到细胞内。
细胞内的活性氧可以氧化无荧光的DCFH生成有荧光的DCF。
检测DCF的荧光就可以知道细胞内活性氧的水平。
本试剂盒提供了活性氧阳性对照试剂Rosup,以便于活性氧的检测。
Rosup是一种混合物(compound mixture),浓度为50mg/ml。
二:实验步骤⑴取20 ul DCFH-DA(试剂盒有100ul)按照1:1000用无血清培养液即20ml稀释DCFH-DA,使终浓度为10微摩尔/ 升。
⑵吸取12ml细胞培养液(细胞浓度为一百万至二千万/毫升)加入24孔板中(设3个阳性对照,3个浓度梯度分别做3个重复,每孔加入1ml细胞培养液),放入细胞培养箱中培养。
⑶培养24小时后去除细胞培养液,每孔加入稀释好的DCFH-DA 1ml (加入的体积以能充分盖住细胞为宜)。
⑷ 37℃细胞培养箱内孵育20分钟。
⑸去除孵育后的DCFH-DA稀释液,每孔加入1ml无血清细胞培养液洗涤细胞(重复洗涤三次,以充分去除未进入细胞内的DCFH-DA)。
洗涤完后每孔加入1ml 细胞培养液。
⑹在酶标仪下使用488nm激发波长,525nm发射波长,实时或逐时间点检测刺激前荧光的强弱即OD值。
⑺实验组中每孔加入已配制好的松茸多糖20ul(浓度分别为5mg/ml、10mg/ml、20mg/ml),对照组中加入阳性对照物Rosup 20ul,放入细胞培养箱内继续培养。
⑻4小时后,在酶标仪下使用488nm激发波长,525nm发射波长,实时或逐时间点检测刺激后荧光的强弱即OD值。
三:数据处理实验组:癌细胞活性氧降低率=(刺激前OD值-刺激后OD值)/刺激前OD值×100%阳性对照组:癌细胞活性氧升高率=(刺激后OD值-刺激前OD 值)/刺激前OD值×100%四:注意事项⑴探针装载后,一定要洗净残余的未进入细胞内的探针,否则会导致背景较高。
植物活性氧ROS酶联免疫分析ELISA
植物活性氧(ROS)酶联免疫分析(ELISA)试剂盒利用说明书(SBJ-P228)本试剂仅供研究利用目的:本试剂盒用于测定植物组织,细胞及其它相关样本中植物活性氧(ROS)含量。
实验原理:本试剂盒应用双抗体夹心法测定标本中植物活性氧(ROS)水平。
用纯化的植物活性氧(ROS)抗体包被微孔板,制成固相抗体,往包被单抗的微孔中依次加入植物活性氧(ROS)抗原,再与HRP标记的活性氧(ROS)抗体结合,形成抗体-抗原-酶标抗体复合物,通过完全洗涤后加底物TMB显色。
TMB在HRP酶的催化下转化成蓝色,并在酸的作用下转化成最终的黄色。
颜色的深浅和样品中的植物活性氧(ROS)呈正相关。
用酶标仪在450nm 波长下测定吸光度(OD值),通过标准曲线计算样品中植物活性氧(ROS)浓度。
标本要求:1.标本收集后及早进行提取,提取按相关文献进行,提取后应尽快进行实验。
若不能马上进行实验,可将标本放于-20℃保留,但应避免反复冻融2.不能检测含NaN3的样品,因NaN3抑制辣根过氧化物酶的(HRP)活性。
操作步骤:1.标准品的稀释与加样:在酶标包被板上设标准品孔10孔,在第一、第二孔中别离加标准品100μl,然后在第一、第二孔中加标准品稀释液50μl,混匀;然后从第一孔、第二孔中各取100μl别离加到第三孔和第四孔,再在第三、第四孔别离加标准品稀释液50μl,混匀;然后在第三孔和第四孔中先各取50μl弃掉,再各取50μl别离加到第五、第六孔中,再在第五、第六孔中别离加标准品稀释液50ul,混匀;混匀后从第五、第六孔中各取50μl别离加到第七、第八孔中,再在第七、第八孔中别离加标准品稀释液50μl,混匀后从第七、第八孔中别离取50μl加到第九、第十孔中,再在第九第十孔别离加标准品稀释液50μl,混匀后从第九第十孔中各取50μl弃掉。
(稀释后各孔加样量都为50μl,浓度别离为1200ng/L,800ng/L ,400ng/L,200ng/L,100ng/L)。
- 1、下载文档前请自行甄别文档内容的完整性,平台不提供额外的编辑、内容补充、找答案等附加服务。
- 2、"仅部分预览"的文档,不可在线预览部分如存在完整性等问题,可反馈申请退款(可完整预览的文档不适用该条件!)。
- 3、如文档侵犯您的权益,请联系客服反馈,我们会尽快为您处理(人工客服工作时间:9:00-18:30)。
生物技术通报
BIOTECHNOLOGY BULLETIN
2007 年第 5 期
植物中活性氧的检测方法
祁艳 王冬梅
( 河 北 农 业 大 学 生 命 科 学 学 院 , 保 定 071001)
摘 要: 主要对超氧阴离子自由基( O 2-·) 、过氧化氢( H2O 2) 等活性氧的检测方法, 包括化学发光法、分光光度法、荧 光染色法, EPR 波谱学方法、DAB 组织染色法和电子显微技术检测法等进行了综述, 并简单介绍了最近发展起来的一些新 技术。
1.3 荧光染色法 运用荧光染色技术可进行活体和离体亚细胞水
平的 H2O2 检测。常用的荧光染料有 2' , 7' -二氯氢化荧 光 素 二 乙 酯 ( dichlorofluorescein diacetate, DCFHDA) 、 4-aminoantipyrine、7-羟-6 甲 基 香 豆 素 ( scopoletin) 、 Amplex Red( N-acetyl-3, 7-dihydrophenoxazine) 及 高 香 草 醛 酸 ( homovanillic acid) 等 。在 辣 根 过 氧 化 物 酶 的 催 化 下 , H2O2 可 氧 化 这 些 物 质 生 成 极 易 检 测 的 发 荧 光 的 物 质 , 此 法 简 便 有 效 , 应 用 广 泛 。有 研 究 者 用 荧 光染色法检测了豌豆( Pisumsativum) 叶片衰老过程中 线 粒 体 、过 氧 化 物 酶 体 中 的 H2O2[10]及 萝 卜 ( Raphanus sativus) 种 子 在 萌 发 过 程 中 经 光 照 、GA、ABA 调 控 下 H2O2 的 释 放 [11]。 Orozco-Ca′rdenas 等 [12]曾 用 Amplex Red 定 量 检 测 了 番 茄 ( Lycopersicon esculentum) 叶 片 提 取 液 中 的 H2O2。 本 研 究 室 陈 晓 波 [13]以 激 发 子-原 生质体简化实验系统模拟叶锈菌侵染小麦叶片的 互 作 体 系 , 利 用 荧 光 探 针 DCHFDA 标 记 H2O2, 并 借 助 激 光 扫 描 共 聚 焦 显 微 镜 ( CLSM) 来 研 究 植 物 抗 病 过 程 中 微 丝 骨 架 与 ROS 的 关 系 , 取 得 了 良 好 效 果 ; 笔者用该法成功检测了受叶锈菌侵染的小麦叶片 中 ROS 的 变 化 ( 待 发 表 ) 。
关键词: 活性氧 检测方法 化学发光 分光光度 荧光染色
Deter minations of Reactive Oxygen Species in Plants
Qi Yan Wang Dongmei
( College of Life Science, Agricultural University of Hebei, Baoding 071001)
电子显微技术检测法应用比较广泛, 其原理是 H2O2 与 氯 化 铈 ( CeCI3) 反 应 生 成 电 子 致 密 物 , 然 后 在透射电镜下观察以 定位、定量 H2O2。Bestwick 等[18] 成 功 运 用 此 法 检 测 了 莴 苣 ( Lactuca sativa) 受 丁 香 假 单 胞 杆 菌 菜 豆 致 病 变 种 ( Pseudomonas syringae pv. Phaseolicola) 侵 染 诱 发 的 过 敏 性 反 应 ( hypersensitive
鲁米诺作为一种有效的化学发光试剂目前仍 受到广泛应用。碱性条件下, 鲁米诺在催化剂( 酶、 Fe2+、Co2+、Ni2+和 Cu2+等 过 渡 金 属 离 子 或 金 属 络 合 物 ) 作 用 下 与 溶 液 中 的 ROS 发 生 氧 化 还 原 反 应 而 导 致 光 子 放 出 , 据 此 可 间 接 检 测 ROS。 本 研 究 室 借 助此法检测了小麦受叶锈菌侵染后细胞间隙液中 活 性 氧 的 变 化 ( 未 发 表 ) 。Imke Ortmann 等 [3]曾 利 用 鲁米诺化学发光体系考察了小麦悬浮细胞受激发 子 刺 激 过 程 中 H2O2 的 产 生 情 况 。但 是 , 鲁 米 诺 既 可 以 与 H2O2 反 应 , 也 可 与 1O2、O2-·及 OH·发 生 化 学 发 光反应从而导致了测定选择性差的问题, 因此许多
1 植 物 体 内 ROS 的 检 测 方 法
1.1 化学发光法 化学发光法是活性氧检测中常用的实验技术,
其原理是化学发光试剂与活性氧反应生成激发态 的产物, 产物中的电子经非辐射性跃迁回到基态而 放出光子。常用的化学发光试剂有鲁米诺( luminol) 、 光 泽 精 ( lucigenin) 、甲 壳 动 物 荧 光 素 ( 如 海 萤 荧 光 素) 等。
荧 光 染 色 法 较 其 它 方 法 的 优 点 是 可 以 直 观 、简 便 地 进 行 H2O2 的 亚 细 胞 定 位 , 不 足 之 处 是 这 种 方 法 检 测 的 H2O2 是 半 定 量 的 。此 外 , 各 种 荧 光 探 针 渗 透能力不同, 可能在细胞的不同部位积累, 得出假 阳 性 结 果 。再 者 , 荧 光 染 料 及 易 淬 灭 , 因 此 观 测 必 须 快速以免影响实验结果。 1.4 二 氨 基 联 苯 胺 ( DAB) 组 织 染 色 法
海 萤 荧 光 素 ( Cypridina Luciferin Analog, CLA) 可 与 O2-·和 1O2 发 生 特 异 化 学 发 光 反 应 , 因 而 用 于 生 物 机 体 内 O2-·及 1O2 的 检 测 。Tomonori Kawano 等 [5]在 研 究 水 杨 酸 ( SA) 诱 导 活 性 氧 ( ROS) 产 生 及 胞 质 钙 离 子 浓 度 升 高 过 程 中 过 氧 化 物 酶 ( POD) 的 作 用 机 制 时 , 成 功 运 用 此 法 检 测 了 烟 草 悬 浮 细 胞 中 O2-· 的 产 生 。 随 后 , 有 研 究 者 [6]开 发 了 一 系 列 选 择 性 较 高 的 化 学 发 光 试 剂 , 其 中 包 括 C LA 的 类 似 物 FCLA ( Fluoresceinyl Cypridina Luciferin Analog) 。 FCLA 发 光 效 率 较 CLA 大 有 提 高 , 因 此 用 其 进 行 生 物 样 品 中 O2-·和 1O2 的 测 定 时 增 强 了 检 测 方 法 的 灵 敏 度 。 1.2 紫外- 可见吸收分光光度法
活 体 中 ROS 的 直 接 检 测 对 于 解 释 生 命 机 体 的 各 种 生 理 反 应 有 着 重 要 的 意 义 。目 前 能 够 用 于 解 决 该问题的方法比较有限, 已报道的有电子顺磁共振 技 术 ( electron paramagnetic resonance, EPR) , 又 称 电 子 自 旋 共 振 技 术 ( electron spin resonance, ESR) 。 EPR 是 一 种 检 测 自 由 基 的 波 谱 学 方 法 , 可 以 直 接 检 测 O2-·,·OH 等 活 性 氧 自 由 基 及 参 与 其 形 成 的 过 渡 金 属 离 子 的 化 学 变 化 [1, 2], 因 此 该 法 受 到 植 物 界 工 作 者 的 广 泛 关 注 。下 面 对 目 前 实 验 室 中 所 用 到 的 检 测 植 物 体 内 ROS 的 方 法 逐 一 进 行 介 绍 。
2007 年第 5 期
祁艳等: 植物中活性氧的检测方法
73
情况下依赖鲁米诺的化学发光法只能作为定量或
者定性分析的辅助手段。 光 泽 精 ( lucigenin) 是 一 种 使 用 较 早 的 化 学 发 光
试 剂 , 碱 性 条 件 下 可 与 H2O2、O2-·等 过 氧 化 物 反 应 生 成 激 发 态 的 N-甲 基 吖 啶 ( N-methylacridan) 。相 对 鲁米诺而言, 光泽精对于活性氧测定的选择性较 高 , 有 报 道 [4]指 出 光 泽 精 只 有 在 O2-·存 在 下 产 生 发 光 现 象 , 但 H2O2 也 可 分 解 产 生 O2-·, 因 此 难 以 定 性 地判断检测结果。
NBT 在 O2-·的 作 用 下 还 原 生 成 不 溶 于 水 的 蓝 色 甲 臢 染 料 , 此 法 测 定 灵 敏 度 高 , 常 用 于 O2-·的 组 织 化 学 定 位 。Fryer 等[7, 8]运 用 这 种 方 法 检 测 了 光 胁 迫 下 拟 南 芥 叶 片 中 O2-·的 产 生 。 由 于 甲 臢 不 溶 于 水, 长时间放置会生成不均一的沉淀物, 因而难以 用 于 测 定 细 胞 或 者 水 溶 液 体 系 中 O2-·随 时 间 推 移 而发生的变化。为了克服这个问题, 水溶性四唑盐 的 研 究 应 运 而 生 。Hiroyuki UKEDA 等[9]发 现 水 溶 性 四 唑 盐 如 XTT, WST-1, WST-8 适 合 于 O2-·的 检 测 , 其 中 WST-1 灵 敏 度 高 、氧 化 态 的 吸 光 度 低 、水 溶 性 好 , 效 果 较 XTT 和 WST-8 更 胜 一 筹 。
紫 外-可 见 吸 收 分 光 光 度 法 中 最 常 用 的 方 法 有 细 胞 色 素 C( cytochrome C) 的 O2-·还 原 法 和 氮 篮 四 唑 ( nitro blue tetrazolium, NBT) 还 原 法 。
具 有 氧 化 活 性 的 细 胞 色 素 C 被 O2-·还 原 而 生 成 于 波 长 550nm 处 有 强 吸 收 的 亚 铁 细 胞 色 素 , 以 此 来 检 测 O2-·的 产 生 。由 于 细 胞 色 素 C 很 容 易 被 其 他 还原剂所还原, 因此一般情况下此法难以准确用于 O2-·的 定 性 分 析 。
收稿日期: 2007-03-30 基金项目: 国家自然科学基金资助项目( No.30671244) ; 植物生理学与生物化学国家重点实验 室开放课题资助项目( No.PPB04006) ; 河北省自