关于冰冻切片的若干问题
冷冻切片方法及注意事项
冷冻切片方法及注意事项一、实验前准备清理实验台及仪器。
开启冷冻切片机并将冷冻切片机预降至所需温度（- 15~-20 ℃*）。
准备好处理好的载玻片、刀片、胶水以及药品。
二、取材解剖之后迅速取出所需的新鲜组织，用干纱布或滤纸擦干后不需固定直接取材（24×24×2mm*）,以防形成冰晶造成切片中形成形状不一的空泡,使细胞内结构移位。
（注：取材中目的标本既要明确也要确保其结构的完整性，应避免不必要的脂肪及坏死组织附着;要尽量剔除毛发、硬骨或钙化物;保乳手术切缘由于脂肪组织较多,取材厚度最好不要超过3mm，厚者冰冻费时，大者难以切完整。
甲状腺及淋巴结组织要带全组织被膜并除去多余的脂肪组织。
）三、冷冻切片1、取出组织支承器，放平摆好组织，周边滴上包埋剂，速放于冷冻台上冰冻，用吸热器压住组织，至包埋剂与组织冻结成白色冰体即可切片（1~3分种）。
2、将冷冻好的组织块，夹紧于切片机持承器上，启动粗进退键，转动旋钮，将组织修平。
3、调好欲切的厚度，根据不同的组织而定，原则上是细胞密集的薄切，纤维多细胞稀的可稍为厚切，一般在5～10μm间。
4、调好防卷板。
制作冰冻切片，关键在于防卷板的调节上，这就要求操作者要细心，准确地将其调较好，调校至适当的位置。
切片时，以切出完整、平滑的切片为准。
切好的组织在干净的玻片上黏附时顺着一个方向稍微用力轻轻一带,可避免组织摊片过程中皱折,保证组织结构的完整及切片的美观。
注：①包埋剂的选用：包埋剂是对冷冻切片质量一重要影响因素，包埋剂用量要适宜，过多或过少都会影响标本冷冻质量。
常用的有三种包埋剂OCT剂、B超藕合剂以及普通胶水。
B超藕合剂适用于细胞丰富质地较嫩的组织,普通胶水或OCT剂适用于纤维丰富质地偏硬组织。
（OCT包埋剂骤冷时固化，其冷冻速度和软硬韧度与组织相近，其还具有水溶性，不影响染色等优点。
）②组织块过小：先将少量胶挤在托架上预先放在冰冻机中冷冻,约30秒钟左右待胶凝固时将小组织放上,组织周围再加一些胶,再次置于冷冻机中冷冻,这样组织被垫高,就能快速切出高质量的切片。
冰冻切片制作与染色过程中常见问题与处理
• 切片判读正确-反映真实的科学现象
• 知识结构背景
• 组织学结构的熟悉…… • 认识病理改变：炎细胞侵润、坏死、水肿、蛋白变性、纤维化、增 生、凋亡…… • 审美观、拍照角度、视野、曝光时间、对比度……
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– 常规HE染色 – 特殊染色
• 如：Masson(Thichrome staining)，油红O，尼氏染色， 台盼蓝（肥大细胞）染色
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(1) 所有切片呈阴性
1）染色未完全严格按照操作步骤进行 2）漏加一种抗体，或抗体失活 3）缓冲液内含叠氮化钠，抑制了酶的活性 4）底物中所加H2O2 量少或失活 5）复染或脱水剂使用不当
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（2）所有切片呈阳性反应，其原因：
①切片在染色过程中抗体过浓，或干片了。 ②缓冲液PH值不准确，洗涤不彻底。 ③使用已变色的显色底物溶液，或显色反 应时间过长。 ④抗体温育的时间过长。
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ห้องสมุดไป่ตู้
4. 染色：抗体孵育和选择: 免疫组化最关 键环节
试剂公司提供标准化的试剂
• 组织固定时
– 固定液要有足够的量(固定液是组织体积的8-10倍) – 保持一定时间，快速灌注固定后，相同的固定剂再固定 2-4h（ 4℃冰箱）
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减少冰晶的形成
• 公认：未经固定的组织切片冰晶较多 • 固定后的组织切片仍然会有一定的冰晶， 为防止冰晶的形成 • 采取如下方法
关于冰冻切片的若干问题
创作编号：GB8878185555334563BT9125XW创作者：凤呜大王*1.问：本人将样品固定过后冲洗过后，放入蔗糖溶液，因有事耽搁，放了一个星期了，不知是否还可切片．还有固定过后冲洗用普通蒸馏水冲洗可以吗？我是做免疫组化答：1、不知道你放置的蔗糖浓度是多少，如果是30%最好是三天之内，50%的浓度可以方久一点，一两个月应该没什么问题。
因为蔗糖是高渗环境，不会影响实验结果。
祝好运吧！2、我认为组织在20％蔗糖放一周还是可以切片的，至于固定后的冲洗，可以免掉，也可用0.01MPBS涮洗一下，蔗糖液的量要多加一些2问：请拟准备做免疫荧光的标本,经前固定灌注后取全脑,后固定4小时后,30%的蔗糖脱水过夜,再用OCT包埋后保存在-80的冰箱,冰冻切片后HE染色,发现整个视野都是大小不等的圆形洞洞,不知道是什么原因.答:1、个人认为可能是以下几个方面的问题: 30%的蔗糖脱水过夜---- 一般我所采取的是灌注固定后取脑,然后放入30%蔗糖的多聚甲醛溶液中,待脑下沉到底后(大约2天)再切片,用这样的高渗糖既可以防止冰晶又可以继续后固定.单纯的蔗糖过夜应该是不够的. 从30%蔗糖的多聚甲醛溶液中捞出脑后应放入液氮迅速冷冻然后进行切片,不建议用-80度冰箱,曾经用过-80度冰箱结果脑片出现许多冰晶孔.2、用0.01M的PBS配置的4%多聚甲醛灌注固定后，20%蔗糖（沉底）→30%蔗糖（沉底），然后直接进冰冻切片机急冻15~20min，我们实验室的技术员曾说过，脑标本千万不能用OCT包埋、液氮冷冻。
只要蔗糖脱水彻底，是不会形成冰晶的；而用OCT包埋、液氮冷冻，你没做过，时间不好把握——时间长了，组织会冻裂；时间不够，冷冻效果不好，切片不好切。
3、这个就是实验室和实验室操作方法有所区别了,我说的方法肯定是没有问题的,我们都是这样操作没有出现过冰晶,不用OCT包埋,但确实用液氮,冻10秒,不会冻裂,效果良好.4、液氮速冻可以防止组织冰晶的形成冰冻切片心得1. 取脑一定要在冰上操作,液体也一定用冷的2. 30%蔗糖一定要充分,最好中间换液一次, 20%的可以不做3. 沉淀后冻存,一定要快冻, 最好在干冰上操作.4. 最重要的一点, 灌注的时候, 不要用0.1M PB, 用0.01M PBS. 以前不知道,很多书上写的都是0.1M PB,后来自己用了发现还是有洞. 为了这个,我还专门作了对照实验,结果0.01M PBS更好一些, 原因不知道为什么, 但是事实如此. (理论上高浓度液体更利于保护细胞不会因为冰冻损伤)5. 如果做磷酸化的抗体,一定记得在灌注液里加一定的抑制剂,如NaF等.如果是全脑的话，放在30%蔗糖（PBS或PB配）中沉底会很慢，我们都用双蒸水配，先20%沉底，再30%沉底，想要沉底快可将脑先切成小块。
冷冻切片常见问题分析与预防
冷冻切片常见问题分析与预防骆新兰收稿日期:1998 03 30作者单位:广东省人民医院病理科,广州 510080作者简介:骆新兰,男,30岁,技师冷冻切片是借助低温使组织冻结达到一定的硬度进行切片的一种方法。
它是术中诊断的一种重要方法。
但由于各种原因,影响冷冻切片的质量,拖延病理报告发出的时间,直接影响着病理诊断的及时性、准确性,间接影响着病人的预后。
归结起来有以下几方面。
1 切片不全或不能切片切片不全是指切出的切片组织切面不完整、有缺损现象;不能切片是指组织块的温度过高或过低不能制作一张完整的切片。
切片不全直接影响着冷冻报告切片的准确性。
导致切片不全或不能切片的常见的原因有几下几方面。
1 1 组织内含过多的脂肪或坏死组织 脂肪或坏死组织较一般的组织冷冻的温度要低些,当活组织达到所需的温度时,其还比较软,从而影响切片的完整性和拖延冷冻报告发出的时间。
1 2 组织块过冷 组织冷冻过度易致切片破碎或呈粉沫状,不能制作一张完整的切片。
1 3 组织块冷冻不均匀 在配合使用液氮时,组织块放入液氮时不能保持水平状态且液氮量不足的情况下,可产生此现象。
1 4 冻头的温度不足 冷冻切片时要求冻头的温度保持在-25 ~-30 左右,冻头的温度达不到要求时,组织很快回软,也不能保证切片的完整。
1 5 组织块过大 预防与处理: 注意组织的性质。
冷冻切片的组织除了要保持新鲜外,还应注意避免组织内含过多的脂肪(脂肪组织除外)及坏死组织。
!组织大小要适中。
冷冻切片机内切片刀移动的范围有一定的限制,超出其范围时,易致切片不全。
一般情况下,冷冻切片的组织块大小1cm ∀1cm ∀0 3cm,但卵巢肿瘤及脂肪组织可稍为大些。
另外,包埋时,应将组织平放在冻头的中央。
#掌握好冷冻时间。
根据组织块的大小、性质,确定冷冻时间,一般13~17s(使用液氮者),若组织较大或脂肪组织时间可适当长些,而甲状腺、脑组织和淋巴结等冷冻的时间相对要短些。
冷冻切片常遇到的问题及解决对策
3 冻切片机工作室温度的设置 根据器官组织形态结构和 组成成分的 不同, 切片时 要相应 调 整切片机工作室温度, 我们在进行冷 冻切片 时得到 的经验 见 表 1:
表 1 没有固定的冰冻组织适合切片的温度如下
组织
标本的切片温度
脑 肝 淋巴结 肾 脾 肌肉 甲状腺 皮肤 乳腺 含脂肪乳腺 脂肪组织
- 12 - 14 - 14 - 16 - 16 - 20 - 20 - 25 - 25 - 30 - 30以下
组织冷冻切片 是借 助低 温使组 织达 到一 定的 硬度 然后 收稿日期: 2006- 04- 10
进行切片的一 种技 术方法 [ 1]。因 其制 作过 程较 传统 的石 蜡 切片相对简便、快捷, 不需经过 固定、包埋和 切片后 温箱中 烤 干处理等实验步骤, 且能很好地保存 组织抗 原和酶 的活性 而
另外, 在切片前 修整 冷 冻组 织块 最容 易损 伤刀 刃, 最好 在急冻组织块稍冻硬以后立刻修 整, 以 减少冻 硬的包 埋剂对 刀刃的损害。组织 块冷冻 时可 根据 组织 块大 小加 入适 量的 包埋剂, 我们 用市售液 体胶 水替 代进 口包 埋剂, 切 片效 果良 好, 且经济简 便。切片后 组 织要 进行 及时 固定, 固 定的 作用 在于使蛋白变性、凝固 、沉淀, 终止或 抑制酶 活性, 保持细 胞、 组织原有的形态结构和抗原性, 此外固 定还兼 有硬化 和媒染 组织切片的效果。对于不同的组 织和抗 原成分的 组织切 片, 需选择合适的固 定剂 及适宜 的温 度和 时间。 蛋白 类抗 原用 丙酮固定, 多 糖类抗原用乙醇固定效 果比较好 [ 6] 。切 片一般 在 4 固定液 5分 钟左右。
2 切片机的温度调试 高质 量 的冷 冻切 片 机一 般有 三 个设 置温 度, 工 作 室温
常规冰冻制片常见问题分析 ppt课件
每台冰冻切片机都有 一个速冻台，好的冰 冻切片机可以在几分 钟内将速冻台的温度 下 降 至 -50℃ ～ -60℃ 度之间。
冷冻锤从上面压在组 织上，可以使组织上 下两面同时冷冻
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一台冰冻切片机有多个冷冻锤
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6、液氮和急冻剂
使用液氮和急冻 剂来快速冷冻组织
7、专用冷冻机
• 你所经历的课堂，是讲座式还是讨论式？ • 教师的教鞭 • “不怕太阳晒，也不怕那风雨狂，只怕先生骂我
笨，没有学问无颜见爹娘 ……”
• “太阳当空照，花儿对我笑，小鸟说早早早……”
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一、冰冻切片制片中冰晶的问题
冰晶的产生：当组织缓慢冷冻时，组织间隙的 水份凝固形成的，这时由于电解质析出，渗透压 升高，细胞内的水分子渗透到细胞外，使组织间 隙的冰晶变得更大，挤压周围组织，使组织细胞 的形态发生明显的改变，严重影响病理诊断。
1、正确选择染色试剂苏木素、伊红的配方 2、注意染色过程中的细节问题
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1、苏木素、伊红配方的选择
（1）改良Gill苏木素液：
苏木2.5克溶于乙二醇250ml中。硫酸铝铵17.6克溶于蒸馏水 730ml,以上二液充分溶调后混合，加碘酸钠0.2克，使用前加 冰醋酸20ml.
（2）酸化沉淀伊红液 贮 备 液 ： 伊 红 20 克 ， 蒸 馏 水 500ml, 经 充 分 溶 解 后 加 浓 盐 酸
5、购置专用冷冻机、急冻剂、专用液氮灌
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二、常规与冰冻制片中常见问题
切片染色的问题
冰冻切片的局限性
冰冻切片的局限性：
1、冰冻切片因急于快速诊断，取材局限，致使取材不足，有时可能误诊、漏诊；有时局部小标本不能代表整个标本，或根本没有取到病变组织。
因此，有时某些病例冰冻切片组织与手术切除的大标本的石蜡切片组织像差异比较大，造成冰冻切片的诊断与石蜡切片的诊断不一致。
2、对于某些疑难病例、交界性病变，有时难以确诊，如勉强诊断则易误诊，故应该等待常规石蜡诊断结果，以决定是否行二次手术。
3、冰冻切片质量多不如常规石蜡切片，且常有人工假像，导致诊断困难，则有时造成假阴性或假阳性病例出现，故此冰冻切片诊断的准确性一般为95％左右，有时误诊是难以避免的，临床决定手术方案时，一定要综合考虑后实施。
4、部分组织不宜做冰冻切片，如骨、脂肪、钙化组织、脑组织、淋巴组织及部分软组织肿瘤等，该切片主要针对乳腺、甲状腺、子宫及双附件、食管、胃肠及部分肺肝肾部位肿瘤做出病理诊断，故此有其局限性，不是所有组织都行冰冻诊断，因此，冰冻切片诊断一定要与病理科预约，征询病理医生能否行冰冻切片诊断。
5、在实际工作中，手术中病理诊断也确实对临床手术方案的制定起到了重要的指导作用，但是必须说明的是，因为诸多因素的局限，手术中病理诊断并不是最后的病理诊断，冰冻切片与手术后石蜡切片的诊断有可能不相符合，最终以石蜡切片病理诊断为最后诊断。
冰冻切片注意事项
冰冻切片注意事项冰冻切片是一种常用的实验技术，在科学研究、医学诊断和药物开发中起着关键作用。
这种技术可以将组织样本以无损坏的方式保存，并用于后续的显微镜观察和分析。
然而，要获得高质量的冰冻切片需要注意一些重要的事项。
以下是一些关键的注意事项。
1.选择合适的切片仪器和材料：要获得最佳的切片效果，应选择高质量的切片仪器和材料。
切片仪器应具备高速度和高精度的切割能力，并且能够保持适宜的温度和湿度。
切片材料应选择具有较好的冷冻保护性能和切割性能的材料。
2.适当的标本处理：在进行冰冻切片前，标本应进行适当的处理。
首先，标本应被固定以保持其形态和结构的稳定性。
常用的固定方法包括冷冻固定、化学固定和生理盐水固定等。
其次，在进行冷冻切片前，标本应进行充分的去水处理，以使切片的质量更好。
3.适宜的切片温度：切片温度是决定切片质量的重要因素。
一般情况下，切片温度应尽量低，以减小标本的结构变形和切割的损伤。
通常，切片温度应控制在-20℃至-30℃之间。
4.适当的切片速度：切片速度是决定切片厚度和切片质量的关键因素。
切片速度过快会导致切片厚度不均匀，切片速度过慢则容易引起标本的变形和损伤。
一般情况下，切片速度应适中，并且应根据不同的标本类型进行调整。
5.切片后的处理：切片后，切片应立即进行处理，以防止切片的结构变形和氧化。
处理方法包括立即放入冷冻保存或石蜡包埋等。
6.切片的储存和保存：冰冻切片在使用前需要进行储存和保存。
一般情况下，切片应保存在低温环境中，以保持其形态和结构的稳定性。
冷冻切片的保存时间一般较短，通常为几天至几周。
7.切片质量的评估：为了确保冰冻切片的质量，应对切片进行适当的评估。
评估的方法包括显微镜观察和组织学染色等。
通过评估，可以发现切片中存在的问题，并采取相应的措施进行改进。
总之，冰冻切片技术在科学研究和医学诊断中具有重要的应用价值。
遵循上述的注意事项，可以获得高质量的冰冻切片，从而提高实验和诊断的准确性和可靠性。
冰冻切片中常见问题分析
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6、切片皱缩或卷缩：
这也是影响切片质量的重要因素之一。常见的原因有：① 刀锋变钝。② 防卷板粘有异物，防卷板的作用是防止切 片卷缩，但若粘有异物，切片时组织会被挤压而缩在一起。 ③ 防卷板与刀锋的位置不平行、不协调。④ 组织块包埋 不完全，缺乏支撑作用。 预防与处理的方法：① 注意检查刀具，及时更换刀口， 定期磨刀。② 保持防卷板的清洁，每做一例冷冻切片， 均应将刀口及防卷板拭擦干净，防止切片的污染和切片皱 缩。③ 调整刀、防卷板的位置，保证两者平行，且防卷 板比刀锋前0.2㎜左右。④ 包埋组织应完全，没法切片者 再滴加包埋胶。
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4、染色对制片的影响：
尤以细胞核的染色最为关键，在寒冷的冬季，室温过低时， 影响核的着色，可适当加温，用以增色，苏木素的酸碱度 应适宜，经常观察其染液的ph值，过碱时应及时更换，盐 酸酒精分化适度，时间控制到位，否则易造成核着色不佳， 染色质不清晰，影响诊断的准确性。
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冰冻切片中 常见问题分析
临安人民医院
1、组织取材对制片的影响
组织取材大小：组织块大小要适宜，冷冻切片机 内切片刀移动的范围有一定的限制，超出其范围 时，易致切片不全。一般情况下，冰冻切片的组 织大小为1.5×1.5㎝,厚2㎜。但卵巢肿瘤及脂肪组 织可稍微大些。组织块过大，切片时阻力过大， 易产生皱折，刀痕，组织易崩碎，增加制片难度， 影响诊断。如需在同一标本托上放大于两块组织 时，应尽量冻成一个平面，与刀锋平齐，以防切 片不完整，发生漏诊。若送检组织过小，请预先 速冻一冷台面，再行包埋，利于制片。另外，包 埋时，应将组织平放在冻头的中央。
5、冰晶的形成对制片的影响：
此原因主要取决于组织含水量的大小，尤以组织细胞水肿， 淋巴结，纵隔肿瘤，卵巢肿瘤为甚，送检取材过程中接触 水源，速冻过程中使用的液氮时间尚未控制好，同是造成 冰晶形成的原因，其解决方法为，使用液氮时间上控制到 位，保证一次冻透标本，组织送检取材时，尽量避开水源， 如遇含水量高的标本时，应尽量用干纱布吸干水分后再行 冷冻，避免由于冰晶形成出现诊断上的失误。操作者的动 作应迅速。
浅析冷冻切片常见的质量问题及处理方法
大密度投影（ Ｍ Ｉ Ｐ ） 图像上 画线 ， 重组 出单体素的曲面图像 。 曲面
重组的优点是可 以将弯 曲的肋 骨重组在一个断面 图像显示 ， 不 受周围组织的干扰［ ４ １ 。Ｖ Ｒ利用了容积 内的全部信息 ， 将扫描容 积 内投影线通过容积数据 的全 部像 素总投影 ， 以不 同灰 阶显示
浅 析冷 冻切 片 常见 的质 量 问题 及 处 理 方 法
杨 国霞
（ 中信机电制造公司总医院 ， 山西 运城 ０ ４ ３ ８ ０ １ ）
冷冻切 片是 指借助低温 条件对 尚未 固定 的手术切 除标本
组织块 快速冷冻 ， 达到一定 的硬度 之后 ， 进行切 片 的一 种制片
织块过大或偏位等 四种状况。
【 ３ ］ 姚 以刚． ６ ４ 层容积 ｃ Ｔ 对肋 骨骨折 的诊断价值 们． 中国 ｃ Ｔ和 Ｍ Ｒ Ｉ
杂志 ， ２ ０ ０ ９， ７ （ ４ ） ： ３ ９ — ４ １ ．
组３ ２ 例， 发现不完全 Ｉ 生骨折 ５ 处、 无移位的完全型骨折 ４处。 总之 。 ｌ ６层螺 旋 Ｃ Ｔ对肋 骨骨折 的诊 断价值 明显优 于 Ｄ Ｒ 胸片， 图像后处理发挥 了其优越性 。其 中 Ｖ Ｒ图像直观 ， 近似解 剖位置 ， 对肋骨 骨折 的位 置 、 数量 和移位 情况显示清楚 ， 但 对微 细骨折确诊需结合原始 薄层图像及 Ｃ Ｐ Ｒ重建 图像 ， 可检 出 Ｄ Ｒ 平片不易发现的骨折 ， 确 定骨折的部位 、 范围 、 类 型及 与周围组
参考文献
结构 ， 但Ｖ Ｒ图像对 肋骨骨皮质微 细裂 折不能确诊 。曲面重组
成像在显示肋骨骨质内在结构及微细骨皮质裂折方面有独特价 值目 ， 可多次重复重组 图像 ， 直至骨 折线显示最佳 。本组病例 均 行冠状位 和矢状位平 面重组 ， 再行 Ｖ Ｒ重组 ， 作出基本诊 断 ； 对
冰冻切片制作及质量控制
冰冻切片制作及质量控制冰冻切片是一种在生物组织学研究中广泛应用的技术，它可以制备出细胞和组织的高质量切片，用于后续的染色、免疫组化和显微镜观察等研究。
为了获得高质量的冰冻切片，制作过程中需要严格控制各个环节，包括样本取材、固定、冻结和切片等步骤。
同时，质量控制也是制作高质量冰冻切片的重要环节之一、下面将详细介绍冰冻切片制作及质量控制的相关内容。
1.样本取材样本取材是制作高质量冰冻切片的第一步，样本的选择和处理对后续切片的质量有重要影响。
通常情况下，应选择代表性的组织，样本必须新鲜，不宜暴露在空气中过长时间，以避免氧化和细胞坏死的发生。
此外，为了使切片更容易涂抹和切割，样本应具有一定的硬度，可以根据需要使用组织固定剂、切片缓冲液等进行处理。
2.组织固定组织固定是为了保持组织的形态结构和细胞的生物学特性，同时防止样本在切片过程中的损伤和变形。
常用的固定方法包括冷醇固定、中性缓冲福尔马林固定等。
固定时间和温度的选择需要根据不同的样本和研究要求进行优化。
3.冻结冻结是制作冰冻切片的关键步骤，它能够快速、有效地固定组织并保持组织的形态。
冻结样本时应使用冷冻剂，如液氮、干冰-酒精混合物等。
在冻结过程中，要避免组织在冻结过程中受到机械或化学损伤，因此可以使用特制的冷冻模具和刀片。
4.切片5.质量控制质量控制是确保冰冻切片质量的关键环节之一、常用的质量控制指标有切片厚度、切片完整性、目标细胞或结构的保存等。
切片厚度的一致性对于后续的显微镜观察和数据分析具有重要影响，可以使用显微镜或数字软件测量切片厚度。
切片完整性是指组织切片的连续性和无碎片断裂等情况，可以通过显微镜观察和染色评估。
目标细胞或结构的保存是评价冰冻切片质量的重要指标，可以通过免疫组化染色、细胞核染色等方法进行评估。
综上所述，制作高质量的冰冻切片需要控制好样本取材、组织固定、冻结和切片等环节，并通过质量控制手段来评估切片质量。
只有在每个环节都进行精细操作和严格控制的情况下，才能制备出适合后续研究的高质量冰冻切片。
冰冻切片制作方法与注意事项
冰冻切片制作方法与注意事项一、固定：固定即借助化学试剂是组织和细胞中的有机和无机成分凝固或沉淀，停止发生死后组织变化，尽量保持其活体状态的过程。
固定的方法有浸泡固定法，注射、灌注固定法，蒸汽固定法，本实验用的是注射、关注固定法：某些组织块由于体积过大或固定液极难流入内部或需要对整个脏器或整个动物进行固定，就可采用灌注或灌流固定法。
固定时将固定液直接注入动物的血管，经血管分支到达整个组织或全身，从二十只得到充分固定。
固定液分为单纯固定液和混合固定液。
单纯固定液有甲醛、乙醇、氯化汞、醋酸、苦味酸等，混合固定液包括Bouin液、Zenker液、Carnoy液、中性甲醛液等。
本实验用的固定液为4%甲醛（10%福尔马林）。
固定后的处理：用水配制的固定液固定后应用流水冲洗，可是组织中的固定液随时溢出和随时洗去。
对小动物和脑组织等，应以浸泡为主，即能达到冲洗的目的，又不损害组织。
【注意事项】1.固定要及时。
2.组织块的大小要合适。
3.应有足够的固定液，一般与组织块的比例为20:1，容器勿过小，组织勿过多。
4.固定时间要合适，甲醛固定液一般固定两天左右，第一天要更换一次固定液。
5.要进行促使固定，在固定期间轻轻地搅动组织或摇动容器使组织移动有利于固定液的渗透，适当提高温度也可缩短固定时间。
6.选择合适的固定液。
7.一次取材数量过多时，应对取材部位和顺序进行编号，并及时做好记录。
二、脱水脱水就是用某些溶剂逐步将组织块内的水分置换出来的过程，使用的试剂称为脱水剂。
脱水剂有非石蜡溶剂的脱水剂如乙醇、丙酮等，和脱水兼石蜡的脱水剂如正丁醇等。
本实验所用的是乙醇脱水。
乙醇是最常用的脱水剂，其优点是脱水能力强，即能与水相混合，又能与透明剂相混，并可使组织硬化，便于切片。
缺点是穿透组织的速度快，且容易使组织收缩、变脆。
为克服这一缺点，在一般脱水中，应采用循序渐进的方法，逐步升级，经一系列不同浓度的乙醇，使组织中的水分逐渐被乙醇代替。
冰冻切片制作体会及常见问题对策
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冰冻切片制作与染色过程中常见问题与处理课件
加强操作人员技能培训与交流学习
总结词
加强操作人员技能培训和交流学习可以提高冰冻切片 制作和染色技术的水平。
详细描述
操作人员的技能水平对冰冻切片制作和染色结果具有 重要影响。因此，应加强操作人员的技能培训，使其 掌握正确的操作方法和技巧。此外，组织操作人员之 间的交流和学习，可以分享经验和技巧，提高整体技 术水平。同时，鼓励操作人员积极参与学术会议和技 术研讨会，了解最新的技术和进展，也是提高技术水 平的有效途径。
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冰冻切片染色常见问题及 处理方法
染色不均匀
总结词
冰冻切片染色不均匀可能是由于染色时间不足或过长、染色液浓度不合适、切片温度不均匀等原因引 起的。
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染色不均匀的问题可以通过控制染色时间和浓度来解决。一般来说，染色时间不宜过长或过短，应根 据染色液的浓度和切片厚度来适当调整。同时，确保切片温度保持均匀，避免局部温度过高或过低。
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在冰冻切片制作过程中，组织固定 是关键步骤之一。如果固定不当， 会导致细胞结构变形、组织结构松 散等问题。
处理方法
应掌握组织固定的最佳时间和方法 ，根据组织类型和实验要求选择合 适的固定剂，并严格控制固定时间 。
切片温度不适宜
总结词
切片温度不适宜可能引起细胞结 构破坏，影响切片质量。
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总结词
切片温度和厚度的调整对切片质量和染色效果具有重 要影响。
要点二
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在冰冻切片制作过程中，应根据组织类型和实验需求 ，选择合适的切片机和切片刀，并调整切片温度和厚 度。一般来说，较薄的切片更容易染色和观察，但过 薄的切片可能会导致组织结构破坏和细胞丢失。同时 ，应根据染液特性，选择合适的染色时间和温度，以 确保染色效果。
关于冰冻切片的若干问题
问：【1】本人将样品固定过后冲洗过后，放入蔗糖溶液，因有事耽搁，放了一个星期了，不知是否还可切片．还有固定过后冲洗用普通蒸馏水冲洗可以吗？我是做免疫组化答：1、不知道你放置的蔗糖浓度是多少，如果是30%最好是三天之内，50%的浓度可以方久一点，一两个月应该没什么问题。
因为蔗糖是高渗环境，不会影响实验结果。
祝好运吧！2、我认为组织在20％蔗糖放一周还是可以切片的，至于固定后的冲洗，可以免掉，也可用0.01MPBS涮洗一下，蔗糖液的量要多加一些问：请拟准备做免疫荧光的标本,经前固定灌注后取全脑,后固定4小时后,30%的蔗糖脱水过夜,再用OCT包埋后保存在-80的冰箱,冰冻切片后HE染色,发现整个视野都是大小不等的圆形洞洞,不知道是什么原因.答:1、个人认为可能是以下几个方面的问题:30%的蔗糖脱水过夜----一般我所采取的是灌注固定后取脑,然后放入30%蔗糖的多聚甲醛溶液中,待脑下沉到底后(大约2天)再切片,用这样的高渗糖既可以防止冰晶又可以继续后固定.单纯的蔗糖过夜应该是不够的.从30%蔗糖的多聚甲醛溶液中捞出脑后应放入液氮迅速冷冻然后进行切片,不建议用-80度冰箱,曾经用过-80度冰箱结果脑片出现许多冰晶孔.2、用0.01M的PBS配置的4%多聚甲醛灌注固定后，20%蔗糖（沉底）→30%蔗糖（沉底），然后直接进冰冻切片机急冻15~20min，我们实验室的技术员曾说过，脑标本千万不能用OCT包埋、液氮冷冻。
只要蔗糖脱水彻底，是不会形成冰晶的；而用OCT包埋、液氮冷冻，你没做过，时间不好把握——时间长了，组织会冻裂；时间不够，冷冻效果不好，切片不好切。
3、这个就是实验室和实验室操作方法有所区别了,我说的方法肯定是没有问题的,我们都是这样操作没有出现过冰晶,不用OCT包埋,但确实用液氮,冻10秒,不会冻裂,效果良好.4、液氮速冻可以防止组织冰晶的形成冰冻切片心得1. 取脑一定要在冰上操作,液体也一定用冷的2. 30%蔗糖一定要充分,最好中间换液一次, 20%的可以不做3. 沉淀后冻存,一定要快冻, 最好在干冰上操作.4. 最重要的一点, 灌注的时候, 不要用0.1M PB, 用0.01M PBS. 以前不知道,很多书上写的都是0.1M PB,后来自己用了发现还是有洞. 为了这个,我还专门作了对照实验,结果0.01M PBS更好一些, 原因不知道为什么, 但是事实如此. (理论上高浓度液体更利于保护细胞不会因为冰冻损伤)5. 如果做磷酸化的抗体,一定记得在灌注液里加一定的抑制剂,如NaF等.如果是全脑的话，放在30%蔗糖（PBS或PB配）中沉底会很慢，我们都用双蒸水配，先20%沉底，再30%沉底，想要沉底快可将脑先切成小块。
冰冻切片制作及染色过程中常见问题及处理
举例：不同实验时间和条件下同种一染 色方法结果差异
A
B
C
Masson staining
2. 标本固定应充分
• 固定的标准
– 切片冰晶少，细胞挤压变形小，切片完整，染色清晰
• 一般较多采用组织固定后再行切片 • 浸入法和灌注法
– 浸入法：活检、手术标本，不能进行灌注的组织固定 – 灌注法：动物实验研究
样易粘、易碎 – 组织块带有皮肤、包膜、过大或冰晶过多 – 切片刀钝或较脏，切片出现刮痕，使切片不完整 – 操作手法不当，如速度不适宜
防止切片卷缩
• 常见原因
– 切片刀钝或粘有组织碎屑 – 防卷板位置不正确或防卷板较脏 – 静电或者气流作用 – 防卷板温度高、室温高
• 采取对策：
– 保持防卷板干净、平整、无缺损、无刮伤 – 戴口罩，以避免呼出的气流直接吹到防卷板 – 切片时间过长时，应注意间隔一会儿，盖上冷冻室
(1)所染的全部切片均为阴性结
果，包括阳性对照在内。 染
色
(2)所有切片均呈阳性反应
失
败
(3)所有切片背景过深
(4)阳性对照染色良好，检测的 阳性标本呈阴性反应
(1) 所有切片呈阴性
1）染色未完全严格按照操作步骤进行 2）漏加一种抗体，或抗体失活
3）缓冲液内含叠氮化钠，抑制了酶的活性 4）底物中所加H2O2 量少或失活 5）复染或脱水剂使用不当
• 好的切片制作和染色成功的关键
– 细节决定成败
• 固定、漂洗溶液PH值，成分；切片厚度、手感；抗体效价、特 异性；切片孵育时间，湿度、温度；
• 切片判读正确-反映真实的科学现象
• 知识结构背景
冰冻切片检查注意事项
手术中冰冻切片检查规范一、手术中冰冻切片检查注意事项(一) 手术中冰冻切片检查是临床医师在实施手术过程中，就与手术方案有关的疾病诊断问题，尤其需要临床医师与病理医师间的密切合作。
(二) 手术中冰冻切片检查要求病理医师在很短时间内，根据对切除标本的巨检和组织块快速冷冻切片的观察，向手术医师提供参考性病理诊断意见，由于组织未得到充分有效的固定、脱水以及切片较厚等等，与石蜡切片病理诊断的准确率有一定的差距，一般仅限于良、恶性的鉴别。
与常规石蜡切片的病理诊断相比，手术中冰冻切片检查具有更多的局限性和误诊的可能性，误诊率5%以上。
有的病例难以快速诊断，需要等待常规石蜡切片进一步明确诊断。
(三) 有关临床医师应于手术前向患者和／或患者授权人说明手术中冰冻切片检查的意义和局限性等，取得患者和／或患方的知情和理解。
患者和／或患者授权人应在由医院制定的《手术中冰冻切片检查知情同意书》签署意见和签名。
(四) 主持手术的临床医师应在手术前一天向病理科递交手术中冰冻切片检查申请单，填写患者的病史，重要的影象学、实验室检查结果和提请病理医师特别关注的问题等。
一般不接受电话预约和临时申请手术中冰冻切片检查。
（五） 手术中冰冻切片检查的手术标本在切除后应立即送到病理科，并注明手术的部位，重点部位应做标记或加以说明。
同时手术标本应保持新鲜，不要加用固定液或用含水溶液清洗，以免影响制片和诊断。
（六） 手术中冰冻切片检查诊断报告一般在手术标本送达病理科后30分钟内做出。
并以书面文字形式通知临床手术科室。
特殊情况（如标本过大，取材过多，或多个冰冻标本同时送检等），报告时间可以超过30分钟。
（七） 工作开展时间：手术中冰冻切片检查的开展时间为周一至周五，周六和周日如有需要可提前预约。
（八） 手术医师应在手术后及时填写常规石蜡病理检查申请单到病理科，以便病理科及时发出常规病理报告。
二、手术中冰冻切片检查适用范围(一) 需要确定病变性质（如肿瘤或非肿瘤／良性肿瘤或恶性肿瘤等），以决定手术方案的标本。
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问：本人将样品固定过后冲洗过后，放入蔗糖溶液，因有事耽搁，放了一个星期了，不知是否还可切片．还有固定过后冲洗用普通蒸馏水冲洗可以吗？我是做免疫组化
答：1、不知道你放置的蔗糖浓度是多少，如果是30%最好是三天之内，50%的浓度可以方久一点，一两个月应该没什么问题。
因为蔗糖是高渗环境，不会影响实验结果。
祝好运吧！
2、我认为组织在20％蔗糖放一周还是可以切片的，至于固定后的冲洗，可以免掉，也可用0.01MPBS涮洗一下，蔗糖液的量要多加一些
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问：请拟准备做免疫荧光的标本,经前固定灌注后取全脑,后固定4小时后,30%的蔗糖脱水过夜,再用OCT包埋后保存在-80的冰箱,冰冻切片后HE染色,发现整个视野都是大小不等的圆形洞洞,不知道是什么原因.
答:1、个人认为可能是以下几个方面的问题: 30%的蔗糖脱水过夜---- 一般我所采取的是灌注固定后取脑,然后放入30%蔗糖的多聚甲醛溶液中,待脑下沉到底后(大约2天)再切片,用这样的高渗糖既可以防止冰晶又可以继续后固定.单纯的蔗糖过夜应该是不够的.
从30%蔗糖的多聚甲醛溶液中捞出脑后应放入液氮迅速冷冻然后进行切片,不建议用-80度冰箱,曾经用过-80度冰箱结果脑片出现许多冰晶孔.
2、用0.01M的PBS配置的4%多聚甲醛灌注固定后，20%蔗糖（沉底）→30%蔗糖（沉底），然后直接进冰冻切片机急冻15~20min，我们实验室的技术员曾说过，脑标本千万不能用OCT 包埋、液氮冷冻。
只要蔗糖脱水彻底，是不会形成冰晶的；而用OCT包埋、液氮冷冻，你没做过，时间不好把握——时间长了，组织会冻裂；时间不够，冷冻效果不好，切片不好切。
3、这个就是实验室和实验室操作方法有所区别了,我说的方法肯定是没有问题的,我们都是这样操作没有出现过冰晶,不用OCT包埋,但确实用液氮,冻10秒,不会冻裂,效果良好.
4、液氮速冻可以防止组织冰晶的形成
冰冻切片心得
1. 取脑一定要在冰上操作,液体也一定用冷的
2. 30%蔗糖一定要充分,最好中间换液一次, 20%的可以不做
3. 沉淀后冻存,一定要快冻, 最好在干冰上操作.
4. 最重要的一点, 灌注的时候, 不要用0.1M PB, 用0.01M PBS. 以前不知道,很多书上写的都是0.1M PB,后来自己用了发现还是有洞. 为了这个,我还专门作了对照实验,结果0.01M PBS更好一些, 原因不知道为什么, 但是事实如此. (理论上高浓度液体更利于保护细胞不会因为冰冻损伤)
5. 如果做磷酸化的抗体,一定记得在灌注液里加一定的抑制剂,如NaF等.
如果是全脑的话，放在30%蔗糖（PBS或PB配）中沉底会很慢，我们都用双蒸水配，先20%沉底，再30%沉底，想要沉底快可将脑先切成小块。
其实我做过很多次只用20%沉底，30%泡过感到有点粘粘的，切出的片子容易卷，不好展开。
要切片没有洞关键要速冻，切片机闲时一般温度较高，使用时把温度调到切片温度，先不将脑块放入，待温度降低后再放入以达到速冻的效果。
我做切片的时候，先用20％蔗糖（PB配）沉底，再用30％蔗糖沉底，这样脱水比较充分。
一般是等切片机温度达到-22度之后，再将包埋好的脑组织放入。
脱水不充分也会导致切片有洞，而且片子容易向内卷，很不好贴。
一直这样做了很久，效果都还不错。
防止脑袋冻碎办法：
先准备好一个保温杯，倒入适量的液氮，然后在杯身中放一个纸杯（塑料或玻璃杯禁用），再在杯中放一金属片，以防止纸杯翻倒，动物脑袋取好后，先放在一张小锡箔纸上，然后连锡箔纸一起转移至杯中的金属片上面，盖上保温杯盖，3-5分钟后，见大脑表片颜色变白，表示冷冻完全，随即将大脑用锡箔纸包好，转入-80度冰箱长期保存。
脑片切好后保存方法：
1、先用手指在玻片（已挂好胶）后均匀轻轻过一下，将脑片组织贴在玻片上。
2、37度干燥箱中烘干。
3、放入切片盒中，盖紧盒盖，并用胶带将切片盒封严，外用样品袋包扎严实，即可防止水汽进入。
于-20度可保存半年以上，于-80度可保存一年以上。
切忌经常打开盒子。
0.01M PBS配方（pH7.2～7.4）（500 ml）
Na2HPO4•12H2O2（分子量358.14） 2.9g
NaH2PO4•2H2O2 （分子量156.01） 0.295g
NaCl 4.5g
ddH2O 500 ml
混匀，完全溶解后，用H3PO4调PH值至pH7.2～7.4。
用前配制或者于4度短期保存。
（资料素材和资料部分来自网络，供参考。
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