大肠菌群快速纸片法原始记录
67总大肠菌群 大肠菌群分析原始记录
月日时分
样品编号
稀释倍数
样品接种体积ml
初发酵产酸产气管数
有典型菌落平板数
复发酵阳性管数
MPN（）
备注
总大肠菌群/大肠菌群分析原始记录（续表）
项目编号： 第 页 共 页
样品编号
稀释倍数
样品接种体积ml
初发酵产酸产气管数
有典型菌落平板数
复发酵阳性管数
MPN（）
备注
仪器有效期
年月日
立式压力蒸汽灭菌
YXQ -70A/ BXM -75S QH - YQ - G -114
检定 □校准
年月日
检定 □校准
年月日
初发酵培养时间
月日时分——月ห้องสมุดไป่ตู้时分
培养温度（℃）
分离培养时间
月日时分——月日时分
培养温度（℃）
复发酵培养时间
月日时分——月日时分
培养温度（℃）
温度（℃）
湿度（%）
总大肠菌群/大肠菌群分析原始记录
项目编号： 第 页 共 页
来（采）样日期
年月日
检测日期
年月日
检测项目
分析方法
《生活饮用水标准检验方法微生物指标》GB / T 5750.12-2023/5.1多管发酵法
仪器型号、名称及编号
生化培养箱SPX -150 QH - YQ - G -042
仪器溯源方式
检定 □校准
水质 总大肠菌群和粪大肠菌群的测定 纸片快速法 征求意见稿
水质总大肠菌群和粪大肠菌群的测定纸片快速法征求意见稿
为了保证水质安全，控制疫情传播，本文介绍一种快速测定水质中总大肠菌群和粪大肠菌群的纸片快速法。
一、原理
本方法采用四氯化钴染色，将水样中的大肠杆菌转化为深蓝色紫色的水溶液中的杆菌，然后用过滤纸吸取样品中大肠杆菌杆菌的胞外成分，与专门的涂层结合，形成深紫色的杆菌珠，并进行定量比色分析。
二、材料和方法
1. 带有蓝色涂层的滤纸一支
2. 四氯化钴溶液
3. 水样
方法：
1. 取一片纸片，将其放入含有四氯化钴溶液的水样中，搅拌均匀。
等待5分钟。
2. 用净水彻底清洗纸片，并在滤纸周围波动，使大肠菌群在水中更容易分散。
3. 在处理好的样品中取一滴，用滤纸吸取。
4. 将纸片放入合适的容器中(如管子或托盘)，等待5分钟，直到纸片上形成紫色的结晶。
5. 用比色板或显微镜进行分析测量。
三、结果
根据纸片上杆菌珠的形成特征，可以快速测定水样中的大肠杆菌群和粪大肠菌群含量。
四、注意事项
1. 纸片处理过程中要严格保持无菌，避免外源菌污染。
2. 样品选择要具有代表性，尽量选取水流清澈，色泽透明，入口甜润的水源，避免河流污染或废水回流。
3. 纸片使用后应当严格清洗，避免杆菌珠继续生长。
4. 此方法仅适用于快速初步筛查水质安全，不适用于作为严格的水质监测标准。
大肠菌群检测原始记录
发酵试验
阳性管数
报出值 MPN/ml
LST肉汤管初 BGLG肉汤管复
发酵试验
发酵试验
阳性管数
报出值 MPN/ml
LST肉汤管初 BGLG肉汤管复
发酵试验
发酵试验
阳性管数
报出值 MPN/ml
审核：
年月
日
编号： 样品名称：
检验依据：GB/T4789.3-2016 培养开始时间： 年 月 培养结束时间： 年 月
稀பைடு நூலகம்度
1
稀释度
项目 管号
1 2 3 1 2 3 1 2 3
项目 管号
2
稀释度
3
稀释度
4
稀释度
1 2 3 1 2 3 1 2 3
项目 管号
1 2 3 1 2 3 1 2 3
项目 管号
1 2 3 1 2 3 1 2 3
项目 管号
1
2
3
5
1
2
3
1
2
3
检验员：
大肠菌群检测原始记录
批次：
日时
日时
LST肉汤管初 BGLG肉汤管复
发酵试验
发酵试验
恒温时间： h 恒温温度：36℃±1℃
阳性管数
报出值 MPN/ml
LST肉汤管初 BGLG肉汤管复
发酵试验
发酵试验
阳性管数
报出值 MPN/ml
LST肉汤管初 BGLG肉汤管复
发酵试验
大肠菌群检验原始记录平板计数法2016版5样
检验单位
检验员
检验日期
至
环境条件
温度℃,相对湿度%
检验依据
GB4789.3-2016《食品安全国家标准食品微生物学检验大肠菌群计数》第二法
样品名称
产品批号
仪器设备及耗材：
电ห้องสมุดไป่ตู้天平、洁净工作台、电热恒温培养箱、立式压力蒸汽灭菌器、水浴锅、PH计、移液器
培养基及试剂：
结晶紫中性红胆盐琼脂培养基（VRBA）：m1配制日期：
接种BG1B管数
BG1B阳性管数
糊也
VRBA空白（仅VRBA）
生理盐水+VRBA
BG1B空白（仅BG1B）
报告人
报告日期
复核人
复核日期
2.接种VRBA
选择适宜的2〜3个连续稀释度的样品匀液（液体样品可包括原液），吸取Im1于无菌平皿内，每个稀释度接种两个平皿。同时分别吸取1m1生理盐水加入两个无菌平皿内作为空白对照。及时将15~20m1融化并恒温至46℃的VRBA倾注平皿，并转动平皿使其混合均匀，待琼脂凝固后，再加3~4m1VRBA覆盖平板表层。同时再以只加VRBA的平皿，作为VRBA的空白对照。将平板翻转，培养。
3.培养
将以上VRBA平板倒置于36.0±1°C,培养18h~24h（//时〜/_/时）并
分别计数可疑和典型菌落。
4.平板菌落数选择
选取菌落数在15~150CFU之间的平板，分别计数平板上出现的典型和可疑大肠菌群菌落。典型菌落为紫红色，菌落周围有红色的胆盐沉淀环。
5.证实试验（接种BG1B）
从VRBA平板上挑取10个不同类型的典型和可疑菌落，少于10个菌落的挑取全部典型和可疑菌落，分别移种于BG1B肉汤管内，36°C±1°C培养24h〜48h,（//时〜/_/时）观察产气
大肠菌群测定原始记录
要求：初发酵试验：36℃±1℃；24h±2h或48h±2h。复发酵试验：36℃±1℃；48h±2h。
初发酵：＿月＿日＿时至＿月＿日＿时；复发酵：＿月＿日＿时至＿月＿日＿时。
稀释度
管号
接种量
（ml）
初次发酵
导管有
无气泡
阴
阳
性
复发酵
导管有
无气泡
阴
阳
性
大肠菌群最有可能数（MPN/100g）
LST肉汤
BGLB肉汤
大肠菌群测定原始记录
编号：
样品名称
规格型号
生产批次
抽样数量
检验标准
GB4789.3-2010
生产日期
检验日期
样品
处理
无菌操作取检样25g，加225ml无菌生理盐水，均质处理得1:10稀释液，再用灭菌生理盐水按梯度稀释，得1:100、1:1000稀释液，选择三个连续的适宜稀释度接种发酵管，双料发酵管接种稀释液10ml，单料发酵管接种稀释液1ml。
备注：
检验员：年月日校核员：年月日
1:10
1
24h( ) 48h( )
2
1
24h( ) 48h( )
3
1
24h( ) 48h( )
1:100
1
1
24h( ) 48h( )
2
1
24h( ) 48h( )
3
1
24h( ) 48h( )
1:1000
1
1
24h( ) 48h( )
2
1
24h( ) 48h( )
3
1
24h( ) 48h( )
菌落总数、大肠菌群原始记录
检样细菌总数：
□cfu/mL □cfu/g
大肠菌群最近似值：检验依据 GB/T4789.3
样 品 稀释度 样品接种量 毫升管号 1 10mL 2 3 1 1mL 2 3 1 0.1mL 2 3 标准值： □MPN/100mL □MPN /100g □MPN/mL □MPN /g 结 论： LST 肉汤 初发酵试验 BGLB 肉汤 复发酵
YSJL01-002
菌落总数、大肠菌群检验数据原始记录
样品编号____________
主要仪器设备：□电子天平( )、 □电热恒温培养箱(
第ቤተ መጻሕፍቲ ባይዱ
页共
页
)
)、 □显微镜(
菌落总数：检验依据 GB/T 4789.2
样品稀释度 检 测 值： □cfu/mL □cfu /g 计算平板菌落数 cfu 标 准 值： □cfu/mL □cfu/g 结论：
检样大肠菌群最近似值：
检样大肠菌群最近似值相当于： □MPN/100mL □MPN /100g
备注：
检验人员、检验日期 校核人员、校核日期
大肠菌群检验原始记录第二法
共页；第页
项目名称
大肠菌群
样品编号
使用设备名称
电热恒温培养箱手提式压力蒸汽消毒器
试验方法标准
GB4789.3-2010（第二
法）
环境条件
温度C,相对湿度％
以无菌操作将检样25g置于225mL灭菌生理盐水中，混匀后，做成检验所用稀释液：分别将待检品稀释
液接种于2个VRBA平板混匀，待琼脂凝固后，再加3mL-4mLVRBAg盖平板表层。翻车t平板，置于36C±
1C温箱内，培养18h-24,计数典型和可疑菌落。选取典型菌落或可疑菌落进行证实试验，观察产气情况。
稀释度
典型菌落总数
cfu/ml
n1
n2
n3
n5
证实试验
从VRBAF板上挑取10个典型菌落或可疑菌落，分别移种于BGLB肉汤管，
36c±1C温箱内，培养24h-48h.凡BGLB肉汤管产气，即可报告为大肠菌群阳性。
检测结果
备注
n为同一批次产品应采集的样品件数；c为最大可允许超出m值的样品数；m为致病菌指标可接受水平的限量值；M为致病菌指标的最高安全限量值
检验人员
校核人员
检验日期
校核日期
大肠菌群检验原始记录
初发酵（月桂基硫酸盐胰蛋白胨肉汤，）支）
产气管数（支）
复发酵(煌绿乳糖胆盐
肉汤，
37℃，,48h)
产气管数（支）
10-1
10-2
10-3
检验结果
（MPN/100g）
检验人：复核人：
大肠菌群检验检验原始记录
样品名称
明胶
样品编号
样品状态
生产日期
检验依据
GB4789.3-2010
检验日期
大肠菌群检验过程：
1、称取样品25g样品放入盛有225ml灭菌的生理盐水中，制成1：10的样品匀液，用1ml无菌吸管吸取1：10的样品匀液1ml，沿管壁缓缓注入盛有9ml生理盐水的无菌试管中，制成1：100的样品均液，用1ml无菌吸管吸取1：100的样品匀液1ml，沿管壁缓缓注入盛有9ml生理盐水的无菌试管中，制成1：1000的样品均液。
2、初发酵试验：大肠菌群每个样品，选择3个适宜的连续稀释度的样品匀液，每个稀释度接种3管月桂基硫酸盐胰蛋白胨（LST）肉汤（大肠菌群测定：如果超过1ml，则用双料LST肉汤），36℃±1℃培养24h±2h，观察倒管内产气情况。如未产气，培养至48h±2h，如产气着进行复发酵试验。
三、复发酵试验：（大肠菌群的测定）用接种环从产气的LST肉汤管中分别取培养物1环，移种于煌绿糖胆盐肉汤（BGLB）管中，36℃±1℃培养48h±2h，，观察产气情况。
大肠菌群快速纸片法原始记录
受检单位
«供样单位»
检测环境
温度（T）：℃；相对湿度（RH）：%
接样日期
年月日
检测地点
——
检测起止日期
年月日～月日检测依据□《食（饮）来自消毒卫生标准》GB14934-94
□《食品卫生微生物学检验大肠菌群测定》GB4789.3-2008
检测仪器
□电热恒温培养箱（型号：DNP-9272）36±1℃编号□04-15□04-24□05-11
培养基
□LST肉汤ML□BGLB肉汤ML□其他
培养条件
培养温度℃，培养时间h
样品编号及样品名称
纸片颜色及结果
可疑结果确证
（发酵法）
均匀紫色
（未检出）
黄色背景上有红点或片状红晕（检出）
异常显色反应（可疑）
«样品编号1»«样品名称1»
«样品编号2»«样品名称2»
«样品编号3»«样品名称3»
«样品编号4»«样品名称4»
«样品编号5»«样品名称5»
检测者：审核者：
大肠菌群-原始记录
检测项目：菌落总数大肠菌群
样品名称
样品编号
样品状态和特性
生产单位
型号规格
使用仪器设备及试验环境
生化培养箱;压力蒸汽消毒锅
菌落总数
GB4789.2-2010
操作过程：
培养基
100
10—1
10—2
10—3
10—4
空白
cfu/ml（g）
平板计数琼脂培养基
注解：为进行此项目测试；+:阳性—:阴性（不产气）
微生物检验原始记录
检测项目：菌落总数大肠菌群
样品名称样品编号样品状态和来自性生产单位型号规格
使用仪器设备及试验环境
生化培养箱;压力蒸汽消毒锅
菌落总数
GB4789.2-2010
操作过程：
1、配制200mL平板计数琼脂培养基于250mL三角烧瓶中，配制0.85%的生理盐水300mL,分别吸取9mL生理盐水置于2个试管中，将三角瓶、试管加塞棉塞，用报纸包好。
煌绿乳糖胆盐肉汤
月桂基硫酸盐胰蛋白胨肉汤
煌绿乳糖胆盐肉汤
月桂基硫酸盐胰蛋白胨肉汤
煌绿乳糖胆盐肉汤
MPN/ml（g）
注解：为进行此项目测试；+:阳性—:阴性（不产气）
主检：检验日期：年月日验讫日期：年月日
6、选择样品匀液10-1、10-2、10-3，分别吸取1ml加入无菌平皿内，分别吸取1mL稀释液（无菌生理盐水）加入平皿内做空白。
7、将15-20mL冷却至46℃的平板计数琼脂培养就倾注平板内，并转动平皿，使其混合均匀，待琼脂凝固后将平皿翻转。
8、将平皿于36±1℃的生化培养箱内培养48h±2h,计数。
培养基
100
10—1
微生物检验原始记录(大肠菌群)
编号：
报告类别：
微生物
共页
项目：
大肠菌群coliforms
检验地点：
样品名称：
样品编号：
样品状态：
符合检验要求； 其他
环境条件：
实验依据及步骤
GB4789.3-2016
样品稀释
固体和半固体样品：称取25g样品置盛有225ml生理盐水或磷酸盐缓冲液的无菌均质容器内均质，或放入盛有225ml稀释液的无菌均质袋中拍击式均质器拍打，制成为1:10样品匀液。依次进行10倍递增稀释。
M：微生物指标的最高安全限量值
2.例：n=5,c=2,m=1cfu/g,M=10cfu/g,即从一批产品中采集5个样品，
若5个样品的检测结果均小于或等于m值（≤1cfu/g），则这种情况是允许的；
若≤2个样品的结果（X）位于m值和M值之间（1cfu/g≤X≤10cfu/g），则这种情况也是允许的；
若有3个及以上样品的检验结果位于m和M之间，则这种情况是不允许的；
MPN检索表
(CFU/ml)
n=5 c=2 m=1
1
2
3
4
5
1
2
3
4
5
1
2
3
4
5
1
2
3
4
5
1
2
3
4
5
数据分析与结果
一、菌落计数
根据证实为大肠菌群的阳性管数，查MPN检索表，报告大肠菌群的最可能数。
二、缓冲液
1.磷酸盐缓冲液
磷酸二氢钾 34.0g 蒸馏水500ml （稀释液需要1000ml）
贮存液：将34.0g磷酸二氢钾溶于500ml蒸馏水中，用大约175ml的1mol/l氢氧化钠溶液调节ph至7.2，用蒸馏水稀释至1000ml后贮存冰箱。
大肠菌群_菌落总数检验报告原始记录
微生物实验原始记录
粤珍小厨餐饮管理有限公司
编号：
放入时培养
℃样品名称样品编号
箱温度
取出时培养
设备名称电热恒温培养箱(±1℃)设备编号DHP-9082
℃
箱温度
检验依据GB/T4789.2-2010 GB/T4789.3-2010样品状态
一、菌落总数（cfu/g）
以无菌操作将检样25g于225ml灭菌生理盐水中，均质后充分振摇做成1：10的均匀稀释
液。
取1ml灭菌吸管吸取上述稀释液1ml，加入9ml灭菌生理盐水中，混合均匀，做成1：100
的稀释液，按上述方法操作，做10倍递增稀释。
每个稀释度吸取1ml于灭菌培养皿内，注入凉至46℃的营养琼脂15ml，混匀。
待营养琼
脂凝固后，翻转平板于36℃培养48h。
同时做空白对照。
样品匀液
10-110-210-3（10-i）
观察结果（C）
计算结果N
报告结果
CFU/g
主检：审核：检验日期：年月日
邹平县产品质量监督检验所检验原始记录
共页第页
主检：校核：检验日期：年月日
邹平县产品质量监督检验所检验原始记录
共页第页
主检：校核：检验日期：年月日
如有侵权请联系告知删除，感谢你们的配合！。
大肠菌群检测原始记录表(多管发酵法)
检验程序
样品编号
大肠菌群检测原始记录表（多管发酵法）
项目编号
检测日期
检测方法
多管发酵法
检测环境
温度： ℃，相对湿度： %
生化培养箱 菌落计数仪 生物安全柜 超净台 电子秤
固体和半固体样品：无菌称取 10g±1g，剪碎后加入到 200mL 无菌生理盐水中，充分混匀。 □涂抹样品：将采样后棉拭子的试管充分振摇后，吸原液检验。 □液体样品：直接吸原液检验。
1 10g 样品+200mL 稀释液混匀（或原液直接检验）；
2
乳糖胆盐发酵试验：将试样 ml 倒入 乳糖胆盐发酵管中 35℃±2℃培养 24h 观察：是否产酸产气，如有进行下步
3
分离培养，将产酸产气发酵管转种伊红美蓝琼脂平板，于 35℃±2℃培养 24h 观察菌落形态。
4 挑选可疑菌落进行革兰氏镜检，阴性（-），阳性（+）。
5
证实试验，上述镜检阴性菌接种乳糖蛋白胨培养液，置 35℃±2℃培养 24h观察：是否产酸产气 Nhomakorabea6 结果报告
样品接种量 （ml）
第一次发酵
检测结果
EM 平板生长情 况
革兰氏染色
第二次发酵
结果报告
“-”表示不产酸也不产气；“+”表示只产酸不产气，培养基变黄色；“ ”表示产酸又产气，培养基变黄，并有气泡
检测人：
复核人：
审核人;
大肠菌群计数(法一)原始记录
大肠菌群计数（法一）原始记录
第页共页
样品编号：环境温湿度：℃ %RH
检验依据：GB 4789.3-2016 检测地点：微生物室
检验日期：检毕日期：
培养开始时间：培养终止时间：
仪器设备：培养箱ZYXYJC/S- □天平ZYXYJC/S-
□pH计ZYXYJC/S-
检测过程：以无菌操作取样品□g或□mL，用□生理盐水或□磷酸盐缓冲液制成10倍梯度稀释液。
选择3个适宜连续稀释度的样品匀液（液体样品可包括原液），
每个稀释度接种3管月桂基硫酸盐胰蛋白胨(LST)肉汤，每管接种1mL（如接种
量超过1mL，则用双料LST肉汤），36℃培养h进行初发酵试验，未产气
者为大肠菌群阴性，产气者进行复发酵试验。
用接种环从产气试管中取培养物1
环，移种于BGLB内，36℃培养h，根据复发酵产气试管数查MPN表，
上报结果。
大肠菌群快速纸片法原始记录
大肠菌群快速纸片法原始记录
开封县疾病预防控制中心大肠菌群快速纸片法原始记录
第页，共页
受检单位?供样单位?
检测环境温度（T）：℃；相对湿度（RH）：%样品接收日期、测试地点-测试依据
检测起止日期
具体日期
年月日～月日
□ 《餐具消毒卫生标准》（gb14934-94）
□《食品卫生微生物学检验大肠菌群测定》gb4789.3-2021
测试仪器□ 电动恒温培养箱（型号：dnp-9272）36±1℃号。
□ 04-15 □ 04-24 □ 05-11中等□ LST肉汤毫升□ bglb肉汤毫升□ 其他培养条件培养温度℃，培养时间h
纸片颜色及结果样品编号及样品名称均匀紫色（未检出）黄色背景上有红点或片状红晕（检出）异常显色反应（可疑）可疑结果确证（发酵法）?样品编号1??样品名称1??样品编号2??样品名称2??样品编号3??样品名称3??样品编号4??样品名称4??样品编号5??样品名称5?检测者：审核者：。
HJ755-2015水质总大肠菌群和粪大肠菌群的测定快速纸片法方法验证报告
方法验证报告项目名称：总大肠菌群和粪大肠菌群的测定方法名称：水质总大肠菌群和粪大肠菌群的测定快速纸片法报告编写人：参加人员：审核人员：报告日期：1 实验室基本情况1.1 人员情况表1参加验证的人员情况登记表1.2 检测仪器/设备情况表2使用仪器情况登记表1.3 检测用试剂情况表3使用试剂登记表1.4 环境设施和条件情况实验室具有检定合格的温湿度计，环境可以控制在温度18⁓26℃，湿度45%⁓65%的要求范围内，满足检测环境条件，实验室人员每天对环境条件进行监控。
另外实验室配备了洗眼器、喷淋设施、护目镜、灭火器等的安全防护措施，符合实验室安全内务的要求。
2 实验室检测技术能力2.1方法适用范围本方法适用于地表水、废水中总大肠菌群和粪大肠菌群的快速测定。
2.2 检测步骤2.2.1. 接种水样的准备当每张纸片接种水样量为10ml或1ml 时，充分混匀水样备用即可。
当每张纸片接种水样量小于1ml时，水样应制成稀释样品后使用。
接种量为0.1ml、0.01ml 时，分别制成1：10稀释样品、1：100稀释样品。
其他接种量的稀释样品依次类推。
1：10稀释样品的稀释方法为：吸取1ml水样，注入盛有9ml无菌水的试管中，混匀，其他稀释度的样品同法制作。
2.2.2水样接种2.2.2.1接种量每个样品按三个10倍递减的不同接种量接种，每个接种量分别接种5张纸片，共接种15张纸片.根据水样的污染程度确定接种量，应尽可能使5个接种量最大的纸片为阳性，5个接种量最小的纸片为阴性，避免出现所有3个不同接种量共15张纸片全部阳性或全部阴性。
清洁水样的参考接种量分别为10ml、1ml、0.1ml。
2.2.2.2接种清洁水样，接种水样总量为55.5ml,10ml水样量纸片5张，每张接种水样10ml，1ml水样量纸片10张，其中5张各接种水样1ml,另5张各接种1：10的稀释水样1ml。
受污染水样，接种3个不同稀释度的1ml稀释水样各5张。
食品微生物快速检测常用方法纸片法测大肠菌群精-优秀PPT文档
结果判定
（纸
阴性结果：纸片保持紫蓝色不变，无论有否色
片
斑点或红晕均为阴性；
法 测
阳性结果及可疑现象：纸片上呈现红色斑点或
大 肠
红晕，其周围变黄整个纸片变黄均为阳性。若
菌
所检样品为未经消毒的食(饮)具，纸片结果是全
群
黄且无红色斑点或红晕，可直接列为阳性；如
）
若是已消毒的，应按发酵法做证实试验或加pH
7.4的无菌PBS溶液证实，以免误判。
（纸片法大测大肠菌群 ） 固轻体轻样 压品平肠菌，，吸置取36l℃:1混±悬1℃液恒3个温1箱m培L(养m1g5)，h，分观别察涂结布果于。3张纸片，再吸取l:10、1:100稀释液各3个mL(mg)，分别涂布于3张纸片，而后用手
群
）
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接种
（纸
液体样品吸取3个1mL分别涂布于3张纸片，再
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一
设备和培养基
二
操作步骤
三
结果报告
—
过渡页
一
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设备和培养基
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纸片(纸片制备：定性滤纸，切成10cm×12cm， 叠成5cm×6cm大小的双层纸片，经烘干或高压灭菌后 备用)、塑料袋(为耐高温的聚丙烯塑料薄膜袋，可按实 验要求压合成一定取l:10和l:100稀释液各3个1mL，分别涂布于3张
法 测
纸片；
大 肠
固体样品，吸取l:1混悬液3个1mL(mg)，分别
菌
涂布于3张纸片，再吸取l:10、1:100稀释液各3个
群
mL(mg)，分别涂布于3张纸片，而后用手轻轻压平，
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«样品编号3»«样品名称3»
«样品编号4»«样品名称4»
«样品编号5»«样品名称5»
检测者：审核者：
□电热恒温培养箱（型号：DNP-9272）36±1℃编号□04-15□04-24□05-11
培养基
□LST肉汤ML□BGLB肉汤ML□其他
培养条件
培养温度℃，培养时间h
样品编号及样品名称
纸片颜色及结果
可疑结果确证
（发酵法）
均匀紫色
（未检出）
黄色背景上有红点或片状红晕（检出）
品名称1»
大肠菌群快速纸片法原始记录
HSCDC/ZJ-19-14A共页第页
受检单位
«供样单位»
检测环境
温度（T）：℃；相对湿度（RH）：%
接样日期
年月日
检测地点
——
检测起止日期
年月日～月日
检测依据
□《食（饮）具消毒卫生标准》GB14934-94
□《食品卫生微生物学检验大肠菌群测定》GB4789.3-2008
检测仪器