生理科学实验——medlab 生物信号采集处理系统
生理科学实验设计家兔呼吸运动调节
生理科学实验设计——家兔呼吸运动的调节09级31班第四小组麦华浩莫世杰刘文荣罗国华王辉赵宏伟一：实验目的：（1）熟悉家兔耳缘静脉注射法、家兔颈部手术操作、神经血管分离、气管插管技术。
（2）记录家兔呼吸曲线观察一氧化碳（CO）、纯氧，走神经对呼吸运动的调节及了解其机理。
（3）熟悉Medlab生物信号处理系统、保护电极、氧气瓶，张力换能器在实验中的作用及使用注意事项。
二：立题依据：一氧化碳中毒机理是一氧化碳与血红蛋白的亲合力比氧与血红蛋白的亲合力高200～300倍，它进入人体后会和血液中的血红蛋白结合，使血红蛋白不能与氧气结合，从而造成人体组织缺氧。
急性中毒时，轻者会出现头痛、头晕、耳鸣、心悸、恶心、呕吐、无力，重者会出现心肌损害、脑椎体系损害、昏迷、休克甚至死亡。
及时强制吸氧，置换一氧化碳，能避免死亡。
临床表现主要为缺氧，其严重程度与HbCO的饱和度呈比例关系。
轻者有头痛、无力、眩晕、劳动时呼吸困难，HbCO饱和度达10%—20%。
症状加重，患者口唇呈樱桃红色，可有恶心、呕吐、意识模糊、虚脱或昏迷，HbCO饱和度达30%—40%。
重者呈深度昏迷，伴有高热、四肢肌张力增强和阵发性或强直性痉挛，HbCO饱和度>50%。
患者多有脑水肿、肺水肿、心肌损害、心律失常和呼吸抑制，可造成死亡。
二氧化碳（CO2）是调节呼吸运动最重要的生理性化学因素。
很早就知道，在麻痹的动物或人，当动物血液Pco2降到很低水平时，可出现呼吸暂停。
因此，一定水平的Pco2对维持呼吸中枢的基本活动是必需的。
CO2刺激呼吸运动是用过两条途径实现的：一是通过刺激中枢化学感受器再兴奋呼吸中枢；二是刺激外周化学感受器，冲动经窦神经和迷走神经传入延髓，反射性地使呼吸加深﹑加快，肺通气量增加。
CO2在呼吸调节中经常起作用，动脉血Pco2在一定范围内升高，可加强对呼吸的刺激作用氧中毒机理当吸入性PO2过高时，活性氧产生增加，反可引起组织，细胞损伤，称为氧中毒。
不同麻醉药对小鼠缺氧耐受性的影响及机制研究
不同麻醉药对小鼠缺氧耐受性的影响及机制研究作者：刘秋晨等来源：《中国医药科学》2013年第18期[摘要] 目的研究不同麻醉药物（戊巴比妥钠、三溴乙醇、乌拉坦和水合氯醛）对小鼠缺氧耐受性的影响及相关机制。
方法小鼠随机分成6组：生理盐水对照组、普萘洛尔对照组、戊巴比妥钠组、三溴乙醇组、乌拉坦组、水合氯醛组。
腹腔注射给药，缺氧瓶法测定小鼠缺氧耐受时间及耗氧率，并利用生物信号采集处理系统记录心率变化。
观察常温下不同药物对小鼠缺氧耐受时间的影响，并分析缺氧耐受时间与耗氧率、心率之间的关系。
结果戊巴比妥钠、三溴乙醇、乌拉坦和水合氯醛均显著延长小鼠的缺氧耐受时间（P[关键词] 麻醉药；缺氧耐受性；小鼠[中图分类号] R364.4 [文献标识码] A [文章编号] 2095-0616（2013）18-29-03缺氧是常见的病理生理过程，缺氧耐受性差的器官如心、脑等，更容易发生缺血-再灌注损伤（ischemia reperfusion injury），心脑血管疾病手术特别是冠脉搭桥术和心脏移植手术等的广泛开展，均涉及缺血-再灌注过程。
近年来研究显示，麻醉药除了其麻醉效能外，还能明显减轻缺血再灌注损伤，但其机制复杂，尚不完全清楚[1-3]。
目前研究主要集中在离体细胞和单个器官上，关于麻醉药预处理对全身缺血缺氧损伤的保护作用研究很少[4]。
因此，研究麻醉药物对机体缺氧耐受性的影响具有重要临床意义，本实验拟通过不同麻醉药物对小鼠缺氧耐受性的影响及相关机制研究，以期为临床相关缺血-再灌注疾病的治疗提供理论依据，对于改善患者预后具有重要价值。
1 材料与方法1.1 动物和试剂健康成年ICR（institute of cancer research）小鼠，体重（20±2）g，购自苏州大学实验动物中心。
普萘洛尔、三溴乙醇购自美国Sigma公司；水合氯醛购自上海金山制药有限公司；戊巴比妥钠、乌拉坦购自国药集团化学试剂有限公司；钠石灰购自上海化学试剂有限公司。
呼吸运动的调节实验教案
1、吸入CO2呼吸运动有何变化？为什么？
2.静脉注入3%的乳酸溶液呼吸运动有何变化？为什么？
3.剪断两侧颈部迷走神经时呼吸运动有何变化？为什么？
教材及参考书：南昌大学医学院编：机能实验学，2005。
姚泰主编：生理学．第6版．北京：人民卫生出版社． 2004
吕国蔚主编：实验神经生物学，北京：科学出版社，2002
第1页总4页（首页）
南昌大学医学院教案
教学内容与方法
时间分配
兔呼吸运动的调节
见《机能实验学》114页。
观看本次实验内容模拟实验，示范操作过程。介绍和强调注意事项，特别是麻醉和静脉注射时的注意事项。介绍MedLab生物信号采集处理系统的使用。
实验目的 观察各种因素对呼吸运动的影响,结合理论,分析其作运用途径,了解呼吸运动的调节机制。
目的与要求：
熟悉哺乳类动物手术方法和气管插管技术。观察各种因素对呼吸运动的影响,结合理论,分析其作用途径,了解呼吸运动的调节机制。
重点与难点：
重点：哺乳类动物手术方法和气管插管技术。吸运动影响的作用途径分析。
媒体与教具：
生理科学模拟实验系统、MedLab生物信号采集处理系统。
沈岳良主编：现代生理学实验教程，北京：科学出版社，2002
教研室（科室）主任
意见
教研室（科室）主任签章：年月日
教学实施情况及分析（此项内容在课程结束后填写）：
第4页总4页（尾页）
呼吸节律respiratory rhythm 缺氧 hypoxia(anoxia)
吸气切断机制 inspiratory off-switch mechanism
肺牵张反射 pulmonary stretch reflex or hering-Breuer reflex
生理科学创新性实验第一组
2.3大量静脉输入液体、利尿剂强化利 尿促进药物经肾脏排出，加大药物的排泄 量
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6
▪ 3.静脉应用纳洛酮 常用0.8—1.2mg/d静滴，兴奋呼吸中枢，减 少巴比妥类药物对呼吸中枢的抑制作用。 (本实验采用呼吸兴奋药加强呼吸解救）
▪ 4.对症支持治疗 包括维持血压、呼吸和体温，昏迷患者预防感
▪ 4、观察记录家兔在注射苯巴比妥之前呼气相， 吸气相，呼吸幅度和频率，血压等各项指标。
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12
▪ 5、给家兔第二次从耳缘静脉注射苯巴比妥 15mg/kg，观察并记录上述指标的变化，待 中毒症状明显后，然后立即从耳缘静脉注射 美解眠50mg，静脉注射后，每20min追加 25mg直至家兔呼吸曲线趋于正常停药，同 时从右侧颈外静脉滴注生理盐水以稀释血药
浓度同时增加尿量的排出以降低苯巴比妥的
浓度。若同时伴有血压下降等微循环障碍， 应从耳缘静脉注射0.01%去甲肾上腺素 0.1ml/kg。
▪ 6、按上述步骤操作后看上述指标是否恢复
正常。
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13
四、创新性
▪ 利用Medlab系统同时观察家兔呼吸指数与血压，直观 明了，利于观察相应变化
▪ 实验通过苯巴比妥麻醉，可以观察其麻醉效果
生理科学设计性实验——
家兔急性苯巴比妥中毒及其解救
组 别: 10级临床05班第1 组
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1
一、实验目的：
▪ 学习制备家兔急性苯巴比妥中毒动物模型 的方法，观察急性苯巴比妥中毒时动物的 一般表现，掌握急性苯巴比妥中毒的发病 原理及其抢救方法。同时了解掌握呼吸兴 奋药美解眠的药理作用，观察其对呼吸运 动的影响。
染等。
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生理学实验课件 蛙类神经干动作电位的引导及其传导速度、不应期的测定
上相幅值 刺激
伪迹
mV
0
-35
潜下伏相期幅值
时程
刺激伪迹：刺激形成的电变化在神经干表面 的传导，可作为刺激开始的标志。
S
R1
R2 R3
R4
神经干
神经干
标本屏蔽盒
S1 S2
R1 R2 R3 R4
神经干动作电位传导速度测定原理：
V=s/t
通道1 通道2 通道3
t1
t t2
神经干动作电位不应期的测定原理：
三、测定神经干动作电位的传导速度、不应期
实验报告封面
班级： 组别： 姓名： 学号：
日期： 温度：
蛙类神经干动作电位的引导及传导速度、不应期的测定 一、实验目的 二、实验材料及步骤 略（详见《生理科学实验》P83～P87） 三、结果
图1 1通道神经干双相动作电位
表1 蛙类神经干动作电位的引导及传导速度、不应期的测定结果
5-3
本实验中相关数据的记录
•阈刺激 •最大刺激强度 •双相动作电位上下相幅值 •双相相动作电位上下相时程 •动作电位潜伏期（t1、t2) •动作电位间隔时间（t）
实验后数据处理：
• 打印1通道双相动作电位的图谱； • 按表5-2列出实验结果的相关数据； • 分析实验结果，并写出实验报告。
图1 1通道双相动作电位
相呼应。
预习：
实验二 影响血液凝固的因素； 实验三 红细胞渗透脆性的测定。 要点: 各种处理因素对血液凝固的影响及其原理；
红细胞渗透脆性的测定方法，渗透性溶血的 原理。
S
中枢端
R1
R2 R3
R4
神经干
神经干
外周端
标本屏蔽盒
S1 S2
实验1 刺激强度频率对骨骼肌收缩的影响
实验1 刺激强度、频率对骨骼肌收缩的影响【目的】本实验在保持刺激时间恒定的条件下，逐步增加或减小对蟾蜍坐骨神经的刺激强度(脉冲振幅)和改变电脉冲刺激频率，观察记录腓肠肌收缩收缩张力，分析探讨刺激强度和刺激频率与骨骼肌收缩张力的关系。
学习微机生物信号采集处理系统的使用。
【原理】肌肉、神经和腺体组织称为可兴奋组织，它们有较大的兴奋性。
不同组织、细胞的兴奋表现各不相同，神经组织的兴奋表现为动作电位，肌肉组织的兴奋主要表现为收缩活动。
因此，观察肌肉是否收缩可以判断它是否产生了兴奋。
一个刺激是否能使组织发生兴奋，不仅与刺激形式有关，还与刺激时间、刺激强度、强度-时间变化率三要素有关，用方形电脉冲刺激组织，则组织兴奋只与刺激强度、刺激时间有关。
用方形电脉冲刺激组织，在一定的刺激时间(波宽)下，刚能引起组织发生兴奋的刺激称为阈刺激，所达到的刺激强度称为阈强度，能引起组织发生最大兴奋的最小刺激，称为最大刺激，相应的刺激强度叫最大刺激强度；界于阈刺激和最大刺激间的刺激称阈上刺激，相应的刺激强度称阈上刺激强度。
刺激神经使神经细胞产生兴奋，兴奋沿神经纤维传导，通过神经肌接头的化学传递，使肌肉终板膜上产生终板电位，终板电位可引起肌肉产生兴奋(即动作电位)，传遍整个肌纤维，再通过兴奋-收缩耦联使肌纤维中粗、细肌丝产生相对滑动，宏观上表现为肌肉收缩。
肌肉收缩的形式，不仅与刺激本身有关，而旦还与刺激频率有关。
当刺激频率较小，使刺激间隔大于一次肌肉收缩舒张的持续时间，则肌肉收缩表现为一连串的单收缩；增大刺激频率，使刺激间隔大于一次肌肉收缩的收缩时间、小于一次肌肉收缩舒张的持续时间，则肌肉产生不完全强直收缩；继续增加刺激频率，使刺激间隔小于一次肌肉收缩的收缩时间，则肌肉产生完全强直收缩。
【预习】1．仪器设备知识参见RM6240微机生物信号采集处理系统介绍。
2．实验理论实验动物知识参见第三章第一节生理科学实验常用实验动物的种类；第四章第一节动物实验的基本操作；统计学知识参见第五章第四节常用统计指标和方法；生理学教材中兴奋性、兴奋的概念，神经肌接头化学传递的机制，骨肌的收缩原理和肌肉收缩的外部表现和力学分析。
生理实验
2008年考研动物生理试验实验一蛙坐骨神经腓肠肌标本制备[目的] 熟悉蛙 (或蟾蜍) 的坐骨神经腓肠肌标本的制备方法，初步掌握几项基本实验操作。
[原理] 蛙类的一些基本生命活动和生理功能与温血动物相类似，而其组织在离体状态下，易于控制和掌握，所以蛙类的神经一肌肉标本常用以研究兴奋性、兴奋过程、刺激的一些规律和特性。
[实验动物] 蛙 (或蟾蜍)[器材及药品] 解剖器械，锌铜弓，培养皿，烧杯，任氏液，棉花线。
[方法及步骤] 1．破坏脑脊髓：取蛙或蟾蜍一只，用蛙针从枕骨大孔垂直插入，向前伸人颅腔，捣毁脑髓；向后插入椎管，捣毁脊髓。
如果蛙处于瘫痪状态，表示脑和脊髓完全破坏。
然后沿两侧腹部将蛙横断为上下两半。
并将前半段弃去，保留后半段备用。
2．剥离皮肤：先剪去尾椎末端及泄殖腔附近的皮肤，然后从脊柱的断端撕下皮肤，将其全部剥去，直至趾端。
除去内脏，将标本放在滴有任氏液的蛙玻璃板上。
将手及使用过的解剖器械洗净。
3．分离标本为两部分：沿脊柱正中线将标本匀称地剪成左右两半，一半浸入盛有任氏液的烧杯中备用，另一半作进一步剥制。
4．分离坐骨神经：在大腿背侧的半膜肌与股二头肌之间用玻璃分针分离出坐骨神经。
注意：分离时要仔细用剪刀剪断坐骨神经的分支，向上分离至基部，向下分离到腘窝。
保留与坐骨神经相连的一小块脊柱，将分离出来的坐骨神经搭于腓肠肌上；去除膝关节周围以上的全部大腿肌肉，刮净股骨上附着的肌肉，保留的部分就是坐骨神经及股骨。
5．分离腓肠肌：在跟键上扎一线，提起结线，剪断结线后的跟腱，腓肠肌即可分离出来。
此时在膝关节下方将其他所有组织全部剪去，到此为止，带有股骨的坐骨神经腓肠肌标本制备完成。
6.标本的检验：将坐骨神经腓肠肌标本放置在蛙玻璃板上，用锌铜弓刺激坐骨神经，若腓肠肌迅速发生收缩反应，说明标本机能良好，制备成功。
应及时移放入盛有任氏液的培养皿中，供实验之用。
[注意事项]1．剥制标本时，切忌用金属器械牵拉或触碰神经干。
实验指导书(生理学部分)
实验项目一：常用实验动物的基本操作（一）实验动物的抓握、固定和处死方法1、小鼠抓取固定方法小鼠温顺，一般不会咬人，抓取时先用右手抓取鼠尾提起，置于鼠笼或实验台向后拉，在其向前爬行时，用左手拇指和食指抓住小鼠的两耳和颈部皮肤，将鼠体置于左手心中，把后肢拉直，以无名指按住鼠尾，小指按住后腿即可。
有经验者直接用左手小指钩起鼠尾，迅速以拇指和食指、中指捏住其耳后颈背部皮肤亦可。
这种在手中固定方式，能进行实验动物的灌胃、皮下、肌肉和腹腔注射以及其他实验操作。
如进行解剖、手术、心脏采血和尾静脉注射时，则需将小鼠作一定形式的固定，解剖手术和心脏采血等均可使动物先取背卧位（必要时先行麻醉），再用大头针将鼠前后肢依次固定在腊板上。
2、小鼠的处死方法可采用颈椎脱臼法。
此法是将实验动物的颈椎脱臼，断离脊髓致死，为大、小鼠最常用的处死方法。
操作时实验人员用右手抓住鼠尾根部并将其提起，放在鼠笼盖或其他粗糙面上，用左手拇指、食指用力向下按压鼠头及颈部，右手抓住鼠尾根部用力拉向后上方，造成颈椎脱臼，脊髓与脑干断离，实验动物立即死亡。
（二）动物血细胞计数方法材料和用品（1）器材：细胞计数板、细口滴管、绸布。
（2）试剂：0.4％台盼蓝。
（3）材料：血细胞悬液。
实验原理细胞计数一般用血细胞计数板，按白细胞计数方法进行计数。
细胞计数时，先将培养细胞或血细胞稀释成细胞悬液，然后将细胞悬液滴入细胞计数板内，计数计数板上计数室四大格内的细胞数。
根据计数室的容积及稀释倍数，即可计算出细胞浓度。
实验步骤：图5－1 血细胞计数板1．采血及稀释用1ml移液管吸取0.38ml白细胞稀释液放入小试管内备用，另用5ml移液管吸取3.98ml红细胞稀释液放入小试管内备用。
用酒精棉球消毒兔的耳缘静脉采血部位，用刺血针刺破血管，让血液自然流出，擦去第一滴血，待流出第二滴血时，用一次性毛细血管分2次准确吸取20ul、和20ul，将血液分别吹入盛有白、红细胞稀释液的小试管内，用滴管放在试管底部轻轻吹出血液，用上清液冲洗毛细取血管2～3次，轻轻摇动，使液体充分混匀。
神经干不应期的测定
生理科学实验实验报告课程名称：生理科学实验指导老师：陆源实验名称：神经干不应期的测定实验类型：模拟实验同组学生姓名：神经干不应期的测定寿春晖（浙江大学2004级临床医学3B班，浙江杭州310058）[摘要]目的：了解蛙类坐骨神经干产生动作电位后其兴奋性的规律性变化。
学习绝对不应期和相对不应期的测定方法。
方法：制备蛙坐骨神经干标本，刺激模式设为双刺激，逐步减小波间隔，观察第二个动作电位振幅与第一个相同的刺激波间隔和第二的动作电位消失的刺激波间隔。
结果：第二个动作电位与第一个动作电位振幅相同的刺激波间隔为10.6ms，第二个动作电位消失的时间间隔为1.0ms。
结论：神经干存在着绝对不应期和相对不应期。
[关键词]神经干动作电位绝对不应期相对不应期1.实验材料和方法1.1 实验材料：蟾蜍、标本屏蔽盒、任氏液、微机生物信号采集处理系统。
1.2 实验方法：1.2.1 系统连接和仪器参数设置（1）RM6240系统：点击“实验”菜单，选择“肌肉神经”或“生理科学实验项目”菜单中的“神经干兴奋不应期的测定”或“神经干兴奋不应期的自动测定”项目。
系统进入该实验信号记录状态。
仪器参数：1通道时间常数0.02s、滤波频率1KHz、灵敏度4mV，采样频率80KHz，扫描速度1ms/div。
双刺激激模式，最大刺激强度，刺激波宽0.1ms，起始波间隔0.5 ms，延迟2ms，同步触发。
（2）PcLab和MedLab系统：点击“实验”菜单，选择“常用生理学实验”或“文件”菜单“打开配置”中的“神经干动不应期测定”项目。
系统进入该实验信号记录状态。
仪器参数：2通道放大倍数200、交流耦合（AC）、上限频率10KHz，通道4，记录刺激标记，放大倍数5～50，采样间隔20ms；自动间隔调节刺激方式，最大刺激强度，周期1s，波宽0.1ms，首间隔0.5ms，增量0.2ms，末间隔：30ms，延时1ms；记忆示波方式，刺激器触发。
1.2.2神经干制备（1）毁脑脊髓和下肢标本制备：按实验1介绍的方法。
家兔急性肺水肿
家兔急性肺水肿【摘要】目的：通过本实验了解复制家兔急性肺水肿模型，进一步了解急性肺水肿表现及其发生机制。
方法：先通过复制家兔实验性肺水肿模型,再用观察法观察家兔的变化,了解肺水肿的发生机制和主要表现。
结果：在逐渐注入肾上腺素生理盐水之后，家兔出现呼吸急促，后来呼吸困难，气管插管内涌出大量粉红色液体，最后家兔处死，肺系数增大。
结论：给家兔快速滴注生理盐水，使循环血容量急剧增多，注入肾上腺素可引起交感活性加强，导致体循环外周阻力增高，大量血液从体循环转移到肺循环，而左心未能及时适应，引起肺毛细血管静水压明显上升，肺血管内液体渗入肺间质和肺泡，发生肺水肿，家兔出现呼吸急促，后来困难、粘膜紫绀，两肺有弥散性湿罗音，气管插管内涌出大量粉红色液体。
【关键词】急性肺水肿肾上腺素生理盐水【 abstract】Objective: through the experiment about the replication rabbit model of acute pulmonary edema, further understand the manifestations and mechanism of acute pulmonary edema. Methods: first, through the model replicated experimental pulmonary edema in rabbits, and then observe the change of observation method in rabbits, investigate the mechanism and the main manifestations of pulmonary edema. Results: after the injection of adrenalin saline in rabbits gradually, shortness of breath, tracheal intubation in pouring a lot of pink liquid, finally rabbits were executed, the pulmonary coefficient increased. Conclusion: to the rabbits of rapid infusion of saline, the circulating blood volume increased sharply,injecting adrenaline can cause sympathetic activity strengthened, resulting in systemic circulation increased peripheral resistance, transfer a lot of blood from the body circulation to the pulmonary circulation, and left heart failed to adapt to, cause pulmonary capillary hydrostatic pressure increased significantly, pulmonary intravascular fluid infiltration of pulmonary interstitial and alveolar, pulmonary edema occurs in rabbits, shortness of breath, difficulty, mucous membrane cyanosis, two lung diffuse rales, tracheal intubation from large pink liquid.【key words】acute pulmonary edema; epinephrine; saline【引言】水肿是指组织间隙内的体液增多。
生理科学实验设计书
【实验目的】1、观察家兔高镁血症的症状。
2、了解钙镁拮抗的原理并学习用氯化钙缓解高镁血症的方法。
【立题依据】镁镁是人体必需的矿物元素，因为镁在人体的含量较多，故被成为常量元素。
正常成人身体总镁含量约25克，其中60％-65％存在于骨，齿，27％分布于软组织。
镁主要分布于细胞内，细胞外液的镁不超过1％。
它的主要生理功能是：激活人体多种酶的活性；维护骨骼生长和神经肌肉的兴奋性；维护胃肠道和激素的功能。
如果镁缺乏，对上述功能会发生影响，可导致血清钙下降；神经肌肉兴奋性亢进；对血管功能可能有潜在的影响（有人报告低镁血症患者可有房室性早搏，房颤以及室速和室颤，半数有血压升高；可能是绝经后妇女骨质疏松症的一种危险因素；也有研究表明镁耗竭可导致胰岛素抵抗（与糖尿病有关）。
镁在粗粮，绿叶蔬菜，坚果中含量丰富，而肉类，淀粉食物和牛奶中镁的含量属中等。
-------资料来自《健康与生活》高镁血症病因高镁血症以急性或慢性肾功能衰竭多见，但一般肾功能衰竭患者血镁大多仍能维持正常或正常偏高水平，且无高镁血症导致的症状。
如果一时摄入过多(如使用抗酸剂)或经其他途径进入体内过多(例如肌注硫酸镁等)，则有可能出现明显高镁血症并出现症状。
此外，甲状腺素可抑制肾小管镁重吸收、促进尿镁排出，故某些黏液性水肿的患者可发生高镁血症。
醛固酮也有抑制肾小管镁重吸收、促进尿镁排出的作用，故Addison病患者可有高镁血症。
-------资料来自《百度百科》镁的生理作用：高镁血症主要由机体内镁摄入过多或排出减少所致，血清镁浓度高于 1.25mmol/L （2.5mEq/L）时为高镁血症。
高镁血症的临床表现与血清镁升高的幅度及速度均有关。
短时间内迅速升高者临床症状较重。
一般早期表现为食欲不振、恶心、呕吐、皮肤潮红、头痛、头晕等，因缺乏特异性，容易忽视。
当血清镁浓度迅速升高，可出现神经-肌肉及循环系统的明显改变。
1.对神经-肌肉的影响:故表现为呼吸肌无力和中枢抑制状态。
实验三 蟾蜍实验(一)
提起结扎线，在结扎线下端剪断跟腱。用玻璃分
针游离腓肠肌至膝关节处，剪去以下部位。制成
坐骨神经-腓Байду номын сангаас肌标本。
1、股三头肌 2、股二头肌 3、半膜肌 4、股骨
8．检验标本：用沾有任氏液的锌铜弓轻触一下坐骨神经，如腓肠肌发生迅速而明显的收
缩，说明标本的兴奋性良好。将标本浸入任氏液中 15 分钟，以稳定其兴奋性。
二、蛙坐骨神经干标本制备
9．标本制备方法基本同坐骨神经—腓肠肌标本制备法，只是为了获得尽量长的神经干标
本，在分离到腓肠肌后再继续沿神经一分支(胫神经)一直分离至踝关节附近，末端结扎并剪
断。
三、生物电现象的观察
10．将一个神经肌肉标本的神经的一点轻置于臀部肌肉的损伤部，另一点置于正常部，
观察在接触时是否引起肌肉的收缩?
末幅度
1V
放大倍数
200-1000
200-1000
脉冲数
1
Y 轴压缩比
4：1
4：1
延时
5ms
14．实时调节 Medlab 生物信号采集系统和刺激器的延迟，使动作电位波形正好出现在显 示屏的适中位置同时调节刺激强度求出在相应刺激波宽下动作电位产生的阈强度和顶强度。
15．双相动作电位的观察： 计算双相动作电位时程及上升相、下降相宽度及幅值，计算
11．将甲标本的神经放在乙标本的肌肉
上，再用锌铜弓刺激乙标本的神经，观察
是否引
起甲标本的肌肉收缩。
四、仪器联接和调试
12．打开 Medlab 生物信号采集系统软件，
任选二个通道（Medlab-U）和 2，4 通道
(Medlab-E)作为记录信号的通道或用于刺激信号的监视通道（不应期测定，Medlab-U 应用
药理实验课讲义(药学专业)
药理学实验须知一、明确药理实验的目的要求药理学实验课是药理学教学的一个重要组成部分。
它的目的任务一方面是验证理论，巩固并加强对理论知识的理解；另一方面是通过实验掌握研究药物作用的基本操作方法和技能，培养对科学工作严肃的态度，严肃的方法和严格的要求，培养根据客观实际分析问题和解决问题的能力，为今后进行科学研究，打下初步基础，以便为实现中西医药结合作出贡献。
药理实验包括进行实验操作(有些部分可进行病例讨论)、整理实验结果写出实验报告等环节。
为了提高实验效果，实验前应作好预习，明确本次实验目的、方法步骤和原理，做到心中有数，避免实验中出现忙乱和差错。
实验过程中要在教师指导下加强培养独力操作能力，克服对教师的依赖性。
通过实验操作要求在生理生化实验的基础上掌握固定动物和各种给药方法，掌握剂量换算和麻醉方法，学会观察记录主要生理生化指标，掌握注射器、天平、磅秤、二导生理记录仪、药理生理多用仪及描记装置等用法，掌握离体心脏、肠管、子宫和在体动物血压、呼吸及各系统药物的主要实验方法。
二、作好实验结果的处理药理实验结果有生理记录仪等记录的曲线、测量资料(如血压、心率、瞳孔大小、睡眠时间等测量的数据)和计数资料（如动物死活数、阴性和阳性反应数等数据）等几种。
要如实地准确地对观察到的数据及时加以记录，决不可想当然地用主要观想象或书本理论代替实验观察到的客观事实。
实验完毕对结果分别加以整理。
记录曲线要加以剪裁。
注明动物性别、体重、日期、实验题目、给药剂量等。
计数资料和测量资料应酌情列表或画图以便比较，使结果一目了解。
三、写好实验报告写实验报告是培养文字表达能力和概括综合分析问题能力的重要训练方法。
每次实验后要求用统—实验报告本写好报告，交负责教师评阅。
在实验报告中要求列出实验题目、实验方法和实验结果。
有时要对实验结果产生的原理或对实验结果异常的原因略加讨论。
讨论不可离开实验结果去抄书。
实验指导所列思考题或讨论题是为加深对实验的理解，如果与实验结果无关，不必写入实验报告。
呼吸运动的调节实验教案
4、启动MedLab生物信号采集处理系统,点击菜单“实验/常用生理学实验”，选择“呼吸运动的调节”，调用己设置好仪器参数的文件，开始采样观察。
5.观察项目
首先观察正常呼吸曲线。
(l)增加吸入气中的C02浓度:将装有C02的球胆通过一细塑料管插入气管套管一侧管中.打开球胆的夹子.使一部分C02随着吸气进入气管注意，一旦呼吸有所变化应迅速停止CO2的吸入,吸入过量的CO2会造成兔的死亡。观察吸入高浓度的C02对呼吸运动的影响,及去掉CO2球胆后呼吸运动的恢复过程.
在巡视中发现问题和解答学生提的问题，启发和指导学生解决问题。
实验结果记录和分析：将记录到的各种实验观察项目呼吸运动曲线进行比较并进行分析。
介绍预期结果和解释，比较并分析实验结果与预期结果不同之处。
实验结果与预期结果不符，可能原因：气管插管侧管与气囊或长橡皮管相连处密封不良有漏气；静脉注射乳酸溶液，药物漏出剂量不够。
呼吸节律respiratory rhythm缺氧hypoxia(anoxia)
吸气切断机制inspiratory off-switch mechanism
肺牵张反射pulmonary stretch reflex or hering-Breuer reflex
40min
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南昌大学医学院教案
实验原理呼吸运动是一种节律性活动,其深度和频率能随机体活动水平而改变.正常情况下的节律性活动是呼吸中枢节律性活动的反映,肺牵张反射是保证呼吸节律的机制之一。随生理状态的不同,其呼吸所发生的适应性变化,是由于各种剌激直接作用于呼吸中枢,或间接地通过各种化学感受器而引起.最终由呼吸中枢通过支配呼吸肌的传出神经,引起呼吸肌产生不同水平的收缩,使呼吸运动随之而改变,以维持血液中正常的O2和CO2的含量。
休克实验报告
家兔失血性休克及其抢救实验人员5人第2组班一、实验目的1. 复制家兔失血性休克模型，观察少量失血和大量失血对家兔动脉血压、心率、皮肤和粘膜颜色的影响。
探讨其发生机制。
2. 用颈外静脉输血和输液的方法抢救失血性休克，观察抢救过程中家兔动脉血压、心率、皮肤和粘膜颜色的变化。
二、实验材料和方法实验器械：兔手术台，常规手术器械，注射器，动脉夹，动脉插管，电刺激连线，血压换能器，三通管，铁架台，棉线，纱布实验仪器：电脑，RM6240生物信号采集系统实验药品：20%氨基甲酸乙酯，肝素，生理盐水0.1ml/10g三、实验对象家兔1只由浙江中医药大学动物实验中心提供四、实验步骤1、仪器调试：首先打开电脑，选择MedLab生物信号处理系统；从第1、2、3通道中选择1个通道，记录动脉血压(记录平均动脉血压、收缩压、舒张压和脉压)。
其次将血压换能器连接线与相应的通道相连，检查换能器是否正常,加肝素溶液排除空泡，先清零，血压0mmH2、家兔称重、麻醉和固定取家兔一只，称重：2.8Kg ，用20%氨基甲酸乙酯以5ml /Kg（体重）, 耳缘静脉缓慢注射麻醉, 共注射14ml, 至呼吸深而慢、反射迟钝（角膜反射、夹肢反射）为止。
把兔子以背位固定法固定。
3、麻醉起效后手术颈部手术——左颈总动脉、右颈外静脉、右颈总动脉插管（1）颈部备皮，作颈部，正中3～5cm切口，左右颈总动脉分离，穿线标记，备用。
（2）左颈总动脉插管术---测血压动脉插管及换能器肝素化，左颈总动脉远心端结扎，近心端动脉夹夹闭，动脉前壁倒“V”切口动脉插管插入，结扎固定。
放开动脉夹记录正常动脉血压(平均血压、脉压差、心率)。
（3）右颈外静脉插管术—输血输液排掉输液管中的空气。
右颈静脉近心端动脉夹夹闭，远心端结扎，静脉前壁倒“V”切口，输液管插入，固定。
缓慢输液，保持通畅。
（4）. 右颈总动脉插管术——失血造模用肝素抗凝剂排掉50ml注射器（其中保留少许肝素液）和动脉插管中空气，右颈总动脉远心端结扎，近心端动脉夹夹闭，动脉前壁倒“V”切口动脉插管插入，结扎固定。
rm 6240 bd 多道生理信号采集处理系统在动物生理学实验教学中的应用
随着现代电子技术和计算机技术的飞速发展，实验手段和 设备不断更新， 实验仪器的微机化、 数字化、 智能化已成为一种 必然。BC"DEFG; 多道生理信号采集处理系统就是集数字信号 处理技术、 生物信号采集、 放大、 显示、 记录、 分析于一体的最新 的一种多媒体系统。该系统可替代传统的示波器、生物信号放 大器、 记录仪和刺激器， 功能强大， 操作灵活， 很多实验由一套 BC"DEFG; 多道生理信号采集处理系统就能完成。 我实验室 DFFH 年引进 " 套 BC"DEFG; 多道生理信号采集 处理系统并将其应用于动物生理学实验教学中，已经取得了良 好的教学效果。现将该系统的应用体会介绍如下。 ( -./)!012 多道生理信号采集处理系统的组成及工作原理
11111111111111111111111111111111111111111111111111111111111111 好用 784,1；自然语言检索，最好用 $%9,1’’:；网络新闻组查询， ! "#$%&#%$ 医学信息检索技巧
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1生理学实验
（1）刺激系统：是对欲研究的对象施加刺激，引起其生 理功能变化（即产生兴奋）的一套仪器设备。多种刺激 因素，如光、声、电、温度、机械及化学因素都可兴奋 组织，使其产生生理活动的变化。但生理实验中应用最 多的还是电刺激，因为电刺激较容易控制、对组织没有 或损伤很小，引导方便，可重复使用。电刺激系统包括 电子刺激器、刺激隔离器和各种电极。 （2）引导、换能系统：生理功能变化的信号只有用一定 的议器设备显示、记录下来才有研究的价值。因此需要 有一定的装置能将其引导到显示、记录仪器上。若生理 信号是电信号引导系统可能是引导电极。包括记录单细 胞活动的玻璃微电极和记录一群细胞电活动的金属电极 。若生理现象为其他能量形式时，如机械收缩、压力、 振动、温度和某种化学成分变化等，都需要将原始生理 信号转换为电的信号加以引导，这就是各种形式的换能 器。
Pclab 生物医学信号采集处理系统
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作业
预习坐骨神经-腓肠肌标本的制备。 预习坐骨神经-腓肠肌标本的制备。 预习动作电位和神经干不应期形成原理。 预习动作电位和神经干不应期形成原理。 请查阅大量相关材料设计一个实验测量神 经干动作电位及其速度。 经干动作电位及其速度。
（3）信号调节放大系统：有的生理信号较为微弱，尚需 进行适当的放大。信号调节系统是一种放大器或放大器 的组合，对信号基线的位置和输出信号幅度的高低（增 益，信号的Y轴）进行调节。最原始的经典仪器是各式 各样的杠杆、玛利式气鼓、各种检压计等、现代仪器设 备包括示波器、记录仪中的放大器部分和专用的前置放 大器、微电极放大器等。 （4）显示与记录系统有用纸带记录、显示屏记录或显示 信号的仪器。通过调节相关的旋钮调节走纸速度或扫描 速度（信号的X轴）将信号扩展开来。记纹鼓是一种较 为原始的经典记录仪。 由于计算机技术的发展。计算机生物信号采集处理 系统已在生理学实验中广泛应用，有替代刺激器、放大 器、示波器和记录仪的趋势。