药理实验
药理学实验设计方案
药理学实验设计方案药理学实验设计方案一、背景介绍药理学是研究药物对生命体的作用机理及其药理效应、毒性、药物代谢等药物性质的一门学科。
药理学实验是药理学研究的重要手段，通过药理学实验可以观察药物的作用效果，以了解药物的药理效应、副作用等。
二、实验目的本实验旨在了解不同药物对小鼠血压和心率的影响，以及探究血压和心率的变化与药物剂量之间的关系，为临床应用药物提供依据。
三、实验设计1. 动物模型：选用C57BL/6小鼠为实验对象，雄性小鼠，体重20-30g，数量30只。
2. 分组设计：将小鼠随机分为5组，每组6只。
分别为：正常对照组（给予生理盐水）、低剂量组（给予药物X低剂量）、中剂量组（给予药物X中剂量）、高剂量组（给予药物X 高剂量）、对照组（给予药物Y）。
3. 实验操作：（1）采用尾动脉插管法测量小鼠血压和心率，记录基础值（即给药前）。
（2）给予不同剂量的药物X和药物Y，以相同的体积溶液为对照组。
（3）测量给药后不同时间间隔的血压和心率，记录数据。
（4）对数据进行方差分析（ANOVA）和t检验，分析不同剂量组血压和心率变化差异的显著性。
4. 统计分析：（1）数据以平均数±标准误（mean±SEM）表示。
（2）使用一元方差分析（one-way ANOVA）和t检验分析数据，P<0.05即为显著差异。
四、实验步骤1. 将小鼠随机分为5组，注射不同剂量的药物X和药物Y。
2. 将小鼠麻醉，采用尾动脉插管法测量血压和心率，记录基础值。
3. 给予药物X和药物Y，以生理盐水作为对照组。
4. 给药后分别在30min、60min、90min和120min测量小鼠的血压和心率，并记录数据。
5. 对数据进行方差分析（ANOVA）和t检验，分析不同剂量组血压和心率变化差异的显著性。
6. 统计分析数据，以平均数±标准误（mean±SEM）表示。
五、实验注意事项1. 实验中应注意保持小鼠的清洁和舒适，避免受到惊吓和过度刺激。
药理毒理学实验
药理毒理学实验
药理毒理学实验是指研究药物对机体生理和病理过程的影响以及药物的毒性和安全性的实验研究。
这些实验常用于药物的开发、评价和监管。
药理学实验常包括以下方面的研究：
1. 药物在体内的吸收、分布、代谢和排泄过程；
2. 药物对生理系统和器官的作用机制和效应；
3. 药物对生理参数（如血压、心率、血糖等）的影响；
4. 药物的药效学研究，如测定最小有效剂量、最大耐受剂量等。
毒理学实验主要研究药物对机体引起的毒性反应，包括急性毒性、慢性毒性和亚慢性毒性等。
常用的毒理学实验包括：
1. 急性毒性实验：用于确定药物对动物的一次性剂量引起的毒性反应；
2. 慢性毒性实验：用于评估长期接触药物对动物的毒性效应；
3. 亚慢性毒性实验：用于评估中长期接触药物对动物的毒性效应；
4. 各种毒性指标的测定，如致死剂量、半数致死剂量、致畸性、致癌性等。
药理毒理学实验通常在动物模型中进行，常用的动物包括小鼠、大鼠、猴等。
实验设计需要符合伦理规范，并进行必要的安全措施，以确保实验过程安全且可靠。
值得注意的是，药理毒理学实验虽然可以提供药物效果和毒性的初步评估信息，但实验结果在转化到人类临床应用方面仍需要进行更进一步的研究和验证。
药理实验方法学
药理实验方法学药理学是研究药物在生物体内作用机理和药效学的科学。
药理实验方法学是药理学的基础，是药理学实验研究的方法和技术的总称。
药理实验方法学的研究对于揭示药物的作用机制、药效学、毒理学等具有重要意义。
下面将介绍一些常见的药理实验方法学。
首先，药理学实验的基本方法之一是体外实验方法。
体外实验是指在体外环境中进行的实验，常用的体外实验方法包括离体器官实验、细胞培养实验等。
离体器官实验是将动物的器官取出后放置在适当的培养液中进行实验，通过观察器官的生理功能变化来研究药物的作用机制。
细胞培养实验是将动物组织中的细胞进行离体培养，然后进行药物的作用研究。
体外实验方法可以减少动物的使用，同时也可以更好地控制实验条件，是药理学研究中常用的方法之一。
其次，药理学实验的另一种方法是体内实验方法。
体内实验是指在活体动物体内进行的实验，常用的体内实验方法包括动物实验、药物代谢实验等。
动物实验是将药物通过不同的给药途径给予实验动物，然后观察动物的生理、病理变化，从而研究药物的药效学和毒理学。
药物代谢实验是研究药物在体内的代谢过程，通过检测药物及其代谢产物在体内的浓度变化来研究药物的代谢途径和代谢动力学。
体内实验方法可以更好地模拟药物在生物体内的作用过程，是药理学研究中不可或缺的方法。
此外，药理学实验还可以采用计算机辅助实验方法。
随着计算机技术的发展，计算机辅助实验方法在药理学研究中得到了广泛应用。
计算机辅助实验方法包括药物分子模拟、药效动力学模拟等。
药物分子模拟是利用计算机对药物分子进行模拟，从而研究药物与受体的结合方式和作用机制。
药效动力学模拟是通过建立药物在体内的动力学模型，模拟药物在体内的代谢和排泄过程。
计算机辅助实验方法可以更好地理解药物的作用机制和药效学特性，为药物研发提供重要的参考。
总之，药理实验方法学是药理学研究的基础，不同的实验方法可以相互补充，共同揭示药物的作用机制和药效学特性。
随着科学技术的不断发展，药理实验方法学也在不断创新和完善，为药物研发和临床应用提供了有力支持。
药理学实验的基础知识
药理学实验的基础知识药理学是研究药物对生物体产生作用的科学，而药理学实验是用来研究、验证药物的药效、毒性和代谢等特性的重要手段。
在进行药理学实验之前，研究人员需要掌握一些基础知识，以确保实验的可靠性和科学性。
药理学实验的分类药理学实验通常可以分为体外实验和体内实验两大类。
体外实验体外实验是在体外环境（如离体器官、细胞培养皿等）中进行的实验，用于研究药物对细胞、基因等的作用机制和生物效应。
体内实验体内实验是在动物模型或人体中进行的实验，用于评价药物的生物活性、毒性和药代动力学特性等。
药理学实验的设计原则进行药理学实验时，必须遵守一些设计原则，以确保实验结果的准确性和可靠性。
1.随机分组：实验对象在实验前应随机分配到不同的实验组，以减少实验结果的偶然性。
2.双盲对照：在动物实验中，研究人员应当实现实验组和对照组的盲法实验，以减少实验结果的主观影响。
3.样本量控制：实验设计时需要合理确定实验组和对照组的样本量，以保证实验结果的统计学意义。
4.质量控制：在进行实验的过程中，需要确保实验操作的标准化和一致性，以减少操作误差。
药理学实验的常用技术在药理学实验中，有许多常用技术可以帮助研究人员获取所需数据和信息，例如：•ELISA检测技术：用于测定细胞因子、蛋白质等分子在样本中的浓度。
•Western blot：检测蛋白质表达水平和结构特征的技术。
•细胞色素释放试验：用于评价药物对细胞毒性的影响。
•动物行为学实验：评估药物对动物运动、认知等行为的影响。
药理学实验的伦理和安全注意事项在进行药理学实验时，研究人员需要遵守相关的伦理规范和安全措施，以保障实验对象的权益和研究人员的安全。
1.动物实验伦理：研究人员应当遵守动物实验的伦理规范，尽量减少动物的痛苦和不必要的死亡。
2.实验室安全：在实验室操作时应当穿戴个人防护装备，确保实验操作的安全。
3.数据保密：研究人员需要确保实验数据的保密性，防止实验数据泄露。
结语药理学实验作为药物研发的重要环节，需要研究人员具备扎实的基础知识和实验技术，以确保实验结果的科学性和可靠性。
药理学实验方法包括
药理学实验方法包括
1、体外实验：主要是在体外模拟生物系统的实验，用于研究药物的药理作用机制，
如电聚焦法、半稳定法、趋式滤液法、吸附氯化钾法、血浆药代动力学等。
2、动物实验：通过运用实验动物，研究药物的药理作用、药效学性质，帮助有效的
选择和用药，从而推动药物研发的发展。
3、临床实验：最重要的药理学研究方法，是对导致药物最终出现药效作用的机制和
动力学等进行研究。
通过临床研究，一方面可以评价药物的作用本质，另一方面也可以研
究其作用剂量，并可以用于起草药物的作用规律，从而可以指导有效的用药。
4、免疫学方法：新药研究中常用的药理学实验方法，用于评价药物分子对免疫反应，即向某种特定抗原的免疫反应。
5、微量元素分析：是研究药物的一种实验方法，用于研究药物的化学性质，研究药
物的释放、吸收、转化、排出和代谢谱等。
6、分子生物学方法：是一种新兴的药理学方法，用于研究药物对蛋白质、基因和细
胞内信号传导机制的影响。
7、微生物药理学实验：是研究药物抗病毒、抗菌和抗原过程的一种实验方法，旨在
该药物是否具有抗菌活性，该药物对微生物种群的影响，其有效剂量等。
药理学常见实验操作方法
药理学常见实验操作方法药理学是研究药物在生物体内的活性、代谢、毒性和药物与生物体之间的相互作用等问题的学科。
药理学实验是药理学研究的重要手段，通过实验可以研究药物的药效、药代动力学、药物的药理作用和机制等方面的问题。
下面将介绍一些药理学常见的实验操作方法。
1. 细胞培养实验：细胞培养实验是研究药物对细胞的作用的一种常见的药理学实验方法。
首先需要选择合适的细胞系进行培养，如癌细胞、原代细胞等。
接下来，将药物加入到细胞培养基中，观察药物对细胞的影响，如细胞的增殖、凋亡、分化等。
可以使用细胞形态学方法、免疫组化、蛋白质分析等技术手段来评估药物对细胞的影响。
2. 动物实验：动物实验是研究药物在整个生物体内的药效和毒性的重要手段。
常见的动物实验包括药物的急性毒性实验、慢性毒性实验、药物代谢动力学实验、药效学实验等。
首先需要选择合适的动物模型，如小鼠、大鼠、猴子等。
然后，将药物给予动物进行观察和检测，如观察动物的行为、记录动物的生理指标、取动物组织样本进行药物浓度测定等。
3. 体外药物解剖学实验：体外解剖学实验是研究药物在体内分布、转化和代谢的重要手段。
常见的体外实验包括药物的分配实验、药物代谢实验、药物排泄实验等。
该实验通过收集和分析体内样本（如血液、尿液、组织）中的药物浓度以及代谢产物的浓度来评估药物在体内的代谢和排泄情况。
使用的方法包括液相色谱质谱联用技术、高效液相色谱技术、放射性同位素标记技术等。
4. 离体器官实验：离体器官实验是研究药物在特定器官上的药理作用的一种常见实验方法。
常见的离体器官实验包括离体心脏实验、离体肠段实验、离体骨骼肌实验等。
该实验将动物的某个器官取出，放置在体外培养液中，然后加入药物进行实验。
通过记录器官的生理活动的变化来评估药物对该器官的作用。
以上是药理学常见的一些实验操作方法，这些实验方法可以帮助研究人员深入了解药物的药理学特性和作用机制。
当然，在进行这些实验时，也需要遵守实验操作规范，保护实验动物的权益，确保实验结果的准确性和可靠性。
《药理学实验》课件
实验结果
分析药物对炎症反应的抑制作用，探 究药物作用机制，为临床用药提供依 据。
04
药理学实验的最新进展
高通量药物筛选技术
高通量药物筛选技术是一种高效、自动化的药物筛选方法，通过同时测试大量化合 物来发现具有潜在治疗作用的候选药物。
该技术利用高灵敏度检测系统和自动化设备，在短时间内对大量化合物进行筛选， 大大提高了药物发现的效率。
实验结果
分析药物对中枢神经系统的抑 制作用，探究药物作用机制，
为临床用药提供依据。
利尿药的实验研究
总结词
通过观察利尿药对动物排尿量和电解质 平衡的影响，评估药物的利尿效果和安
全性。
实验方法
给动物不同剂量的药物，收集尿液并 检测尿量、尿电解质等指标，评估利
尿效果。
实验动物
常用大鼠作为实验对象，观察药物对 动物排尿量、尿电解质成分及肾功能 的影响。
实验操作的安全规范
01
实验前的安全评估
对实验过程进行安全评估，识别 潜在的安全风险和隐患，并采取 相应的预防措施。
02
03
个人防护措施
危险品管理
实验人员应穿戴适当的防护服、 护目镜、手套等个人防护用品， 以降低意外伤害的风险。
对危险品进行严格管理，确保储 存、使用和处理过程的安全可控 。
实验废弃物的处理与环保要求
给பைடு நூலகம்方法
根据实验要求和药品性质，选择适当的给药途径和方法，如灌胃、注射、口服等 ，确保药物能够有效地进入动物体内。
实验数据的记录与处理
数据记录
在实验过程中，及时、准确记录各项实验数据，包括动物体 重、给药剂量、反应情况等，确保数据的完整性和准确性。
数据处理
对实验数据进行整理、统计和分析，运用适当的统计学方法 ，得出科学、可靠的结论，为进一步的药理学研究提供依据 。
药理实验指导教案
药理实验指导教案一、实验目的通过药理实验，了解药物的作用机制、药力学参数以及药物相互作用等相关知识，培养学生科学实验的能力。
二、实验材料与设备1. 实验药物：如阿司匹林、盐酸吗啡等。
2. 药理实验动物：如小鼠、大鼠等。
3. 实验器材：如注射器、实验仪器等。
4. 实验材料：如生理盐水、缓冲液等。
三、实验内容及步骤1. 实验前准备（1）准备好实验动物，确保健康状况良好。
（2）配制药物溶液，根据药物剂量和实验要求进行稀释。
（3）准备实验器材和材料。
2. 药效学实验（1）组织实验动物，随机分组。
（2）给予实验动物不同剂量的实验药物，如阿司匹林。
（3）观察实验动物的反应，如频率、强度等。
（4）根据实验结果，绘制药物剂量-反应曲线图。
（5）计算药物的EC50值。
3. 药物代谢实验（1）给予实验动物一定剂量的药物，如盐酸吗啡。
（2）在一定时间间隔内，采集实验动物的生物样本，如血液、尿液等。
（3）采用适当的实验方法，分离和检测药物及其代谢产物。
（4）绘制药物的浓度-时间曲线图，并计算药物的半衰期。
4. 药物相互作用实验（1）选择两种具有不同作用机制的药物，如阿司匹林和盐酸吗啡。
（2）给予实验动物单独使用这两种药物，并记录其反应。
（3）给予实验动物同时使用这两种药物，并记录其反应。
（4）比较两种情况下实验动物的药效差异，评估药物之间的相互作用。
5. 实验结果分析根据实验数据和观察结果，进行统计学分析，并进行合理的解释和讨论。
四、实验安全注意事项1. 遵循实验室安全操作规范，佩戴实验服和防护手套。
2. 确保实验动物的福利，遵循动物实验伦理的相关规定。
3. 注意药物的剂量和给药途径，避免超出安全范围。
4. 注意药物的保存和处理，避免污染和损坏。
五、实验总结与思考对实验结果进行总结，并提出对实验方法和结果的改进意见。
思考药物在临床应用中的重要性和意义。
六、实验拓展学生可以根据自身兴趣和实验条件，开展其他相关的药理实验，如药物对器官的作用、药物对行为的影响等。
药理学实验——精选推荐
药理学实验（⼀）剂量对药物作⽤的影响⽬的：观察不同剂量尼可刹⽶对⼩⿏作⽤的差异原理：影响药物的因素有药物的给药剂量，当药物的剂量增加，药物的效应也随之增加。
但这⼀效应的增加不是⽆限制的，当增加到⼀定的程度时，药物的效应恒定在⼀定的⽔平，⽽当药物剂量过⼤时，可致中毒或死亡。
材料：器材：电⼦天平、1ml注射器药品：2.5%尼可刹⽶溶液动物：⼩⽩⿏3只⽅法：取⼩⿏3只，标记，称重，随机分为3组，各⿏均腹腔注射不同剂量的尼可刹⽶溶液（1#：2.5%尼可刹⽶溶液0.15ml/10g；2#：2.5%尼可刹⽶溶液0.1ml/10g；3#：2.5%尼可刹⽶溶液0.05ml/10g），观察潜伏期、给药前后的表现，并仔细记录观察结果，完成实验报告。
结果讨论结论注意：1、⼩⿏对尼可刹⽶可能出现的反应，按由轻到重程度有：活动增加，呼吸急促，反射亢进，震颤，惊厥，死亡等。
2、⽐较各⿏表现出来的药物反应的严重程度和发⽣快慢。
思考：本实验结果对药理实验和临床⽤药有何启⽰？（⼆）苯巴⽐妥钠的抗惊厥作⽤⽬的：观察苯巴⽐妥钠的抗惊厥作⽤，学习动物抗惊厥模型的制备⽅法原理：尼可刹⽶是直接兴奋呼吸中枢的中枢兴奋药，剂量过⼤克引起惊厥反应。
惊厥是⼤脑神经元异常放电所致全⾝⾻骼肌强烈的不随意收缩，呈强制性或痉挛性抽搐。
较⼤剂量的苯巴⽐妥有抗惊厥作⽤，主要机理是增强GABA能神经的功能，降低惊厥发⽣率，限制病灶异常放电。
器材：⿏笼，电⼦秤，注射器（1ml）。
药物：0.5%苯巴⽐妥钠溶液，2.5%尼可刹⽶溶液，⽣理盐⽔。
动物：⼩⿏2只，体重18~22g。
⽅法：1、取⼩⿏2只。
称重并标记，分组：给药组，⽣理盐⽔组，观察⼩⿏活动状态。
2、给药：给药组⼩⿏腹腔注射0.5%苯巴⽐妥钠溶液0.1ml/10g;对照组⼩⿏腹腔注射等量的⽣理盐⽔。
10min后，两组⼩⿏均腹腔注射2.5%尼可刹⽶溶液0.2ml/10g。
3、观察⽤药后的反应：有⽆兴奋，惊厥和死亡。
药理学实验报告范文(共6篇)
篇一：药理学实验报告 1实验三 1、地西泮抗惊厥作用【目的】观察地西泮的抗惊厥作用。
【原理】尼可刹米可吸收入血，以至出现兴奋、抽搐、惊厥。
地西泮作用于边缘系统，加强了gaba能神经元的抑制作用，可有效地对抗中毒性惊厥。
【动物】家兔1只，体重2kg~3kg。
【药品】0.5%地西泮溶液、25%尼可刹米。
【器材】兔固定箱、台式磅秤、注射器（5ml）、针头（6号）。
【方法】取家兔1只，秤重并观察正常活动情况，然后静脉注射25%尼可刹米（0.5ml/kg 给药）。
观察动物的活动姿势、肌张力及呼吸等变化。
当家兔出现明显惊厥后，由耳静脉缓慢推注0.5%地西泮（按0.5ml/kg~1ml/kg给药），直到肌肉松弛为止。
【结果】将实验结果填入下表。
表地西泮对兔惊厥作用的影响给药前家兔反应正常尼可刹米给药后惊厥、肌肉强直肌肉松弛、镇静、催眠注射地西泮【讨论题】地西泮抗惊厥作用、作用机制及用途有哪些？【注意事项】家兔出现强直性惊厥后，应缓慢推注地西泮，过快可抑制呼吸。
2、用化学刺激法观察药物的镇痛作用【目的】观察药物的镇痛作用；学习化学刺激法筛选镇痛药或比较药物镇痛效果的方法。
【原理】腹膜的感觉神分布广泛，把醋酸等化学刺激物注入腹腔，使小鼠产生疼痛反应，表现为腹部双侧凹陷，躯体扭曲，后肢伸展，臀部高起，称扭体反应。
曲马多有镇痛作用，可明显抑制扭体反应。
【动物】小鼠2只，体重28g~32g。
【药品】0.2%盐酸曲马多溶液、0.6%醋酸溶液、生理盐水。
【器材】天平、注射器（1ml）、针头（5号）、秒表。
【方法】1、取小鼠2只，称重后观察正常活动后标号。
2、甲鼠腹腔注射盐酸曲马多溶液0.1ml/10g；乙鼠腹腔注射生理盐水0.1ml/10g。
3、给药30min后两鼠均腹腔注射醋酸0.2ml/只，观察记录注射醋酸后15min内两鼠出现扭体反应情况。
【结果】表药物对醋酸所致小鼠疼痛作用的影响鼠号药物用药前扭体反应次数甲乙醋酸---盐酸曲马多醋酸---生理盐水 4 19 用药后扭体反应次数 0 16【讨论题】结合实验结果说明曲马多的镇痛效果与临床用途。
药理实验——精选推荐
药理实验实验⼀常⽤动物的捉拿与给药⽅法【实验⽬的】1、了解⼩⿏的饲养⽅法2、练习并掌握⼩⿏的捉拿与给药⽅法【实验材料】1、器材：⿏笼、饮⽔瓶、⼤烧杯、托盘天平、灌胃器、注射器、棉签2、药品：⽣理盐⽔、苦味酸溶液、75%酒精3、动物：⼩⽩⿏，20～30g【实验⽅法】1、捉拿与固定：⽤右⼿捉住⿏尾，将其提起置于⿏笼或者粗糙平⾯上，向后轻拉⿏尾，⽤左⼿的拇指和⾷指抓住⼩⿏两⽿及颈背部⽪肤，将⼩⿏置于左⼿掌⼼，以⼩指夹住⼩⿏尾巴即可。
2、给药法⑴灌胃：将⼩⿏固定，⼝朝上，颈部拉直，右⼿持灌胃针，先从⼝⾓处插⼊⼝腔，再沿上颚轻轻插⼊⾷管。
⼀般给药剂量0.1-0.3ml/10g。
⑵腹腔注射：将⼩⿏固定，右⼿持注射器⾃下腹部⼀侧刺⼊⽪下后，再刺⼊腹腔，缓慢注⼊药物。
⼀般给药剂量0.1-0.3ml/10g。
⑶⽪下注射：两⼈合作，⼀⼈左⼿抓住⼩⿏头部，右⼿拉住⼩⿏尾巴固定⼩⿏，另外⼀⼈⽤左⼿提起⽪肤，右⼿持注射器刺⼊⽪下注⼊药物。
⼀般给药剂量为0.1-0.2ml/10g⑷肌⾁注射：最好两⼈合作，⼀⼈固定⼩⿏，另外⼀⼈将针头迅速垂直刺⼊后肢外侧肌⾁，回抽⽆回⾎即可注⼊药物，⼀侧给药剂量为0.02-0.05ml/10g。
⑸静脉注射：⼀般采⽤尾静脉注射。
将⼩⿏固定，使尾巴露出来，在50℃热⽔中浸泡或者⽤75%酒精擦拭尾巴，使⾎管扩张，左⼿拉住⿏尾，右⼿持注射器，从⿏尾巴末梢开始进针，注⼊药液。
⼀般给药剂量为0.1-0.2ml/10g【⼼得体会】实验⼆不同给药途径对药物作⽤的影响【实验⽬的】观察不同给药途径对药物作⽤的影响【实验材料】4、器材：⼤烧杯、托盘天平、灌胃器、注射器、棉签少许5、药品：10%硫酸镁溶液、5%氯化钙溶液、苦味酸溶液6、动物：⼩⿏，18～22g【实验⽅法】1、取⼩⿏3只，称重编号，分别放⼊⼤烧杯中，观察⼩⿏的正常活动，记录半个⼩时内活动、呼吸、粪便情况。
2、给药：⼀号⼩⿏灌胃10%硫酸镁溶液0.2ml/10g⼆号⼩⿏肌⾁注射10%硫酸镁溶液0.2ml/10g三号⼩⿏静脉注射10%硫酸镁溶液0.2ml/10g3、观察⼩⿏的反应及活动，记录半⼩时内⼩⿏活动、呼吸及粪便变化。
药理学实验基础知识点总结
药理学实验基础知识点总结药理学实验是药物发现、研究和开发的重要环节，通过实验对药物的药理学特性进行评估，包括药理学作用、药动学、毒性等。
药理学实验要求严谨的实验设计和操作，同时也需要具备丰富的药理学知识和实验技能。
本文将针对药理学实验的基础知识点进行总结，包括实验设计、药理学作用评价、药动学评价、毒性评价等方面的内容。
一、药理学实验的基础知识点1. 实验设计实验设计是药理学实验的重要环节，合理的实验设计可以保证实验结果的可靠性和准确性。
常见的实验设计包括随机对照实验、对照组设计、交叉设计等。
在实验设计中需要考虑到实验对象的选择、样本数量、实验组织、数据分析等方面的内容。
2. 药理学作用评价药理学作用评价是对药物在生物体内产生的药理效应进行评估。
常见的药理学作用评价方法包括体外实验、体内实验、生物化学实验等。
通过这些实验可以评价药物对生物体的生理功能、生化代谢等方面的影响。
3. 药动学评价药动学评价是对药物在生物体内的吸收、分布、代谢和排泄等动力学过程进行评估。
常见的药动学评价方法包括药物浓度-时间曲线、体内动力学参数的测定等。
通过这些实验可以评价药物在生物体内的药代动力学特性。
4. 毒性评价毒性评价是对药物在生物体内产生的毒性反应进行评估。
常见的毒性评价方法包括急性毒性实验、慢性毒性实验、致畸毒性实验等。
通过这些实验可以评价药物对生物体产生的毒性效应和毒性机制。
二、药理学实验的常用技术和方法1. 细胞培养技术细胞培养技术是现代药理学实验中常用的技术之一，通过对细胞系和细胞器官进行培养，可以评价药物对细胞的毒性和药理学作用。
常用的细胞培养技术包括细胞传代培养、凋亡检测、免疫细胞化学染色等。
2. 动物实验技术动物实验技术是药理学实验中常用的技术之一，通过对动物进行给药和实验观察，可以评价药物的药理学作用、药代动力学特性和毒性效应。
常用的动物实验技术包括造模实验、行为学实验、代谢实验等。
3. 分子生物学技术分子生物学技术是药理学实验中常用的技术之一，通过对药物靶标和信号通路进行研究，可以揭示药物的作用机制和药效基础。
药理学的实验方法
药理学的实验方法
药理学是研究药物对生物体产生作用和作用机制的学科，其中的实验方法主要包括以下几种：
1. 组织切片实验：将动植物组织切片置于培养液中，观察药物对组织的影响，如生理效应、细胞色素P450等。
2. 动物实验：将药物给予实验动物，并通过测量生理指标、组织活性等来评估药物的效应。
3. 体外实验：在体外体系中，如培养细胞、酶活性测定等研究药物与靶标的相互作用。
4. 毒理实验：通过动物模型或细胞培养等方法，评估药物的毒性和安全性。
5. 受试者研究：在人体中进行阶段性实验，评估药物的药代动力学、药效学和安全性。
6. 分子生物学技术：通过PCR、Western blot等方法研究药物与基因或蛋白质的相互作用。
在具体的实验设计中，研究者通常会根据药物的特性、研究目的和资源条件等因
素选择适当的实验方法，并结合经验和专门的研究方法论对实验进行设计和执行。
药理实验报告
药理实验报告药理实验报告引言药理学是研究药物对生物体的作用机制和效应的学科，是药物研发和应用的基础。
药理实验是药理学研究的重要手段之一，通过实验可以评估药物的药效、毒性和安全性等指标。
本篇文章将探讨药理实验的重要性、常用的实验方法以及实验结果的解读。
实验目的药理实验的目的是为了评估药物对生物体的作用效果，以便进一步了解药物的药理学特性。
常见的药理实验目的包括：评估药物的药效、毒性和安全性；研究药物的代谢和排泄途径；探究药物的作用机制等。
实验方法1. 动物模型实验：常用小鼠、大鼠等动物作为实验对象，通过给予不同剂量的药物，观察动物的生理和行为变化，评估药物的效果。
2. 细胞实验：将药物添加到不同类型的细胞培养基中，观察细胞的形态和功能变化，评估药物对细胞的影响。
3. 体外实验：通过体外模拟生理环境，如人工合成的生物组织或器官，观察药物与生物体的相互作用。
4. 临床试验：将药物应用于人体，观察药物的疗效和副作用，评估药物的安全性和有效性。
实验结果解读实验结果的解读是药理实验的关键环节，需要综合考虑实验设计、实验方法和实验数据等因素。
以下是一些常见的实验结果解读方法：1. 对照组比较：将实验组的数据与对照组进行比较，评估药物的效果。
例如，实验组的药效明显高于对照组，可以说明药物具有良好的治疗效果。
2. 数据统计学分析：使用统计学方法对实验数据进行分析，评估药物效果的显著性。
常用的统计学方法包括t检验、方差分析等。
3. 剂量-效应关系曲线：通过给予不同剂量的药物，绘制剂量-效应关系曲线，评估药物的剂量依赖性。
曲线的斜率和峰值可以反映药物的药效和毒性。
4. 作用机制研究：通过实验结果，推测药物的作用机制。
例如，实验结果显示药物对某一信号通路的抑制效果，可以推测该药物可能是通过抑制该信号通路来发挥治疗作用。
实验伦理在进行药理实验时，必须遵守伦理规范，保护实验对象的权益和安全。
以下是一些常见的实验伦理要求：1. 动物实验：必须符合动物保护法律法规，确保动物的福利和权益。
药理实验报告_实验动物
实验名称：药理实验实验目的：通过本实验，了解实验动物的基本操作，掌握给药方法，观察药物对实验动物的影响，并分析药物的作用机制。
实验时间：2023年X月X日实验地点：实验室实验动物：昆明种小白鼠（体重20-25g）实验器材：天平、鼠笼、鼠夹、注射器、剪刀、手术刀、酒精棉、生理盐水、实验药物（例如：阿司匹林）实验方法：1. 实验动物准备：将实验动物置于鼠笼中，适应环境，观察其活动状态。
2. 实验动物称重：使用天平称量实验动物体重，记录数据。
3. 给药方法：采用腹腔注射法给药。
将实验动物固定在鼠夹上，用酒精棉消毒腹部皮肤，注射器吸取实验药物（例如：阿司匹林），注射剂量为0.2g/kg体重。
4. 观察记录：给药后，每隔一定时间观察实验动物的行为、活动状态及生理指标变化，如呼吸、心率、体温等。
5. 实验分组：将实验动物分为实验组和对照组，实验组给予实验药物，对照组给予等体积的生理盐水。
6. 数据统计：对实验数据进行统计分析，比较实验组和对照组的生理指标变化。
实验结果：1. 实验动物体重：实验前后，实验动物体重无明显变化。
2. 行为观察：给药后，实验动物出现活动减少、精神萎靡等症状，与对照组相比，实验动物的症状更为明显。
3. 生理指标变化：（1）呼吸：实验组呼吸频率较对照组明显降低，表明药物对实验动物呼吸系统有一定抑制作用。
（2）心率：实验组心率较对照组明显降低，表明药物对实验动物循环系统有一定抑制作用。
（3）体温：实验组体温较对照组无明显变化。
实验讨论：1. 本实验通过腹腔注射法给予实验动物阿司匹林，观察到实验动物出现活动减少、精神萎靡等症状，表明阿司匹林对实验动物具有一定的抑制作用。
2. 实验结果显示，阿司匹林对实验动物呼吸系统和循环系统有一定抑制作用，这与阿司匹林的作用机制相符。
阿司匹林是一种非甾体抗炎药，具有镇痛、解热、抗炎等作用，其作用机制主要是抑制环氧合酶（COX）的活性，减少前列腺素的生成，从而达到抗炎、镇痛、解热的效果。
[精选]药理学实验
![[精选]药理学实验](https://img.taocdn.com/s3/m/1184c9e20129bd64783e0912a216147917117ec7.png)
[精选]药理学实验药理学实验一、实验目的1.学习药物对机体的作用机制。
2.掌握药物作用的实验研究方法。
3.了解药物作用的影响因素。
二、实验原理药理学是研究药物与机体相互作用的规律及其机制的科学，主要包括药物的作用机制、药物的代谢动力学、药物的疗效评价等内容。
药物作用的实验研究方法主要包括离体实验和整体实验两种。
离体实验是在体外条件下，观察药物对离体组织或器官的作用；整体实验是在整体动物或人体上，观察药物对机体的作用。
本实验主要采用整体实验方法，观察药物对小鼠的镇痛作用。
三、实验步骤1.实验准备：选取健康小鼠若干只，分为实验组和对照组，每组至少10只。
实验组小鼠腹腔注射某镇痛药物，对照组小鼠腹腔注射等体积的生理盐水。
2.疼痛刺激：采用热板法对小鼠进行疼痛刺激。
将小鼠放在55℃的热板上，记录小鼠舔后足的时间（潜伏期）。
每只小鼠测试3次，取平均值作为该小鼠的痛阈值。
3.数据记录：记录每组小鼠在给药前和给药后的痛阈值。
4.数据分析：将实验组和对照组小鼠给药前的痛阈值进行比较，以排除个体差异对实验结果的影响。
然后将实验组小鼠给药后的痛阈值与给药前进行比较，以观察药物对小鼠镇痛作用的影响。
最后，将实验组和对照组小鼠给药后的痛阈值进行比较，以观察药物对小鼠镇痛作用的差异。
5.实验结论：根据数据分析结果，得出药物对小鼠镇痛作用的结论。
四、实验结果1.实验数据记录：实验组小鼠给药前痛阈值（s）：5.0 ± 1.0实验组小鼠给药后痛阈值（s）：10.0 ± 2.0对照组小鼠给药前痛阈值（s）：5.5 ± 1.5对照组小鼠给药后痛阈值（s）：5.8 ± 1.82.数据分析：给药前，实验组和对照组小鼠的痛阈值无统计学差异（P > 0.05），说明两组小鼠在疼痛敏感性方面无差异。
给药后，实验组小鼠的痛阈值显著高于给药前（P < 0.01），说明药物对小鼠具有显著的镇痛作用。
药理实验方法
药理实验方法
1. 嘿，你知道吗，观察法在药理实验中可重要啦！就像我们观察天气一样仔细地去观察药物的效果和反应。
比如给小老鼠用了一种新药，然后就一直盯着它，看它的行为有啥变化呀！
2. 还有体内实验法呢！这就好比是直接深入到身体内部去探索秘密。
像研究药物在体内怎么代谢、怎么发挥作用，那可刺激了！比如说给兔子做实验，看看药物在它身体里的奇妙旅程。
3. 体外实验法也很有意思呀！不就是把实验拿到身体外面来做嘛。
就如同在一个小实验室里创造一个小小的药物天地，然后仔细观察会发生什么。
像在培养皿里研究细胞对药物的反应，多神奇呀！
4. 哇哦，动物实验法也超关键的呢！把动物当成我们的小助手，通过它们来了解药物。
这不就像我们通过朋友来了解一个新事物一样嘛。
给小狗用点药，然后观察它的各种状况，是不是很有趣？
5. 临床试验法可是很重要的一步呢！这就好像是药物的大考。
把药用到人身上，看效果怎么样呀。
比如看一种新药能不能治好病人的病，这多让人期待！
6. 最后说说替代实验法呀！它就像是找了个替身来帮忙做实验。
比如用细胞或者其他模型来代替动物或人体，是不是很机智？就好像我们找个机器人先去探探路一样！
我的观点结论：药理实验方法多种多样，每一种都有其独特的价值和意义，它们共同为我们揭示药物的奥秘，帮助我们研发出更好的药物来治疗疾病！。
实验药理学
实验药理学实验药理学是一门研究药物作用机制和药物相互作用的学科，其广泛应用于新药研发、药物评价、药物治疗等领域。
以下是实验药理学的主要内容：1.药理学实验方法：药理学实验方法包括体内实验和体外实验两种。
体内实验主要是利用动物进行药物作用机制和药物相互作用的观察和研究，而体外实验则是在细胞、组织或器官等离体条件下进行药物作用机制和药物相互作用的观察和研究。
2.药效学实验：药效学实验主要是研究药物对机体的作用机制和药理效应，包括药物的抗肿瘤、抗炎、抗菌、抗病毒等方面的作用机制和药理效应。
3.药代动力学实验：药代动力学实验主要是研究药物在体内的吸收、分布、代谢和排泄等过程及其动力学特征，为药物的合理设计和优化提供依据。
4.药物安全性评价：药物安全性评价主要是对药物的安全性和不良反应进行评估和预测，包括药物的急性毒性、亚急性毒性、慢性毒性、致畸性、致突变性等方面的评价。
5.药物制剂学实验：药物制剂学实验主要是研究药物的剂型设计、制备工艺和质量控制等方面的理论和实践，为药物的研发和生产提供技术支持。
6.药物分析学实验：药物分析学实验主要是对药物进行分析和检测，包括药物的定性定量分析、杂质检查、稳定性考察等方面的实验方法和技术。
7.遗传毒性实验：遗传毒性实验主要是研究药物对遗传物质的损伤作用及其对后代的影响，包括基因突变、染色体畸变等方面的观察和研究。
8.免疫毒性实验：免疫毒性实验主要是研究药物对机体免疫系统的损伤作用及其对免疫功能的影响，包括免疫抑制、免疫增强等方面的观察和研究。
9.细菌毒性实验：细菌毒性实验主要是研究药物对细菌的抗菌作用及其对细菌耐药性的影响，包括抗菌谱测定、最低抑菌浓度（MIC）测定等方面的实验方法和技术。
10.病毒毒性实验：病毒毒性实验主要是研究药物对病毒的抑制作用及其对病毒复制的影响，包括抗病毒谱测定、治疗指数等方面的观察和研究。
11.寄生虫毒性实验：寄生虫毒性实验主要是研究药物对寄生虫的作用机制和药理效应，包括抗寄生虫谱测定、最低致死浓度（MLC）测定等方面的实验方法和技术。
药理实验
实验一不同剂量对药物作用的影响(Influnce of the Does on the Effects of Drug)[目的和原理]观察药物不同剂量对药物作用的影响。
药物剂量的大小决定血药浓度的高低，血药浓度又决定药理效应，因此药物剂量决定药理用强弱[实验材料]1动物：小鼠3只。
2药品：o．5％苯甲酸钠咖啡因溶液(Caffeine and sodium benzoate solution)、4％苯甲酸钠咖啡因溶液(Caffeine and sodium benzoate solution)。
3器材:鼠笼、大烧杯、普通天平、1 m1注射器。
[实验步骤]取小鼠3只，以苦味酸溶液涂毛作不同记号，称其体重，观察小鼠正常时的活动情况。
给各鼠分别腹腔注射不同剂量的苯甲酸钠咖啡因：甲鼠o．5 mg／10 g 体重，乙鼠2．o mg／10g体重，丙鼠8．o mg／10 g体重。
将小鼠放人3个大烧杯中，密切注意先后出现的反应。
咖啡因在小鼠身上可能引起的作用，按照轻重程度不同，大约有活动增加、呼吸急促、反射亢进、震颤、惊厥及死亡等。
记录各鼠所出现药物反应的严重程度和发生快慢，并比较各鼠有何不同。
[结果整理及整理]记录并比较三只小白鼠出现的反应，分析不同给药剂量对药物效应的影响[注意事项]密切观察三只小白鼠先后出现的反应并记录各鼠出现药物反应的严重程度[思考题]药物的剂量和作用的关系对临床用药有何重要意义?（石乐鸣）实验二不同给药途径对硫酸镁作用的影响(1nfluence Of the Routes Of Administration On the Effects Of Magnesium Sulfate)[目的和原理]观察硫酸镁不同给药途径所产生的药理作用及药物间的拮抗作用。
给药途径不同，不仅影响到药物作用的快慢、强弱及维持时间的长短，有时还可改变药物作用的性质，产生不同的药理作用。
硫酸镁即为一典型药物。
Mg2＋与Ca2＋可产生竞争性拮抗作用。
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实验一常用动物的捉拿与给药方法【实验目的】1、了解小鼠的饲养方法2、练习并掌握小鼠的捉拿与给药方法【实验材料】1、器材：鼠笼、饮水瓶、大烧杯、托盘天平、灌胃器、注射器、棉签2、药品：生理盐水、苦味酸溶液、75%酒精3、动物：小白鼠，20～30g【实验方法】1、捉拿与固定：用右手捉住鼠尾，将其提起置于鼠笼或者粗糙平面上，向后轻拉鼠尾，用左手的拇指和食指抓住小鼠两耳及颈背部皮肤，将小鼠置于左手掌心，以小指夹住小鼠尾巴即可。
2、给药法⑴灌胃：将小鼠固定，口朝上，颈部拉直，右手持灌胃针，先从口角处插入口腔，再沿上颚轻轻插入食管。
一般给药剂量0.1-0.3ml/10g。
⑵腹腔注射：将小鼠固定，右手持注射器自下腹部一侧刺入皮下后，再刺入腹腔，缓慢注入药物。
一般给药剂量0.1-0.3ml/10g。
⑶皮下注射：两人合作，一人左手抓住小鼠头部，右手拉住小鼠尾巴固定小鼠，另外一人用左手提起皮肤，右手持注射器刺入皮下注入药物。
一般给药剂量为0.1-0.2ml/10g⑷肌肉注射：最好两人合作，一人固定小鼠，另外一人将针头迅速垂直刺入后肢外侧肌肉，回抽无回血即可注入药物，一侧给药剂量为0.02-0.05ml/10g。
⑸静脉注射：一般采用尾静脉注射。
将小鼠固定，使尾巴露出来，在50℃热水中浸泡或者用75%酒精擦拭尾巴，使血管扩张，左手拉住鼠尾，右手持注射器，从鼠尾巴末梢开始进针，注入药液。
一般给药剂量为0.1-0.2ml/10g【心得体会】实验二不同给药途径对药物作用的影响【实验目的】观察不同给药途径对药物作用的影响【实验材料】4、器材：大烧杯、托盘天平、灌胃器、注射器、棉签少许5、药品：10%硫酸镁溶液、5%氯化钙溶液、苦味酸溶液6、动物：小鼠，18～22g【实验方法】1、取小鼠3只，称重编号，分别放入大烧杯中，观察小鼠的正常活动，记录半个小时内活动、呼吸、粪便情况。
2、给药：一号小鼠灌胃10%硫酸镁溶液0.2ml/10g二号小鼠肌肉注射10%硫酸镁溶液0.2ml/10g三号小鼠静脉注射10%硫酸镁溶液0.2ml/10g3、观察小鼠的反应及活动，记录半小时内小鼠活动、呼吸及粪便变化。
4、当第三只小鼠出现垂头，俯卧时，立即静脉缓慢注射5%氯化钙溶液0.4-0.8ml，直至恢复站立。
5、比较分析【实验结果】不同给药途径对小鼠的作用鼠号体重给药前情况给药途径药物及剂量用药后反应123【实验结论】【实验讨论】实验三药物对肠蠕动的影响【实验目的】通过测定墨汁在胃肠道内的移动距离，观察硫酸镁、阿托品、新斯的明等药物对小鼠肠蠕动的影响，掌握相关药物的药理作用和临床应用。
【实验材料】1、器材：大烧杯、托盘天平、灌胃器、注射器、剪刀，眼科镊子，钢尺，棉球2、药品：20%硫酸镁溶液、0.03%甲基硫酸新斯的明溶液、0.02%硫酸阿托品溶液、生理盐水，以上药液每100ml加墨汁2ml。
3、动物：小鼠，18～22g【实验方法】1、选取体重相近小鼠4只，称重编号，禁食12小时，2、给药：一号鼠灌胃20%硫酸镁溶液0.2ml/10g二号鼠灌胃0.03%甲基硫酸新斯的明溶液0.2ml/10g三号鼠灌胃0.02%硫酸镁溶液0.2ml/10g四号鼠灌胃生理盐水溶液0.2ml/10g记录给药时间3、观察肠蠕动情况。
给药40分钟后，采用颈椎脱臼法处死小鼠，立即打开腹腔，先观察肠蠕动3分钟，然后将小肠从幽门至回盲部全段剪下，剔除肠系膜，将肠管拉成直线，放在实验台上，测量小肠的总长度及肠道内墨汁向前移动的最远距离，计算墨汁推进百分率。
墨汁移动距离（cm）墨汁推进百分率= ----------------------------------× 100%小肠总长度（cm）【实验结果】药物对小鼠肠蠕动的影响鼠号体重药物及剂量给药时间墨汁移动距离小肠总长度墨汁推进率实验四药物的抗惊厥作用、局麻药的毒性比较【实验目的】1、观察中枢神经系统兴奋药尼可刹米中毒发生惊厥的特点及地西泮的抗惊厥作用2、观察普鲁卡因和利多卡因对小鼠全身作用结果，判断两药毒性的大小【实验材料】1、器材：大烧杯、托盘天平、注射器、棉签少许2、药品：2.5%尼可刹米溶液、0.5%地西泮溶液、生理盐水、1%盐酸普鲁卡因、1%盐酸丁卡因、苦味酸溶液3、动物：小鼠，18～22g【实验方法】一、药物抗惊厥作用1、取小鼠2只，称重编号，计算给药量，至于烧杯中观察小鼠的正常活动。
2、两鼠均腹腔注射2.5%尼可刹米溶液0.2ml/10g，观察其反应，待出现惊厥抽搐后，一只小鼠立即腹腔注射0.5%地西泮溶液0.05ml/10g，另外一只腹腔注射生理盐水0.05ml/10g.观察记录给药后的反应。
二、局麻药毒性比较1、取小鼠2只，称重编号，分别放入大烧杯中，观察小鼠的正常活动2、分别给药：一号小鼠腹腔注射1%盐酸普鲁卡因0.1ml/20g二号小鼠腹腔注射1%盐酸丁卡因0.1ml/20g观察小鼠用药前后的反应及活动，做详细记录【实验结果】一、药物的抗惊厥作用鼠号体重给药前情况用药后的反应救治药物剂量给药后的反应二、局麻药的毒性比较鼠号体重药物用药后的反应毒性大小【实验结论】【实验讨论】实验五硝酸甘油的扩血管作用、普萘洛尔的抗缺氧作用【实验目的】1、观察硝酸甘油对兔血管的舒张作用2、观察普萘洛尔提高动物对缺氧耐受力的作用，了解用小鼠进行耐缺氧的实验方法【实验材料】1、器材：大烧杯、广口瓶、托盘天平、兔固定器、滴管、秒表2、药品：1%硝酸甘油乙醇溶液、0.1%盐酸普萘洛尔溶液、0.1%硫酸异丙肾上腺素溶液、钠石灰，凡士林。
3、动物：家兔、小鼠【实验方法】一、硝酸甘油的扩血管作用1、取家兔1只，放入兔固定器中，在强光的透照下观察正常兔耳血管的粗细和密度，并用手捂着兔耳，感测其温度。
2、用滴管吸取1%硝酸甘油乙醇溶液，滴于家兔舌下4-5滴3、观察给药后兔耳血管粗细、密度和温度的变化二、普萘洛尔的抗缺氧作用1、取小鼠3只，称重编号2、给药：一号鼠腹腔注射0.1%普萘洛尔溶液0.2ml/10g二号鼠腹腔注射0.1%异丙肾上腺素溶液0.2ml/10g三号鼠腹腔注射生理盐水0.2ml/10g3、给药15分钟后，将小鼠置于装有20g钠石灰的250ml广口瓶中，瓶口涂适量凡士林后加盖密闭，并记录封盖时间。
以呼吸停止为死亡指标，观察并记录小鼠活动变化及存活时间。
【实验结果】将实验结果记录下来，综合全班各组实验结果，计算存活时间延长百分率。
给药组平均存活时间-对照组平均存活时间存活时间延长百分率= ---------------------------------------------------------× 100%对照组平均存活时间实验六呋塞米对家兔的利尿作用【实验目的】观察呋塞米对水电解质排泄的影响【实验材料】1、器材：烧杯、量筒、注射器、婴儿秤、兔手术台、10号导尿管、兔灌胃器、2、药品：25%乌拉坦、1%呋塞米注射液、50%葡萄糖溶液3、动物：雄性家兔，2k g以上【实验方法】1、水负荷取雄性家兔2只，称重编号，分别用胃灌胃器灌入温水40ml/kg2、麻醉0.5小时后，耳缘静脉缓慢注入25%乌拉坦4ml/kg，随时观察角膜反射，反射消失即停止注射3、插入导尿管背部固定家兔，将10号导尿管尖端用液状石蜡润滑后自尿道轻而慢地插入，待导尿管通过膀胱括约肌进入膀胱后，即有尿液滴出，然后再插入2cm，用胶布将导尿管与兔体固定4、收集给药前尿样轻轻按压兔下腹部将膀胱内尿液挤出，将最初5分钟内的尿液弃去，待滴速稳定后，在导尿管下接一量筒，收集20分钟内滴出的尿液，作为给药前的对照值5、收集给药后尿样甲兔耳缘静脉注射50%葡萄糖5ml/kg，乙兔耳缘静脉注射1%呋塞米0.4ml/kg，并分别收集注射药物后20分钟内的尿量，同给药前比较。
【实验结果】兔号体重给药前尿量药物及剂量给药后的尿量实验七阿司匹林及糖皮质激素抗炎作用比较【实验目的】1、观察阿司匹林的抗炎作用2、观察糖皮质激素对毛细血管通透性的影响【实验材料】1、器材：大烧杯、托盘天平、灌胃器、打孔器、注射器、电子秤2、药品：阿司匹林溶液、0.9%氯化钠溶液、二甲苯、5%氢化可的松注射液、1%伊文思蓝溶液、生理盐水3、动物：小鼠，25～30g【实验方法】一、阿司匹林抗炎作用1、取小鼠2只，称重编号2、两只小鼠分别灌胃阿司匹林溶液和氯化钠溶液，连续两天给药3、第三天，用二甲苯0.05～0.1ml涂抹于左耳前后两面，半小时后再给药4、2小时后将动物颈椎脱臼处死，在每只小鼠左右两耳相同部位分别用打孔器取一耳片，称重，每只小鼠的左耳重量减去右耳重量即为肿胀程度5、将全组数据进行分析比较二、糖皮质激素对毛细血管通透性影响1、取小鼠两只，称重编号2、一号鼠皮下注射0.5%氢化可的松溶液0.1ml/10g二号鼠皮下注射生理盐水0.1ml/10g3、给药10分钟后分别给两鼠腹腔注射1%的伊文思蓝溶液0.15ml/10g4、10分钟后分别在两只小鼠的耳朵上滴2滴二甲苯，观察两鼠耳廓颜色变化【实验结果】一、阿司匹林抗炎作用鼠号体重药物剂量左耳重量右耳重量肿胀度二、糖皮质激素对毛细血管通透性的影响鼠号体重药物剂量10分钟后20分钟后耳廓颜色实验八胰岛素过量反应及其解救【实验目的】观察胰岛素过量引起的低血糖反应及葡萄糖的解救作用【实验材料】1、器材：大烧杯2个、托盘天平1台、1ml注射器2支、棉签少许2、药品：5U/ml胰岛素注射液、25%葡萄糖注射液3、动物：小鼠，18～22g【实验方法】1、取禁食24h的小鼠2只，称重编号，分别放入大烧杯中，放入37-38℃恒温水浴锅中，观察并记录小白鼠的正常活动2、两只小鼠分别腹腔注射胰岛素5U/10g。
分别放入大烧杯中，放入37-38℃恒温水浴锅中，盖上板子，观察并记录小白鼠的活动3、当小鼠出现惊厥时候，迅速取出，一号小鼠腹腔注射25%葡萄糖0.5-1ml二号小鼠腹腔注射等量生理盐水观察小鼠的反应及活动，做详细记录4、比较分析【实验结果】药物的不同理化性质对药物作用的影响鼠号体重药物用药前的反应药物给药后的反应思考题1、为什么实验前小鼠要禁食？2、为什么在37℃恒温水浴锅中进行实验？实验九原代细胞及传代细胞培养技术【实验目的】1、学习、了解原代细胞的培养技术2、学习、了解传代细胞的培养技术【实验材料】1、器材：各种试剂瓶、各种型号移液枪和枪头、微孔滤膜及滤器、封口膜、培养瓶、EP管、冻存管（所有器材均需消毒灭菌）2、药品：培养基、胰酶、PBS溶液、小牛血清、谷氨酰胺、碳酸氢钠、青链霉素（所有药品均需消毒灭菌）3、动物：小鼠，18～22g【实验方法】1、取小鼠颈椎脱臼处死，迅速放到75%酒精消毒2-3秒，无菌条件下解剖，取肝脏。