荧光素标记探针的原位杂交示意图
原位杂交技术ppt课件
分类
1、 基因组原位杂交技术 基因组原位杂交(GISH)技术是20世纪80年代末发展起来的一种原位杂交技术。
它主要是利用物种之间DNA同源性的差异,用另一物种的基因组DNA以适当的浓度作 封阻,在靶染色体上进行原位杂交。 2、荧光原位杂交技术
3 、多彩色荧光原位杂交技术 多彩色荧光原位杂交(mFISH)是在荧 光原位杂交技术的基础上发展起来的 一种新技术,它用几种不同颜色的荧 光素单独或混合标记的探针进行原位 杂交,能同时检测多个靶位,各靶位 在荧光显微镜下和照片上的颜色不同, 呈现多种色彩。
4、原位PCR
原位PCR技术是常规的原位杂交技术与PCR技术的有机结合,即通过 PCR技术对靶核酸序列在染色体上或组织细胞内进行原位扩增使其拷贝数 增加,然后通过原位杂交技术进行检测,从而对靶核酸序列进行定性、定 位和定量分析。
1、标记物
①高度灵敏性; ②标记物与核酸探针结合,应绝对不能影响核酸探针与模
板的结合能力及结合的特异性; ③当用酶促方法进行标记时,应对酶促活性(Km值)无多
大影响,以保证标记反应的效率和标记产物的比活 性; ④高度特异性; ⑤较高的化学稳定性,保存时间长,标记及检测方法简单 ; ⑥对环境无污染,对人体无损伤; ⑦价格低廉等。
荧光原位杂交(FISH)技术是在已有的放射性 原位杂交技术的基础上发展起来的一种非放 射性DNA分子原位杂交技术。它利用荧光标记 的核酸片段为探针,与染色体上或DNA显微切 片上的特异fl-N:~行杂交,通过荧光检测系 统(荧光显微镜)检测信号DNA序列在染色体或 DNA显微切片上的目的DNA序列,进而确定其杂 交位点。
荧光原位杂交(fish)
荧光原位杂交技术荧光原位杂交技术(fluorescence in situ hybridization),简称FISH。
是利用荧光标记的特异核酸探针与细胞内相应的靶DNA分子或RNA分子杂交,通过在荧光显微镜或共聚焦激光扫描仪下观察荧光信号,来确定与特异探针杂交后被染色的细胞或细胞器的形态和分布,或者是结合了荧光探针的DNA区域或RNA分子在染色体或其他细胞器中的定位。
中文名fish外文名fluorescent in situ hybridization建立时间1986年发展历程1969年,Pardue和John等两个研究小组开始采用放射性标记DNA或28S RNA发明了原位杂交技术(ISH)。
尽管当时原位杂交技术已经具有较高的特异性和灵敏度,但鉴于放射性同位素自身特性的局限,如安全性、空间分辨率低、不稳定性等问题,这项技术仅限于实验室研究方面的应用。
1986年科研工作者开始利用异硫氰酸盐荧光素来标记探针,并在荧光显微镜下进行观察分析,建立了荧光原位杂交技术(FISH)。
1989年,Delong首次使用荧光标记寡核苷酸探针检测单个微生物细胞。
由于FISH技术具有敏感度高、信号强、背景低、快速等优点,该方法在环境微生物的检测中得到了广泛的应用。
随着科技的迅速发展,FISH探针标记物越来越多,不仅从单一荧光发展到多色荧光检测,而且应用范围也进一步扩大,不仅可以用于分裂相细胞而且可以用于间期细胞检测,为FISH技术的临床应用打下了坚实的基础。
操作步骤编辑播报(1)样品的固定;(2)样品的制备和预处理;(3)预杂交;(4)探针和样品变性;(5)用不同的探针杂交以检测不同的靶序列;(6)漂洗去除未结合的探针;(7)检测杂交信号,进行结果分析·荧光信号观察:将处理好的样品置于荧光显微镜下,选择分散较好的区域来观察。
三色(或者更多)荧光激发下,观察到不同颜色的荧光图像。
通常选用20X物镜来扫描样品杂交区域,40X或100X物镜下观察样品,从一定的方向进行计数,并对计数情况进行分析。
原位杂交技术ppt课件
1. cDNA(complementary DNA) 互补于mRNA的DNA分子 (长度为数百-数千碱基对)
优点 ⑴ 克隆于质粒中,可以无限繁殖,取之不尽 ⑵ 较不易被降解 ⑶ 标记方法可靠易行
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2. RNA RNA是单链分子(探针长度50-300碱基对) 优点:
⑴ 杂交效率比DNA探针高 ⑵ 在检测mRNA时所形成的RNA-mRNA杂交体比 DNA-mRNA杂交体稳定 缺点:容易受RNA酶的污染而被降解
提取标本DNA和RNA进行Southern和Northern 印记杂交、qPCR、RT-PCR等。
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(4)RNA酶或DNA酶预先处理标本后杂交反应 (5)选用标记的非特异性(载体)序列或不相关 的核酸探针进行杂交。 (6)探针孵育后的检测系统对照
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五. 实验结果可能的问题和原因
1. 标本形态结构不佳 取材的标本不新鲜,核酸有不同程度的降解 杂交预处理中蛋白酶消化不当所致 杂交温度较高、孵育时间长易造成切片的飘浮 或脱片
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去除或抑制RNA酶方法: 1. 物理方法:
对耐高温的器具如玻璃器皿、不锈钢器具作高温烘 烤(180-200℃干烤4-6小时)
对溶液和耐热塑料器具作高压蒸气消毒 2. 化学方法:
焦碳酸二乙酯( DEPC ) RNA酶抑制剂,有毒
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(1)取材的器具用火焰灼烧过或高温消毒 (2)标本尽早固定,固定剂可灭活部分RNA酶 (3)所用玻璃器皿均须DEPC水浸泡(37 ℃,2h),蒸馏
水清洗后高压消毒,然后180℃处理3h以上 (4)塑料器材最好用灭菌的一次性用品或DEPC处理 整个操作过程带手套和口罩。
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(二)取 材 目的:既要充分保留被测核酸,(特别是RNA)不
荧光原位杂交技术在临床病埋中的应用 ppt课件
Blue单通道
荧光原位杂交技术在临床病埋中的 应用
二、常用探针种类
• 单色探针(single color probe, SC) • 双色探针(dual color probe, DC) • 三色探针(triple color probe, TC) • 双色分离探针(dual color, break apart probe. DC,BCR) • 双色单融合探针(dual color, single fusion. DC, SF
CCND1基因为重要预后因子,与多种肿瘸的转移、 复发等相关。在高凤险们GIST中扩增,在低风险和中等 风险GIST中无扩增,其表达与GIST有预后相关性。
MDM2基因扩增宣GIST患者有预后相关性。
荧光原位杂交技术在临床病埋中的 应用
前列腺癌
• 探针:PTEN/CEN10 FGFR1/CEN8 ERG
套细胞淋巴瘤
• 探针:CCND1/IGH(双色双分离探针)
CCND1基因位于11q13,IGH基因位于14q32。 CCND1/IGH融合基因导致CCND1蛋白过度表达,可促进细胞 增生。
• CCND1/IGH融合基因检测意义
CCND1基因重排和(或)高表达是MCL的特征,FISH探 针检测CCND1/IGH的阳性率可以达到96%。
• 检测意义:
PTEN基因缺失,前列腺癌患者预后差。 FGFR1基因扩增是前列腺癌患者传递激素抵抗的重 要过程。 没有ERG基因改变的前列腺癌患者8年生存期达90%。
荧光原位杂交技术在临床病埋中的 应用
神经母细胞瘤、神经胶质瘤
• 探针:1p36/1q25 19q13/19p13 NMYC/2q11
• MALT1及API2/MALTI融合基因检测意义
核酸杂交技术.
碱性磷酸酶显色反应示意图
(DAB)
(TMB)
HRP酶显色反应示意图
(2)间接检测
检测含地高辛、荧光素或生物素标记的探针时, 就要增加一个将酶连接到杂化核酸分子上的步骤。
Dig:半抗原,可通过抗原抗体反应系统与显色体系偶联
Dig-DNA探 针 + 抗Dig
抗体-碱性磷
酸酶(或辣 根过氧化物 酶)+ 底物
一定的固相支持物(硝酸纤维素膜或尼龙膜)上,
即印迹(blotting)。
固定于膜上的核酸与同位素标记的探针在一定的
温度和离子强度下退火,即分子杂交过程。
Southern印迹杂交的基本步骤:
① 待测DNA样品的限制性内切酶消化
② 酶切DNA样品的电泳分离
③ 凝胶中DNA的变性和Southern转移
(三)Northern印迹杂交
Northern 印迹(Northern blot) 杂交是应用DNA探针检测特异
mRNA的另一种膜上印迹技术。
此项技术的原理和过程与 Southern印迹基本相同,只是检 测的分子是RNA,可用来对组织 或细胞中的mRNA进行定性或定 量分析。
原位杂交组织化学幻灯片PPT
放射性同位素和非放射性标记探针的双重标 记原位杂交
常用的放射性同位素标记物为35S,非放射性标 记物为生物素和地高辛。
非放射性标记探针的双重标记原位杂交
应用生物素和地高辛标记探针的双重标记原位 杂交
双重荧光标记原位杂交
两种同位素标记探针的双重标记原位杂交
探针长度 50-300个碱基,最长不宜超过400个碱基。探针短易进入细胞,杂 交率高,杂交时间短。
探针浓度 0.5-5.0μg/ml 。
杂交温度和时间 大约在30~60℃之间。一般将杂交时间定为16~20h,或为了方便, 将杂交液和标本孵育过夜
四、杂交后处理
杂交后处理主要包括系列不同浓度、不同温度 盐溶液的漂洗
间接FISH
Down(21三体)综合征间期细胞中的杂交信号
3. 多色FISH
通过选用多种具有可分辨光谱的荧光染料与不同的探针结合 (直接法),在一个染色体中期分裂象或细胞核中可呈现多种颜 色标记,同时检测多种染色体异常。
多色FISH
4.FIBER FISH
将细胞的全部DNA在玻片上制备出高度伸展的染色质DNA纤维, 然后用标记不同颜色荧光物质的探针与DNA纤维进行杂交,最后 用荧光显微镜观察结果并分析.
包含了PCR和FISH二种方法的特点,在染色体重排方面可 选择性的代替FISH技术,在使用PRINS技术时,用简单的寡 核苷酸引物代替探针,原位标记染色体,消除了制备DNA 探针困难的问题。
核型与带型分析
括号内为结构异常的染色体
重排中用于分开染色体 嵌合体中用于分开不同的细胞系 易位 末端 从....到
4.2 核型描述方法 4.2.1 染色体数目异常的核型描述
首先是书写染色体总数,加一个逗号,接 着写出性染色体的组成,然后写出染色体的异 常。“+”和“-”号当其放在相应的符号之 前,表示增加或丢失了整条染色体;当其放在 相应符号之后,则表示染色体长度的增加或减 少。 例如:47,XX,+21为一个女性先天愚型 的核型,有一条额外的21号染色体; 46,XY,5p-表示一个5号染色体短臂长度 减少的男性核型。
人染色体组型模式图
是鉴别染色体进行配对分类的基木技术,是 在对染色体进行测量计算的基础上, 进行分组、 排队、配对, 并进行形态分析的过程。
2 染色体核型分析的意义: ◆不同物种的染色体都有各自特定的形态结构 (包括染色体的长度、着丝点位置、臂比、随体
大小等)特征,而且这种形态特征是相对稳定的。
因此,染色体核型分析是生物种质资源遗传性研 究的重要内容,在动植物分类和生物进化研究中 也得到广泛的应用;
带(subband)的水平。使我们能够确认那些更为
微小的染色体结构改变了。
i)SCE(sister chromatid exchange)显示方法:
5-BrdU→T
5-BrdU
优缺点:染色体显带技术能够识别不同 的染色体,从染色体水平上了解许多疾病的 遗传变异,但是受到分辨率(超过3Mb的DNA 才会识别)的影响,检测出像染色体微缺失 的综合症的微小染色体变异可能性较小;只 能分析中期分裂相细胞;而且,由于许多肿 瘤是实体,染色体重组非常复杂,无法通过 显带技术得到全部的核型。
1996 年 Schroch等首次描述了SKY技术。应用5 种荧光素同时标记24条人染色体,制成染色体涂染探 针,应用Fourier光谱仪,CC成像和荧光显微镜进行检 测分析,经计算成像处理,46条染色体形成具有不同 颜色的核型影像,可用以分析各种染色体异常。
荧光原位杂交-更新
荧光原位杂交-更新荧光原位杂交(Fluorescence in situ hybridization,FISH)是一种基于DNA分子杂交技术,可以用于研究细胞核内DNA序列的空间分布,基因表达与功能等问题的一种重要方法。
相比于传统的DNA杂交方法,荧光原位杂交具有高灵敏度、高特异度、高分辨率、无需PCR扩增等优点,被广泛应用于在形态学及遗传水平对真核生物的相关研究。
本文将介绍荧光原位杂交的原理、方法和应用。
一、原理荧光原位杂交的原理是利用标记有荧光染料(如荧光素、rhodamine等)的DNA探针与待检测样品(常为细胞核、染色体、tissue或者section等)中的目标DNA特异性结合,形成稳定的探针-靶DNA杂交物,通过检测荧光发射信号的方法来确定目标DNA序列的位置和数量。
探针的设计是荧光原位杂交成功的关键,因为它们必须具有真确的互补性,绑定到目标DNA的特定区域上。
如何选择探针的特异性,通常取决于所要研究的问题,例如检测某一基因的副本数,探测非编码RNA,或发现肿瘤细胞中的染色体异常等。
二、方法1. 获取样品荧光原位杂交技术所需的样品通常以细胞核或组织切片的形式存在,依据所要研究的问题,通过相应方法处理,如:细胞核的分离、组织的固定剂的处理、剪切不同的组织块、制备Paraffin等经典样品处理方法。
2. 样品前处理对于切片和细胞各种杂质如化学物质、染料、蛋白质等的影响,靠的是样本的处理方法。
主要有以下几种:1) 催化游离的核酸:这一步的主要目的是去除待测样品中的核酸,包括double-stranded 的DNA和single-stranded的RNA。
当使用非常规杂交试剂或非常规探针(如bacterial artificial chromosome、cosmid probe)时,可能需要使用一些高效的去掉毛糙杂质的试剂。
2) 前处理(预处理):固定、脱水、变性、去除RNA、去除单链DNA(ssDNA)、吉姆萨染色、荧光染色、脱色剂去除等多项操作。
荧光原位杂交
探针的非放射性标记
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间接标记:是采用生物素标记DNA探针,杂交 后再用联有荧光素的抗生物素抗体检测。(可 将检测信号放大,监测到小至500 bp的靶序 列)
直接标记:是通过荧光素直接与探针核苷酸或 磷酸戊糖骨架共价结合,或在缺口平移法标记 探针时掺入荧光素核苷三磷酸标记探针。(检 测步骤简单,但不能将信号放大,不如间接标 记的探针灵敏)
种序列; 6、既可以在玻片上显示中期染色体数量或结构的变化,也可
以在悬液中显示间期染色体DNA的结构。
Applications of FISH
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➢ 基因组结构研究; ➢ 染色体精细结构变异分析; ➢ 病毒感染分析; ➢ 人类产前诊断; ➢ 肿瘤遗传学;
基因组结构研究
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探针制备
所谓核酸探针即是指一段用放射性核素或其他标记物(如酶与荧光素等)标记的与 目的基因互补的 DNA 片段或单链 DNA 或 RNA。根据其来源可分为“cDNA探针、基因组探 针、寡核苷酸探针与 RNA 探针”。 1.“cDNA探针” 以 mRNA 为模板——在逆转录酶的催化下合成一条与 mRNA 互补的DNA链 (cDNA)——用碱除去mRNA
荧光原位杂交(FISH)
Fluorescence in situ hybridization
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FISH原理
以荧光素直接标记的已知核酸分子为探针,探针和靶序列双链DNA 变性后杂交,互补的异源单链DNA分子在适宜的温度和离子强度下 退火形成稳定的异源双链DNA,通过荧光标记显示出来,通过荧光 显微镜观察杂交信号。
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FISH技术的优点
FISH技术作为非放射性检测体系,具有以下优点:
荧光原位杂交(FISH)_ppt课件
肽核苷酸(PNA)探 针 PNA寡聚物是一类 新分子,其结构与 DNA相似。但在PNA 中,没有核糖-磷酸基 骨架,其骨架是不带 电的肽链(聚酰胺)。
PNA与DNA杂交时也 遵循碱基互补配对原则
与DNA相比,PNA对热稳定、与DNA 的结合不依赖于离子强度,因此杂交 时,受探针变性温度和溶液PH的影响 较小,鉴于这些特点和优点,PNA有 望取代DNA或RNA作为FISH的探针。 但由于PNA探针只能通过化学方法进 行合成,而且合成费用高,因此迄今 所用的PNA探针还仅限于染色体的泛 着丝粒和泛端粒探针。
基本原理
根据碱基互补配对原则,同源的DNA-DNA、 DNA-RNA和RNA-RNA两条单链在一定条 件下能结合成双链。用放射性或非放射性 物质标记的DNA、RNA或与mRNA互补的 cDNA作探针,与组织切片或细胞内待测核 酸(RNA或DNA)片段进行杂交,然后可用 放射自显影等方法予以显示,在光镜或电 镜下观察目的 mRNA或DAN 的存在与定位。
探针的制备
探针(probe)是指用于检测特定基 因或转录产物存在或表达的DNA、 RNA或寡核苷酸序列。
杂交实验所选择的核酸探针可以分 为三种:化学合成、克隆和PCR。
探针的分类
根据化学组成,可以将探针分为DNA、 RNA、PNA及寡核苷酸探针。 DNA探针 这类探针应用最广,可以通过化 学合成、克隆或PCR技术获得。 RNA探针 一般用RNA聚合酶体外转录克隆 的DNA序列获得。RNA-RNA杂交分子在所 有可能的杂交分子中最稳定,但RNA探针 容易被RNase降解。
FISH的基本原理
FISH基本原理是利用同源互补的待检染色 体与用生物素、地高辛标记过的核酸探针, 经变性- 退火- 复性,形成待检DNA与核酸探 针的杂交体。使探针与荧光素标记的特异亲 和素之间发生免疫化学反应,最后用荧光显 微镜对待测DNA进行定性、定量或相对定位 分析。
荧光原位杂交(FISH)技术.ppt
3. 去处rubber cement以及盖玻片 4. 将第一张玻片放到0.4X SSC/ 0.3% NP-40,73±1oC,轻轻
摇动玻片3 secs. 重复剩下3张玻片,洗2 mins
__ 不要同时将4张玻片放入conplin缸中 __ 保证玻片在洗液的时间不要超过2mins
需要的主要设备
荧光显微镜 在荧光显微镜下,DNA探针上
的荧光基团在一定波长的激发光激发后会发 出一定颜色的光线。射入光激发荧光分子, 荧光分子随后发出光子,发出的光子具有较 长的波长 – 较低的能量荧光标记的探针与其 靶标结合后 – 将能检测到荧光信号
水浴箱2台、热台1个,恒温箱1台。(或 者只需1台FISH杂交仪)。
将滴好的片子放在2×SSC中,37 ℃ 1小时老化。
将玻片放到新鲜配置的胃蛋白酶溶液37 ℃杂交预处理 13 mins 。
PBS洗,后固定液固定10分钟,PBS洗,晾干后70%的酒精1 min,85%的酒精1 min,100%的酒精1 min 酒精梯度脱水 。
实验程序3 变性杂交
玻片变性,73±1 ℃ 5mins 。关键步骤!! 20 ℃ 冷冻的70%的酒精1 min85%的酒精1 min100% 的酒精1 min 酒精梯度脱水 。在45-50 ℃热台上使 玻片完全干燥 。---保持DNA单链状态。
二、细胞间期和分裂中期相中的染色体计数
识别和确定染色体易位
单个位点或基因的缺失/扩增
中期分裂相染色体涂片识别某染色体
FISH技术优点
标本多样性:细胞涂片(绒毛、精子、卵裂
球PGD等) 脱落细胞收集制片(羊水等)。
客观判断 高灵敏性 高特异性 定量分析、重复性好 在同一标本中同时评价多个基因的改变 DNA的稳定性
荧光原位杂交(FISH)技术.ppt
CEP 18 CEP X CEP Y
LSI 21 LSI 13
产前诊断异常核型
羊水标本,未培养,XY, +18。
CEP 18 CEP X CEP Y
LSI 21 LSI 13
24色染色体涂染
比较基因组杂交(Comparative genomic hybridiation,CGH)
比较基因 组杂交 (CGH)
实验程序5 显微镜下观察
选择杂交最好的区域来观察结果 1. 用25X 的物镜扫描整个杂交区域 2. 选择分散较好的区域间期细胞重叠较少或
者分裂相较多的区域观察 3. 用40X 或者 100X物镜 开始从左到右从上到
下计数分析. 4. 计数50个细胞核。 5. 当出现10 – 60% 的嵌和体时,需要计数200
FISH杂交仪
荧光显微镜
光源
滤光片: 一定波长 的光能通 过,其余 波长的光 滤掉,保 证只有需 要的荧光 被激发。
实验程序
样品染色体DNA变性 探针变性 杂交过夜 洗涤复染 显微观察
实验程序1 样本 收集
__AneuVysion kit主要用于培养后的以及未经培养的羊水 __样本必须按照ACT手册的推荐的方法收集 __样本收集必须要保证最小程度的母体细胞污染 __羊水最小需要量为2-5ml,这个依赖与孕周龄 __从收集羊水细胞到培养之间的间隔尽量要短(最晚
__ 第二天丢弃洗液
3. 去处rubber cement以及盖玻片 4. 将第一张玻片放到0.4X SSC/ 0.3% NP-40,73±1oC,轻轻
摇动玻片3 secs. 重复剩下3张玻片,洗2 mins
__ 不要同时将4张玻片放入conplin缸中 __ 保证玻片在洗液的时间不要超过2mins
荧光原位杂交FISH
**用于FISH的探针 1)单拷贝探针: (1)种类:酵母人工染色体( YAC),细菌人工 染色体 (BAC), Cosmid,Plasmid, cDNA片段 (2)应用 (a)定位DNA片段及嵌合体克隆验证; (b)确定染色体微小缺失与重复; (c)染色体断裂点分析。 (d)间期细胞染色体数目异常诊断。
**同位素原位杂交的不足: 1)不稳定; 2)高背景; 3)曝光时间长; 4)结果统计学处理繁琐。 5)同位素的使用和处理
1.具有R带带型的正常女性染色体,箭头示杂交 颗粒集中分布于Xp1 1---c1lI 区
2.杂交后R显带的46,Xdic(X)核型,在迟复制的X染色体上有2处被杂交, 为双着丝粒X染色体(小箭头),正常X染色体亦被杂交(大箭头)
第一天(星期一)采血、接种(10:00) 第二天(星期二)培养 第三天(星期三)培养 第四天(星期四)上午7:00 加秋水仙素,(终浓度 0.2ug/ml) 至上午10:00结束培养 制片,不染色,在显微镜下挑选分散良好的标本。 将选好的标本放入50 ℃烤片。
第五天(星期五) 探针变性:75℃水浴5分钟,立即置于0℃ (冰浴中) 5-10分钟。 玻片标本变性: 1. 50℃温箱中2小时 2. 标本在70-75℃,70%甲酰胺/2XSSC中变性 2-3分 钟。 3. 立即脱水,70-90-100%顺序,各5分钟。 4 .室温干燥
同理,采用三种或三种以上不同 的半抗原,如Biotin, DIG和DNP等 标记探针,然后用多种不同颜色的 荧光素,如FITC(绿色), Rhodamine(红色),AMA或Cascade Blue(兰色)等结合抗体进行检测, 可同时得到多种不同颜色的荧光信 号,如采用不同的排列组合,最多 可同时检测7种不同的探针。
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探针的荧光素标记可以采用直接和间接标记的方法。 1)间接标记是采用生物素标记DNA探针,杂交之后 用藕联有荧光素亲和素或者链霉亲和素进行检测,同 时还可以利用亲和素-生物素-荧光素复合物,将荧光 信号进行放大。 2)直接标记法是将荧光素直接与探针核苷酸或磷酸 戊糖骨架共价结合。直接标记法在检测时步骤简单, 可以直接检测荧光信号。开展个体化药学服务,即采 用荧光直接标记法。
即:探针间竞争结合模板时,通过一阶导(斜率)阈值,来判断杂交的阴阳性。
2:当探针数小于待测基因拷贝数时:
C1 A1(探针1)+B (模板) C2 A1B (杂交分子)
A2(探针2)+B (模板)
A2B (杂交分子
(1)当体系中只有二个以上的模板分子B,A1和A2探针各有一条时,模板足够多,不会 发生竞争,A1与A2均可结合B。
北京个体化药学服务平台
荧光染色原位杂交 原理及软件参数设置
中国健康促进基金会
荧光原位杂交(Fluorescence in situ hybridization FISH)是一门新兴的分子细胞遗传学技术,是20世 纪80年代末期在原有的放射性原位杂交技术的基础上 发展起来的一种非放射性原位杂交技术。目前这项技 术已经广泛应用于动植物基因组结构研究、染色体精 细结构变异分析、病毒感染分析、人类产前诊断、肿 瘤遗传学和基因组进化研究待许多领域。
(2)由于A1与A2均可结合模板B,因此,形成的A1B和A2B的杂交荧光信号都足够强。
(3)但,在这种条件下,反应速率常速C1大于C2,形成A1B的速度大于A2B,因此,达 到一定强度的杂交信号的A1B的时间会快于A2B。
2:当探针数小于待测基因拷贝数时:
1、模板与A1完全互补(A1配对碱基 的纯合子),与A2不完全互补。达到 特定信号强度的时间,STA1小于STA2。
模版 3 A 5
寡核苷酸探针:
+ =
A
3’端接有荧光素(红圈), 5’端接有淬灭基团(红点)
有特异核酸SNP位点的模板
未杂交时,成自身环状,不 发出荧光。
3
Q
T
G
5 杂交后,探针打开,淬灭基 团原理荧光素,发出荧光
用荧光检测仪和荧光染色原位杂交,
实现SNP分型的原理
仪器原理:
探针和模版结合,发出荧光 通过内置CCD探头,接收荧光信号 通过软件分析处理,给出待检基因位点基因 型
荧 光 强 度
1 A1 A2
检测时间
荧 光 强 度
2、模板与A1、A2探针都完全互 补(A1、A2配对碱基的杂合子) 。达到特定信号强度的时间, STA1与STA2很接近。 2 A1 A2
ST A1
ST A2
ST A1 ST A2
荧 光 强 度
检测时间
A2
3
3、模板与A2完全互补(A2配对碱基 的纯合子),与A1不完全互补。达到 特定信号强度的时间,STA1大于STA2
FISH的基本原理是用已知的标记单链核酸为探针 ,按照碱基互补的原则,与待检材料中未知的单链核 酸进行异性结合,形成可被检测的杂交双链核酸。由 于DNA分子在染色体上是沿着染色体纵轴呈线性排列 ,因而可以探针直接与染色体进行杂交从而将特定的 基因在染色体上定位。与传统的放射性标记原位杂交 相比,荧光原位杂交具有快速、检测信号强、杂交特 异性高和可以多重染色等特点,因此在分子细胞遗传 学领域受到普遍关注。
**荧光原位杂交的特点: 1)快速;2)信号强;3)特异性高;4)多色。 **FISH有上述优点的原因: 使用了荧光标记与检测系统取代放射性标记与检测系统 标记探针的物质:(1)间接标记:生物素(biotin)/地高辛(digoxigenin) ——半抗原报告分子 (2)直接标记:荧光素
荧光素标记探针的原位杂交示意图
A1
ST A2
ST A1
检测时间
2:当探针数小于待测基因拷贝数时:
由于获取信号的时间ST的差值体现了两条探针与模板的相互关系,因此,可 以有以下情况:
Delta ST= STA1-STA2
(1)模板与A1完全互补(A1配对碱基的纯合子),与A2不完全互补时: Delta ST1= -7
(2)模板与A1、A2探针都完全互补(A1、A2配对碱基的杂合子)时: Delta ST2=1 (3)模板与A2完全互补(A2配对碱基的纯合子),与A1不完全互补时: Del方程: A1(探针1)+B (模板) A2(探针2)+B (模板) A1B (杂交分子) A2B (杂交分子
A1为与模板完全互补的探针(假定长15mer),其Tm1值较高。 A2为与模板不完全互补的探针,与模板SNP不互补,假定长14mer,其Tm2值较低。
探针与模板 聚合度
1:当探针数大于待测基因拷贝数时:
即: (1)当探针多,模板少时,探针间竞争与模板结合。 (2)完全互补配对的探针结合力强,形成的杂交荧光信号强。 (3)一个碱基不互补配对的探针结合力较弱,形成的杂交信号较弱。
图中,蓝色为强杂交荧光信号,绿色为弱杂交荧光信号 此时,通过(1)设定荧光信号的阈值,或(2)设定信号曲线的斜率阈值 (一阶导),即可将低于阈值的信号,视为本底,判定为杂交阴性。
杂交所用的探针大致可以分类三类: 1)染色体特异重复序列探针,例如α卫星、卫星III类的探 针,其杂交靶位常大于1Mb,不含散在重复序列,与靶位 结合紧密,杂交信号强,易于检测; 2)全染色体或染色体区域特异性探针,其由一条染色体 或染色体上某一区段上极端不同的核苷酸片段所组成,可 由克隆到噬菌体和质粒中的染色体特异大片段获得; 3)特异性位置探针,开展个体化药学服务,就使用特异 性位置探针,检测特定的SNP位点。
100%
Tm2 Tm1
50% 55℃ 56℃ 57℃ 58℃
解链温度
1:当探针数大于待测基因拷贝数时:
探针间竞争结合模板
A1(探针1)+B (模板) A2(探针2)+B (模板) A1B (杂交分子) A2B (杂交分子
(1)当体系中只有一个模板分子B,A1和A2探针各有一条时。A1与A2竞争结合B。 (2)当体系温度为Tm1时,A1B有50%时间处于解链状态,此时,B与A1分离,B有机会 与A2形成杂交体。但A2B杂交体的形成时间会少很多。 (3)表现在出现杂交荧光信号上,A1B的杂交信号,会比A2B杂交信号,强很多。