本科生六个基本生物学实验
安医大基础医学实验技能
安医大基础医学实验技能
1. 实验设计与操作：学生需要学习如何设计和执行科学实验，包括选择适当的实验方法、控制变量、收集和分析数据等。
2. 生物化学与分子生物学实验：学生将学习生物大分子的提取、分离、纯化和鉴定技术，以及基因克隆、PCR 技术、蛋白质表达等分子生物学实验技能。
3. 生理学与药理学实验：学生将进行生理学实验，如血压测定、心电记录、平滑肌收缩等，以及药理学实验，如药物剂量效应关系的测定。
4. 解剖学与组织学实验：学生通过解剖实验，学习人体解剖结构和器官的位置关系，同时进行组织学切片的观察和分析。
5. 微生物学与免疫学实验：学生将学习微生物的培养、鉴定和药敏试验，以及免疫学实验技术，如血清学检测、免疫细胞功能测定等。
通过这些实验技能的学习和训练，安医大的学生将掌握基础医学研究的基本方法和技术，培养科学思维和实践能力，为进一步的医学研究和临床实践打下坚实的基础。
生物技术专业本科课程设置
生物技术专业本科课程设置1. 课程简介生物技术专业是一门涵盖生物学、化学、计算机科学等学科知识的交叉学科。
本文介绍了生物技术专业的本科课程设置，旨在培养学生综合运用生物技术知识，进行生物学研究和应用开发的能力。
2. 课程结构2.1 基础课程•生物学基础•生物化学•生物信息学•分子生物学•细胞生物学•遗传学•微生物学•生物统计学基础课程为学生提供了生物技术专业所需的基本知识和理论基础，使学生具备跨学科研究和应用开发的能力。
2.2 专业核心课程•生物工程学•生物分离工程•蛋白质工程•基因工程•酶工程•细胞工程•抗体工程•微生物发酵工程专业核心课程是生物技术专业的核心内容，通过这些课程的学习，学生能够深入了解生物技术的研究与应用领域，提升生物技术的实践能力。
2.3 专业选修课程•生物安全与伦理•生物药物开发•农业生物技术•食品生物技术•环境生物技术•医学生物技术•生物传感技术•生物信息处理与分析专业选修课程提供了学生根据个人兴趣和职业发展方向进行深化学习的机会，培养学生在特定领域的专业知识和技能。
3. 实践环节3.1 实验课程生物技术专业的实验课程是培养学生实践操作和技能的重要环节。
通过实验课程的学习，学生能够掌握生物技术实验基本方法，培养实验设计和数据分析的能力。
3.2 实习课程为了让学生更加深入地了解生物技术领域的实际应用，生物技术专业设置了实习课程，让学生有机会进入科研机构、生物技术企业等单位进行实习，亲身参与生物技术项目的研究与开发。
3.3 毕业设计毕业设计是生物技术专业本科教育的重要组成部分，通过毕业设计，学生需要独立完成一个生物技术相关课题的研究。
毕业设计旨在培养学生的研究能力、科学思维和创新精神。
4. 就业与发展生物技术专业本科毕业生可在生物技术公司、科研院所、医疗机构、药品研发机构等单位从事生物技术研究、生产与开发工作。
此外，也可以选择进入研究生院进行进一步的深造。
5. 总结生物技术专业本科课程设置全面涵盖了生物技术领域的基础知识和专业技能。
本科生六个基本生物学实验
实验一：感受态细胞的制备1.原理：当实验室获得了一个新的质粒时，而这个质粒并未转化到宿主菌体内，则需要该技术进行细菌的转化，以大量获得这一质粒。
转化细菌的方式有很多种，如电转化法、脂质体转染法、显微注射法、CaCl2处理法制备感受态细胞等。
一般的实验室都应用CaCl2处理细菌，改变细胞膜的结构，使质粒DNA能穿过细菌细胞膜进入细胞。
然后在选择培养基中培养转化处理过的细菌，转化成功的细菌可在抗菌素培养基上生长形成菌落。
这一方法是分子生物学常用实验方法。
2.实验材料2.1LB液体培养基2.20.1mol/L CaCl2溶液：称取1.1g无水CaCl2，溶于90ml双蒸去离子水中，定容至100ml，用0.22μm滤器过滤并装入灭菌试剂瓶中，4℃保存。
2.3 DH5α菌株，冰，牙签，无菌滤纸，50ml离心管，枪头（以上需灭菌）；移液器，摇床，冷冻离心机，涡旋震荡器，恒温摇床，恒温培养箱，超净工作台，普通冰箱，-70℃冰箱3.操作方法3.1从37℃培养12—16h的平板上，用无菌牙签挑取一个单菌落，转移到含有3ml LB培养基的试管内，37℃振摇过夜。
次日取菌液1ml，接种到含有100ml LB培养基的500 ml烧瓶中，37℃剧烈振摇培养约2—3h（振摇速度为200—300r/min），待OD600值达到0.3—0.4时，将烧瓶取出立即置冰浴10—15min。
3.2自该步骤起皆需无菌操作。
在无菌条件下将细菌转移到一个灭菌处理过的、冰预冷的50 ml离心管中。
3.34℃离心，4000g×5min回收细胞。
3.4弃去培养液，将离心管倒置于滤纸上1min，以使最后残留的培养液流尽。
3.5加入冰预冷的0.1mol/L CaCl2溶液10ml重悬菌体，置冰浴30min。
3.64℃离心，4000g×5min,弃去上清液，倒置于滤纸1min。
3.7再加4ml用冰预冷的0.1mol CaCl2重悬菌体（重悬时操作要轻）。
大学一年级生物实验教案细胞生物学与遗传实验
大学一年级生物实验教案细胞生物学与遗传实验教案标题：大学一年级生物实验-细胞生物学与遗传实验一、实验目的本次实验旨在通过观察与实践，加深学生对细胞生物学与遗传学原理的理解，并培养其科学实验和观察的能力。
二、实验器材和试剂1. 显微镜、载玻片、盖玻片、玻璃滴管、草酸溶液、甘油溶液、柠檬酸溶液、洋蓟叶片、组织细胞涂片、盐水、生理盐水、酒精灯等。
三、实验步骤1. 细胞的观察a) 取一片洋蓟叶片，加入盐水中，用镊子在盖玻片上挤压叶片，将叶片细胞挤出。
用显微镜观察细胞的形态和结构特点。
b) 取一片动物组织细胞涂片，加入生理盐水中润湿，盖上盖玻片，用显微镜观察细胞的形态和结构特点。
c) 比较植物细胞和动物细胞的异同点。
2. 细胞的染色体观察a) 取一片洋蓟根尖，加入柠檬酸溶液中，用镊子剪取根尖，放入草酸溶液中煮沸。
沥干后涂片，并加入少量染色液，盖上盖玻片。
b) 用显微镜观察细胞的核和染色体。
c) 计数根尖细胞染色体数目，并观察染色体的形态变化。
3. 细胞的遗传基因观察a) 将一滴果蝇精子滴于载玻片上，加入一滴甘油溶液，并用盖玻片盖好，将样品置于显微镜下。
b) 观察果蝇精子中的遗传基因。
c) 讨论果蝇遗传基因的传递方式和基因突变的可能性。
四、实验注意事项1. 实验过程中应注意用显微镜时的安全操作，避免眼睛直视光源；2. 实验结束后，及时将试剂和实验器材归位，并清理实验台面，保持实验环境整洁；3. 遵守实验室安全规范，注意实验过程中的个人安全。
五、实验结果和分析1. 细胞的观察：a) 洋蓟叶片细胞观察结果：细胞边界清晰，含有细胞壁、细胞膜、细胞核等结构；b) 动物组织细胞涂片观察结果：细胞边界不明显，含有细胞膜、细胞核等结构；c) 植物细胞与动物细胞异同点：植物细胞含有细胞壁和细胞质，而动物细胞只含有细胞膜和细胞质。
2. 细胞的染色体观察：a) 洋蓟根尖染色体观察结果：细胞核内可见线状染色体，呈现特定的形态和数量；b) 根尖染色体数目的计数结果：果蝇细胞染色体数目为8。
药学本科分子生物学实验指导
实验项目一：总RNA的提取（必做）一、实验学时：6学时二、实验目的通过本实验学习总RNA的提取和分析方法。
三、实验内容利用匀浆裂解细胞，采用TRilzol试剂盒抽提RNA去除蛋白质和DNA。
四、实验要求学会提取基因组RNA的方法和操作过程提取RNA时，要特别注意防止RNase的污染，所用玻璃器皿均应用0.1％的二乙基焦碳酸盐(diethyl pyrocarbonate，DEPC)处理。
塑料器材均使用一次性用品，并高压灭菌处理，必要时，也可用0.1%DEPC处理。
五、实验所需仪器设备与试剂仪器：移液器及吸头，电泳仪,台式高速离心机, 恒温水浴锅, 微量移液枪等试剂：TRIzol 试剂、氯仿、异丙醇、75% 乙醇（DEPC H2O 配制）、DEPC H2O六、实验原理TRIzol试剂适用于从细胞和组织中快速分离RNA。
最大特点是可同时分离一个样品的RNA\DNA\蛋白质.TRIzol使样品匀浆化，细胞裂解，溶解细胞内含物，同时因含有RNase抑制剂可保持RNA的完整性。
在加入氯仿离心后，溶液分为水相和有机相，RNA在水相中。
取出水相用异丙醇沉淀可回收RNA；七、实验步骤1. 颈椎脱臼法处死大鼠，打开大鼠腹腔，取出肝脏2. 将肝脏用ddH2O冲洗几遍，去除血液3. 将大鼠肝脏放入研钵，用剪刀剪成绿豆大小的组织块，4．冷冻离心机冷却到4℃（预冷半个小时）。
准备冰盒。
5．戴口罩，戴手套。
6. 每个EP管中，加入100mg左右的组织，加入1mL Trizol 试剂，7. 超声破碎仪破碎细胞8. 剧烈震荡30秒，室温静置10分钟。
9．加入200uL氯仿（三氯甲烷），剧烈震荡30秒，室温静置5分钟。
10. 离心：4℃，13,000rpm，10min。
11．取新EP管。
将上层水相（约600uL）加入新EP管，12. 再加入500uL异丙醇，室温静置10分钟。
13. 离心：4℃，13,000rpm，10min。
14. 去上清夜，加入20-30 uL DEPC水，55℃10min，以完全溶解RNA。
本科生实验讲解
作业： 1.描述采集标本的症状特点 2.绘图：分离纯化病原菌的形态特征 3.分析孢子分离法和组织分离法的优缺点。
实验四
病原真菌的培养性状 及生长量的测定
植物病害方面，培养真菌的目的主要是观察它 的性状和研究环境条件对它的影响，或者是大量繁 殖后用于接种或其他试验。
真菌生长量的测定主要有（ 1）目力估测；（ 2） 直线生长 ： 测定菌落的半径或直径或者计算菌落 面积； （3）湿重测定：振荡培养后测定菌丝的重量； （4）干重测定：菌丝烘干后测重。
锅菌灭压高动自全
锅菌灭压高动自全
分离工作应 在无菌条件 下进行，无 菌室和超净 工作台是分 离不可缺少 的设施。
2. 组织分离法： 这种方法适用于大部分病菌的分离，以番茄
叶霉病、灰霉病为试材进行： （1）取番茄叶霉病病叶，先用无菌水冲洗干
净。 （2）在病、健交界处剪取 2～3毫米长的病
组织，在70%的酒精中浸 2～3秒种。
亚甲蓝染色法 制备涂片标本 →染色
涂片
干燥
固定
水洗、吸干
镜检
染色1min
2.革兰氏染色法（ Gram Stain ）
原理: 第一步：结晶紫使菌体着上紫色 第二步：碘和结晶紫形成大分子复合物，分子大，能被细
胞壁阻留在细胞内。 第三步：酒精脱色，细胞壁成分和构造不同，出现不同的
反应。 G+ 菌：细胞壁厚，肽聚糖含量高，交联度大，当乙醇 脱色时，肽聚糖因脱水而孔径缩小，故结晶紫 -碘复合物被 阻留在细胞内，细胞不能被酒精脱色，仍呈紫色。 Gˉ菌：肽聚糖层薄，交联松散，乙醇脱色不能使其结 构收缩，因其含脂量高,乙醇将脂溶解，缝隙加大，结晶紫 -碘复合物溶出细胞壁，酒精将细胞脱色，细胞无色，沙黄 复染后呈红色。
微生物学实验报告
微生物学实验报告(格式标准)(生命科学专业)教师:黎勇目录索引实验一油镜的使用与细菌的简单染色法 3实验二细菌的革氏染色与芽孢染色 5实验三常用培养基的配制7实验四酵母菌霉菌的形态结构观察及酵母死活细胞的鉴别8实验五、微生物大小的测定与显微计数10实验六环境中微生物的检测与分离纯化11实验七细菌鉴定中常用的生理生化反应12实验八(综合实验)化能异养微生物的分离与纯化13课程名称: 微生物学实验班级:化生系生命科学本科实验日期: 指导教师:黎勇实验一油镜的使用与细菌的简单染色法〔目的要求〕学习并熟练掌握油镜的使用技术;观察细菌的基本形态;学习观察细菌的运动性的基本方法。
〔基本原理〕1、 N·A=n·sinα2、 D=λ/2N、A3、目镜可提高放大倍数,但有效放大率取决于镜口率。
已经分辨的物体不放大瞧不清,未分辨物放得再大也瞧不清。
4、用悬滴法或凹玻片法观察细菌的运动性时,可以通过真运动能定向地由一处快速运动来区别于颗粒的布朗运动。
〔器材用具〕显微镜、载玻片、凹玻片、盖玻片、接种环、香柏油、二甲苯、凡士林、吸水纸、擦镜纸;细菌、放线菌等固定装片;培养18小时左右的B、subtilis、 S、arueus 菌斜面培养物;无菌水、生理盐水。
〔方法步骤〕:(一) 油镜的使用镜检装片在中倍(或高倍镜)下找到目的物,并使位于视野正中聚光镜上升到最高位置,虹彩光圈开到最大,镜头转开成八字形在玻片的镜检部位(光斑处)滴一滴香柏油油镜转入正下方侧视小心上升载物台(缩短镜头与装片距离,镜头浸入油中,至油圈不扩大为止镜头几与装片接触) 粗调器徐徐下降载物台(密切注视视野,当捕捉到物像时,立即用细调器校正) 仔细观察并绘图取出装片,清洗油镜:擦镜纸拭去镜头上的香柏油擦镜纸沾少许二甲苯擦去残留(用手指辅助,迅速拭擦一、二次) 用清洁擦镜纸仔细擦干二甲苯(2-3次)。
(二) 细菌的简单染色法:涂片干燥火焰固定染色水洗干燥油镜观察(三) 细菌运动性的观察取洁净盖玻片,四周涂上凡士林滴加一小滴菌悬液凹玻片的凹窝向下盖于盖玻片上翻转观察〔结果分析〕1、画一圆圈表示视野,选取所观察的微生物绘图,注意特殊结构、形状与排列。
基础生物学实验讲义
（生命科学类本科生使用）
广西大学行健文理学院
1
实验一 普通光学显微镜的使用与生物绘图
一、实验目的
1. 了解普通光学显微镜的基本构造，能规范和较熟练地使用； 2. 学习细胞临时装片的制作方法和生物绘图的方法。
二、实验材料
细菌涂片
三、实验用具
显微镜、载玻片、盖玻片、胶头滴管
பைடு நூலகம்四、实验内容
3
针方向旋转粗调节器，把镜筒徐徐降到物镜头差不多接近玻片标本（约半厘米）为止（从侧 面观察下降镜筒）。然后左眼观察，边观察边用调节器将镜筒徐徐上升（逆时针方向旋转粗 调节器）直到发现物象，观察清晰为止。如果观察部分不在视野中心，可移动玻片标本到视 野中心，再上下转动粗调节器至物象清晰为止。 如果要观察视野内某部分更细微的结构，则需要用高倍镜观察，首先要把观察的部分移至视 野中心，然后移动物镜转换器换上高倍镜（使正对通光孔）（使用镜头转化器，不要直接 扳动镜头），再用粗调节器徐徐将镜筒距离调整，至视野中出现物象，然后用细调节器调节 到看清物象止。如光线太弱，可放大虹彩光圈的口径或调节光亮度旋钮。 高倍镜下观察的标本，如果放大倍数还不够，可用油镜，换用前，同样要先在高倍镜下观察， 把要观察的部分放在视野的正中央。观察到清晰的物象之后，在盖玻片上表面的中央滴一小 滴香柏油，再换上油镜头，使油镜头与香柏油接触，然后由目镜观察。一边观察，一边用手 稍移动细调节器（切忌用粗调节器）以看清物象。用油镜观察完毕后，转开油镜，必须用擦 镜纸点二甲苯擦去镜头上的香柏油。下降镜筒，直立反光镜，使光学部件的光线不再对在一 条直线上。 应当了解的是，在显微镜中观察到的物象是倒象，因此移动玻片时，应注意移动方向。如果 要使物象左移动就要向右移动玻片，同样要使物象向前移动，就要向后移动玻片。观察结束 后，降下载物台，取掉载玻片，光源调至最弱后关闭电源（为防止下次打开电源时因电流 过大烧毁照明灯泡，请在关闭电源前一定将光源亮度调至最暗）。
临床医学本科实验课
临床医学本科实验课
临床医学本科实验课是临床医学教育中的重要组成部分，旨在培养学生的实践操作能力和临床思维能力。
以下是临床医学本科实验课的一些常见课程：
1. 解剖学实验：通过观察和操作尸体、模型等，让学生了解人体解剖结构，掌握基本的解剖操作技能。
2. 生理学实验：通过动物实验和人体实验，让学生了解人体生理功能和调节机制，掌握基本的生理学实验技能。
3. 病理学实验：通过观察病理标本、组织切片等，让学生了解疾病的发生、发展和转归，掌握基本的病理学实验技能。
4. 内科学实验：通过模拟病例、实际病例等，让学生了解常见内科疾病的诊断和治疗，掌握基本的内科临床技能。
5. 外科学实验：通过模拟手术、实际手术等，让学生了解常见外科疾病的诊断和治疗，掌握基本的外科手术技能。
6. 妇产科学实验：通过模拟病例、实际病例等，让学生了解常见妇产科疾病的诊断和治疗，掌握基本的妇产科临床技能。
7. 儿科学实验：通过模拟病例、实际病例等，让学生了解常见儿科疾病的诊断和治疗，掌握基本的儿科临床技能。
8. 诊断学实验：通过心电图、X线片、超声等检查手段，让学生了解常见临床检查方法和技术，掌握基本的临床诊断技能。
此外，临床医学本科实验课还包括一些跨学科的实验课程，如临床药理学实验、临床免疫学实验等。
这些实验课程旨在培养学生综合运用所学知识解决实际问题的能力。
细胞生物学实验本科生实验内容
细胞生物学实验（本科生）实验内容实验一细胞的结构目的：1、熟悉实验室规范2、掌握光镜下细胞器的形态、分布特点；3、掌握临时制片法；4、学会生物绘图内容：（一）录像：临时标本片的制作（二）光镜下细胞器形态学观察：1、高尔基体（兔神经节切片）2、细胞核及核仁（蝾螈表皮装片）3、线粒体（肾小管切片）4、细胞骨架（培养肝癌细胞飞片）5、中心体*（马蛔虫受精卵切片）（二）操作：制作人口腔上皮细胞临时制片（显示活体线粒体）（三）实验报告：绘制人口腔粘膜上皮细胞实验二细胞化学细胞工程目的：1、掌握甲基绿-派洛咛染色法原理及操作技巧2、了解几种化学成分的显示方法及原理；3、观察各种化学成分在细胞中的分布；4、了解PCC原理；5、了解细胞融合及其应用；内容：（一）录象：克隆羊（二）观察：1、糖原（动物肝切片，PAS反应）2、酸性蛋白（蟾蜍血涂片，酸性固绿染色）3、酸性磷酸酶*（鼠腹腔液涂片，金属沉淀法显色）4、DNA* （小鼠睾丸切片，Feulgen反应）5、DNA、RNA*（人口腔粘膜上皮细胞涂片，吖啶橙染色，荧光显微镜观察）6、细胞融合（鸡血细胞、培养细胞）7、PCC*（Hela细胞）（三）操作：制作蟾蜍血涂片，显示DNA、RNA（四）实验报告：甲基绿-派洛咛染色原理、步骤及结果实验三显微测量细胞的生理活动目的：1、掌握显微测量技术；2、观察细胞的生理活动；3、掌握死活细胞的鉴别方法及原理；内容：(一)录象：细胞的活动显微测量（二）观察：1、胞质环流（黑藻叶片）2、吞噬作用*（小鼠白细胞）3、吞噬作用（蟾蜍白细胞）（三）操作：1、显微测量（蟾蜍红细胞）2、死活细胞鉴别（酵母细胞）（四）实验报告：1、测量5-10个细胞的大小，计算平均值；2、计算细胞存活率。
实验四细胞增殖染色体（质）目的：1、熟悉细胞增殖的主要方式；2、掌握细胞增殖周期各期的形态学特点；3、熟悉人染色体的基本形态特征；4、掌握X染色质标本的制备方法及原理；内容：（一）观察：1、动物细胞有丝分裂（马蛔虫受精卵切片）2、植物细胞有丝分裂（洋葱根尖纵切片）3、收缩环*（肝癌细胞飞片）4、无丝分裂*（草履虫装片）5、人染色体的基本形态（人血涂片）（二）操作：1、制作有丝分裂压片（洋葱根尖）2、制作X染色质标本片（人口腔粘膜上皮细胞）（三）实验报告：绘有丝分裂图、X染色质图。
生物本科实验报告
实验名称：植物光合作用影响因素的研究一、实验目的1. 了解植物光合作用的原理和过程。
2. 探究光照强度、温度、二氧化碳浓度等因素对植物光合作用的影响。
3. 培养学生运用科学方法进行实验设计和操作的能力。
二、实验原理植物光合作用是植物利用光能将二氧化碳和水转化为有机物和氧气的过程。
该过程主要发生在叶绿体中，其基本原理是光反应和暗反应。
光反应在叶绿体的类囊体膜上进行，产生ATP和NADPH；暗反应在叶绿体的基质中进行，利用ATP和NADPH将二氧化碳还原为有机物。
本实验通过测定不同光照强度、温度、二氧化碳浓度下植物光合作用的速率，分析各因素对光合作用的影响。
三、实验材料与仪器1. 实验材料：菠菜叶片、CO2发生器、NaOH溶液、蒸馏水、碘液、滴定管、量筒、酒精灯、烘箱、温度计、光照计等。
2. 实验试剂：NaOH溶液（0.01mol/L）、碘液（0.01mol/L）。
四、实验步骤1. 光照强度实验（1）将菠菜叶片洗净、晾干，分别置于光照强度为1000lx、2000lx、3000lx、4000lx、5000lx的环境中，光照时间为2小时。
（2）将处理后的叶片放入烘箱中，60℃烘至恒重。
（3）用碘液滴定法测定叶片中淀粉含量，计算光合作用速率。
2. 温度实验（1）将菠菜叶片洗净、晾干，分别置于0℃、10℃、20℃、30℃、40℃的环境中，光照时间为2小时。
（2）将处理后的叶片放入烘箱中，60℃烘至恒重。
（3）用碘液滴定法测定叶片中淀粉含量，计算光合作用速率。
3. 二氧化碳浓度实验（1）将菠菜叶片洗净、晾干，分别置于CO2浓度为200、400、600、800、1000μmol/mol的环境中，光照时间为2小时。
（2）将处理后的叶片放入烘箱中，60℃烘至恒重。
（3）用碘液滴定法测定叶片中淀粉含量，计算光合作用速率。
五、实验结果与分析1. 光照强度对光合作用的影响实验结果显示，随着光照强度的增加，菠菜叶片的光合作用速率逐渐提高，但超过4000lx后，光合作用速率基本保持稳定。
本科生物实验课教学实践(3篇)
第1篇摘要：本文以某高校本科生物实验课为例，从实验课程设置、教学方法、实验内容选择、教学评价等方面进行探讨，分析了生物实验课教学实践中的优点与不足，并提出了相应的改进措施，旨在提高生物实验课的教学质量，培养学生的实验技能和创新能力。
关键词：生物实验课；教学实践；教学方法；实验内容；教学评价一、引言生物实验课是生物专业本科生学习过程中不可或缺的一部分，它对于培养学生动手能力、科学思维和创新能力具有重要意义。
本文以某高校本科生物实验课为例，探讨生物实验课教学实践中的经验与不足，并提出改进措施。
二、实验课程设置1. 实验课程内容丰富，涵盖多个生物学分支，如细胞生物学、分子生物学、遗传学等。
2. 实验课程与理论课程紧密结合，理论教学与实验教学相辅相成。
3. 实验课程设置注重培养学生的实验技能，如操作技能、观察分析能力、实验设计能力等。
4. 实验课程设置注重培养学生的创新能力，如实验方案设计、实验结果分析等。
三、教学方法1. 传统教学方法：以教师讲解为主，学生跟随操作，注重实验技能的培养。
2. 现代教学方法：采用多媒体教学、网络教学等手段，提高实验课的教学效果。
3. 案例教学法：通过典型案例，引导学生分析问题、解决问题，提高学生的综合能力。
4. 小组合作教学法：将学生分成若干小组，进行实验操作和讨论，培养学生的团队协作能力。
四、实验内容选择1. 实验内容选择注重理论与实践相结合，贴近实际应用。
2. 实验内容选择注重基础实验与综合性实验相结合，提高学生的实验技能。
3. 实验内容选择注重实验方法的创新，如实验技术的改进、实验仪器的更新等。
4. 实验内容选择注重实验内容的多样性，如实验材料、实验方法、实验结果分析等。
五、教学评价1. 评价方式多样化：采用实验报告、实验操作考核、实验报告答辩等多种评价方式。
2. 评价内容全面：评价学生的实验技能、实验态度、实验结果分析能力等。
3. 评价过程公平公正：确保每位学生都能得到公正的评价。
细胞生物学实验
细胞生物学实验《细胞生物学实验教程》为生物科学所有本科生必修，训练学生实验动手能力、分析问题能力、解决问题能力，以及设计实验等能力。
从基础性实验、综合性实验和设计性实验3个层面设置实验项目，旨在培养学生的基本实验技能和综合创新能力，内容涵盖光学显微镜技术、细胞化学技术、细胞器的分离和鉴定技术、染色体标本制作技术、细胞培养和细胞融合技术、染色体畸变检测技术、细胞凋亡检测技术以及细胞生物学设计性实验的选题、设计和实施等内容。
第一部分基础性实验实验1 细胞的形态观察和大小测定实验2荧光显微镜的使用实验3细胞器的活体染色实验4细胞内核酸的原位显示实验5细胞内糖类的显示实验6细胞内脂类的显示实验7 细胞内蛋白质的定位实验8骨髓细胞染色体标本的制备第二部分综合性实验实验9 细胞器的分离和鉴定实验10 完整叶绿体和叶绿体亚组分的分离及其鉴定实验11细胞骨架的显示和光学显微镜观察实验12动物细胞融合实验13植物原生质体的分离、融合和培第三部分设计性实验实验14植物细胞悬浮培养实验15 微核的诱导和检测实验16 细胞凋亡的诱导和检测本教材首先介绍了常用实验动物了解和解剖器械的使用、细胞生物学实验绘图方法与要求、特殊显微镜的原理和应用，在此基础上，学生学习动物细胞的基本形态观察和显微测量、细胞显微摄影、细胞核与线粒体的分级分离；然后开始学习细胞化学：核酸细胞化学、酶细胞化学、吖啶橙荧光染色法、免疫细胞化学；再研究细胞生理活动：细胞生理活动的实验观察、细胞分裂的形态观察；最后是综合能力创新能力的培养：细胞的原代培养、细胞的传代培养、培养细胞的生长特征和形态分型、培养细胞的形态观察和计数、细胞生长曲线的测定、细胞的分裂指数、细胞融合、早熟染色体凝集(PCC)的诱导、观察和分析、正常细胞与肿瘤细胞常规核型的检测和分析。
生物科学专业本科课程设置
生物科学专业本科课程设置简介生物科学专业是研究生物现象、结构和功能的学科，涵盖了生物的多个层面，从分子和细胞水平到整个生态系统。
对于生物科学专业的本科课程设置，旨在提供学生全面的生物学知识和实践技能，培养他们成为生物学领域的专业人才。
课程要求生物科学专业的本科课程设置主要包括以下几个方面的内容：1.基础课程：–生物化学：介绍细胞和生物分子的结构与功能，学习生物化学的基本理论与实验技术。
–细胞生物学：研究细胞结构、功能和组织学，理解一个生物体内细胞的机制和相互作用。
–遗传学：探讨基因的遗传规律、基因组的结构与功能以及遗传变异等。
–分子生物学：学习生物分子的结构、功能和相互作用原理，了解基因表达与调控机制等。
–生态学：研究生物与环境的相互关系，探究生物群落和生态系统的结构和功能。
2.专业核心课程：–生物进化学：了解生物进化的基本概念和理论，学习进化机制和地质历史对生物演化的影响。
–分子遗传学：深入了解基因组结构和功能，学习分子遗传学中的实验技术和分析方法。
–植物学：研究植物的结构与功能，了解植物生长发育、植物地理分布和植物的进化。
–动物学：学习动物的结构和生理特征，了解动物的分类、生态和行为学。
–微生物学：研究微生物的形态、生理和分子机制，理解微生物在生命活动中的重要作用。
3.选修课程：–环境生物学：研究生物在环境中的响应和适应机制，探讨生物与环境之间的互动关系。
–发育生物学：研究生物体的发育过程和调控机制，了解生物发育的分子和细胞基础。
–生物信息学：学习生物数据分析和基因组学的方法与工具，熟悉生物信息学的应用。
–种群生态学：研究物种的数量、分布和相互关系，了解种群在生态系统中的作用。
–分类学与系统学：学习生物分类学的基本原理和方法，探究物种之间的分类关系。
实践环节除了理论课程，生物科学专业的本科课程设置还强调实践环节的培养。
1.实验课程：–生物实验技术：培养学生进行常见生物实验的能力，包括细胞培养、基因工程等实验技术。
生物化学实验内容
生物化学实验内容《生物化学》实验教学大纲课程类别：专业基础适用专业：本科临床学专业课程总学时：实验学时：32实验指导书：生物化学与分子生物学实验教程开课实验室名称：生化实验室一、目的和任务生物化学是一门在分子水平上研究生命现象的学科，也是一门重要的实验性较强的基础医学课程．随着医学的发展，该学科已渗透到医学的各个领域。
生物化学实验技术已被广泛地应用于生命科学各个领域和医学实验的研究工作。
生物化学实验是生物化学教学的重要组成部分，它与理论教学既有联系，又是相对独立的组成部分，有其自身的规律和系统。
我们根据国家教委对医学生物化学课程基本技能的要求，开设了大分子物质的常用定量分析法、酶活性分析、电泳法、层析技术、离心技术及临床生化，使学生对生物化学实验有一个比较系统和完整的概念，培养学生的基本技能和科学思维的形成，提高学生的动手能力。
二、基本要求1.通过实验过程中的操作和观察来验证和巩固理论知识，加深学生对理论课内容的理解。
2.通过对实验现象的观察，逐步培养学生学会观察，比较，分析和综合各种现象的科学方法，培养学生独立思考和独立操作的能力。
3.通过对各类实验的操作和总结，培养学生严谨的科学态度。
4.进行本学科的基本技能的训练，使学生能够熟练各种基本实验方法和实验技术的操作。
三、考试方法及成绩评定方法四、说明实验教材及参考书：1.揭克敏主编：生物化学与分子生物学实验教程（第2版）。
科学出版社，2010参考资料：1..袁道强主编：生物化学实验（第1版）。
化学工业出版社，2011五、实验项目数据表质的沉淀反应人台滤纸3张2 影响酶活性的因素3 2 0 1 3 10人水浴锅1台试管5支3 血清醋酸纤维素薄膜电泳6 2 0 2 1 25人电泳仪1台电泳槽1台薄膜条1张干4 血清胆固醇的3 2 0 1 1 25人分光光度计1台试管3支设的教学实验项目。
2）要求：0：必修1选修3）类型：0：演示1：验证2：综合3：设计4）每组人数：指教学实验项目中一次实验在每套仪器设备上完成实验项目的人数。
基础实验分类
基础实验分类
基础实验主要分为两大类：演示实验和学生实验。
这些实验的目标是培养学生的实验基本技能，并让他们熟悉各种实验器材，如显微镜、量筒、酒精灯等。
基础实验主要包括以下内容：
1. 生物组织中还原糖、脂肪、蛋白质的鉴定。
2. 观察DNA、RNA在细胞中的分布。
3. 观察叶绿体和线粒体。
4. 观察植物细胞的质壁分离及复原。
5. 探究影响酶活性的条件。
6. 绿叶中色素的提取和分离。
7. 观察植物细胞的有丝分裂。
8. DNA的粗提取与鉴定。
针对高考，实验设计的重点是遵循单一变量原则和等量原则，这样可以清晰地表明单一变量是实验结果产生差异的原因，并据此得出相应的结论。
以上信息仅供参考，如有需要，建议您查阅教育类书籍或咨询专业教师。
生物化学实验内容
《生物化学》实验教学大纲课程类别：专业基础适用专业：本科临床学专业课程总学时：实验学时：32实验指导书：生物化学与分子生物学实验教程开课实验室名称：生化实验室一、目的和任务生物化学是一门在分子水平上研究生命现象的学科，也是一门重要的实验性较强的基础医学课程．随着医学的发展，该学科已渗透到医学的各个领域。
生物化学实验技术已被广泛地应用于生命科学各个领域和医学实验的研究工作。
生物化学实验是生物化学教学的重要组成部分，它与理论教学既有联系，又是相对独立的组成部分，有其自身的规律和系统。
我们根据国家教委对医学生物化学课程基本技能的要求，开设了大分子物质的常用定量分析法、酶活性分析、电泳法、层析技术、离心技术及临床生化，使学生对生物化学实验有一个比较系统和完整的概念，培养学生的基本技能和科学思维的形成，提高学生的动手能力。
二、基本要求1.通过实验过程中的操作和观察来验证和巩固理论知识，加深学生对理论课内容的理解。
2.通过对实验现象的观察，逐步培养学生学会观察，比较，分析和综合各种现象的科学方法，培养学生独立思考和独立操作的能力。
3.通过对各类实验的操作和总结，培养学生严谨的科学态度。
4.进行本学科的基本技能的训练，使学生能够熟练各种基本实验方法和实验技术的操作。
三、考试方法及成绩评定方法四、说明实验教材及参考书：1.揭克敏主编：生物化学与分子生物学实验教程（第2版）。
科学出版社，2010参考资料：1..袁道强主编：生物化学实验（第1版）。
化学工业出版社，2011五、实验项目数据表2）要求：0：必修1选修3）类型：0：演示1：验证2：综合3：设计4）每组人数：指教学实验项目中一次实验在每套仪器设备上完成实验项目的人数。
六、各实验项目教学大纲实验一蛋白质的沉淀反应【预习要求】预习四个小实验的具体实验原理和操作内容。
【实验目的】1. 加深对蛋白质胶体溶液稳定因素的认识；2. 了解沉淀蛋白质的几种方法及其实用意义。
生物所有实验知识点总结
生物所有实验知识点总结
1. 实验基本方法
生物实验的基本方法包括观察、测量、记录、提出假设、设计实验、进行实验、分析结果和得出结论等步骤。
在实验过程中，有时需要使用显微镜、色谱仪、光度计等仪器设备进行实验操作。
2. 细胞结构实验
细胞是生命的基本单位，了解细胞结构对于理解生物学知识非常重要。
生物学实验中常用的方法有显微镜观察细胞形态，利用离心等手段分离细胞器进行观察，使用电镜对细胞结构进行更细致的观察等。
3. 遗传实验
遗传是生物学的重要内容之一，实验中常用的方法包括对遗传学原理进行模拟实验、构建基因工程模型进行实验操作、观察不同基因型的表现差异等。
4. 分子生物学实验
分子生物学实验主要涉及DNA、RNA、蛋白质等分子的实验操作，包括DNA提取、PCR 扩增、电泳分析、蛋白质纯化等实验操作。
5. 生态学实验
生态学实验主要包括生态系统的研究，常见的实验包括样地调查、物种多样性调查、光合作用、呼吸作用等实验。
6. 生理学实验
生理学实验主要涉及生物的生理功能，包括植物的生长发育过程、动物的呼吸、循环、营养等生理功能的实验研究。
7. 微生物学实验
微生物学实验主要涉及微生物的培养、鉴定、菌落计数、抗生素敏感性试验等实验方法。
8. 植物学实验
植物学实验包括植物的形态、解剖、生长发育等实验操作。
以上是生物学实验的一些知识点总结，生物学实验丰富多样，涉及的内容广泛，通过生物学实验可以更好地理解生物学知识，培养学生的实验技能和科学素养。
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实验一：感受态细胞的制备1.原理：当实验室获得了一个新的质粒时，而这个质粒并未转化到宿主菌体内，则需要该技术进行细菌的转化，以大量获得这一质粒。
转化细菌的方式有很多种，如电转化法、脂质体转染法、显微注射法、CaCl2处理法制备感受态细胞等。
一般的实验室都应用CaCl2处理细菌，改变细胞膜的结构，使质粒DNA能穿过细菌细胞膜进入细胞。
然后在选择培养基中培养转化处理过的细菌，转化成功的细菌可在抗菌素培养基上生长形成菌落。
这一方法是分子生物学常用实验方法。
2.实验材料2.1LB液体培养基2.20.1mol/L CaCl2溶液：称取1.1g无水CaCl2，溶于90ml双蒸去离子水中，定容至100ml，用0.22μm滤器过滤并装入灭菌试剂瓶中，4℃保存。
2.3 DH5α菌株，冰，牙签，无菌滤纸，50ml离心管，枪头（以上需灭菌）；移液器，摇床，冷冻离心机，涡旋震荡器，恒温摇床，恒温培养箱，超净工作台，普通冰箱，-70℃冰箱3.操作方法3.1从37℃培养12—16h的平板上，用无菌牙签挑取一个单菌落，转移到含有3ml LB培养基的试管内，37℃振摇过夜。
次日取菌液1ml，接种到含有100ml LB培养基的500 ml烧瓶中，37℃剧烈振摇培养约2—3h（振摇速度为200—300r/min），待OD600值达到0.3—0.4时，将烧瓶取出立即置冰浴10—15min。
3.2自该步骤起皆需无菌操作。
在无菌条件下将细菌转移到一个灭菌处理过的、冰预冷的50 ml离心管中。
3.34℃离心，4000g×5min回收细胞。
3.4弃去培养液，将离心管倒置于滤纸上1min，以使最后残留的培养液流尽。
3.5加入冰预冷的0.1mol/L CaCl2溶液10ml重悬菌体，置冰浴30min。
3.64℃离心，4000g×5min,弃去上清液，倒置于滤纸1min。
3.7再加4ml用冰预冷的0.1mol CaCl2重悬菌体（重悬时操作要轻）。
3.8置4℃冰箱置12—24h，即可应用于转化。
思考题：制备感受态细胞时加入CaCl2的作用是什么？钙离子结合于细胞膜上，使细胞膜呈现一种液晶态。
在冷热变化刺激下液晶态的细胞膜表面会产生裂隙，细胞膜的通透性发生变化，使外源DNA进入。
实验二质粒转化1.原理当宿主菌接受CaCl2处理后，细胞膜通透性改变，感染细菌的质粒很容易地透过细胞膜，在宿主菌酶系统的作用下，质粒大量繁殖。
通过进一步实验，可获得大量的质粒DNA，以供分子生物学实验所用。
一般的实验室都应用CaCl2处理细菌。
2. 实验材料2.1，质粒GFP-SNAT2-pBK-CMVΔ （kan抗性）2.2，LB固体培养基平板(kan抗性)，LB液体培养基2.3，感受态细胞2.4，1.5ml离心管，枪头，三角耙（以上物品需灭菌处理）；移液器，冰，恒温水浴锅，恒温摇床，恒温培养箱，超净工作台，-70℃冰箱3.操作方法3.1无菌状态下取新鲜感受态50μl置于无菌的1.5ml离心管。
3.2每管加质粒50—100ng，轻轻旋转以混合内容物，在冰上放置30min。
3.342℃热休克90s，不要摇动离心管。
3.4每管加无抗生素的普通LB培养基950μl，37℃(150—180r/min)摇床，温和摇振45min。
3.5 用无菌弯头玻璃铺菌器（三角耙），将10μl菌液铺于含卡那青霉素(Kan)的琼脂平板表面，37℃平放20min，然后倒置培养10—14h。
4.结果观察计数全皿菌落数5.写实验报告（详细描述转化菌落的生长情况）6.思考题请说明每一步骤的原理：冰上30分钟、42度热休克90秒、37度温和震荡45分钟等。
冰上30分钟：转化混合物中的DNA形成抗DNA酶的羟基-钙磷酸复合物粘附于细胞表面。
42度热休克90秒：42度短暂的热刺激，细胞膜的液晶结构会发生剧烈扰动，并随即出现许多间隙，促进细胞吸收DNA复合物。
37度温和震荡45分钟：促使在转化过程中获得新的表型得到表达实验三质粒DNA的抽提和纯化1.原理：质粒为多数细菌和某些真核生物染色体的双链环状分子。
一般情况下，质粒并不是它的宿主细胞所必需的，如细胞分裂时，分裂的子细胞中不含质粒，但子细胞仍能生长分裂。
然而，许多质粒含有在特殊环境下所必需的抗生素抗性。
尽管质粒的复制有赖于宿主细胞的酶系统进行，但质粒DNA是独立于宿主基因组以外的环状分子，对于碱的裂解具有较强的耐受性，因此，用碱裂解法可将质粒DNA与宿主的线性DNA分开。
2材料2.1质粒DNA小抽试剂盒，乙醇2.2含质粒的菌液（GFP-SNAT2-pBK-CMV⊿）2.3 离心管，枪头（以上物品需灭菌）；移液器，离心机3．步骤见试剂盒说明书实验四琼脂糖凝胶电泳1.原理：带电物质在电场中向相反电极移动的现象称为电泳(electrophoresis)。
各种生物大分子在一定的pH值条件下，可解离成带电荷的离子，在电场中向相反的电极移动。
分子生物学领域中，琼脂糖和聚丙烯酰胺作为支持介质的凝胶电泳应用最多，它们是分离、鉴定和纯化DNA及RNA片段的主要方法。
该方法操作简便、快速，可以分辨其它方法(如梯密度离心法)所无法分离的片段。
直接嵌入荧光染料后，在紫外灯下可直接检出DNA片段所在的位置，如有必要，从凝胶中回收DNA片段，用于各种克隆操作。
琼脂糖和聚丙烯酰胺凝胶均可制成各种不同大小、形状和孔径的凝胶块，在不同的装置上进行电泳。
琼脂糖比聚丙烯酰胺凝胶的分辨率低，但其分离范围广，约200bp~50kb的DNA。
琼脂糖凝胶电泳通常在水平装置上进行。
聚丙烯酰胺分离小片段(5~500bp)的效果较好，甚至可以分辨相差1bp的DNA片段。
长度大于10 000kb的DNA片段，可以通过电场方向呈周期性变化，在脉冲电场胶中进行电泳。
2.琼脂糖凝胶的性质：琼脂糖是从海澡中提取的长链状多聚物，琼脂糖凝胶点为40~45℃。
当加热至90℃左右时，即可成清亮、透明的液体，浇在模具上冷却后固化形成凝胶，琼脂糖凝胶可区分相差100bp 的DNA片段。
为了满足特殊的要求，可选择低溶点琼脂糖(<70℃,低于双链DNA的变性温度)。
3材料3.1 琼脂糖，10mg/ml溴化乙锭，1kb DNAmarker3.2 100ml 50×TAE缓冲液：Tris 24.2g,冰乙酸5.71ml，0.5mol/L EDTA(PH6.8) 10ml 3.3 6×上样缓冲液：0.25%溴酚蓝、0.25%二甲苯青FF、30%甘油3.4 枪头，移液器，锥形瓶，微波炉，制胶槽，梳子，水平电泳仪，稳压器，凝胶成像系统4操作步骤：4.1将胶模槽放于水平工作台上。
4.2用电泳缓冲液在微波炉中将琼脂糖颗粒用最短的时间完全溶解。
熔化琼脂糖溶液冷却至60度时，加入浓度为0.5μg/ml溴化乙锭10ul，充分混匀。
4.3在胶模放置好梳子后，将具有一定温度的凝胶倒入胶模中，凝胶的厚度在3-5mm之间。
注胶时要避免产生气泡，若有气泡可用吸管小心吸去。
4.4凝胶凝固后通常需要在室温中放置30——45min，小心移去梳子，并将凝胶托盘放入电泳槽。
可同时制作几块凝胶，待其固化后用保鲜纸包住以防水分挥发，置4度保存，通常在数日之内可以使用。
4.5加入电泳缓冲液，使液面高出凝胶表面1—2mm，样品孔内有气泡，用吸管小心吸去，以免影响加样。
4.6将样品与上样缓冲液混合：上样缓冲液不仅能提高样品的密度，使样品均匀沉到孔底，还可使样品带色，便于上样、估计电泳时间和判断电泳位置。
4.7用微量移液器将样品依次加在样品孔内。
4.8盖上电泳槽并通电，5V/cm2,恒压电泳，使DNA向阳极方向移动。
4.9电泳完成后切断电源，取出凝胶。
如果凝胶中加有溴化乙锭，可直接在紫外透射灯下观察，否则就将凝胶浸泡在0.5微克/ml溴化乙锭缓冲液中浸泡30——45min。
4.10用凝胶分析系统直接观察并拍照。
5.注意事项：5.1加热溶解琼脂糖时应不断地摇动容器，并可对着光线肉眼检查凝胶溶解情况，使附着在壁上的颗粒完全溶解。
5.2在微波炉上加热时间不要过长，以免引起暴沸。
如蒸发过多的溶液，应补充部分缓冲液。
5.3气温较高或用低熔点、低浓度（小于0.5%）琼脂糖制胶、倒胶和电泳时，最好在4℃进行。
6. 结果观察6.1仔细观察DNA泳动的方向。
6.2 DNA电泳结束后，记录正常组与marker组电泳条带的相应位置。
7.书写实验报告实验五DNA限制内切酶技术1.原理：限制性内切酶（即限制性核酸内切酶，简称限制酶或内切酶）是一类能识别双链分子中特异核酸序列的水解酶，这类酶的发现和应用，促进了基因工程和DNA序列测定以及基因诊断技术的发展。
它的应用是当代分子生物学研究最基本、最重要的技术手段。
从质粒、噬菌体或粘性质粒获得的含有目的基因重组分子，必须经过酶切、电泳分离、回收基因片断，方可用于重组或探针标记。
根据酶切的目的不同，可采用小量酶切或大量酶切反应两种体系。
2．实验材料2.1 质粒SNAT1-PBK-CMV⊿(600ng/ul，150ul)2.2 限制性内切酶EcoRI2.3 1kb DNAmarker2.4 离心管，枪头，移液器，离心机，恒温水浴锅，琼脂糖凝胶电泳所需材料3.小量酶切反应体系本实验主要应用于质粒的酶切鉴定。
典型的反应是20μl体积中含0.2—1μgDNA，酶切反应体系如下：质粒DNA 5μl10×缓冲液1μl限制酶（根据质粒酶切位点选择）1μl双蒸去离子水3μl总体积10μl4.操作方法4.1在一灭菌的新的Ep管中加入3μl双蒸水。
4.2加入10×缓冲液1μl。
4.3加限制酶1μl。
4.4最后加入质粒DNA 5μl。
4.5稍离心，混合。
4.637℃水浴1—1.5h。
4.7取出后电泳分析鉴定是否酶解。
5.注意事项5.1双蒸水为可变体积，当其他反应成分的量确定后，用双蒸水将反应体积补足。
5.2质粒DNA最后加入，以防止操作不当引起试剂的污染。
5.3为保持限制酶的活性，将酶从低温冰箱取出后立即置于预先准备的碎冰中冰浴，操作应迅速，用后立即放回低温冰箱中。
5.4大多数酶多以浓缩液存放，吸取时需严格取量。
若要取用多种酶，每种酶必须单独使用吸头，避免交叉污染。
5.5大多数限制酶均加50%甘油缓冲液置于-20℃保存，其活力稳定，但在配制反应混合物时，酶的加入量要准确限制小于体积的1/10，否则甘油会抑制酶解反应。
5.6如欲节省酶的用量，可增加酶解时间，但酶解时间过长，易出现异常条带。
5.7当样品加入反应管之后，必须将装酶试管盖盖严，避免温育时水蒸汽进入管内。
6. 结果观察6.1DNA分子中分布的酶切位点的多少与酶解后条带呈正比。
仔细观察条带数量。
6.2. 与Marker 对照，观察各条带中的bp数。