抗药抗体免疫原性分析方法学验证指导原则(中文版)

抗药抗体免疫原性分析方法学验证指导原则

摘要：

几乎所有的生物制药产品都会引起一定的抗药抗体（anti-drug antibody，ADA）反应，抗药抗体反应可能会降低药物疗效或导致严重的不良反应。在人体内，抗药抗体通常不会引起明显的临床反应。但是对于某些治疗性蛋白质，抗药抗体反应能引起各种临床的不良反应，包括温和事件及严重不良事件。临床前研究表明，抗药抗体能对药物暴露、药物毒性作用、药物代谢动力学、药物效应动力学等造成影响。因此治疗性蛋白质的免疫原性引起了临床医生、药企及监管机构的注意。为了评估生物药物分子的免疫原性，以及将实验结果与临床事件联系起来，在临床前研究和临床研究中，很有必要开发可靠的能够有效评估抗药抗体反应的实验方法。这里方法学验证显得尤为重要，并且方法学验证是药物上市申请必不可少的。现行的监管文件对于免疫分析方法的验证的指导相当有限，特别是缺乏有关免疫原性分析方法的验证的指导。因此，本文对抗药抗体免疫分析方法的验证提供科学的建议。在现有的关于生物分析的规范性文件的基础上加入独特的性能验证。笔者建议采用实验和统计学的方法进行免疫分析的方法学验证。这些建议被视为最佳的例子，旨在促进整个医药行业形成一个更加统一的抗体检测方法。

1．简介：

生物制药产品包括氨基酸聚合物、碳水化合物或核酸，一般通过人细胞系、哺乳动物细胞或细菌进行表达，比常规的小分子药物更大（一般大于1~3KD）。由于以上特性，生物制药产品引起免疫反应的潜力更大。生物制药的免疫原性与产品的内在因素（种属特异性表位、外源性、糖基化程度、聚合或变性程度、杂质和制剂）、外在因素（给药途径、慢性或急性给药、药代动力学及内源性当量）、患者因素（自身免疫性疾病、免疫抑制、和替代疗法）相关。

抗药抗体反应可能会导致严重的临床症状，包括过敏、自身免疫和不同的药代动力学特征（例如，药物中和、生物分布异常和药物清除率增强等均可能会使

药物的的疗效发生改变）。药物引起的免疫反应是药物安全性和有效性的重要指标，这也是监管机构、生产企业、临床医生和患者共同关注的。因此，美国食品药品监督管理局以及欧盟、日本、加拿大、澳大利亚等国家的监管机构均要求通过药理学或毒理学相关的方法对抗药抗体进行评估。免疫原性与临床症状之间的相关性的研究依赖于临床前研究和临床研究中对于抗药抗体的客观检测和表征。因此免疫原性生物分析方法在用于检测研究样本之前应进行适当的开发及验证。已有出版物提供了关于抗药抗体检测和表征的策略、方法开发及优化等方面的指南。方法学验证是对分析方法的评价，通过特定的实验室方法表明采用的分析方法适用于相应的检测要求。具体到抗药抗体的检测方法，验证就是指证明该方法能可靠的（例如一致性和重复性）在复杂的生物基质（血清或血浆）中检测出低量的药物特异性抗体。方法学验证应该通过预先研究阶段和研究阶段两个阶段进行，预先研究阶段是指在分析样品之前的工作，研究阶段是指样品的分析工作，预先研究阶段和研究阶段对于表明分析方法的有效性和可控性同等重要。本文主要介绍抗药抗体免疫分析方法验证的主要性能特征，推荐方法学验证相关的方法和措施。本指南应当被视为最佳实践范例，考虑到具体实际分析方法时，在保持科学合理性和客观性的情况下，也可以采取替代方法。若采用替代方法，建议与监管机构进行充分讨论。以细胞功能为基础的中和抗药抗体生物检测和细胞介导的免疫分析不在本指南的讨论范围内。

2.方法

2.1 抗药抗体检测

临床和非临床研究通常是通过对治疗引起的抗药抗体反应的检测和表征来评估药物的免疫原性。目前可通过多种方法可用于抗药抗体的检测，包括酶联免疫法（ELISA）、放射免疫检定法（RIA）、放射免疫沉淀法（RIPA）、表面等离子体共振（SPR）、电化学发光法（ECL）。每一种检测方法均有其优点和局限性，在最近的文章中已进行过讨论[8,14]。不管是采用何种方法，在方法开发和优化后均应进行正式的方法学验证，以保证该方法适合相应的检测要求。因此可以预测，本指南的验证建议适用于大部分的抗药抗体免疫检测。研究人员应根据检测系统的特点确定合适的方法学验证方案。

临床研究中抗药抗体的检测和表征通常包括四种不同类型的方法。抗药抗体检测试验通常包括筛选试验和特异性确证试验，表征试验通常包括抗体滴定和中和抗体检测[10]。应用到具体研究样本时，抗药抗体分析试验需要两个关键决策参数，分别为筛选试验的筛选临界点（screening cut point）和特异性确证试验的特异性临界点（specificity cut point）。筛选临界点有助于抗药抗体检测结果的分类，高于筛选临界点为活性样品（活性样品通常为潜在阳性样品），低于临界点为无活性样品。活性样品通过特异性确证试验（如竞争性药物抑制信号通路）检测是阳性（特异性活性）还是阴性（非特异性活性）。特异性临界点为抑制信号通路所需的样品量，也就是具体药物的抗药抗体，需要通过试验确定。

抗药抗体的检测方法通常是非定量试验（有时是半定量试验），因为没有可用的标准化的物种特异性的抗药抗体作为校正标准品[15]。阳性对照一般都是内部开发的（例如单克隆抗体或高免血清的多克隆抗体），不可能将受试者检测到的所有抗药抗体作为阳性对照。如果准备使用质量单位标示抗药抗体水平，那应该证明标准品和试验样品的平行性，以确定样品的浓度的准确性[8,10]。若未证明样品与标准品间的平行性，则准确性是可疑的。滴定法是另一种评估抗体水平的方法，该方法不同样品稀释间容易缺乏平行性。然而，值得注意的是已有研究表明，滴定法适用于抗体水平的评估。几十年来，临床上感染、自身免疫疾病的诊断和治疗以及预防接种等都采用这一方法[16~22]。滴定法比较抗药抗体反应

更为简便且所需的验证工作更少，因为其不需要再对不同产品的抗药抗体与标准品间的平行性进行详细描述与证明。此外质量单位法每当标准品品改变时均需要进行重新验证。综上所述，两种方法都无法提供准确的定量数据。因此，赞助商建议采用相对浓度（质量单位）或滴度表示抗药抗体水平。某些监管机构会更倾向于使用滴度单位。滴度是仍能产生阳性结果的最大稀释倍数的倒数。

在方法的开发和优化阶段，应先确定方法并进行记录，例如选择所需的试剂、最佳浓度、预期样品所需的最大稀释倍数等。这些需要研究人员在预先研究阶段进行简单或重复确证。本文假定以下属性在验证之前已被确证：免疫分析方案及方法设计，分析基质的类型，最大稀释倍数（MRD）、试剂的最佳浓度、酶标板的均匀性评估（如位置的影响、漂移等）。监管机构可能会要求提供相关的数据