大鼠的麻醉

小鼠麻醉大鼠麻醉兔麻醉狗麻醉

动物麻醉麻醉(anesthesia)的基本任务是消除实验过程中所至的疼痛和不适感觉，保障实验动物的安全，使动物在实验中服从操作，确保实验顺利进行。

一、常用的麻醉药(一)常用局部麻醉剂：普鲁卡因，此药毒性小，见效快，常用于局部浸润麻醉，用时配成0.5％～1％；利多卡因，此药见效快，组织穿透性好，常用1％～2％溶液作为大动物神经干阻滞麻醉，也可用0.25％～0.5％溶液作局部浸润麻醉。

(二)常用全身麻醉剂：1. 乙醚乙醚吸入法是最常用的麻醉方法,各种动物都可应用。

其麻醉量和致死量相差大,所以其安全度大。

但由于乙醚局部刺激作用大,可刺激上呼吸道粘液分泌增加；通过神经反射还可扰乱呼吸、血压和心脏的活动，并且容易引起窒息，在麻醉过程中要注意。

但总起来说乙醚麻醉的优点多，如麻醉深度易于掌握，比较安全，而且麻醉后恢复比较快。

其缺点是需要专人负责管理麻醉，在麻醉初期出现强烈的兴奋现象，对呼吸道又有较强的刺激作用，因此，需在麻醉前给予一定量的吗啡和阿托品(基础麻醉)，通常在麻醉前20－30分钟，皮下注射盐酸或硫酸吗啡(每公斤体重5～10mg)及阿托品(每公斤体重0.1mg)。

盐酸吗啡可降低中枢神经系统兴奋性，提高痛阈，还可节省乙醚用量及避免乙醚麻醉过程中的兴奋期。

阿托品可对抗乙醚刺激呼吸道分泌粘液的作用，可避免麻醉过程中发生呼吸道堵塞，或手术后发生吸入性肺炎。

进行手术或使用过程中，需要继续给予吸入乙醚，以维持麻醉状态。

慢性实验预备手术的过程中，仍用麻醉口罩给药，而在一般急性使用,麻醉后可以先进行气管切开术,通过气管套管连接麻醉瓶继续给药。

在继续给药过程中，要时常检查角膜反射和观察瞳孔大小(如发现角膜反射消失，瞳孔突然放大，应立即停止麻醉。

万一呼吸停止，必须立即施行人工呼吸。

待恢复自动呼吸后再进行操作。

2. 苯巴比妥钠此药作用持久,应用方便，在普通麻醉用量情况下对于动物呼吸、血压和其它功能无多大影响。

通常在实验前半至一小时用药。

大鼠水合氯醛麻醉心得[参考内容]

大鼠水合氯醛麻醉心得本人所做的模型需要使用水合氯醛麻醉，所使用的是医院里配制的用于儿科灌肠的10%水合氯醛。

在先前的实验中，剂量为0.3mL/100g（这个剂量来自于师姐使用的经验），麻醉完全清醒时间约4h（当初没有记录开始清醒的时间）现在由于实验方案有所改动，希望麻醉的时间尽量缩短（1~1.5h），而麻醉深度保持不变，这样在侧脑室注射操作后，大鼠能够尽快的恢复清醒状态，便于后续的实验操作。

因此，对水合氯醛麻醉的剂量与药效进行了摸索，我把它贴出来，跟大家分享一下。

动物：雄性SD大鼠4只，平均体重356g（这里就不算标准差了），水合氯醛浓度分为4%、7%、10%三个水平。

结果：如下表格所示：水合氯醛浓度 4% 7% 7% 10% 10%水合氯醛剂量 0.5mL/100g 0.3mL/100g 0.2mL/100g 0.2 mL/100g 0.3 mL/100g诱导时间约7min 约4min 约7min 约4min 约4min麻醉深度浅麻醉水平中度麻醉浅麻醉深度麻醉深度麻醉麻醉开始清醒时间约90min 约100min 未观察约68min 114min 结论：1、麻醉的诱导，似乎从4%到（7%、10%），随着浓度的增加，麻醉诱导的时间缩短。

但在7%及10%这两个浓度，麻醉时间基本一致。

2、麻醉时间的长度与水合氯醛的总剂量可能成正相关。

3、麻醉的深度跟与水合氯醛的浓度可能成正相关在之前甲醛《做动物实验前必须给予阿托品吗？》的这篇中，有战友提出“把水合氯醛配成4%的，而不是10%的，这样就拉开了麻醉剂量和致死剂量之间的差距，可安全了”，我的经验是这样：（1）确实，4%的水合氯醛在实验中比较安全，我们一般用于追加麻醉的时候，4%水合氯醛每次1mL，追加一到两次，安全度颇高。

（2）而水合氯醛的致死剂量，我不是很了解，希望知道的战友能够告知一声。

对于10%的水合氯醛，我们用到0.3mL/100g也很安全，应该距离致死剂量还有一段距离，麻醉深度与维持时间也很确切。

大鼠麻醉

2．局部麻醉
浸润麻醉。根据手术，按皮下、筋膜、肌肉、腹膜、骨膜等顺序逐步深入注射到术野周围。
3. 麻醉的基本原则
• • • •
注意不同个体的耐受性及时判断麻醉的深浅
静脉麻醉坚持先快后慢原则
补充麻醉
(三) 麻醉前准备：
• 禁食8～12h，防止呕吐，可饮水。 • 犬、猪、猴等大动物可在麻醉前给予一些药物以减
（六）不同麻醉方法操作
• 1.吸入麻醉法
①将乙醚棉球投入密闭容器中，放入大鼠。
②计时观察与判断大鼠的麻醉程度及苏醒时间。
当大鼠倒下，四肢紧张明显减轻，皮肤痛觉消失，则表示其已进入麻醉状态。
• 注意事项
1.乙醚易挥发，易燃，应远离火源。 2.实验过程中避免大鼠逃脱。
• 2.注射麻醉法
`
① 实验开始时，应先称重，确定大鼠的药物用量。
少动物紧张，减少支气管分泌。
• 实验开始时，首先应当根据实际条件，确定动物的
药物用量。剂量太小，作用不明显，剂量太大，又可能引起动物死亡。
(四) 麻醉时的注意事项
• ⑴静脉注射必须缓慢，同时观察肌肉紧张性、角膜
反射和对皮肤夹捏的反应，当这些活动明显减弱或消失时，立即停止注射。（配制的药液浓度要适中，不可过高，以免麻醉过急；但也不能过低，以减少注入溶液的体积。）
实验大鼠的麻醉
2014年3月5日
1
2 3
常用麻醉剂麻醉方法分类麻醉准备
5 麻醉的效果观察 6 不同麻醉方法操作 7 麻醉后生化指标变化 8 其他
4 麻醉时的注意事项
引言
麻醉(anesthesia)的基本任务是消除实验过程中所致的疼痛和不适感觉，保障实验动物的安全，使动物在实验中服从操作，确保实验顺利进行。

去离子水定容至100ml
用量：0.25ml/100g
6、2%戊巴比妥钠50mg/kg，书上推荐的剂量是40～50mg/kg（ip）；或者苯巴比妥钠+乙醚麻醉，效果也可以.。
7、在建立肠道缺血再灌注损伤模型中使用戊巴比妥钠，是沿用了很多同事的方案。使用中麻醉很平稳。效果很不错。估计肾脏移植模型和肠道相差不大，不知对否。
二、异氟醚大鼠麻醉
安全且具有麻醉科特色。
我们是用异氟醚（应该是国产的吧）麻醉的，用那种市面上常见的可以提的比较大的带盖塑料水杯自制一个封闭的小麻醉空间，水杯是那种直桶透明，盖子类似特百惠按盖，上有一个约2cm饮水孔的那种，用一个合适的注射器前端堵住饮水孔。使用时打开盖子，将杯子对着大鼠，大鼠顺势会自己进去，然后竖起杯子盖上盖，连抓大鼠都省了，超级安全！然后接麻醉机（临床淘汰的机型，不过作试验足够了），注意要事先准备好连接管道（临床上各种管子都是可以互相接口的），打开挥发器就行了。我们一般先开最大，大鼠一会儿不动了就麻好了（杯子要求至少半透明）。
4、3%的戊巴比妥钠，1ml～1.5ml/kg，但要体重称准。
5、戊巴比妥钠，40mg/kg，但不安全，用水合氯醛腹腔注射最安全，300mg/kg。或是用乌拉坦。用复合麻醉，2小时左右很有效。
配方：
戊巴比妥钠：0.886g
水合氯醛：4.25g
硫酸镁：2.12g
无水酒精：14.25ml
丙二醇：33.8ml
3、水合氯醛和戊巴比妥钠均可以的，前者的麻醉持续时间短些，看你的手术需要了，前者的一般剂量为350～400mg/kg，后者的剂量一般可为30mg/kg，均是ip注射，安全性是很好的。戊巴比妥钠最好用进口分装的，上海试剂公司有售。??
注：我们一般同时接着氧气，所以安全过程中的维持麻醉一般也采用吸入麻醉，与诱导时基本类似。取出诱导好的大鼠，快速固定四肢在操作板上，给大鼠口鼻处罩上剪下的合适注射器（好像是20或30ml注射器）前端，注射器头接诱导时的麻醉管道，连接到麻醉机上，一般维持时开到2，同时供氧，没有给它们插过气管插管，也没有出现窒息的（至少我没见过）。可作除开胸外的手术，一般切皮处给予少量局麻。作过颈部血管手术和股动静脉穿刺置管效果都很好。

大鼠水合氯醛麻醉的方法

水合氯醛麻醉药在姓动名：物王实宁丁验手术
中的心得
专业：中西医结合基础
动物手术常用麻醉药
✓ 戊巴比妥钠 ✓ 水合氯醛 ✓ 乌拉坦 ✓ 氯胺酮 ✓ 乙醚 ✓ α-氯醛糖
水合氯醛常用浓度及剂量
1.常用浓度有5%、7%、10% 2.剂量可分别为0.7ml/100g、0.5ml/100g、
0.3ml/100g 3.麻醉有效时间约3-5min，维持时间2-3h
大鼠之间的个体差异，使每只对其耐受程度不同，壮年及雄性大鼠对其耐受性强，体弱或雌性大鼠相反，导致致死量相对减少
10%水合氯醛，一般200g左右0.25差不多，300g以上要0.3-0.35，当个别大鼠一次麻不倒，一般按25%首剂量追加
麻醉效果观察
➢ 呼吸
由不规则变为规则且平稳
➢ 反射活动
角膜反射迟钝
➢ 肌张力
全身肌肉松弛
➢ 皮肤夹捏反应度，心电图，血压，体温
水合氯醛对机体的影响
水合氯醛对离体十二指肠平滑肌收缩性的抑制作用最大，抑制率为99.5%
相对其他麻醉剂，发现水合氯醛降低脑温的时间最长
大剂量水合氯醛引起心律失常，小剂量没有明显毒性作用
麻醉注意事项
注意动物个体差异注意麻醉剂的新鲜度注意体重与麻醉剂量的关系注意麻醉过量和致死剂量的关系注意补加麻醉剂的方法注意保温
1. 麻醉剂要现用现配以保持新鲜度
2. 严格按照动物体重来计算麻醉剂量 3. 10%水合氯醛LD50为480mg/kg，麻醉剂量
与致死剂量较近，一麻醉过量容易致死
4. 麻醉过程中会伴有体温下降，可采取保温措施
注意
水合氯醛麻醉后大鼠很容易腹胀而死，是由于水合氯醛浓度太高了，可选用5-7%的水合氯醛，给药原则是一次给齐，忌讳反复追加注射，否则很容易肠道胀气。

SD大鼠脂肪采取

SD大鼠脂肪采取简介SD大鼠脂肪采取是一种常用的实验方法，用于研究大鼠脂肪组织的特性和功能。

在这篇文档中，我们将介绍SD大鼠脂肪采取的步骤和注意事项。

希望本文能为相关科研人员提供一些帮助。

步骤1.准备实验材料：–SD大鼠–麻醉剂（如异氟醚）–消毒液–手术器械（如手术刀、手术剪、镊子等）–无菌培养皿和离心管2.麻醉SD大鼠：–将SD大鼠置于麻醉箱中，通过给予适量的麻醉剂使其进入麻醉状态。

–确保大鼠完全进入麻醉状态后，将其取出放在手术台上。

3.消毒操作区域：–使用消毒液彻底清洗手术台及手术器械，以减少感染风险。

4.实施脂肪采取：–使用手术刀在大鼠身体的特定位置（如腰部）切开皮肤，并将切口扩大。

–使用手术剪和镊子小心地分离脂肪组织，注意不要损伤其他组织。

–通过运用轻柔的力量，将脂肪组织完整地取出，并放置在无菌培养皿中。

5.脂肪组织的处理：–将采取的脂肪组织放入离心管中，并加入适量的生理盐水进行清洗。

–对脂肪组织进行离心，以去除其中的杂质。

–可根据实验需求，将清洗后的脂肪组织进行冷冻保存或进一步处理。

6.注意事项：–在实施脂肪采取之前，应经过相关机构的批准，并遵循相关伦理规定。

–在实施手术时，应注意麻醉剂的使用量，确保大鼠在手术过程中不会醒来。

–手术过程中要小心操作，避免伤及大鼠的其他组织。

–操作过程中要保持工作区域的洁净，使用无菌器械进行操作，以减少感染风险。

结论SD大鼠脂肪采取是一项常见的实验技术，用于研究脂肪组织的性质和功能。

通过遵循正确的操作步骤和注意事项，可以获得高质量的脂肪样本，为后续的实验研究提供可靠的基础。

同时，在进行实验前应获得相关批准，并遵循伦理规定，以确保动物的福利和实验的科学性。

希望本文对于进行SD大鼠脂肪采取的科研人员有所帮助。

注：本文所提供的步骤和注意事项仅供参考，具体操作应根据实验要求和相关规定来进行。

大鼠去势术

雌鼠的手术过程：1. 麻醉：先将大鼠采用40mg/kg戊巴比妥钠腹腔注射进行麻醉，取俯卧位于手术面板上。

2. 备皮：剪去大鼠背部中下部分被毛，碘伏消毒3. 切口：在无菌条件下在背部中线旁0.5-1.0cm做纵行切口。

位置大概位于大鼠肋弓与脊椎边缘夹角的位置稍微向下0.5-1cm，向两侧分离皮肤，筋膜及肌肉，在左右两侧腹后壁肌肉层较薄弱处打开腹腔，切口尽量小。

4. 寻找卵巢：大鼠的活体卵巢呈粉红色，表面呈桑椹状，处于发情周期时可能会充血而呈深红色。

刚一开始寻找卵巢比较困难，有以下几个线索：（1）先找到输卵管，输卵管颜色深红，与肠管相比壁厚较饱满，然后沿着输卵管寻找末端的卵巢；（2）卵巢周围有一块脂肪，与其他组织明显不同，从切口视野下也比较容易识别，呈游离状；（3）卵巢因纤维组织牵引脂肪形成一小凹，如果切口位置得当的话能直接看到此小凹，从此处用无齿镊轻提脂肪就可以看到桑椹状黄豆粒大小的卵巢；（4）要注意的一点是右侧卵巢比左侧要高一些，寻找右侧卵巢的时候稍加注意5. 切除：以无齿镊探入腹腔将卵巢连带输卵管末端轻轻提出体外，小号止血钳在子宫末端与卵巢之间的最细处夹闭，0号手术线结扎后用眼科剪将卵巢全部切除；松开止血钳，将子宫轻轻还纳入腹腔，分别缝合肌肉层和皮肤，对皮后酒精棉球清理手术切口。

手术过程中需要注意动作轻柔，尽量避免对肠管进行过分牵拉和夹捏；卵巢切除前的结扎一定要可靠，避免术后出血造成大鼠死亡（结扎很重要，因为卵巢周围的脂肪组织比较松软，很容易造成结扎线脱落，务必注意，不然老鼠内出血死亡，前功尽弃）。

雄大鼠的去势：1.麻醉剂的选用。

用无巴比妥或乙醚都行。

2.麻醉后，仰卧，露出睾丸，常规消毒等，切一0.5厘米的小口（视情况而定，如果太小可以再切大点，但不要太大），把睾丸挤出，结扎精索，此时可以摘除睾丸，注意消毒处理，缝合即可。

3.去势后的大鼠不能放在温度太低的环境下。

注意饲养条件。

常用的大小鼠麻醉剂与剂量

1
國家實驗動物中心實驗動物照護及使用委員會
參考資料 A
11 Sevoflurane
誘導 5-8%, 維持麻醉 2.5-4% IH
於抽氣櫃內或通風良好處使用
初生仔鼠（尚未長毛者）麻醉：
Pentobarbital 5 mg/kg, IP
Halothane，isoflurane
低溫麻醉
止痛: 品系差異性大，需注意
50-100 mg/kg
IM
4 Ketamine/Xylazine
50-100 mg/kg K+10 mg/kg IM,IP 1. Yohimbine(1-2 mg/kgIP),
X
Tolazoline(20 mg/kgIP), Atipamezol
(1 mg/kgSC)為 Xylazine 結抗劑
2. 如需追加劑量, 使用 1/3 Ketamine 劑
Midazolam
注射用水:2
抗劑
Midazolam:1 混合,
2
國家實驗動物中心實驗動物照護及使用委員會
參考資料 A
2.7-4.0 ml/kg
9 Chloral hydrate（5%）
300-500 mg/kg
IP
1. 建議經動物實驗管理委員會審查同
意,確定有其科學研究之需求與依據,
才得以使用本藥劑
90-120 mg/kg K+5-10 mg/kg IP
Atipamezol (1 mg/kgSC)為 Xylazine
X
結抗劑
2. 如需追加劑量, 使用 1/3 ketamine
劑量
3. IM 由 40 mg/kg K + 10 mg/kg X

动物麻醉剂及麻醉剂量

动物麻醉方法及给药剂量一、动物麻醉的目的1. 清醒状态的动物虽然更加接近其生理状态，但是试验过程中的各种强刺激容易引起动物大脑皮质的抑制，使动物机体发生生理机能障碍影响到实验的结果。

甚至引起动物死亡或休克。

2. 防止动物伤害实验操作者。

3. 基于人道主义的考虑，麻醉是动物保护所必需采取的措施。

二、麻醉的类型和方法1. 全身麻醉的方法：吸入麻醉：吸入麻醉是将挥发性麻醉剂或气体的麻醉剂经过动物的呼吸道进入体内产生麻醉的效果。

常见的麻醉剂有乙醚、安氟醚、三氟乙烷等，其中乙醚因麻醉深度容易掌握、安全、动物容易恢复等优点，使用最为广泛。

1）大鼠、小鼠、豚鼠的乙醚麻醉：将含有乙醚的棉球/ 纱布放在大烧杯中，将动物放入，封口。

动物先兴奋后抑制，自行倒下。

当动物角膜反应迟钝，肌肉紧张度降低时，即可取出动物。

如果动物逐渐恢复肌肉紧张（挣扎），可重复麻醉一次，待平静后即可开始试验。

如果试验时间较长，可将动物固定在其口鼻处放置含有乙醚的棉球或纱布，并在实验中注意动物的反应，适时追加乙醚的吸入量，以维持麻醉的深度和实践。

2）猫、兔的乙醚麻醉：将动物放进内装含有乙醚的棉球/ 纱布的麻醉瓶中，封口。

经过1~2min，从动物后腿依次出现麻痹现象，而后失去运动能力，表明动物进入麻醉状态。

4~6min 后可以将动物麻醉，如观察到动物倾斜不能站立、跌倒时，说明动物已经深度麻醉，立即取出动物，这时动物肌肉松弛、四肢紧张度降低，角膜反射迟钝，皮肤痛觉消失，可进行试验。

3）犬的乙醚麻醉：首先将犬用绳子绑定，根据犬的大小选择适合的麻醉口罩，将纱布/ 棉花放到口罩内，加入乙醚。

一人固定犬的前后肢，另一人用膝盖顶住犬的胸颈处，一手捏住头颈（注意力量，防止窒息），将口罩套在犬嘴上。

开始乙醚用量可大一些，之后逐渐减少。

犬开始兴奋后出现挣扎、呼吸不规则现象，而后呼吸逐渐平稳，肌肉紧张度逐渐消失，角膜反射迟钝，对皮肤刺激无反应，此时可开始试验。

等呼吸恢复后在继续吸入。

SD大鼠麻醉

一、SD大鼠的麻醉1、SD大鼠腹腔麻醉把异氟烷和脂肪乳混合做成乳化异氟烷，腹腔注射，3分钟麻醉，30分钟清醒。

乳化异氟烷制备：用30%的脂肪乳为载体，在室温下（20℃）应用玻璃瓶法，配制成8%的乳化异氟烷。

即将1.2ml的液态异氟烷和21.3ml的30%脂肪乳加入至一个气密性良好的25～30ml玻璃容器内，在振荡器上以2000r/min的速度剧烈震荡30s，静置30s，然后再以2000r/min速度剧烈震荡50min，达到平衡后放置于4℃冰箱保存备用。

乳化异氟烷，大鼠腹腔注射的半数有效量（ED50）相当于液态异氟烷0.51～0.64ml/kg，半数致死量（LD50）相当于液态异氟烷1.10～1.46ml/kg，治疗指数（TI）为2.24。

致死量大鼠表现为呼吸抑制、心律失常，继而心跳停止。

病理解剖显示腹腔注射乳化异氟烷不会引起心、肺、肝、肠系膜的病理改变。

2、SD大鼠吸入麻醉可以作一个小金鱼缸（四方形）算出体积，钻个眼用橡皮塞塞住，老鼠装进去封住缸口，从橡皮塞插上注射器给液态吸入麻醉药（如1ml异氟烷可挥发成196ml的气体），算出需要的浓度就会算出需要的液态麻醉药量，一般一个MAC 就够了，老鼠的异氟烷MAC大约是2%。

3、SD大鼠经口气管插管腹腔麻醉，四肢仰面固定，上下切牙用丝线系住作牵引，操作者头戴额镜（五官科检查耳朵用的），对面放置好光源（一个射灯），牵出舌头和下切牙丝线一起由左手捏住，上切牙丝线由助手提着或用止血钳夹住用自己的前胸固定，拉动丝线使头部上提和口充分张开，右手持18G或16G套管针（戴芯但不超过管口），看到声门（鱼口状）既可插管。

二、异氟醚大鼠麻醉安全且具有麻醉科特色。

我们是用异氟醚（应该是国产的吧）麻醉的，用那种市面上常见的可以提的比较大的带盖塑料水杯自制一个封闭的小麻醉空间，水杯是那种直桶透明，盖子类似特百惠按盖，上有一个约2cm饮水孔的那种，用一个合适的注射器前端堵住饮水孔。

大鼠及小鼠麻醉剂量

1.3 mg/100 g BW
2.2 mg/100 g BW
2.0 mg/100 g BW
IM, SC
IP
IM
IM
IP
注射麻醉剂
Fentanyl & Droperidol
Ketamine
Pentobarbital
0.2-0.4 ml/kg (10% solution)
4.4 mg/100 g BW
4-16 mg/100 g BW
2.5 mg/100 g BW
5.0 mg/100 g BW
2.5-5.0 mg/100 g BW
IM
IP
IV
IV
IP
IV
IP
IV
混合注射麻醉剂
Ketamine & Xylazine
Fentanyl& Droperidol & Diazepam
Ketamine & Acepromazine
8.7 & 1.3 mg/100 g BW
0.5 mg/100 g BW
2.0 mg/100 g BW
IM
IP
IM
注射麻醉剂
Ketamine
Pentobarbital
Thiopental
Thiamylal
2.2-4.4 mg/100 g BW
10 mg/100 g BW
2.5 mg/100 g BW
1.5 mg/100 g BW
6.0 mg/100 g BW
Inactin
Acepromazine & Pentobarbital
8.7 & 1.3 mg/100 g BW
2-4 & 0.075 mg/100 g BW

大鼠的麻醉

大鼠的麻醉点击次数：3690 发表于：2008-06-25 22:38转载请注明来自丁香园来源：<a href=''>丁香园</a>一、SD大鼠的麻醉1、SD大鼠腹腔麻醉把异氟烷和脂肪乳混合做成乳化异氟烷，腹腔注射，3分钟麻醉，30分钟清醒。

乳化异氟烷制备：用30%的脂肪乳为载体，在室温下（20℃）应用玻璃瓶法，配制成8%的乳化异氟烷。

即将1.2ml的液态异氟烷和21.3ml的30%脂肪乳加入至一个气密性良好的25～30ml玻璃容器内，在振荡器上以2000r/min的速度剧烈震荡30s，静置30s，然后再以2000r/min速度剧烈震荡50min，达到平衡后放置于4℃冰箱保存备用。

乳化异氟烷，大鼠腹腔注射的半数有效量（ED50）相当于液态异氟烷0.51～0.64ml/ kg，半数致死量（LD50）相当于液态异氟烷1.10～1.46ml/kg，治疗指数（TI）为2.24。

致死量大鼠表现为呼吸抑制、心律失常，继而心跳停止。

病理解剖显示腹腔注射乳化异氟烷不会引起心、肺、肝、肠系膜的病理改变。

2、SD大鼠吸入麻醉可以作一个小金鱼缸（四方形）算出体积，钻个眼用橡皮塞塞住，老鼠装进去封住缸口，从橡皮塞插上注射器给液态吸入麻醉药（如1ml异氟烷可挥发成196ml的气体），算出需要的浓度就会算出需要的液态麻醉药量，一般一个MAC就够了，老鼠的异氟烷MA C大约是2%。

3、SD大鼠经口气管插管腹腔麻醉，四肢仰面固定，上下切牙用丝线系住作牵引，操作者头戴额镜（五官科检查耳朵用的），对面放置好光源（一个射灯），牵出舌头和下切牙丝线一起由左手捏住，上切牙丝线由助手提着或用止血钳夹住用自己的前胸固定，拉动丝线使头部上提和口充分张开，右手持18G或16G套管针（戴芯但不超过管口），看到声门（鱼口状）既可插管。

二、异氟醚大鼠麻醉安全且具有麻醉科特色。

我们是用异氟醚（应该是国产的吧）麻醉的，用那种市面上常见的可以提的比较大的带盖塑料水杯自制一个封闭的小麻醉空间，水杯是那种直桶透明，盖子类似特百惠按盖，上有一个约2cm饮水孔的那种，用一个合适的注射器前端堵住饮水孔。

大鼠结状神经节分离方法

大鼠结状神经节分离方法
大鼠结状神经节分离方法是一种常用的实验技术，用于研究神经系统的功能和疾病模型。

以下是大鼠结状神经节分离方法的详细步骤：
1. 动物准备：选择健康的成年大鼠作为实验对象。

提前让大鼠适应实验环境并进行禁食，一般需要禁食12至16小时。

2. 麻醉：使用合适的麻醉剂将大鼠完全麻醉。

常用的麻醉剂包括七氟醚、异氟醚等。

确保麻醉程度和麻醉时间符合实验需求和动物伦理要求。

3. 骨架暴露：在麻醉下，利用手术工具小心地刮去头顶的皮肤，暴露出颅骨。

4. 穿孔：使用手术钻等工具，通过颅骨穿孔制造一个直径约为2毫米的孔洞，以将其作为进入大脑的通道。

5. 分离神经节：通过切割脑组织、移除脑膜等步骤，小心地将结状神经节从大鼠大脑中分离出来。

要确保在过程中保持结状神经节的完整性。

6. 监测与记录：在分离结状神经节后，可以使用电生理学记录仪等设备监测神经节的活动。

同时，根据实验需求，可以进行其他相关操作或采集样本。

请注意，大鼠结状神经节分离方法需要借助于准确的解剖手法和实验工具。

在进行此类操作时，务必遵循实验室操作规范和动物实验伦理要求，确保动物的福利和实验结果的可靠性。

大鼠的麻醉

大鼠的麻醉一、SD大鼠的麻醉1、SD大鼠腹腔麻醉把异氟烷和脂肪乳混合做成乳化异氟烷，腹腔注射，3分钟麻醉，30分钟清醒。

乳化异氟烷制备：用30%的脂肪乳为载体，在室温下（20℃）应用玻璃瓶法，配制成8%的乳化异氟烷。

即将1.2ml的液态异氟烷和21.3ml的30%脂肪乳加入至一个气密性良好的25～30ml玻璃容器内，在振荡器上以2000r/min的速度剧烈震荡30s，静置30s，然后再以2000r/min速度剧烈震荡50min，达到平衡后放置于4℃冰箱保存备用。

乳化异氟烷，大鼠腹腔注射的半数有效量（ED50）相当于液态异氟烷0.51～0.64ml/kg，半数致死量（LD50）相当于液态异氟烷1.10～1.46ml/kg，治疗指数（TI）为2.24。

致死量大鼠表现为呼吸抑制、心律失常，继而心跳停止。

病理解剖显示腹腔注射乳化异氟烷不会引起心、肺、肝、肠系膜的病理改变。

2、SD大鼠吸入麻醉可以作一个小金鱼缸（四方形）算出体积，钻个眼用橡皮塞塞住，老鼠装进去封住缸口，从橡皮塞插上注射器给液态吸入麻醉药（如1ml异氟烷可挥发成196ml的气体），算出需要的浓度就会算出需要的液态麻醉药量，一般一个MAC就够了，老鼠的异氟烷MAC大约是2%。

3、SD大鼠经口气管插管腹腔麻醉，四肢仰面固定，上下切牙用丝线系住作牵引，操作者头戴额镜（五官科检查耳朵用的），对面放置好光源（一个射灯），牵出舌头和下切牙丝线一起由左手捏住，上切牙丝线由助手提着或用止血钳夹住用自己的前胸固定，拉动丝线使头部上提和口充分张开，右手持18G或16G套管针（戴芯但不超过管口），看到声门（鱼口状）既可插管。

二、异氟醚大鼠麻醉安全且具有麻醉科特色。

我们是用异氟醚（应该是国产的吧）麻醉的，用那种市面上常见的可以提的比较大的带盖塑料水杯自制一个封闭的小麻醉空间，水杯是那种直桶透明，盖子类似特百惠按盖，上有一个约2cm饮水孔的那种，用一个合适的注射器前端堵住饮水孔。

SD大鼠麻醉

一、SD大鼠的麻醉1、SD大鼠腹腔麻醉把异氟烷和脂肪乳混合做成乳化异氟烷，腹腔注射，3分钟麻醉，30分钟清醒。

乳化异氟烷制备：用30%的脂肪乳为载体，在室温下（20℃）应用玻璃瓶法，配制成8%的乳化异氟烷。

即将1.2ml的液态异氟烷和21.3ml的30%脂肪乳加入至一个气密性良好的25～30ml玻璃容器内，在振荡器上以2000r/min的速度剧烈震荡30s，静置30s，然后再以2000r/min速度剧烈震荡50min，达到平衡后放置于4℃冰箱保存备用。

乳化异氟烷，大鼠腹腔注射的半数有效量（ED50）相当于液态异氟烷0.51～0.64ml/kg，半数致死量（LD50）相当于液态异氟烷1.10～1.46ml/kg，治疗指数（TI）为2.24。

致死量大鼠表现为呼吸抑制、心律失常，继而心跳停止。

病理解剖显示腹腔注射乳化异氟烷不会引起心、肺、肝、肠系膜的病理改变。

2、SD大鼠吸入麻醉可以作一个小金鱼缸（四方形）算出体积，钻个眼用橡皮塞塞住，老鼠装进去封住缸口，从橡皮塞插上注射器给液态吸入麻醉药（如1ml异氟烷可挥发成196ml的气体），算出需要的浓度就会算出需要的液态麻醉药量，一般一个MAC 就够了，老鼠的异氟烷MAC大约是2%。

3、SD大鼠经口气管插管腹腔麻醉，四肢仰面固定，上下切牙用丝线系住作牵引，操作者头戴额镜（五官科检查耳朵用的），对面放置好光源（一个射灯），牵出舌头和下切牙丝线一起由左手捏住，上切牙丝线由助手提着或用止血钳夹住用自己的前胸固定，拉动丝线使头部上提和口充分张开，右手持18G或16G套管针（戴芯但不超过管口），看到声门（鱼口状）既可插管。

二、异氟醚大鼠麻醉安全且具有麻醉科特色。

我们是用异氟醚（应该是国产的吧）麻醉的，用那种市面上常见的可以提的比较大的带盖塑料水杯自制一个封闭的小麻醉空间，水杯是那种直桶透明，盖子类似特百惠按盖，上有一个约2cm饮水孔的那种，用一个合适的注射器前端堵住饮水孔。

大鼠麻醉

10%水合氯醛溶液经预试确定麻醉剂量为4. 5 ml/kg;按文献(刘忠和等,2006)戊巴比妥钠配制为1%溶液,麻醉剂量为6ml/kg。麻醉方法均为腹腔注射。
②将大鼠固定，腹腔注射。
③计时观察与判断大鼠的麻醉程度及苏醒时间。水合氯醛麻醉起效时间 3.3±1.9 分钟，麻醉维持时间为 85.3±25.3 分钟，麻醉死亡率为 10.0 %，总死亡率为15.0％。
特点：作用不够稳定，而且常需加佐剂麻醉效果才能理想。因而，多数实验室不选用这类麻醉剂进行麻醉。
乙醚
(1)药理学作用：乙醚在简便装置中也容易挥发。乙醚的使用是比较安全的，因为它很少因为过量而致动物死亡。
(2)不良反应：动物诱导时不舒服，而且乙醚对粘膜的刺激可导致咳嗽、大量的支气管和唾液腺分泌物，偶尔还会导致喉痉挛。乙醚还能在动物的麻醉苏醒期后诱发既有的慢性呼吸系统疾病急性发作，特别是兔和啮齿类动物。乙醚是可燃的，和空气或氧气构成爆炸性混合物。
肌肉或皮下注射，剂量1～1.5g/kg，宜用于鼠类。作用温和持久，有效麻醉时间可长达6～10小时，对于深度外科麻醉，呼吸及循环均无明显抑制。但此药本身有致癌作用，不能用作与肿瘤有关的实验。工作人员亦应小心，禁止长期接触。使用此药的动物，用后即作为有害废弃物，严格按照规定深埋或作其他无害处理。
2．局部麻醉
浸润麻醉。根据手术，按皮下、筋膜、肌肉、腹膜、骨膜等顺序逐步深入注射到术野周围。
3. 麻醉的基本原则
• 注意不同个体的耐受性 • 及时判断麻醉的深浅 • 静脉麻醉坚持先快后慢原则 • 补充麻醉
(三) 麻醉前准备：
• 禁食8～12h，防止呕吐，可饮水。 • 犬、猪、猴等大动物可在麻醉前给予一些药物以减