植物中可溶性糖含量的测定
(完整word版)植物可溶性糖含量的测定方法
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植物可溶性糖含量的测定可溶性糖包括葡萄糖、果糖、蔗糖,是植物品质的重要构成性状之一,尤其是以果实为目的产品的果树作物,可溶性糖与酸的含量及其配比是影响果实风味品质的重要因素。
对于鲜食品种,一般来讲,高糖中酸,风味浓,品质优;低糖中酸,风味淡,品质差。
科标检测拥有国际先进的检测仪器和雄厚的技术力量,可以依据多种检测标准,提供检测服务并出具资质检测报告。
一、试材及用具1.试材新鲜或冷冻的植物材料2.仪器及试剂高速组织捣碎机、电热恒温水浴锅、1000W调温电炉以及200mL、250mL容量瓶、250mL锥形瓶及50mL碱式滴定管等玻璃仪器;试剂主要包括费林试剂及亚甲基蓝溶液等。
二、原理本实验的主要原理:在加热条件下,用还原糖溶液滴定一定量的费林试剂时,将费林试剂中的二价铜还原为一价铜,以亚甲基蓝为指示剂,稍过量的还原糖立即使蓝色的氧化型亚甲基蓝还原为无色的还原型亚甲基蓝。
通过实验,学习并掌握用费林试剂滴定法测定可溶性糖的原理和方法。
三、方法步骤(一)试剂配制1.费林试剂甲:称取硫酸铜(CuSO4 •5H2 O,分析纯)34.6g溶于水中,稀释至500mL,过滤,贮于棕色瓶内。
2.费林试剂乙:称取氢氧化钠50g和酒石酸钾钠(KNaC4 O6 H4 •4H2 O,分析纯)138g溶于水中,稀释至500mL,用石棉垫漏斗抽滤。
3.转化糖标准溶液:称取9.5g蔗糖(分析纯)用水溶解后转入1000mL容量瓶中,加入6mol/L HCl(分析纯)10mL,加水至100mL。
在20~25℃下放置三天或在25℃保温24h,然后用水定容(此为酸化的1%转化糖液,可保存3~4个月)。
测定时,取1%转化糖液25.00mL放入250mL容量瓶中,加入甲基红指示剂一滴,用1mol/L NaOH溶液中和后用水定容,即为1mg/mL转化糖标准溶液。
4.亚甲基蓝溶液:称取0.5g亚甲基蓝(分析纯)溶于10mL水中。
5.乙酸锌溶液:称取21.9g乙酸锌[Zn(OAC)2 •2H2 O,分析纯]溶于水中,加冰乙酸3mL稀释至100mL。
植物生理学实验:实验四 植物可溶性糖含量的测定(蒽酮比色法)
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出,自然冷却至室温,在630nm波长下比色。以标准蔗
糖含量作横坐标,以吸光值作纵坐标作标准曲线。
实验步骤
2. 植物样品中可溶性糖的提取(其他组做,数据共享) 将植物叶片剪碎混匀,准确称取0.3g3份,加入研钵中,
再加入2-3mL水和少量石英砂,研磨后转入试管中,用 水再洗涤2次,均转入试管中。将试管置于沸水浴中提取 30min,提取液过滤至25mL容量瓶,反复冲洗试管及 残渣,定容至刻度。 3. 显色测定(同上): 吸取0.5mL提取液于试管中,加水1.5mL,蒽酮乙酸乙酯 试剂0.5mL和5mL浓硫酸,混匀,沸水浴中准确保温 1min取出,自然冷却至室温,在630nm波长下比色。
注意一切与浓硫酸操作有关的安全 !!!不要吝啬用水和卫生纸!! !
作业
得出实验结果后,根据标准曲线算出的含糖量 ,写于实验报告上。(之前问题)
管号
0
1糖标准液(mL) 0 0.2 0.4 0.6 0.8 1.0
水(mL)
2 1.8 1.6 1.4 1.2 1.0
蔗糖含量(μg)
0 20 40 60 80 100
(2)在每支试管中立即加入蒽酮乙酸乙酯试剂0.5mL和
5mL浓硫酸,用玻棒混匀,沸水浴中准确保温1min取
。
实验目的;实验材料、仪器设备与试剂
目的:掌握蒽酮法测定可溶性糖含量的原理和方法。 仪器 分光光度计、水浴锅; 天平、试管架、容量瓶、试管、滤纸、漏斗。 试剂 100mg/L葡萄糖标准液;浓硫酸;蒽酮乙酸乙酯试剂 材料:白兰叶片
实验步骤
1. 葡萄糖标准曲线的制作(1组同学做,数据共享)
(1)取6支试管,按下表数据配制一系列不同浓度的葡萄 糖溶液:
实验结果计算与分析
植物体内可溶性糖含量的测定
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植物体内可溶性糖含量的测定(蒽酮法)2010-04-04 22:43:32 来源:易生物实验浏览次数:221 网友评论0 条糖类物质是构成植物体的重要组成成分之一,也是新陈代谢的主要原料和贮存物质。
不同载培条件,不同成熟度都可以影响水果、蔬菜中糖类的含量。
因此对水果、蔬菜中可溶性糖的测定,可以了解和鉴定水果、蔬菜品质的高低。
关键词:可溶性测定含量植物可溶性糖含量测定蒽酮法solublesugar新陈代谢一、目的:糖类物质是构成植物体的重要组成成分之一,也是新陈代谢的主要原料和贮存物质。
不同载培条件,不同成熟度都可以影响水果、蔬菜中糖类的含量。
因此对水果、蔬菜中可溶性糖的测定,可以了解和鉴定水果、蔬菜品质的高低。
二、原理糖类遇浓硫酸脱水生成糖醛或其衍生物,反应如下:糠醛或羟甲基糠醛进一步与蒽酮试剂缩合产生蓝绿色物质,其在可见光区620nm波长处有最大吸收,且其光吸收值在一定范围内与糖的含量成正比关系。
此法可用于单糖、寡糖和多糖的含量测定,并具有灵敏度高,简便快捷,适用于微量样品的测定等优点。
三、实验材料、仪器及试剂1.材料:白菜叶、柑桔2.仪器:分光光度计恒温水箱20ml具塞刻度试管(3支)漏斗100ml容量瓶刻度试管试管架剪刀研钵3.试剂:(1)200μg/ml标准葡萄糖:AR级葡萄糖100mg,蒸馏水溶解,定容至500ml。
(2)蒽酮试剂:1g蒽酮,用乙酸乙酯溶解,定容至50ml,棕色瓶避光处贮藏;(3)浓硫酸四、实验方法1.葡萄糖标准曲线的制作取6支20ml具寒试管,编号,按下表数据配制一系列不同浓度的标准葡萄糖溶液。
在每管中均加入0.5ml蒽酮试剂,再缓慢地加入5ml浓H2SO4,摇匀后,打开试管塞,置沸水浴中煮沸10分钟,取出冷却至室温,在620nm波长下比色,测各管溶液的光密度值(OD),以标准葡萄糖含量为横坐标,光密度值为纵坐标,作出标准曲线。
2.样品中可溶性糖的提取称取1克白菜叶,剪碎,置于研钵中,加入少量蒸馏水,研磨成匀浆,然后转入20ml刻度试管中,用10ml蒸馏水分次洗涤研钵,洗液一并转入刻度试管中。
植物体内可溶性糖和可溶性蛋白含量测定
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植物体内可溶性糖和可溶性蛋白含量的测定摘要:目的通过标准曲线的绘制,测定白菜、芹菜、菠菜中可溶性蛋白和可溶性糖的含量,了解可溶性糖和可溶性蛋白的测定方式。
方式别离用蒽酮法和考马斯亮蓝染色法来测定植物体内可溶性糖和可溶性蛋白的含量。
结论关键词:白菜;芹菜;菠菜;可溶性蛋白含量;可溶性糖含量;蒽酮法;考马斯亮蓝染色法1 引言植物体内的可溶性糖和可溶性蛋白含量是重要的生理生化指标。
在作物的碳素营养中,作为营养物质主若是指可溶性糖和淀粉。
它们在营养中的作用要紧有:合成纤维素组成细胞壁;转化并组成其他有机物如核苷酸、核酸等;分解产物是其他许多有机物合成的原料,如糖在呼吸进程中形成的有机酸,可作为NH 3 的受体而转化为氨基酸;糖类作为呼吸基质,为作物的各类合成进程和各类生命活动提供了所需的能量。
由于碳水化合物具有这些重要的作用,因此是营养中最大体的物质,也是需要量最多的一类。
可溶性蛋白是植物体内氮素存在的要紧形式,其含量的多少与植物的代谢和衰老有紧密的关系,同时它与植物体维持渗透压抗脱水也有专门大关系。
白菜是叶用蔬菜,味道鲜美可口,营养丰硕,素有“菜中之王”的美称,为广大群众所喜爱。
芹菜属植物,富含蛋白质、碳水化合物、胡萝卜素、B族维生素、钙、磷、铁、钠等,同时,具有有平肝清热,祛风利湿,清肠利便、润肺止咳、降低血压、健脑镇定的功效。
菠菜一年生草本植物,菠菜含有丰硕的维他命A、维他命C及矿物质,它对各类贫血症和糖尿病、肺结核、高血压、风火赤眼等诸多疾病可起辅助医治作用。
2 材料与方式植物体内可溶性糖含量的测定材料新鲜的白菜、芹菜、菠菜叶片(剪碎后各取—)试剂葡萄糖标准溶液(200ug/ml)、蒽酮试剂仪器设备。
植物组织中可溶性糖含量测定
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实验报告课程:植物生理学实验题目:植物组织中可溶性糖含量的测定一.【实验原理】植物的代谢活动随着植物的发育过程而不断发生着变化,碳水化合物的代谢也不例外,其含量也随之发生变化,在种子萌发过程中,在光合作用受到影响时和受到外界环境的胁迫等情况下植物可溶性糖含量都会发生变化。
了解植物可溶性糖含量的变化,在生理上与实践上都有重要意义。
蒽酮比色法是常用的测定可溶性五碳糖和六碳糖的方法,糖在硫酸的作用下脱水生成糠醛,糠醛再与蒽酮作用形成一种绿色的络合物,在一定的浓度范围内颜色的深浅与糖含量成正比,可以用比色法测定。
该法简便,但没有专一性,绝大部分的碳水化合物都能与蒽酮反应产生颜色。
二.【实验步骤】1、标准曲线的绘制2、可溶性糖的提取3、提取液的显色及比色三.【实验结果】实验中测得的数据如下所示:若以1号管调零,处理后数据如下:作出标准曲线如下:将y=0.261,0.269,0.247分别代入上述函数公式,得到:x=45.000,46.379,42.586;即三样品溶液中糖浓度分别为:45.000μg/mL,46.379μg/mL,42.586μg/mL。
样品中可溶性糖含量(m g·g-1)= A × c/(W × 103)式中,A——植物样品稀释后的体积(mL);C——提取液的含糖量(μg/mL);W——植物组织鲜重(g)。
四.【讨论】1、误差分析实验中的误差来源主要有:(1)植物材料称取的误差;(2)植物样品在转移过程中的损失;(3)最后过滤得到的提取液中尚有未除尽的醋酸铅;(4)移液管未润洗等等。
2、注意事项(1)样品提取液的显色应与标准曲线的绘制同步;(2)比色时以蒸馏水调零;(3)醋酸铅一定要除尽;(4)在样品转移过程中,尽量减少材料的损失;(5)进行第二次过滤时要更换滤纸,并将漏斗洗净。
3、植物组织中糖的测定方法还有很多种,举例说明它们的原理和优缺点。
(1)苯酚-硫酸法原理:糖在浓硫酸作用下,脱水生成的糠醛或羟甲基糠醛能与苯酚缩合成一种橙红色化合物,在10~100mg范围内其颜色深浅与糖的含量成正比,且在485nm 波长下有最大吸收峰,故可用比色法在此波长下测定。
植物可溶性糖含量的测定
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植物可溶性糖含量的测定可溶性糖包括葡萄糖、果糖、蔗糖,是植物品质的重要构成性状之一,尤其是以果实为目的产品的果树作物,可溶性糖与酸的含量及其配比是影响果实风味品质的重要因素。
对于鲜食品种,一般来讲,高糖中酸,风味浓,品质优;低糖中酸,风味淡,品质差。
因此,可溶性糖的定量讨论对果树的品质育种具有重要意义。
一、试材及用具1.试材新奇或冷冻的植物材料2.仪器及试剂高速组织捣碎机、电热恒温水浴锅、1000W调温电炉以及200mL、250mL容量瓶、250mL锥形瓶及50mL碱式滴定管等玻璃仪器;试剂主要包括费林试剂及亚甲基蓝溶液等。
二、原理本试验的主要原理:在加热条件下,用还原糖溶液滴定肯定量的费林试剂时,将费林试剂中的二价铜还原为一价铜,以亚甲基蓝为指示剂,稍过量的还原糖马上使蓝色的氧化型亚甲基蓝还原为无色的还原型亚甲基蓝。
通过试验,学习并把握用费林试剂滴定法测定可溶性糖的原理和方法。
三、方法步骤(一)试剂配制1.费林试剂甲:称取硫酸铜(CuSO45H2O,分析纯)34.6g溶于水中,稀释至500mL,过滤,贮于棕色瓶内。
2.费林试剂乙:称取氢氧化钠50g和酒石酸钾钠(KNaC4O6H44H2O,分析纯)138g溶于水中,稀释至500mL,用石棉垫漏斗抽滤。
3.转化糖标准溶液:称取9.5g蔗糖(分析纯)用水溶解后转入1000mL容量瓶中,加入6mol/L HCl(分析纯)10mL,加水至100mL。
在20~25℃下放置三天或在25℃保温24h,然后用水定容(此为酸化的1%转化糖液,可保存3~4个月)。
测定时,取1%转化糖液25.00mL放入250mL容量瓶中,加入甲基红指示剂一滴,用1mol/L NaOH溶液中和后用水定容,即为1mg/mL转化糖标准溶液。
4.亚甲基蓝溶液:称取0.5g亚甲基蓝(分析纯)溶于10mL水中。
5.乙酸锌溶液:称取21.9g乙酸锌[Zn(OAC)22H2O,分析纯]溶于水中,加冰乙酸3mL稀释至100mL。
植物可溶性糖的测定
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植物组织可溶性总糖的测定2015-8-16一、目的:测定植物组织中总糖(可溶性碳水化合物),用以研究体内能量储藏和渗透物质积累情况,检测范围为10-100ug/ml。
因淀粉在超过45度可能糊化水解,如果已知样品含淀粉较多,应考虑70%乙醇提取或冷水提取(不包括淀粉)或1:4盐酸水解(包括淀粉)。
二、样品前处理:鲜样要称重后105度烘干,称干重,计算含水量,粉碎。
三、可溶性总糖的提取:干样测定完含水量后,称取样品0.25g,或鲜样2.50g,放入250ml 消煮管中,加水100ml,调整消煮炉温度约150-160度,煮沸30分钟,冷却,加水定容,取上清液过滤,滤液或离心上清液以水稀释适当倍数(5-10倍左右)待测。
注:西红柿总糖:取1ml匀浆,用水稀释1000倍,取2ml测定。
四、测定4.5.1试剂配制:4.5.1.1 80%硫酸:200ml水加入到1000ml烧杯中,在搅拌和水冷条件下,缓慢加入800ml浓硫酸,冷却备用。
4.5.1.2 蒽酮试剂:取2g蒽酮溶解到1000ml 80%(V/V)硫酸中,搅拌均匀,冷却后备用。
蒽酮试剂当日配制使用。
4.5.1.3 100μg/ml 葡萄糖标准液制作:称取0.0100g无水葡萄糖(分子量180.16)或者1水葡萄糖(分子量198.18)0.0110g溶于水中,加0.5ml浓硫酸,定容100ml。
4.5.2标准曲线浓度μg/ml(ppm) 0 20 40 60 80 100 样品ml葡萄糖标准液(ml) 0 0.4 0.8 1.2 1.6 22 水 2 1.6 1.2 0.8 0.4 0蒽酮试剂ml 84.5.3 总糖测定:取2ml提取液于试管中,在冷水浴中加8ml蒽酮试剂,沸水浴5分钟,取出迅速冷却,于625nm测定含糖量。
同时取上表标准液2ml加8ml蒽酮同样测定。
如果含糖量太低,可适当减低稀释倍数,如果糖含量太,可适当增加稀释倍数。
此方法适于含糖量1-10%样品的测定,如果超过此含量,需稀释后测定,低于此含量,需增加称量样品。
实验植物组织中可溶性糖含量的测定
![实验植物组织中可溶性糖含量的测定](https://img.taocdn.com/s3/m/bab450531eb91a37f0115c30.png)
实验方案一、实验目的通过实验,掌握测定萝卜品质的方法(一)萝卜外部形态的测定1、实验材料取鲜样3个∕小区直尺、蒸馏水、笔、记录本、吸水纸2、实验方法.用自来水将各组萝卜洗净后,再用蒸馏水洗涤,擦干表面水分.每个小区取3个重复,用电子天平称量每株的鲜重,用直尺测量植株的茎长、茎粗、叶长,取平均值作为指标值实验(二) 植物体内可溶性糖含量的测定(蒽酮法)一、实验目的了解蒽酮法测定可溶性糖含量的原理;掌握分光光度计的使用二、实验原理糖类物质是构成植物体的重要组成成分之一,也是新陈代谢的主要原料和贮存物质。
不同载培条件,不同成熟度都可以影响水果、蔬菜中糖类的含量。
因此对水果、蔬菜中可溶性糖的测定,可以了解和鉴定水果、蔬菜品质的高低。
蒽酮比色定糖法是一个快速而方便的定糖方法,在强酸性条件下,蒽酮可以与游离的或多糖中存在的己糖、戊糖及己糖醛酸(还原性和非还原性)作用生成蓝绿色的糖醛衍生物,其颜色的深浅与糖的含量在一定范围内成正比。
蒽酮也可以和其他一些糖类发生反应,但显现的颜色不同。
当存在含有较多色氨酸的蛋白质时,反应不稳定,呈现红色。
上述特定的糖类物质,反应较稳定。
该法特点:灵敏度高,测定量少,快速方便。
三、材料、仪器及试剂1.材料:植物种子、白菜叶、柑桔2.仪器:分光光度计;恒温水箱; 20ml具塞刻度试管(3支)漏斗;100ml容量瓶;刻度试管;试管架;剪刀;研钵3.试剂(1)200μg/ml标准葡萄糖:AR级葡萄糖100mg,蒸馏水溶解,定容至500ml。
(2)蒽酮试剂:1g蒽酮,用乙酸乙酯溶解,定容至50ml,棕色瓶避光处贮藏;(3)浓硫酸四、实验方法1.葡萄糖标准曲线的制作取6支20ml具寒试管,编号,按下表数据配制一系列不同浓度的标准葡萄糖溶液。
在每管中均加入0.5ml蒽酮试剂,再缓慢地加入5ml浓H2SO4,摇匀后,打开试管塞,置沸水浴中煮沸10分钟,取出冷却至室温,在620nm波长下比色,测各管溶液的光密度值(OD),以标准葡2.称取1克白菜叶,剪碎,置于研钵中,加入少量蒸馏水,研磨成匀浆,然后转入20ml刻度试管中,用10ml蒸馏水分次洗涤研钵,洗液一并转入刻度试管中。
实验8 植物组织中可溶性糖含量的测定(蒽酮比色法)
![实验8 植物组织中可溶性糖含量的测定(蒽酮比色法)](https://img.taocdn.com/s3/m/433958040066f5335b812109.png)
实验七植物体内可溶性糖含量的测定(蒽酮法)一、实验目的了解蒽酮法测定可溶性糖含量的原理;掌握分光光度计的使用二、实验原理糖类物质是构成植物体的重要组成成分之一,也是新陈代谢的主要原料和贮存物质。
不同载培条件,不同成熟度都可以影响水果、蔬菜中糖类的含量。
因此对水果、蔬菜中可溶性糖的测定,可以了解和鉴定水果、蔬菜品质的高低。
蒽酮比色定糖法是一个快速而方便的定糖方法,在强酸性条件下,蒽酮可以与游离的或多糖中存在的己糖、戊糖及己糖醛酸(还原性和非还原性)作用生成蓝绿色的糖醛衍生物,其颜色的深浅与糖的含量在一定范围内成正比。
蒽酮也可以和其他一些糖类发生反应,但显现的颜色不同。
当存在含有较多色氨酸的蛋白质时,反应不稳定,呈现红色。
上述特定的糖类物质,反应较稳定。
该法特点:灵敏度高,测定量少,快速方便。
三、材料、仪器及试剂1.材料:植物种子、白菜叶、柑桔2.仪器:分光光度计;恒温水箱; 20ml具塞刻度试管(3支)漏斗;100ml容量瓶;刻度试管;试管架;剪刀;研钵3.试剂(1)200μg/ml标准葡萄糖:AR级葡萄糖100mg,蒸馏水溶解,定容至500ml。
(2)蒽酮试剂:1g蒽酮,用乙酸乙酯溶解,定容至50ml,棕色瓶避光处贮藏;(3)浓硫酸四、实验方法1.葡萄糖标准曲线的制作取6支20ml具寒试管,编号,按下表数据配制一系列不同浓度的标准葡萄糖溶液。
在每管中均加入0.5ml蒽酮试剂,再缓慢地加入5ml浓H2SO4,摇匀后,打开试管塞,置沸水浴中煮沸10分钟,取出冷却至室温,在620nm波长下比色,测各管溶液的光密度值(OD),以标准葡称取1克白菜叶,剪碎,置于研钵中,加入少量蒸馏水,研磨成匀浆,然后转入20ml刻度试管中,用10ml蒸馏水分次洗涤研钵,洗液一并转入刻度试管中。
置沸水浴中加盖煮沸10分钟,冷却后过滤,滤液收集于100ml容量瓶中,用蒸馏水定容至刻度,摇匀备用。
3.糖含量测定用移液管吸收1ml提取液于20ml具塞刻度试管中,加1ml水和0.5ml 蒽酮试剂。
植物体内可溶性糖含量的测定
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植物体内可溶性糖含量的测定——蒽酮法一、实验目的1.了解蒽酮法测定可溶性糖含量的原理2.掌握分光光度计的使用二、实验背景糖类物质是构成植物体的重要组成成分之一也是新陈代谢的主要原料和贮存物质。
不同载培条件不同成熟度都可以影响水果、蔬菜中糖类的含量。
因此对水果、蔬菜中可溶性糖的测定可以了解和鉴定水果、蔬菜品质的高低。
三、实验原理总糖是指样品中的还原单糖及在本法测定条件下能水解成还原单糖的蔗糖、麦芽糖和可部分水解为葡萄糖的淀粉。
蒽酮比色法是测定样品中总糖量的一个灵敏、快速、简便的方法。
其原理是糖类在较高温度下被硫酸作用脱水生成糠醛或糖醛衍生物后与蒽酮(C14HoO)缩合成蓝色化合物。
溶液含博量在每mL 150 pg以内,与蔥酮反应生成的颜色深浅与糖量成正比。
蒽酮不仅能与单糖也能与双糖、糊精、淀粉等直接起作用,样品不必经过水解。
四、材料、仪器及试剂1.材料:苹果2.仪器:分光光度计恒温水箱试管漏斗容量瓶试管架研钵刀片3.试剂:蒽酮试剂(称取100 mg蒽酮溶于100 mL 98%硫酸溶液(A.R)中)葡萄糖标准溶液(100 μg)/mL(精确称取100 mg干燥葡萄糖,用蒸馏水定容至1000 mL)。
样品溶液(可自选待测物制成样品溶液。
eg:称取0.1g苹果剪碎置于研钵中加入少量蒸馏水研磨成匀浆然后转入20ml刻度试管中用10ml蒸馏水分次洗涤研钵洗液一并转入刻度试管中。
置沸水浴中加盖煮沸10分钟冷却后过滤滤液收集于100ml容量瓶中用蒸馏水定容至刻度摇匀备用。
)四、实验方法1.葡萄糖标准曲线的制作:取七支干燥洁净的试管编号后,按下表操作。
编号123456700.100.200.300.400.600.80葡萄糖标准液(100ug/ml)H2O 1.00.900.800.700.600.400.20蒽酮试剂10101010101010每管加人葡萄糖标准液和水后立即混匀,迅速置于冰浴中,传各管都加人蒽酮试剂后,同时置于沸水浴中,准确加热7分钟,立即取出置冰浴中迅速冷却。
植物体内可溶性糖和可溶性蛋白含量的测定
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2.2 植物体内可溶性蛋白含量的测定2.2.1材料新鲜的白菜、芹菜、菠菜叶片(剪碎后各取0.5—1.0g)2.2.2试剂标准蛋白质溶液:用牛血清白蛋白配成含蛋白质100μg/的标准蛋白溶液;90%乙醇;85%磷酸(W/V);考马斯亮蓝G-250溶液2.2.3仪器设备分光光度计;量筒;研钵;烧杯;量瓶;移液管;具塞刻度试管;分析天平;恒温水浴;2.2.4测定方法0~100μg/ml标准曲线的制作:取六支试管,分别按下表数据配制0~100μg/ml血清白蛋白液1ml。
准确吸取所配各管溶液0.1ml,分别放入10ml具塞试管中,加入5ml考马斯亮蓝G—250试剂,盖塞,反转混合数次,放置2min后,在595nm下比色,绘制标准曲线。
设置两个重复),加入5Ml考马斯亮蓝G-250溶液,充分混合,放置2min后在595nm下比色,记录吸光值,并通过标准曲线查得蛋白质含量。
结果计算:样品蛋白质含量(mg/g鲜重)=(C*V/a)/W式中C-查标准曲线所得每管蛋白质含量(mg);V-提取液总体积(ml);a-测定所取提取液体积(ml);W-取样量(g)。
3 结果分析3.1 植物体内可溶性糖含量的测定3.1.1可溶性糖标准曲线3.1.2芹菜、白菜、菠菜中可溶性糖的吸光值吸光值样品名称芹菜白菜菠菜A1 0.358 0.347 0.333A2 0.361 0.352 0.327A3 0.367 0.351 0.327平均值0.362 0.350 0.329对照标准曲线,可以得出:在1g蔬菜样品中移取的1ml样品溶液中,芹菜样品溶液含糖量为80.930μg;白菜样品溶液的含糖量为78.139μg;菠菜样品溶液的含糖量为73.256μg。
3.1.3可溶性糖含量计算样品含糖量=样品含量(ug)*稀释倍数*100/{样品重(g)*106}g/100g鲜重样品质量/g 吸光值查表所得含糖量/μg 稀释倍数可溶性糖含量/μg芹菜 1.00 0.362 80.830 100 0.8083 白菜 1.00 0.350 78.139 100 0.7813 菠菜 1.00 0.329 73.256 100 0.7325 由表可知:芹菜中可溶性糖含量最高,白菜中含量居中,菠菜中可溶性糖含量最低。
实验8 植物可溶性糖的测定
![实验8 植物可溶性糖的测定](https://img.taocdn.com/s3/m/c21d6b78a417866fb84a8e38.png)
2、用此法测定时,什么样的材料需要用活性碳脱色?
3、请设计一实验,用本实验获得的同一份提取液在测 定可溶性糖含量的同时,一并测定蔗糖、葡萄糖和果 糖?这种测定方法比分别测定有什么优点?
蒽酮比色法
测定可溶性总糖
同 一 份 乙 醇 抽 提 液
预处理
间苯二酚比色法
3 绘制标准曲线:取标准葡萄糖溶液将其 稀释0、20、40、60、80μg/mL系列浓度, 按上述方法分别测其OD值,绘制标准曲线。
计பைடு நூலகம்:
V 为植物样品提取液的体积 C 为提取液糖的浓度 W 为植物样重或为颗粒数 可溶性糖 % = CV/W 同一种子类型之间按每粒种子 计算
实验结果:
表1 不同种子和同一种子萌发前后可溶性糖含量变化
小麦种子 干种子 可溶性 糖含量 萌发种子 萝卜种子 干种子 萌发种 子
注意事项
1 定量实验,且涉及标准曲线绘 制,分光光度计的使用,因此溶 液配制、材料选取等方面必须精 确、仔细,减少误差。 2 实验组、对照组步骤应同步, 使结论准确。
问题:
实验步骤
1 可溶性糖的提取:
分别取2粒干种子和萌发种子于研 钵中,加80%乙醇少许,磨成匀浆,倒 入大试管中, 再用80%乙醇洗涤,水浴 80℃半小时,冷却后转移至10ml量筒, 并用80%乙醇定容至10ml。过滤,所得 的透明液体即为可溶性糖提取液。
2 显色及比色:吸取上述糖提取液1ml, 加入5ml蒽酮试剂,沸水浴10 min,冷却后 于625nm处测OD值,从标线取得提取液中 糖的浓度。
测定蔗糖
不预处理
实验8 植物组织中可溶性糖含量的测定(蒽酮比色法)
![实验8 植物组织中可溶性糖含量的测定(蒽酮比色法)](https://img.taocdn.com/s3/m/433958040066f5335b812109.png)
实验七植物体内可溶性糖含量的测定(蒽酮法)一、实验目的了解蒽酮法测定可溶性糖含量的原理;掌握分光光度计的使用二、实验原理糖类物质是构成植物体的重要组成成分之一,也是新陈代谢的主要原料和贮存物质。
不同载培条件,不同成熟度都可以影响水果、蔬菜中糖类的含量。
因此对水果、蔬菜中可溶性糖的测定,可以了解和鉴定水果、蔬菜品质的高低。
蒽酮比色定糖法是一个快速而方便的定糖方法,在强酸性条件下,蒽酮可以与游离的或多糖中存在的己糖、戊糖及己糖醛酸(还原性和非还原性)作用生成蓝绿色的糖醛衍生物,其颜色的深浅与糖的含量在一定范围内成正比。
蒽酮也可以和其他一些糖类发生反应,但显现的颜色不同。
当存在含有较多色氨酸的蛋白质时,反应不稳定,呈现红色。
上述特定的糖类物质,反应较稳定。
该法特点:灵敏度高,测定量少,快速方便。
三、材料、仪器及试剂1.材料:植物种子、白菜叶、柑桔2.仪器:分光光度计;恒温水箱; 20ml具塞刻度试管(3支)漏斗;100ml容量瓶;刻度试管;试管架;剪刀;研钵3.试剂(1)200μg/ml标准葡萄糖:AR级葡萄糖100mg,蒸馏水溶解,定容至500ml。
(2)蒽酮试剂:1g蒽酮,用乙酸乙酯溶解,定容至50ml,棕色瓶避光处贮藏;(3)浓硫酸四、实验方法1.葡萄糖标准曲线的制作取6支20ml具寒试管,编号,按下表数据配制一系列不同浓度的标准葡萄糖溶液。
在每管中均加入0.5ml蒽酮试剂,再缓慢地加入5ml浓H2SO4,摇匀后,打开试管塞,置沸水浴中煮沸10分钟,取出冷却至室温,在620nm波长下比色,测各管溶液的光密度值(OD),以标准葡称取1克白菜叶,剪碎,置于研钵中,加入少量蒸馏水,研磨成匀浆,然后转入20ml刻度试管中,用10ml蒸馏水分次洗涤研钵,洗液一并转入刻度试管中。
置沸水浴中加盖煮沸10分钟,冷却后过滤,滤液收集于100ml容量瓶中,用蒸馏水定容至刻度,摇匀备用。
3.糖含量测定用移液管吸收1ml提取液于20ml具塞刻度试管中,加1ml水和0.5ml 蒽酮试剂。
实验四___植物组织中可溶性糖含量的测定
![实验四___植物组织中可溶性糖含量的测定](https://img.taocdn.com/s3/m/e1014d56a26925c52cc5bfef.png)
一、实验目的:掌握蒽酮比色法测定可溶性糖含量的 提取和方法原理;掌握分光光度计中标准曲线制作的 使用程序。 二、实验原理:(P48) 三、实验材料:绿豆黄化苗四、实验步骤: 1.可溶性糖的提取:材料不需烘干(1 g鲜重)加入10 mL
纯水,80℃水浴30min,过滤后定容至50mL 。(不必脱色和离 心)
按“SET”进行设置,按“↓翻页”可在标样间切换,设置完毕后。 按“100T%”调零,出现:
请将参比杯拉入光路! ENT确认
参比测量后按“ENT”,出现:
请置入样品比色皿标号:
输入标号后,出现:
请将样品拉入光路! ENT确认
按“ENT”确认,拉动拉杆,进入下一比色皿的测量。测量结 束后,得到标准曲线,按“ESC”退回上一层界面。
按“1”进入样品“测量”功能。(此功能是对样品的测量,需 要有参比杯做对照。)按“ENT”,出现:
请将参比杯拉入光路! ENT确认
测量后,按“ENT”,出现:
请置入样品比色皿标号:
依次测量。 按“3”进入“置入曲线”,(此功能主要用于标准曲线做 完后无法及时做样品测量,故记下曲线公式,在进行测量 前直接输入曲线)页面如下: 置入曲线 当前曲线:C= A+ SET修改↓翻页
723G型分光光度计“标准曲线”建立方法
浓度测量 1 测量 2 AC建 曲线 3 置入 曲线 1-4选择 4 参数 PRN打印 设置 进行此功能操作流程如下:
Байду номын сангаас
在主界面下,按“2”进入“浓度测量”功能,出现如下界面:
按“2”进入“AC建曲线”功能,出现如下界 面: 比色皿: 测建曲线 波长: 标样个数: 标样A1: SET修改↓翻页
植物组织中可溶性糖含量的测定
![植物组织中可溶性糖含量的测定](https://img.taocdn.com/s3/m/c79b1e70844769eae009edc0.png)
植物组织中可溶性糖含量的测定一.实验目的学习可溶性糖测定的蒽酮比色法二.实验原理植物在个体发育的各个时期,代谢活动也发生相应的变化,碳水化合物的代谢也不例外其含量也随之发生变化。
了解可溶性糖含量的变化,在生理上和实践上都有重要的意义。
本实验采用蒽酮比色法测定可溶性糖的含量。
糖在硫酸的作用下生成糠醛,糠醛再与蒽酮作用,形成一种绿色的络合物.在低浓度时,625nm 的OD值与糖含量成正相关。
该实验方法简便,但没有专一性,对于绝大部分的碳水化合物都能与蒽酮反应,产生颜色。
三.实验用品721型分光光度计分析天平研钵恒温水浴锅烧杯刻度试管大试管活性炭移液管漏斗酒精(80%)葡萄糖标准溶液:称取已在80℃烘箱中烘至恒重葡萄糖100mg,配制成500mL溶液,即得每mL含糖为200μg的标准溶液。
蒽酮试剂:称取1g经过纯化的蒽酮,溶解于1000mL稀硫酸中即得。
稀硫酸溶液由760mL浓硫酸(比重1.84)稀释成1000mL而成。
四.实验步骤1.可溶性糖的提取称取0.5g的新鲜植物(青菜)叶片,于研钵中加80%酒精4ml,仔细研磨成匀浆,倒入离心管内,置于80℃水浴中不断搅拌30min,离心10分钟(5000转/min),收集上清液于10ml的刻度试管中,其残渣加2ml80%酒精重复提1次,合并上清液。
在上清液中加0.5g活性炭,80℃水浴脱色30min,定容至10ml,过滤后取滤液(稀释10倍或20倍后)测定。
2.显色及比色吸取上述糖提取液1mL,放入一干洁的试管中,加蒽酮试剂5mL混合之,于沸水浴中煮沸10分钟,取出冷却,然后于分光光度计上进行测定,波长为625nm,测得吸光度。
从标准曲线上查得滤液中得糖含量(或经直线回归公式计算),然后再行计算样品中含糖百分数。
3.绘制标准曲线取标准葡萄糖溶液将其稀释成一系列不同浓度的溶液,浓度分别为每mL含糖0、5、10、20、40、60、80μg。
按上述方法分别测得其吸光度,然后绘制A625-糖浓度曲线,或进行直线回归求得直线方程。
植物组织中可溶性糖含量的测定
![植物组织中可溶性糖含量的测定](https://img.taocdn.com/s3/m/7c9011add1f34693daef3e80.png)
植物组织中可溶性糖含量的测定XXX,YYY,ZZZ(版权所有,仅限个人)一.实验目的1、学习植物组织中可溶性糖的测定方法。
2、了解可溶性糖在植物物质代谢中的作用。
二、实验原理:(一)提取:利用可溶性糖溶于水的特性,将植物磨碎,用热水将组织中的可溶性糖提取出来,用铅离子沉淀提取液中的蛋白质,用草酸钠除去多余的铅离子,过滤后即可获得植物的可溶性糖提取液。
(二)测定:蒽酮比色法五碳糖和六碳糖在90~100℃温度下可被浓硫酸脱水生成糠醛或羟甲基糖醛,与蒽酮(C14H10O)脱水缩合,形成糠醛的衍生物,呈蓝绿色。
该物质在600nm处有最大吸收,在0~200µg/mL范围内,其颜色的深浅与可溶性糖含量成正比。
蒽酮比色法该物质在600nm处有最大吸收,在0~200µg/mL范围内,其颜色的深浅与可溶性糖含量成正比,可以比色测定。
该法方法简便,绝大部分的碳水化合物(五碳糖、六碳糖)都能与蒽酮反应产生颜色。
三、实验材料:大白菜Brassica campestris ssp.pekinensis四.实验步骤:1.标准曲线的绘制配制浓度分别为0,50,100,150,200µg/ml的糖标准溶液各10ml。
显色:取糖标准液lml于一干洁的试管中,加蒽酮试剂5ml混合,于沸水浴中煮沸10分钟。
比色:测定A600nm的吸光度值。
浓度:ug/mL050100150200吸光度:a00.1950.3550.5150.689绘制标准曲线:.可溶性糖的提取:称取0.250g待测植物叶片,放入研钵中,加少许乙醚研磨成均浆,用70℃的热水洗涤研钵,植物材料和洗涤后的溶液全量转移到100ml烧杯中,使总体积在30~ 40ml,将烧杯放在水浴锅中70~80℃半小时,冷却后滴加饱和中性醋酸铅以除去溶液中的蛋白质,连同残渣一起全量转移到100ml容量瓶中,定容,充分摇匀,用干燥漏斗过滤于一干燥的三角瓶中,瓶中事先放入少量(约0.2-0.4g)的草酸钠粉末,除去滤液中过量的铅,使生成草酸铅沉淀再行过滤,所得透明滤液即为可溶性糖提取液。
植物可溶性糖含量的测定
![植物可溶性糖含量的测定](https://img.taocdn.com/s3/m/ed70ce360b4c2e3f5727636a.png)
实验8 植物可溶性糖含量的测定可溶性糖包括葡萄糖、果糖、蔗糖,是植物品质的重要构成性状之一,尤其是以果实为目的产品的果树作物,可溶性糖与酸的含量及其配比是影响果实风味品质的重要因素。
对于鲜食品种,一般来讲,高糖中酸,风味浓,品质优;低糖中酸,风味淡,品质差。
因此,可溶性糖的定量研究对果树的品质育种具有重要意义。
一、试材及用具1.试材新鲜或冷冻的植物材料2.仪器及试剂高速组织捣碎机、电热恒温水浴锅、1000W调温电炉以及200mL、250mL 容量瓶、250mL锥形瓶及50mL碱式滴定管等玻璃仪器;试剂主要包括费林试剂及亚甲基蓝溶液等。
二、原理本实验的主要原理:在加热条件下,用还原糖溶液滴定一定量的费林试剂时,将费林试剂中的二价铜还原为一价铜,以亚甲基蓝为指示剂,稍过量的还原糖立即使蓝色的氧化型亚甲基蓝还原为无色的还原型亚甲基蓝。
通过实验,学习并掌握用费林试剂滴定法测定可溶性糖的原理和方法。
三、方法步骤(一)试剂配制1.费林试剂甲:称取硫酸铜(CuSO4•5H2O,分析纯)34.6g溶于水中,稀释至500mL,过滤,贮于棕色瓶内。
2.费林试剂乙:称取氢氧化钠50g和酒石酸钾钠(KNaC4O6H4•4H2O,分析纯)138g 溶于水中,稀释至500mL,用石棉垫漏斗抽滤。
3.转化糖标准溶液:称取9.5g蔗糖(分析纯)用水溶解后转入1000mL容量瓶中,加入6mol/L HCl(分析纯)10mL,加水至100mL。
在20~25℃下放置三天或在25℃保温24h,然后用水定容(此为酸化的1%转化糖液,可保存3~4个月)。
测定时,取1%转化糖液25.00mL 放入250mL容量瓶中,加入甲基红指示剂一滴,用1mol/L NaOH溶液中和后用水定容,即为1mg/mL转化糖标准溶液。
4.亚甲基蓝溶液:称取0.5g亚甲基蓝(分析纯)溶于10mL水中。
5.乙酸锌溶液:称取21.9g乙酸锌[Zn(OAC)2•2H2O,分析纯]溶于水中,加冰乙酸3mL 稀释至100mL。
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四、结果计算
可溶性糖含量(%)=从标准曲线查得糖的量(μg)×提取液体积(ml)×稀释倍数/[测定用样品液的体积(ml)×样品重量(g)×106]×100
糖类与蒽酮反应生成的有色物质在可见光区的吸收峰为620 nm,故在此波长下进行比色。
二、实验材料、试剂与仪器设备
(一)实验材料
任何植物鲜样或干样。
(二)试剂
1. 80%乙醇。
2.葡萄糖标准溶液(100μg/mL):
准确称取100 mg分析纯无水葡萄糖,溶于蒸馏水并定容至100 mL,使用时再稀释10剂量
试剂管号0100
μg/m
L xx
萄糖
溶液
(m
L)
蒸馏水(m
L)
蒽酮
试剂
(m
L)
葡萄
糖量
(μg
)010.
220.
430.
640.851.01.05.000.85.02
00.65.04
00.45.06
00.25.08005.0100将各管快速摇动混匀后,在沸水浴中煮10 min,取出冷却,在620 nm波长下,用空白调零测定光密度,以光密度为纵坐标,含葡萄糖量(μg)为横坐标绘制标准曲线。
三、实验步骤
1.样品中可溶性糖的提取称取剪碎混匀的新鲜样品0.5~1.0 g(或干样粉末5~100 mg),放入大试管中,加入15 mL蒸馏水,在沸水浴中煮沸20 min,取出冷却,过滤入100 mL容量瓶中,用蒸馏水冲洗残渣数次,定容至刻度。
2.标准曲线制作取6支大试管,从0~5分别编号,按表24-1加入各试剂。
植物组织中可溶性糖含量的测定
在作物的碳素营养中,作为营养物质主要是指可溶性糖和淀粉。它们在营养中的作用主要有:
合成纤维素组成细胞壁;转化并组成其他有机物如核苷酸、核酸等;分解产物是其他许多有机物合成的原料,如糖在呼吸过程中形成的有机酸,可作为NH 3的受体而转化为氨基酸;糖类作为呼吸基质,为作物的各种合成过程和各种生命活动提供了所需的能量。由于碳水化合物具有这些重要的作用,所以是营养中最基本的物质,也是需要量最多的一类。
式中:
C ——标准方程求得糖量,μg。
V T ——提取液体积,mL。
V 1——吸取样品液体积,mL。
W ——组织重量,g。
3.样品测定取待测样品提取液1.0 mL加蒽酮试剂5 mL,同以上操作显色测定光密度。重复3次。
四、结果计算
溶性糖含量(%)=从标准曲线查得糖的量(μg)×提取液体积(ml)×稀释倍数/[测定用样品液的体积(ml)×样品重量(g)×106]×100
式中:
C ——从标准曲线查得葡萄糖量,μg。
V T ——样品提取液总体积, mL。
表24-2苯酚法测可溶性糖绘制标准曲线的试剂量
试剂
100μg/L蔗糖标准液
(mL)
蒸馏水(mL)
蔗糖量(μg)管号00
2.0
01、2
0.2
1.8
203、4
0.4
1.6
405、6
0.6
1.4
607、8
0.8
1.2
809、10
1.0
1.
01002.可溶性糖的提取取新鲜植物叶片,擦净表面污物,剪碎混匀,称取0.1~0.3 g,共3份,分别放入3支刻度试管中,加入5~10 mL蒸馏水,塑料薄膜封口,于沸水中提取30 min(提取2次),提取液过滤入25 mL容量瓶中,反复冲洗试管及残渣,定容至刻度。
V 1——显色时取样品液量,mL。
W ——样品重(g)。
Ⅱ苯酚法测定可溶性糖
一、原理
植物体内的可溶性糖主要是指能溶于水及乙醇的单糖和寡聚糖。苯酚法测定可溶性糖的原理是:
糖在浓硫酸作用下,脱水生成的糠醛或羟甲基糠醛能与苯酚缩合成一种橙红色化合物,在10~100mg范围内其颜色深浅与糖的含量成正比,且在485 nm波长下有最大吸收峰,故可用比色法在此波长下测定。苯酚法可用于甲基化的糖、戊糖和多聚糖的测定,方法简单,灵敏度高,实验时基本不受蛋白质存在的影响,并且产生的颜色稳定160 min以上。二、实验材料、试剂与仪器设备
5. 100μg/L蔗糖标准液:
精确吸取1%蔗糖标准液l mL加入100 mL容量瓶中,加蒸馏水定容。
(三)仪器设备
分光光度计,电炉,铝锅,20 mL刻度试管,刻度吸管5 mL 1支、lmL 2支,记号笔,吸水纸适量。
三、实验步骤
1.标准曲线的制作取20 mL刻度试管11支,从0~10分别编号,按表24–2加入溶液和水,然后按顺序向试管内加入1mL 9%苯酚溶液,摇匀,再从管液正面以5~20 s时间加入5 mL浓硫酸,摇匀。比色液总体积为8 mL,在室温下放置30 min,显色。然后以空白为参比,在485 nm波长下比色测定,以糖含量为横坐标,光密度为纵坐标,绘制标准曲线,求出标准直线方程。
3.蒽酮试剂:
称取1.0 g蒽酮,溶于80%浓硫酸(将98%浓硫酸稀释,把浓硫酸缓缓加入到蒸馏水中)1000 mL中,冷却至室温,贮于具塞棕色瓶内,冰箱保存,可使用2~3周。
(三)仪器设备
分光光度计,分析天平,离心管,离心机,恒温水浴,试管,三角瓶,移液管(
5、1、
0.5 mL),剪刀,瓷盘,玻棒,水浴锅,电炉,漏斗,滤纸。
(一)实验材料
新鲜的植物叶片。
(二)试剂
1. 90%苯酚溶液:
称取90 g苯酚(AR),加蒸馏水溶解并定容至100 mL,在室温下可保存数月。
2. 9%苯酚溶液:
取3 mL 90%苯酚溶液,加蒸馏水至30 mL,现配现用。
3.浓硫酸(比重1.84)。
4. 1%蔗糖标准液:
将分析纯蔗糖在80℃下烘至恒重,精确称取1.000 g,加少量水溶解,移入100 mL容量瓶中,加入0.5 mL浓硫酸,用蒸馏水定容至刻度。
Ⅰ蒽酮法测定可溶性糖
一、原理
糖在浓硫酸作用下,可经脱水反应生成糠醛或羟甲基糠醛,生成的糠醛或羟甲基糠醛可与蒽酮反应生成蓝绿色糠醛衍生物,在一定范围内,颜色的深浅与糖的含量成正比,故可用于糖的定量测定。
该法的特点是几乎可以测定所有的碳水化合物,不但可以测定戊糖与己糖含量,而且可以测所有寡糖类和多糖类,其中包括淀粉、纤维素等(因为反应液中的浓硫酸可以把多糖水解成单糖而发生反应),所以用蒽酮法测出的碳水化合物含量,实际上是溶液中全部可溶性碳水化合物总量。在没有必要细致划分各种碳水化合物的情况下,用蒽酮法可以一次测出总量,省去许多麻烦,因此,有特殊的应用价值。但在测定水溶性碳水化合物时,则应注意切勿将样品的未溶解残渣加入反应液中,不然会因为细胞壁中的纤维素、半纤维素等与蒽酮试剂发生反应而增加了测定误差。此外,不同的糖类与蒽酮试剂的显色深度不同,果糖显色最深,葡萄糖次之,半乳糖、甘露糖较浅,五碳糖显色更浅,故测定糖的混合物时,常因不同糖类的比例不同造成误差,但测定单一糖类时,则可避免此种误差。