优化尼罗红荧光染色法简便快速筛选高油脂裂殖壶菌

优化尼罗红荧光染色法简便快速筛选高油脂裂殖壶菌

岳秀宏; 李祥宇; 刘鹏阳; 陆姝欢; 万霞

【期刊名称】《《中国油料作物学报》》

【年(卷),期】2019(041)005

【总页数】8页(P796-803)

【关键词】裂殖壶菌; 油脂含量; 尼罗红荧光染色

【作者】岳秀宏; 李祥宇; 刘鹏阳; 陆姝欢; 万霞

【作者单位】中国农业科学院油料作物研究所湖北武汉 430062; 嘉必优生物技术股份有限公司湖北武汉 430073; 湖北大学生命科学学院湖北武汉 430062; 农业农村部油料作物生物学与遗传育种重点实验室湖北武汉 430062; 农业部油料加工重点实验室湖北武汉 430062

【正文语种】中文

【中图分类】TK6

二十二碳六烯酸（docosahexaenoic acid，DHA）是一种重要的ω-3系列超长

链多不饱和脂肪酸，由22个碳和6个双键组成[1]。DHA广泛存在于人类的神经

和视网膜组织中，是神经系统细胞生长及维持的必要因素，也是大脑和视网膜的重要成分，对胎婴儿智力和视力发育至关重要[2]。研究报道表明DHA还具有降低高血压、心血管疾病、炎症和某些癌症的风险，因此受到人们越来越多的关注[3～5]。目前，除了鱼油来源的DHA外，裂殖壶菌、吾肯氏壶藻和寇氏隐甲藻等微生物也

被用于DHA的商业化生产，原卫生部2010年第3号公告将其列为新食品原料。其中,裂殖壶菌作为DHA产业化生产的菌株，以其生长速率和高效的产油效率成为DHA产业化生产的研究热点[6]。不同亚种间或不同发酵条件下，裂殖弧菌DHA 含量约占细胞总脂肪酸的23%～51%，DHA产量约为6～36 g/L[7]。中性脂为裂殖壶菌主要的油脂成分，占总油脂95.90%，其中以三酰甘油（TAG）为主，占中性油脂的97.20%[8]。通过提高TAG含量进一步提高裂殖壶菌DHA产量是目前研究报道的热点。由于基因工程和基因编辑改造方法和法规尚不完善，通过物理或化学手段诱变并筛选高产突变株，仍是提供优势菌株资源的重要手段。因此，建立快速、简便、高通量方法筛选高含油脂的突变株十分关键。

目前，微生物油脂定量的方法主要为有机试剂提取（称重法）[9]和气相色谱法[10]。但前者样品需求量大，操作繁琐，安全性低，后者虽灵敏度高，但设备及检测标品昂贵且耗时。这两种方法的检测通量均不高，因此应用于高含油脂的裂殖壶菌突变株的筛选时耗时耗力。尼罗红是一种脂溶性的荧光染料，可以与胞内油脂结合产生荧光。尼罗红与胞内油脂结合产生的荧光强度与胞内油脂含量呈正比，已被运用于酵母、微藻等多种微生物油脂含量的检测[11～14]。该方法操作简单、样品量小、可高通量操作，能较好地适用于微生物的油脂检测。

尽管尼罗红荧光染色法在快速检测高油脂含量微生物方面有较大优势，但将该方法应用于不同的物种还需要重新优化染色条件，且该方法仍有改进空间。不同物种的油脂成分有所差异，激发光与发射光也有所不同[14～18]。本文结合多功能酶标仪与荧光光谱仪，系统选择了适用于裂殖壶菌油脂含量检测的激发光与发射光。目前报道过的文献中[11～18]检测胞内油脂均用磷酸缓冲盐溶液（PBS）或无菌水对细胞进行洗涤，以消除培养基对染色的影响，但操作繁琐，在样品多的情况下耗时长，不适合高通量的菌株筛选工作。本实验在简化洗涤步骤的情况下，探究了尼罗红染色法应用于裂殖壶菌胞内油脂测定时最适宜的激发光与发射光波长、细胞溶

剂二甲基亚砜体积分数、尼罗红用量、染色时间及细胞密度等条件，试图建立简便、高通量、快速的方法检测裂殖壶菌油脂含量。

1 材料与方法

1.1 材料与仪器

菌株：本实验所用菌株为裂殖壶菌Schizochytrium sp.A-2，由嘉必优生物技术（武汉）股份有限公司提供。

材料：葡萄糖、谷氨酸钠、磷酸二氢钾、十二水合磷酸氢二钠、氯化钠、氯化钾，均购于国药集团化学试剂有限公司。尼罗红(Nile red，NR)、二甲基亚砜(dimethyl slfoxide,DMSO)均购于美国Sigma Aldrich公司。

仪器：立式压力蒸汽灭菌锅，上海申安医疗器械厂；电热恒温振荡培养箱（太仓市强乐实验设备有限公司）；干式恒温器（杭州奥盛仪器有限公司）；多功能酶标仪（美谷分子仪器有限公司）；荧光光谱仪（日本日立公司）；电子精密天平(瑞士

梅特勒-托利多公司)；气相色谱仪（美国安捷伦公司）。

1.2 方法

1.2.1 培养基及相关试剂的配置活化培养基：葡萄糖40 g，酵母浸膏6 g，天然海水1 L，pH 6.8，于121℃灭菌20 min。

发酵培养基：葡萄糖50 g，酵母浸膏9 g，谷氨酸钠30 g，补加天然海水至1 L，pH 6.8，于121℃灭菌20 min。

PBS缓冲液：磷酸二氢钾0.2 g/L、十二水合磷酸氢二钠2.9 g/L、氯化钠8.0 g/L，氯化钾0.2 g/L，pH 7.4，121℃灭菌15 min。

尼罗红染液：将1 mg尼罗红溶于10 mL的丙酮中，用有机滤膜过滤到小棕瓶中

避光保存。

1.2.2 菌种培养与发酵挑取平板保存的单菌落于装有30 mL活化培养基的250

mL锥形瓶中，28℃，150 r/min，培养48 h，活化两代。接种5%的种子液到装

有30 mL发酵培养基的250 mL锥形瓶中，28℃，220 r/min，培养48 h。

1.2.3 油脂含量测定离心收集细胞，进行冷冻干燥后，通过脂肪酸提取及气相色谱分析方法[20]测定胞内油脂含量。

1.2.4 荧光强度的测定取500μL菌液加入500μL一定体积分数的DMSO振荡混匀，向其中加入一定体积的1 mg/mL的尼罗红染液，再次混匀于暗处染色。取200μL染色后重悬菌液于96孔黑色酶标板中，使用多功能酶标仪检测荧光强度，并扣除空白培养基尼罗红染色荧光强度值。

2 结果与分析

2.1 DMSO浓度、激发光及发射光对尼罗红染色荧光强度的影响

2.1.1 DMSO浓度对尼罗红染色荧光强度的影响DMSO是一种含硫的有机化合物，能改变细胞壁和细胞膜对药物、毒物、电解质等的透性，使尼罗红易于透过细胞壁与胞内油脂结合，提高染色效果。与丙酮、甲醇、异丙醇等相比，DMSO挥发性

较低，可与水以任意比例互溶，已广泛应用于微藻尼罗红染色法[12,15,18]。由于不同菌种的细胞壁通透性不同，DMSO的用量不同，相关研究中检测微拟球藻采

用的浓度为15%[17]，检测小球藻采用的浓度为20%[18]。因此本实验首先考察DMSO浓度对尼罗红染色荧光强度的影响，此部分实验条件为尼罗红浓度

1μg/mL，常温避光染色10 min，DMSO体积分数分别设为5%、10%、20%、30%、40%、50%。使用酶标仪设定激发光为480 nm，发射光在550～750 nm 范围内，每隔10 nm进行一次荧光值检测，结果如图1所示。

由图1A可知，在没有细胞的情况下，DMSO体积分数为30%～50%时染色液在650 nm处出现峰值，因此认为DMSO与尼罗红结合在650 nm处形成发射波。且DMSO浓度越高，尼罗红与DMSO结合峰值越高。由图1B可以看出，尼罗红与脂质结合，在580 nm左右产生峰值，DMSO浓度为20%时，尼罗红对油脂染色效果最佳；DMSO浓度为30%和40%时，尼罗红与DMSO结合，胞内油脂不