观察染色体
染色体核仁组织区染色体带型标本的观察
(2) 图的大小及在纸上分布的位置要适当。一般画在靠近中央 稍偏左方，并向右方引出注明各部名称的线条。各引出线条 要整齐平列，各部名称写在线条右边。图的下方写图的名称
及放大倍数（ 目镜倍数×物镜倍数）。
【作业】
1．绘制中期人染色体图，显示染色体的大小、数目 和形态。
察的目的物处于物镜的正下方。 调节粗调螺旋，使物镜（10×）与标本靠近，眼睛在侧向注
视物镜，防止物镜和载玻片相碰。 张开双眼向物镜里观察，如果见到目的物，但不十分清楚，
可用细准焦螺旋，至目的物清晰为止。 通过玻片夹推进器慢慢移动玻片，认真观察标本各部分，找
到合适的目的物，仔细观察并记录所观察到的结果。
观察结束后，调节光源到最小再关掉电源开关。调节粗调 螺旋，使载物台下降到最低，取下玻片，擦干净镜体，罩上 防尘罩，然后放回原处。
显微镜的保养及注意事项
（1）油镜使用完毕，先用擦镜纸擦去镜头上的油，再取一张 擦镜纸，滴上少量的二甲苯擦拭，然后再取另一张新擦镜纸 将镜头上残留的二甲苯擦净。否则粘固透镜的胶质会被二甲 苯溶解，日久镜片易移位脱落。
3.高倍镜的操作
使用高倍镜前，必须先用低倍镜观察，发现目的物后将它移至 视野正中处。
旋动转换器换高倍镜。如果高倍镜触及载玻片立即停止旋动， 这说明原来低倍镜并没有调准，目的物并没有真正找到，必 须用低倍镜重新调节。如果高倍镜下观察目的物有点模糊， 调节细准焦螺旋，直到视野清晰。调节细准焦螺旋时要注意 旋转方向与载物台上升或下降的关系，防止镜头与载玻片强 力接触，损坏镜头或载玻片。
(4) 绘出的图要正确，观察时要把混杂物、破损、重叠等现象 区别清楚，不要把这些现象绘上。
染色体畸变的观察
染色体畸变的观察日期姓名学号指导教师成绩10.0【实验目的】1.掌握人体正常染色体数目及形态特征2.熟悉染色体的核型分析步骤3.了解畸变染色体的类型【实验原理】染色体畸变是指体细胞或生殖细胞内染色体发生异常的改变，包括数目异常和结构畸变两种类型。
多数非整倍体产生的原因是在生殖细胞成熟过程或受精卵早起卵裂中发生了染色体不分离或染色体丢失所致。
染色体结构畸变发生的基础是染色体在化学、物理或生物等致畸因素的影响下发生断裂，断裂未在原位重接，因而造成染色体结构畸变或染色体重排，主要形式包括缺失、易位、重复和倒位等。
凡是能够引起染色体断裂的物质称为断裂剂，断裂对染色体的毒理效应因作用时间不同而导致的结果也有所不同。
若断裂剂作用于DNA复制之前，会导致染色体断裂；若断裂剂作用于DNA复制之后，将导致染色体单体断裂。
电离辐射在细胞周期的任何时期都可以诱发DNA双链断裂。
紫外线只能诱发DNA单链断裂。
大多数化学断裂剂都属于拟紫外线断裂及，即只能诱发DNA单链断裂。
染色体畸变：染色体数目的增减或结构的改变。
染色单体畸变：是指仅涉及染色体内一条染色单体的染色体结构异常。
环状染色体：若断裂发生于染色体的两端，那么断裂下来的两个断片彼此可以粘合成一个，而带着丝粒的部分可通过两断端的粘合形成环状染色体。
超二倍体：超二倍体是指除正常染色体组以外，还有一条或几条额外的染色体或染色体片段的细胞或个体。
亚二倍体：当体细胞中染色体数目多了一条或数条时，称超亚二倍体。
染色体断裂：染色体的臂出现裂开，大于臂的宽度称为断裂，是各类结构畸变的始因。
微小体：指畸变染色体脱离的圆点状短片。
双着丝粒染色体：若染色体的两条臂于同一水平断裂，断片丢失，而两臂的断端相互愈合，继而着丝粒纵裂并自身复制，称为双着丝粒染色体。
【实验内容】（通过比较，理解染色体畸变、染色单体畸变、染色体断裂、微小体、双着丝染色体、环状染色体、超二倍体、亚二倍体等概念）染色体结构畸变的观察：1、染色体畸变：指在某一条染色体两条单体上同时发生的畸变。
遗传学实验实验一 动植物减数分裂过程中染色体行为的观察
用洁净的刀片或镊子压在花药上向一端轻轻抹 去，将花粉母细胞压挤出来，或者用大头针钝端直 接捣碎花药，把花粉母细胞(呈半透明胶状)在小范 围内涂成薄层。
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4．染色 在涂好的载玻片上滴加一滴或半滴染液
(视滴管大小而定，由于花粉母细胞在压片过 程中特别容易随染液溢出，所以滴加染液宜 少不宜多)，静置染色8-10分钟，染色结束剔 除花药残体。
3
减数分裂的遗传学意义：保证了有性生殖生物个 体世代之间染色体数目的稳定性；为有性生殖过程中 创造变异提供了遗传的物质基础。
减数分裂细胞染色体制片取材以高等动、植物雄性 生殖分裂较为方便。在适当的时机采集动物精巢或植 物花蕾(花序)，经适当技术处理，压片就可在显微镜 下观察到细胞的减数分裂过程。
4
和方法。 2．通过观察进一步熟悉减数分裂的全过程及各个时 期染色体的动态变化和形态特征。
2
二 实验原理 减数分裂是进行有性繁殖的动植物性母细胞成
熟、形成配子的过程中出现的一种特殊分裂方式。 减数分裂过程中染色体复制一次，进行两次连续的 有丝分裂——减数第一次分裂（减数Ⅰ）和减数第 二次分裂（减数Ⅱ）；每次分裂都可分为紧密衔接 的前、中、后、末四个时期，以前期Ⅰ变化最为复 杂，又可分为细线期、偶线期、粗线期、双线期和 终变期。通过减数分裂所形成的四分体细胞（或雌、 雄配子），其染色体数目只有体细胞的一半。
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取材时间主要看植物生长发育的最适温度 而定。气温过低会影响减数分裂的正常进行， 这时取材细胞常常处于前期、末期等时期，而 终变期、后期、中期图像少；温度过高(30℃ 以上)时植株新陈代谢旺盛，减数分裂周期缩短， 核质粘连严重，也不易获得理想的制片和观察 效果。为了获得理想的减数分裂图像，取材时 间一般是上午8:00～10:00。
人类染色体核型分析
1．染色方法
Q—染色法 G—染色法 R—染色法 又称反转G染色法 C—染色法 又称着丝粒异染色质带 Cd-染色法 N—染色法
2．染色体带的区分和命名
带：是染色体上的一部分，它能通过某种染色方法显示出 较深或较浅的染色，以至于能很清楚的与其相邻的节段区 分开来，染色体上没有带间区，深染浅染都是带。
一秃二蛇三蝶飞， 四像炮竹五黑腰，六是一、四小白脸， 七上八下九苗条， 十号长臂近腰好， 十一低来十二高， 十三、十四、十五三个样，十六中央次缢痕好，十七脚上带镣铐， 十八人小白肚皮， 十九中央一点红， 二十头重脚又轻， 二十一像个葫芦瓢，二十二一点y黑脚， X-pq竹节一担挑， 1-9-16有次缢痕；13、14、15端部着丝点有随体，21、22有随体。
⑴按大小分：从大到小排列下去，x相当于6号（即x长短 相当于6），y相当于12号
⑵按着丝点位置分组：A（1-3），B（4-5），C（6-12）， D（13-15），E（16-18），F（19-20），G（21-22）。
⑶据带纹，每条染色体都分区分带，每区之间都有界标 隔开。
4．人类各染色体的特征
界标：具有鉴别染色体的重要、一致而明显的形态特点， 包括染色体两臂的末端、着丝粒和某些染色带。
染色体区：就是指位于相邻的界标之间的染色体区域，界பைடு நூலகம்标被标为那个区的第一带。
在一个特定的染色体带定名时，有四种符号：染色体号， 臂的符号，区号，在该区内的带号。如：1p33。
3. 国际体制的几个原则
实验九 人类染色体观察
一、实验目的
学习人类染色体G带识别方法； 了解核型鉴定技术； 初步了解人类染色体命名的基本原则。
二、实验原理
染色体标本制作与观察实验报告
染色体标本制作与观察实验报告Document number【SA80SAB-SAA9SYT-SAATC-SA6UT-SA18】【实验题目】染色体标本制作与观察【实验目的】1、掌握小鼠睾丸细胞染色体标本的基本制作过程和Giemsa染色法，了解各操作步骤的原理。
2、了解常用实验动物染色体的数目及特点。
3、认识不同生物染色体的特征，学会做染色体组型图。
【实验材料与用品】1.器材：显微镜、载玻片、盖玻片、镊子、手术剪、解剖盘、胶头滴管、离心管、离心机、小烧杯、冰箱、酒精灯、小烧杯等2.材料：小鼠3. 试剂：蒸馏水、%NaCl溶液、%KCl溶液，固定液（甲醇：冰醋酸=3:1）、秋水仙素【实验原理】一、制作染色体标本的先决条件细胞具有旺盛的分裂能力：选择活跃的组织，如胸腺、骨髓、睾丸、小肠；或施加药物使细胞分裂（PHA）设法得到大量的分裂中期细胞：利用秋水仙素二、染色体染色体是基因的载体。
真核细胞染色体的数目和结构是重要的遗传特性之一。
制备染色体标本是细胞学最基本的技术之一，优良的染色体制片是进行染色体显带、组型分析、原位杂交等的先决条件。
染色体的制备在原则上可以从所有发生有丝分裂的组织和细胞悬浮液中得到。
最常用的途径是从骨髓细胞、血淋巴细胞、、和组织培养的细胞中制备染色体。
本实验采用的方法是从小鼠的睾丸细胞中获取。
染色体的形态结构在细胞增殖周期中是不断的运动变化的，一般在有丝分裂中期，染色体形态最典型、最易辨认和区分。
因此，制备染色体标本获取的是中期细胞。
染色体特征：数目、长度（绝对长度、相对长度）、着丝粒位置（M/SM/ST/T)、随体与次缢痕的数目大小和位置、带型分析描述染色体的四个参数：①相对长度=（每条染色体的长度）/（单倍常染色体之和+X染色体）*100，相对长度可以用来表示每条染色体的长度。
②臂指数=（长臂的长度）/(短臂的长度)，臂指数可以用来确定臂的长度。
③着丝粒指数=（断臂长度）/（染色体全长）*100，着丝粒指数可以决定着丝粒的相对位置。
实验一 染色体玻片标本的制作与染色体观察
辽宁师范大学生命科学学院 张剑锋
一、实验原理
植物根尖的分生细胞的有丝分裂，每 天都有分裂高峰时间(am9, pm3)，此时把 根尖固定，经过染色和压片，再置放在显 微镜下观察，可以看到大量处于有丝分裂 各时期的细胞和染色体。
二、实验目的
根尖染色体压片法是观察植物染色体 最常用的方法，也是研究染色体组型、染 色体分带、染色体畸变和姊妹染色单体交 换的基础。
卡诺固定液的配制：3 份无水酒精，加1 份冰醋酸(现配现 用 )。 酶液的配制：以0.1mol/L 醋酸钠为溶剂，配成纤维素酶(2 ％)和果胶酶(0.5％)的混和液。
染色液的配制： 配方Ⅰ：石碳酸品红(Carbol. fuchsin)染色液，先配母液A和B。 母液A：称取3克碱性品红，溶解于100毫升的70％酒精中(此液可 长期保存)。 母液B：取母液A 10毫升，加入90毫升的5％石碳酸水溶液(2周内 使用)。 石碳酸品红染色液：取母液B 45毫升，加入6毫升冰醋酸和6毫升 37％的甲醛。此染色液含有较多的甲醛，在植物原生质体培养过 程中，观察核分裂比较适宜，后来在此基础上，加以改良的配方 Ⅱ，称改良石碳酸品红，可以普遍应用于植物染色体的压片技术。 配方Ⅱ：改良石碳酸品红 取配方Ⅰ石碳酸品红染色液2-10毫升，加入90-98毫升45％的醋酸 和1.8克山梨醇(sorbitol)。此染色液初配好时颜色较浅，放置二周 后，染色能力显著增强，在室温下不产生沉淀而较稳定。
（四）压片：把染色后的根尖放在清洁的载玻片上，用解剖针 把根冠及延长区部分截去，加上少量染色液，并盖上盖玻片。 一个解离良好的材料，只要用镊子尖轻轻的敲打盖玻片，分生 组织细胞就可铺展成薄薄的一层，再用毛边纸把多余的染色液 吸干，经显微镜检查后，选择理想的分裂细胞，再在这个细胞 附近轻轻敲打，使重叠的染色体渐渐分散，就能得到理想的分 裂相，要达到这个目的，必需掌握以下几点： 1. 压片材料要少，避免细胞紧贴在一起，细胞和染色体没有伸 展的余地。 2. 用镊子敲打盖玻片时，用力要均匀，若在压片时稍不留意， 使个别染色体丢失，而被迫放弃一个良好的分裂相的细胞。 （五）封片：把压好的玻片标本，放在干冰或冰箱结冰器里冻 结。然后用刀片迅速把盖玻片和载玻片分开，用电吹风把玻片 吹干后，滴上油派胶加上盖玻片封片，或经二甲苯透明后，滴 中性树胶，加盖玻片封片，做成永久封片。
人类染色体G带观察与核型分析
人类染色体G带观察与核型分析一、实验目的掌握人类体细胞染色体组型分析的方法二、实验原理○1核型：染色体组型又称核型，是指将动物、植物、真菌等的某一个体或某一分类群(亚种、种、属等)的体细胞内的整套染色体，按它们相对恒定的特征排列起来的图像。
核型模式图是指将一个染色体组的全部染色体逐个按其特征绘制下来，再按长短、形态等特征排列起来的图像。
核型( karyotype )是指一个细胞内的整套染色体按照一定的顺序排列起来所构成的图像,通常是将显微摄影得到的染色体照片剪贴面成。
正常细胞的核型能代表个体的核型。
组型( idiogram )是以模式图的方式表示,它是通过对许多细胞染色体的测量取其平均值绘制而成的,是理想的、模式化的染色体组成。
它代表了一物种染色体组型的特征,核型的研究对人类医学遗传研究及临床应用,对探讨动植物起源、物种间亲缘关系、鉴定远缘杂种等方面都有重大意义。
○2带染色技术也称为改良的 iemsa 染色法。
因用 iemsa 染色,所以称为带。
它是目前应用最广泛的染色体分带技术之一。
染色体标本放到37℃胰酶中是带显示的一种预处理方式,它可以从染色体上抽取蛋白质特定的成分,从而经 iemsa 染色后获得良好一致的分带类型。
带的形成与 iemsa 染料的组成及染色特性分不开。
iemsa 染料即噻嗪-曙红染料,染色首先取决于两个噻嗪分子同DNA 的结合,在此基础上它们结合一个曙红分子,其次取决于一个有助于染料沉淀物积累的疏水环境。
通过胰前预处理可以使阴性带区的疏水蛋白被除去或使它们的构型变为更疏水状态。
从而造成了染色体蛋白质的差异,这种差异就是明暗相间的染色体带。
染色体带技术为染色体遗传病诊断、杂种细胞检定、特殊细胞株标记、染色体的识别等开创了一系列检测方法,大大加速了染色体研究的进展。
○3对任何一个染色体的基本形态学特征来说，重要的参数有3个：描述染色体的三个参数: 1.相对长度：指单个染色体长度与包括X（或Y）染色体在内的单倍染色体总长之比，以百分率表示。
实验八 人类染色体G带观察与组型分析
实验八 人类染色体G 带观察与组型分析 2017.11.24一、实验目的1. 熟悉观察人类染色体G 带。
2. 掌握任磊体细胞染色体组型分析的方法。
二、实验原理1. G 显带是指Giemsa 染液染色后，使每条染色体上显示出深浅交替横纹的技术。
A-T 相对丰富的区域染为深带，G-C 相对丰富的区域染为浅带。
2.组型是以模拟图的方式表示，它是通过对许多细胞染色体的测量取其平均值绘制而成的，是理想的、模式化的染色体组成。
它代表了一种染色体组型的特征。
3.染色体特征参数：（1）相对长度=每个染色体的长度/（单倍体+X 染色体）×100％（2）臂指数=长臂长度/短臂长度（3）着丝粒指数=（短臂长度/该染色体总长）×100三、实验材料与用具人类染色体G 带标本、正常人类染色体标本、显微镜四、实验方法取装片于光学显微镜下观察，找到处于分裂期的染色体，观察形态、数目与大小，并拍照记录。
五、结果与分析（1）实验结果1 3 4 56 12 13 16 18 D E 19 21 G图1.正常女性染色体核型1520 F A B CX 22表1.正常女性染色体的基本形态特征参数群组号染色体号长臂长度短臂长度相对长度％着丝粒长度1 1.5 0.9 8.1 37.5A 2 1.3 1.1 8.1 45.83 1 1 6.7 50B 4 1.4 0.5 6.4 26.35 1.2 0.6 6.1 33.36 1 0.7 5.7 41.27 1 0.5 5.1 33.38 0.8 0.5 4.4 38.59 0.8 0.5 4.4 38.5C 10 0.8 0.5 4.4 38.511 0.7 0.5 4.1 41.712 0.5 0.5 3.4 50X 0.9 0.6 5.1 4013 1.1 0.1 4.1 8.33D 14 1 0.1 3.7 9.115 0.9 0.1 3.4 1016 0.6 0.3 3.1 33.3E 17 0.5 0.4 3.1 44.418 0.5 0.3 2.7 37.5F 19 0.4 0.3 2.4 42.820 0.3 0.3 2.1 50G 21 0.5 0.1 2.1 16.722 0.4 0.1 1.7 20(2)结果分析答：通过对染色体的核型分析可以知道，1-3号染色体最大，4-5号次大，6-15号（和X染色体）中等长度，16-18号较小，19-20号小，21-22号最小。
实验报告细胞分裂与染色体行为的观察与分析
实验报告细胞分裂与染色体行为的观察与分析实验报告细胞分裂与染色体行为的观察与分析1. 引言细胞分裂是生物体维持生命和生物发育的基本过程之一，其中包括有丝分裂和无丝分裂两种类型。
细胞分裂过程中，染色体的行为对于细胞遗传信息的传递至关重要。
本实验旨在观察和分析细胞分裂过程中染色体的行为，以更深入了解细胞分裂的机制。
2. 材料与方法2.1 实验材料- 微生物学实验室配备的显微镜- 细胞培养培养基- 细胞培养皿- 活体细胞标本2.2 实验方法（根据实际实验内容编写）3. 观察结果（根据实际观察结果编写）4. 细胞分裂与染色体行为的分析4.1 有丝分裂过程有丝分裂是指通过丝状物质的纺锤体使染色体有序分离的细胞分裂过程。
在有丝分裂开始阶段的纺锤体形成中，细胞核内的染色体开始凝聚，逐渐呈现出条状结构。
纺锤体由纺锤丝和中心体组成，在纺锤体的引导下，染色体在细胞中心向两个极端移动，每个染色体的两条染色体单体分离，沿纺锤丝移动到细胞极端。
4.2 无丝分裂过程无丝分裂是指染色体在细胞质内直接分离的细胞分裂过程。
相对于有丝分裂来说，无丝分裂的分裂过程相对简单，需要的结构和物质较少。
在无丝分裂开始阶段，细胞内染色体的凝聚程度相对较低。
染色体逐渐在细胞中心线上排列，然后分离为两个具有相同遗传信息的染色体。
5. 结论通过本次实验，我们观察和分析了细胞分裂过程中染色体的行为。
有丝分裂和无丝分裂是两种不同的细胞分裂类型，不同的分裂过程中染色体的行为也有所差异。
在有丝分裂过程中，染色体通过纺锤体的引导向两个细胞极端进行分离；而无丝分裂过程中，则是染色体直接在细胞质内进行分离。
这些观察结果为我们进一步研究细胞分裂和遗传物质传递提供了重要的参考。
6. 参考文献（如果有引用的文献，请根据实际情况列出参考文献）注：本实验报告仅做示范，实际内容需要根据实验设计和实验结果进行编写。
高中生物染色体检验方法
高中生物染色体检验方法全文共四篇示例，供读者参考第一篇示例：高中生物染色体检验方法在生物学研究中，染色体是细胞核内的核糖核酸分子的一种。
它们携带着遗传信息，决定了生物体的性状和特征。
研究染色体结构和功能对于理解生物遗传学和进化过程至关重要。
在高中生物学课程中，染色体是一个重要的考察内容之一，而染色体检验方法也是学生们需要掌握的实验技能之一。
染色体检验方法是通过某些特定的技术手段对细胞进行染色，以观察和分析染色体的结构、数量和特征。
通过染色体检验，可以揭示细胞的生物学特征，如染色体的数量、形态和染色体的配对规律等。
目前常见的染色体检验方法包括核型分析、荧光原位杂交（FISH）法、G显带法等。
下面将详细介绍这些方法的原理和操作步骤。
一、核型分析核型分析是通过染色体的形态特征来确定染色体的数量、型态和大小，是一种常用的染色体检验方法。
它通常用于观察染色体的结构和异常情况，以帮助医学诊断和遗传疾病的分析。
核型分析的步骤如下：1. 采集细胞样本。
可以采集血液、绒毛膜组织、尿液等含有细胞的样本。
2. 细胞培养。
将采集的细胞进行培养，促使细胞不断分裂，以增加染色体的数量，便于观察。
3. 细胞减数分裂。
使细胞进入减数分裂阶段，如卵母细胞进入卵泡期、精子形成等。
4. 细胞染色。
使用染色体染色剂（如吉姆萨染色剂）对细胞进行染色，以观察染色体的结构和数量。
5. 检查和分析。
通过显微镜观察细胞核型，并对染色体进行分析和计数，以确定染色体的数量和结构特征。
通过核型分析，可以帮助医学研究人员对遗传疾病的发病机理和遗传特征进行深入了解，并为个体的诊断和治疗提供重要参考。
二、荧光原位杂交（FISH）法荧光原位杂交（FISH）法是一种高灵敏度的染色体检验方法，可以用于检测染色体的特定序列和结构，是一种常用的遗传诊断技术。
FISH法的原理是利用带有荧光标记的核酸探针与目标染色体特异结合，从而在显微镜下显示出荧光信号。
FISH法的操作步骤如下：1. 制备探针。
高中生物实验八 植物减数分裂过程中染色体行为的观察
实验八植物减数分裂过程中染色体行为的观察一、实验目的1. 掌握制备植物细胞减数分裂玻片标本的技术和方法。
2. 了解植物花粉形成中的减数分裂各时期的特征及染色体变化。
二、实验原理减数分裂是进行有性生殖的动植物性母细胞成熟、形成配子过程中的一种特殊的细胞分裂方式。
在减数分裂过程中，染色体复制一次，细胞连续分裂两次，第一次为染色体数目减半，第二次分裂过程中每条染色体的两条染色单体分开，最终形成的配子中染色体数目仅为性母细胞的一半。
受精时雌雄配子结合，恢复亲代染色体数，从而保持物种染色体数的恒定。
植物形成配子时，由花药或胚珠中的某些细胞分化为二倍性的小孢子母细胞或大孢子母细胞，这些细胞连续进行两次细胞分裂即减数第一分裂和减数第二分裂，结果一个小孢子母细胞形成4个小孢子，一个大孢子母细胞形成一个大孢子，它们都只具有单倍的染色体。
植物材料的减数分裂制片通常采用涂片法，制片过程包括：取材、固定、染色及压片几个步骤。
三、实验材料葱花（染色体数2n=16）四、实验步骤1. 取材：选取处于减数分裂期的葱花，剪下花序。
2．固定：用卡诺氏固定液固定12～24h，之后用95％酒精冲洗，再转入70％酒精中，可于4℃冰箱保存。
固定的目的与有丝分裂相同。
3．制片：用镊子小心拨开花药壁，挤出花粉粒，涂于载玻片上，用镊子轻轻捣碎，用卡宝品红染色3～5分钟，盖上盖玻片。
4．镜检用低倍镜找到分裂期细胞，再转用高倍镜仔细观察。
五、注意事项不同部位的花粉粒的成熟程度不同，取材时注意避免选取相同部位的材料，以便观察到更多的分裂相。
六、实验结果观察：绘制所观察到的减数分裂各任四个时期的图相，并简述其特征。
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动植物减数分裂过程中染色体行为的观察
动植物减数分裂过程中染色体行为的观察摘要：本实验通过蝗虫的精巢观察动植物减数分裂过程中染色体的行为，重点是要学会辨认减数分裂的几个重要时期和其判断依据。
了解精母细胞减数分裂的一般规律及减数分裂过程中的染色体行为的动态变化过程；此外还要求掌握制片、染色技术。
1引言同有丝分裂不同，减数分裂仅仅发生在生命周期的某一阶段；期间染色体复制一次，细胞分裂两次。
减数分裂对生命的延续具有重要的意义。
自1883年Caldwell和Threlfal发明出切片机和Edouard van Beneden发现减数分裂现象到1903年Sutton以笨蝗（brachystola magna）作材料并提出“Sutton-Bover”假说，再到如今，近130年来，随着细胞生物学和分子生物学的发展，人们对减数分裂过程中染色体行为的研究取得很大的进展。
2实验材料和方法：2.1试验材料：固定的蝗虫精巢、卡宝品红染液、载玻片、盖玻片、显微镜、解剖针、解剖镜、镊子、生理盐水、滤纸、镜头纸、香柏油。
2.2试验方法：2.2.1材料的获取及处理（1）取材：用剪刀剪去双翅，再从雄性蝗虫腹部背面剖开，靠近胸节处有桔黄色团状结构，为精巢。
取出精巢，这双精巢紧紧地贴在一起，外被含大量脂肪的薄膜，使整个精巢呈现黄色。
将精巢投入0.7%的生理盐水中，剔去脂肪，就可以看到精巢中细小的纤维状的曲细精管。
（图片转自文献[1]）（2）取一个或两个精细小管放于载玻片上，用刀片在精细小管上横切两到三次。
（3）以卡宝品红染液染色10－15分钟，同时以小镊子轻轻挤压精细小管外壁，以使性母细胞或减数分裂中各时期的细胞流出精细小管管壁，以利于观察，压片后进行观察，可以见到减数分裂的各个时期。
3.实验结果3.1 不同染色体的构像雄性蝗虫是XO型的染色体组合，2n=23——22条常染色体和1条性染色体。
不同类型的常染色体在减数分裂不同时期的构象是有差异的。
中部着丝粒染色体, 在后期I 至中期II 均呈双“V”叠加形结构, 而在后期II 则呈现单“V”形;近中部着丝粒染色体, 在后期I 至中期II 均呈双“J”叠加形结构, 而在后期II 则呈现单“J”形; 端着丝粒则在后期I 至中期II均呈现很粗的棒状、元宝形、V 形或哑铃形, 在后期II 中呈现棒状或点状。
细胞的染色体观察和核型分析
细胞的染色体观察和核型分析
汇报人：XX
目 录
• 染色体基本概念与结构 • 细胞染色体观察方法 • 核型分析基本原理与步骤 • 实验操作注意事项与技巧 • 结果解读与报告撰写指南 • 案例分析：某疾病相关染色体异常研究
01
染色体基本概念与结构
染色体定义及功能
遗传信息的载体
染色体是细胞核中容易被碱性染 料染成深色的物质，主要是由 DNA和蛋白质组成，是遗传信息 的载体。
03
核型分析基本原理与步骤
核型定义及其意义
核型定义
核型是指生物体细胞内的染色体组型 ，包括染色体的数量、形态和结构等 方面的特征。
核型意义
核型分析是研究生物遗传变异、物种 起源和进化、以及医学遗传学等领域 的重要手段，对于了解生物遗传信息 、揭示遗传规律具有重要意义。
核型分析流程和方法
流程
核型分析通常包括细胞培养、染色体制片、染色体显带、图像采集和核型分析等步骤。
核型分析
对显带后的染色体进行核型分析，记录染色体的数目和结 构异常。通过与正常核型的比较，确定患者是否存在特定 的染色体异常。
结果展示、解读和讨论
结果展示
通过核型分析，我们发现患者存在特定的染色体异常，包括染色体数目的增减和结构的异 常。这些异常与疾病的临床表现密切相关。
结果解读
根据实验结果，我们可以确定该疾病与特定的染色体异常有关。这些异常可能导致基因表 达异常，进而影响患者的生长发育和智力发育等。
安全防护
注意保护眼睛，避免长时间观察对 眼睛造成伤害；同时，注意显微镜 的维护和保养，确保其良好运行。
数据记录、整理和分析方法
数据记录
详细记录实验过程中的各项数据，如染色体形态、数量、核型等 ，确保数据的准确性和完整性。
实验04 多线染色体观察
实验四多线染色体观察一、实验目的1、练习剥离果蝇三龄幼虫唾液腺的技术和制作唾液腺染色体的方法；2、观察多线染色体的特征。
二、实验原理唾腺染色体是处于体细胞同源染色体的配对状态，它们的巨大性是由于重复分裂后的众多染色线没有分开的结果，因此又称为多线染色体。
多线染色体是处于早前期的一种体细胞染色体配对形式。
它普遍存在于双翅目昆虫某些物种的幼虫唾腺细胞内。
唾腺染色体经染色后，出现深浅不同、疏密各别的横纹，这些横纹的数目和位置往往是恒定的，代表着种的特征。
如染色体有缺失、重复、倒位、易位等，很容易在唾腺染色体上识别出来。
三、实验材料1、材料：果蝇的三龄幼虫2、用具：双筒解剖镜、显微镜、解剖针、载片及盖片、吸水纸、蒸馏水等3、药品：改良的苯酚品红、生理盐水（0.7% NaCL）、1mol/LHCl四、方法与步骤1．剥离唾腺：取载玻片于双筒镜下，滴一滴生理盐水，幼虫置于生理盐水内，两手各持一解剖针，左手压住幼虫前端1/3处，固定幼虫，右手按住头部黑点处（口器）稍后，向前轻轻移动，把头部自身体拉开，腺体即随之而出，剔除脂肪。
2．解离：拉出的腺体移到载片中央，加一滴1mol/LHCl，解离2-3min。
3．染色：用吸水纸吸去HCl；加1滴蒸馏水轻轻冲洗后，小心吸干，重复2～3次。
加1～2滴改良苯酚品红染色10～15min。
4．压片、镜检：加盖玻片，覆以吸水纸压片；45%乙酸分色；镜检。
流程：剖取唾腺→转到载玻片上→加1mol/LHCL酸解2-3min →吸去HCl→水洗→苯酚品红染色10-15min →盖片、压片→镜检五、作业绘制所观察到的多线染色体图。
注意事项1.一定加生理盐水，否则唾腺易干。
2.将脂肪组织清除干净。
3.水不可太多，否则幼虫会漂浮而且活跃。
4.染色时间不可过长，否则背景也着色。
5.压片时要揉。
6.染色完以后，将旧的染色液吸去，加新的染色液，再压片。
发现：1881年，意大利的细胞学家巴尔比尼（Balbiani)在双翅目昆虫摇蚊幼虫的唾腺细胞间期核中发现了一种巨大的染色体，由于存在于唾腺细胞中，所以又称为唾腺染色体。
高中生物染色体检验方法
高中生物染色体检验方法
高中生物染色体检验方法主要包括传统的细胞核型分析以及现代分子生物学技术。
1. 传统的细胞核型分析是基于染色体的长度、着丝点的位置、臂比和随体等特征，借助染色体分带技术对被检者的染色体进行分析、比较、排序和编号，用于检查染色体有无数目和结构异常。
这种方法需要将特定的细胞短期或长期培养后，经过特殊制片和显带技术，在光学显微镜下观察分裂中期的染色体。
2. 现代分子生物学技术则包括荧光原位杂交（FISH）、定量荧光聚合酶链式反应（QF-PCR）、比较基因组杂交（aCGH）、染色体的微阵列分析（CMA）、多重连接探针扩增技术（MLPA）以及二代测序等方法。
这些方法各有特点，可以根据具体的实验需求和条件选择合适的方法进行染色体检验。
同时，进行染色体检验需要在正规的大医院进行，由专业的医生或实验室技术人员进行操作和解读结果。
观察微生物与染色体实验目的
观察微生物与染色体实验目的
观察微生物与染色体实验是为了学习染色原理和方法，掌握微生物涂片、革兰氏染色、无菌操作技术；巩固显微镜的使用。
微生物（尤其是细菌）个体微小，其机体是无色透明的，在显微镜下，微生物体与其背景反差小，不易看清微生物的形态和结构，若增加其反差，微生物的形态就可看得清楚，通常用染料将菌体染上颜色以增加反差，便于观察。
微生物细胞由蛋白质、核酸等两性电解质及其他化合物组成，所以，微生物细胞表现出两性电解质的性质。
两性电解质兼有碱性基和酸性基，在酸性溶液中离解出碱性基呈碱性带正电。
在碱性溶液中离解出酸性基呈酸性带负电。
经测定，细菌等电点在pH＝2～5之间，故细菌在中性（pH＝7）、碱性（pH＞7）或偏酸性（pH＝6～7）的溶液中，细菌的等电点均低于上述溶液的pH值，所以细菌带负电荷，容易与带正电的碱性染料结合，故用碱性染料染色的为多。
碱性染料有美蓝、甲基紫、结晶紫、龙胆紫、碱性品红、中性红、孔雀绿和蕃红等。
微生物体内各结构与染料的结合力不同，故可用各种染料分别染微生物的各结构以便观察。
实验精通(生物)_染色体的观察(教用)
1染色体的观察细胞核；行细胞分裂时，遗传物质以染色体形态出现，因形状粗短可在一般显微镜下观察。
2. 因根尖生长点之分生组织细胞不断地进行细胞分裂，故容易以显微镜观察到染色体。
3. 延长部之细胞不再进行分裂，其遗传物质以染色质或DNA形态出现，不易观察到染色体。
4. 显微观察细胞分裂期，虽看不到细胞核，但看得到纺锤体、染色体或细胞板等构造。
5. 细胞分裂中期，染色体排列在赤道板上，很容易观察，此时可显微照相，并剪下、依照大小成对排列成染色体舆图。
6. 移动中的染色体成＜或＞形状，移动方向为←＜或＞→。
7. 刚分裂完的子细胞较小。
实验1染色体的观察 3洋葱根尖的观察◎ 比较细胞周期中间期与分裂期的特征：(1) 观察间期中细胞核：核膜的形状、核内细丝状的染色质。
(2) 观察分裂期中的细胞：核膜的变化、染色质浓缩成染色体的过程；寻找排列在赤道板中的染色体；寻找移向两极的染色体，及观看其形状；观察母细胞形成细胞板将细胞分隔为两个子细胞；子细胞和母细胞体积大小的改变。
Q ：此实验观察的洋葱根尖纵切玻片标本，可找到同源染色体联会的现象吗？ A ：不行，因为根尖生长点行的是有丝分裂，不出现减数分裂才有的同源染色体联会。
Q ：何处的细胞分裂才可观察到同源染色体联会现象？A ：同源染色体联会只发生在生殖母细胞行减数分裂时，所以发生在植物的大孢子母细胞及小孢子母细胞分别形成精细胞与卵细胞之过程（即花粉、胚珠的成熟过程），分生组织或营养繁殖皆行有丝分裂。
洋葱根尖纵切玻片标本置于载物台以低倍镜观察找出分裂中的细胞观察细胞核的变化以高倍镜分别找出细胞间期与分裂期4 ∣高中基础生物(下) 实验精通Q：赤道板和细胞板是相同的构造吗？A ：不相同。
赤道板是虚拟的板，指的是细胞中央染色体集中排列的位置；细胞板是染色体分别拉向两极时，由高基氏体分泌的果胶钙物质将细胞由中央分隔的初生细胞壁。
1. 显微观察下的洋葱根尖细胞分裂图，依序为：2. 由于观察到的洋葱根尖细胞分裂，只出现二分体，并未出现四分体，即染色体联会现象，因而属于有丝分裂，非减数分裂。
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臂比（ L / S） 1
1～1.7 1.7～3.0 3.0～7.0 7.0以上
表示符号 M m sm st t
ቤተ መጻሕፍቲ ባይዱ
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核型的描述
染色体总数 性染色体
正常男性 46 XY
正常女性 46 XX
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核型描述方法
在用核型式描述一个核型时，第一项是染色体总数（包括性染色体）， 然后是一个逗号，最后是性染色体。下面是一些核型式的举例：
A
B
C
D
E
F
G
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染色体的基本形态特征及分析顺序
Y 染色体：形态和大小，跟 G 组染色体相似。它有以下几个特征： 1. 呈现异固缩状态； 2. Y 染色体长臂常平行靠拢，此点为 Y 染色体与 21、22 号染色体鉴别的
重要标志； 3. 在许多细胞中，在其长臂上可见到次缢痕； 4. 一般来说，它比第 21、22 染色体要长一些； 5. 没有随体； 6. 长臂的端部模糊不清，呈“细毛状”。
亚中着丝点；该组染色体数目多，它们的大小相差不大，在常规标本中是 最难将它们一一识别的。
9 号染色体的长臂有一次溢痕，从着丝粒处延伸到长臂的中部。有时 11 号的长臂也会发现有次溢痕，位置在长臂的1/4～1/3 处。12 号是 C 组 中最小的 1 对，不易与组内其他较短的相互区别。X 染色体被隶属该组， 大小居 6～7 号之间，是亚中着丝点。其中的 1 个常有 “细毛状”的外观。
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染色体的基本形态特征及分析顺序
首先确定 A 组：A 组是七组染色体中最大的一组。 A 组包括三对，即第 1~3 号 6 条染色体。 第1号为最大、是中央着丝粒染色体，长臂近侧有次缢痕； 第2号第二大、亚中央着丝粒染色体； 第3号第三大，是中央着丝粒染色体。比 1 号小三分之一。
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染色体的基本形态特征及分析顺序
第五确定F组： F 组二对，即第 19～20 号 4 条染色体，染色体比 G 组稍大；均为最
小的中央着丝点。 易与其它组区分，但组内两对染色体不易区分。
A
B
C
D
E
F
G
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染色体的基本形态特征及分析顺序
随体：随体是位于染色体末端的、圆形或圆柱形的染色体片段，通过次 缢痕与染色体主要部分相连。它是识别染色体的主要特征之一。根据随体在 染色体上的位置，可分为两大类：随体处于末端的，称为端随体； 处于两 个次缢痕之间的称为中间随体 。人类13、14、15、21和22号染色体具有随 体，其余染色体无随体。
利用 Q 带、G 带等显带技术，可以显示出人 类每一条染色体的特异带型，这为识别和分析每 条染色体提供了必要的条件。
显带染色体
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染色体观察及核型分析
染色体标本制作好后，不经处理直 接染色，一般用 Giemsa 染色，使染色体 （除着丝粒和次缢痕外）都均匀着色。 由于非显带染色体标本不能将每一条染 色体本身的特征完全显示出来。所以， 只能根据各染色体的大致特征（大小、 着丝粒位置）来识别染色体。因此，非 显带染色体核型很难准确鉴别出组内染 色体的序号。
第六确定E组：
E 组三对，即第 16～18 号 6 条染色体，较小，第 16 号是中央着丝 点，长臂上有一次缢痕； 17、18 号是亚中着丝点，后者的短臂较短 。
A
B
C
D
E
F
G
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染色体的基本形态特征及分析顺序
余者为 C 组： C 组包括 7 对常染色体和 1 对 X 染色体。按大小顺序依次排列，均是
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丹佛体制规定
1. 将人类体细胞的 46 条染色体按其相对长度、臂率和着丝粒 位置等三个参数予以识别，分为 23 对。
2. 其中 22 对为男女共有，称常染色体，以其长度递减和着丝 粒位置依次编为1～22 号；划分为 7 个易区分的组，即以字 母A～G表示 7 组染色体；另一对与性别形成有关，随性别 而异，称为性染色体。
染色体数目不够
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46 条 无重叠 形态、大小适中，着丝点位置清晰
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46 条 无重叠 形态、大小适中，着丝点位置清晰
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染色体的基本形态特征及分析顺序
观察统计方法 按染色体自然分
布的图形大致分为几 个区域，分别计数每 区的染色体条数，然 后加起来即是该细胞 的染色体总数。
计数。
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染色体的基本形态特征及分析顺序
观察方法
先用低倍镜选择分散良好的中期分裂相，在高倍镜下再检查一下 中期分裂相的质量，分散差的、分散过度的、分散的圆形轮廓不太完 整的、有染色体重叠的、染色体着色差的或与其它分裂相太靠近的都 不要。
转换油镜对选择好的分裂相进行仔细观察。 找出符合下列要求的分裂相做核型分析：46 条；无重叠；形态、 大小适中，着丝点位置清晰。
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实验报告
1. 什么是核型？人的正 常核型如何表示？
A1
2
3
2. 判断核型是否正常有
B
4
5
些什么表示？
C6
7
8
9
10
3. 在 word上按要求贴成 一完整的染色体核型图。
4. 确定性别。
D 13
E
16
F
19
14
15
17
18
20
11
12
华中科技大学生G 命21 科学与技术22 教学实验X 中Y 心
结束！
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未完全压缩，染色体过长，着丝点位置不明显
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染色体压缩过度，太短，长短臂不易区分
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染色体过分聚集，重叠
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聚集、重叠、过度压缩 华中科技大学生命科学与技术教学实验中心
体标本来完成这项工作。
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丹佛体制（ Denver System）
1960年，在美国丹佛市召开第一届国际细胞遗传学会 议，讨论并确立了正常人核型的基本特点，规定了人类体 细胞中各对染色体的识别标准和统一的分组编号， 即丹佛 （Denver）体制。
Denver 体制是识别和分析人类各种染色体病的基础。
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染色体的基本形态特征及分析顺序
确定性别: 一般根据 C 组和 G 组的染色体数目来判断。 如果 C 组为16 条染色体，G 组为 4 条染色体，可初步
确定该核型为 46，XX。 如果 C 组为 15 条染色体，G 组有 5 条染色体（其中 1
个比其他 4 条略大，且两长臂靠近，为 Y 染色体），则可 初步确定该核型为 46，XY 。
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示意图
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按着丝粒位置分类
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染色体长度测定
染色体长度：可在显微镜下用测微尺直接测量或在 放大的照片上测量得到。通常以微米表示。
绝对长度：不稳定，只有相对意义。 相对长度：是每条染色体的绝对长度与正常细胞全部 染色体总长度的比值，通常用百分比表示。是稳定的比较 可靠的数据。
A
B
C
D
E
F
G
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染色体的基本形态特征及分析顺序
接着确定 B 组： B 组二对，即第 4～5 号（4 条）染色体，较大，均为亚中着丝点，
两者不易区分开。
A
B
C
D
E
F
G
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染色体的基本形态特征及分析顺序
第三确定 D 组： D 组三对，即第 13～15 号 6 条染色体，中等大小。为最大近
非显带染色体
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非显带染色体核型分析的意义
在临床和科研工作中，常需要在光学显微镜下对所 研究的非显带染色体进行初步的观察分析。
这是染色体分析的第一步，通过它可以了解中期染 色体的分散情况及标本质量的好坏，也可以筛选出染色 体数目异常或较大的形态异常。
它是初学者的一项基本训练内容，也是对标本进行 显微摄影的一个不可少的步骤。
端着丝粒染色体，短臂末端有随体。彼此间不易区分 。
A
B
C
D
E
F
G
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染色体的基本形态特征及分析顺序
第四确定 G 组： G 组二对，即第 21～22 号 4 条染色体，是最小的一组。最小的近端着丝粒染色
体，短臂末端有随体，长臂常呈分叉状，21 号稍小于 22 号。 Y 染色体被隶属于 G 组。
染色体观察及核型分析
染色体显带是将染色体经过一定程序的处理， 并用特定的染料染色后，使染色体在其长轴上显 示出一个个明暗交替或深浅不同的横纹，这样的 横纹就叫做染色体的带。
染色体的显带技术分为两大类：一类为整条 染色体的显带技术，如 Q 带和 G 带，另一类为 染色体局部的显带技术，如 J 带和 C 带。
46，XX 正常女性 46，XY 正常男性 45，X 特纳氏综合征。是女性缺少第二条 X 染色体。表现在