双水相萃取实验

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一、双水相系统的相图绘制

1.实验目的

了解制作双水相系统的相图的方法,加深对相图的认识。

2.实验原理

相图是研究两水相萃取的基础,双水相形成条件和定量关系常用相图来表示。图1是典型的高聚物-高聚物-水双水相体系的直角坐标相图,两种聚合物A、B以适当比例溶于水就会分别形成有不同组成、度的两相,上相组成用T点表示,下相组成用B点表示,由图1可知上下相所含高聚物有所偏重,上相主要含B,下相主要含A。曲线TCB称为结线,直线TMB称为系线。结线上方是两相区,下方为单相区,若配比取在曲线上,则混合后,溶液恰好从澄清变为混浊。组成在系线上的点,分为两相后,其上下相组成分别为T和B,T、B量的多少服从相图的杠杆定律。即T和B相质量之比等于系线上MB与MT的线段长度之比。又由于两相密度相差很小,故上下相体积之比也近似等于系线上MB与MT线段长度之比。

图1 A-B-水双水相体系相图

O aqueous two-phase system Figure 1 The phase diagram of the A-B-H

2

3.实验器材和试剂

(1)器材:电子台秤,漩涡混合器,大试管,滴定管,密度计,温度计。(2)试剂:聚乙二醇,硫酸铵,硫酸镁。

4.操作方法

(1)溶液的配制

配制40%的盐(硫酸铵或硫酸镁)溶液

配制40%的聚乙二醇溶液,液体聚乙二醇可用纯溶液。

(2)相图的制作

精确称取一定质量(0.7000g 左右)PEG 溶液于大试管中,按表1所列第1列数据,加入0.5mL 去离子水,用滴定管缓慢滴加已配好的40%的盐溶液,并不断在漩涡混合器上混合,观察溶液的澄清程度,直至试管内液体出现浑浊为止。记录盐溶液的加量(g)。然后,按表格所列第2列数据加入水,溶液澄清,继续向试管中滴加盐溶液并不断混匀,直至再次达到浑浊,如此反复操作。计算每次达到浑浊时,PEG 和盐在系统总量中的质量分数,将实验数据填入表中,以PEG 的质量分数为纵坐标,某种盐的质量分数为横坐标作图,即得到一条双节线的相图。

表1相图制作表

号 水

/g (NH 4)2SO 4溶液加量/g 纯(NH 4)2SO 4累计量/g 溶液累计总量/g (NH 4)2SO 4质量分

数/% PEG 质量分数/% 1 0.5 3.1315 0.895 4.3786 20.4 4.79 2 0.3 2.1792 1.5186 5.9511 21.85 3.02 3 0.3 2.0456 2.1 9.2867 22.65 2.26 4 0.3 3.1372 3.0 12.6738 23.68 1.65 5 0.5 6.0769 4.7 19.3276 24.52 1.08 6 0.5 6.1909 6.5 26.0138 25.02 0.8 7 0.5

6.8585

8.5

33.4596

25.32

0.62

根据以上数据以(NH 4)2SO 4质量分数为横坐标,以PEG 质量分数为纵坐标即可做出相图。

二、双水相系统比例的选择

根据相图,选择五个成相比例。

三、蛋白酶酶活标准曲线的绘制—— Folin 酚法或紫外分光光度法

PEG4000与MgSO4双水相图

y = 0.0995x 2 - 5.3887x + 73.334

2012345

6

20

21

22

2324

25

26

MgSO4%

P E G 4000%

紫外分光光度法测蛋白酶酶活

1.原理

蛋白酶在一定的温度与pH条件下,水解酪素底物,然后加入三氯乙酸终止酶反应,并使未水解的酪素沉淀除去,滤液对紫外光有吸收,可用紫外分光光度法测定。根据吸光度计算其酶活力。酶活单位的定义:每1mL粗酶液,在一定温度和pH值条件下,1min水解酪素产生1ug酪氨酸为一个酶活力单位,以(u/mL)表示。

2.试剂和溶液

2.1三氯乙酸c=0.4mol/L:称取三氯乙酸65.4g,用水溶解并定容至1000 mL。

2.2氢氧化钠溶液c(NaOH)=0.5mol/L

2.3盐酸溶液c(HCl)=1 mol/L及0.1 mol/L

1mol/L HCl:取90mL浓盐酸溶解于去离子水中,定容至1000mL。

0.1mol/L HCl:取9mL浓盐酸溶解于去离子水中,定容至1000mL。

2.4缓冲溶液

a.磷酸缓冲液(pH=7.5)适用于中性蛋白酶

称取磷酸氢二钠(Na

2HPO

4

·12H

2

O)6.02g和磷酸二氢钠(NaH

2

PO

4

·12H

2

O)0.5g,

加水溶解并定容至1000mL。

b.乳酸缓冲液(pH=3.0)适用于酸性蛋白酶

甲液称取乳酸(80%~90%)10.6g,加水溶解并定容至1000 mL。

乙液称取乳酸钠(70%)16g,加水溶解并定容至1000 mL。

使用溶液取甲液8 mL,加乙液1 mL,混匀,稀释一倍,即成0.05moi/L乳酸缓冲溶液。

c.硼酸缓冲溶液(pH=10.5)适用于碱性蛋白酶

甲液称取硼酸钠(硼砂)19.08g,加水溶解并定容至1000 mL。

乙液称取氢氧化钠4.0g,加水溶解并定容至1000 mL。

使用溶液取甲液500 mL、乙液400 mL混匀,用水稀释至1000mL。

上述各种缓冲溶液,均须用pH计校正。

2.5 10g/L酪素溶液

称取酪素1.000g,精确至0.001g,用少量0.5mol/L氢氧化钠溶液(若酸性蛋白酶则用浓乳酸2~3滴)湿润后,加入适量的各种适宜pH的缓冲溶液约80 mL,

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