各类临床微生物标本规范操作流程
临床微生物标本规范化采集和送检
注意事项
✓ 虽粪便含有多种杂菌，但应尽量采用 无菌容器。
✓ 为提高检出率，要采集新鲜粪便作培 养，且应挑取其脓血、 粘液部分。
四、痰及上呼吸道标本的采集
采集痰标本作细菌培养，或涂 片后经特殊染色以检查细菌、真 菌或抗酸杆菌等，以助诊断；从 咽部及扁桃体采取分泌物作细菌 培养或病毒分离
痰及上呼吸道标本
尿液标本
➢ 采集时间： 一般原则 通常应采集晨起第一次尿 液送检。原则上应选择在抗菌药物应 用之前采集尿液。
尿液标本的采集时间
A. 结核分枝杆菌感染 留取晨尿或24小时 尿的沉渣部分10-15ml作涂片检查，若为 培养，患者应停药1-2天后再采样，以提 高阳性率
B. 沙门菌、钩端螺旋体感染 感染后2周左 右采集
采集方法
➢ 自然排便采集法 自然排便后，挑取其脓血、 粘液部分2-3g，液状粪便取絮状物2-3ml， 盛于灭菌容器内或保存液中送检
➢ 直肠拭子方法 如不易获得粪便时，或排 泄困难的患者及婴儿，可用直肠拭子采取， 即以无菌棉拭子用生理盐水湿润后，插入肛 门内4-5cm（幼儿2-3cm）轻轻转动取出， 插入无菌试管内送检。
标本采集--保留导管
• 经由导管抽取5-10ml血液， 进行血培养；
• 再由静脉端抽血进行另外 一套血培养。
标本采集--决定拔除导管 • 从2个独立的外周静脉部 位，无菌采集2套血培养， 同时无菌操作取出导管并 剪下5cm导管末梢送实验 室培养。
血培养标本采集与送检要求--4
2. 未留置深静脉导管者： （1）怀疑血流感染时，从2个不同的外周静脉穿刺部位无
➢ ④尽可能采集更多的液体，至少1ml
手术切口分泌物标本采集
➢ 1、涂片：常规检查+革兰染色 ➢ 先用无菌生理盐水擦拭切口2遍，再用含生
临床微生物样本采集规范
临床微生物样本采集规范临床微生物样本采集规范1. 范围和目的本规范适用于临床微生物样本的采集、处理和管理，旨在保证样本采集的质量和规范性，确保临床微生物诊断结果的准确性和可靠性。
2. 术语和定义（1）微生物：指包括细菌、真菌、病毒、支原体、立克次体、螺旋体等在内的微小生物体。
（2）临床样本：指从患者体内采集的各种生物标本，如血液、口腔、鼻咽部、骨髓、尿液、痰液、脑脊液等。
（3）采集容器：指用于采集临床样本的容器，如血液采集管、尿样瓶、培养皿等。
（4）采集套装：指一次完整的样本采集过程中所需的所有采集工具和材料。
3. 采集前准备（1）确定采集部位、时间和采集方式，注意患者的生命体征和病情变化。
（2）准备好所需的采集套装和采集容器，在样本采集前做好标签，并核对患者信息。
（3）认真阅读所有相关规范和实验室要求，确保样本采集符合要求。
4. 采集操作步骤（1）根据采集部位和样本类型选择合适的采集套装。
（2）采集前应让患者了解采集的目的和过程，并获得其同意。
（3）采集前要检查采集部位，患者的身体状态和生命体征，确保采集过程安全和无痛苦。
（4）采血时应注意采血量、采血速率、采血部位、采血方式等。
（5）尿样采集时应注意尿样的采集量、采集时间、采集方式、保护好样本的完整性和纯度。
（6）痰液采集时应注意痰液的颜色、黏度、量和纯度，选择合适的采集器具和采集方式。
（7）脑脊液采集时应注意采集部位、采集方式、采集量、采血顺序和样本处理标准等。
（8）其他临床样本采集时，应根据具体要求和操作规范，选择合适的采集方法和器具。
5. 样本运输和储存（1）在采集后，立即将样本放入相应的采集容器中，尽快送至实验室进行处理。
（2）若无法立即处理样本，应按要求在采集容器中注明采集时间和采集者信息，并存储在规定温度下，以便后续处理。
（3）运输过程中应遵循规范，确保样本不泄漏、不污染，并尽快送至目的地。
（4）储存过程中应保持样本的纯度和完整性，控制储存温度，在保质期内使用。
临床微生物检验标准化操作
临床微生物检验标准化操作临床微生物检验是临床诊断的重要组成部分，其结果直接关系到患者的治疗方案和预后评估。
因此，标准化操作在临床微生物检验中显得尤为重要。
本文将从标本采集、实验操作、结果判读等方面介绍临床微生物检验的标准化操作。
1. 标本采集。
标本采集是临床微生物检验的第一步，也是至关重要的一步。
不规范的标本采集可能会导致检验结果的误差，影响临床诊断。
因此，在进行标本采集时，需要注意以下几点：（1）标本采集时间，标本采集的时间应符合临床需要，并且应在医生的指导下进行。
不同的微生物在不同的时间段内的检出率可能会有所不同，因此需要根据临床情况选择合适的标本采集时间。
（2）标本采集部位，标本采集部位应选择合适的部位，并且在采集前要进行充分的消毒处理，以避免外部微生物的干扰。
（3）标本容器，不同的微生物需要不同类型的容器进行采集，因此需要选择合适的标本容器，并且在采集后要及时送至实验室进行检验。
2. 实验操作。
实验操作是临床微生物检验的核心环节，其准确性和规范性直接关系到检验结果的准确性。
在进行实验操作时，需要注意以下几点：（1）实验操作环境，实验操作应在符合微生物检验要求的环境下进行，避免外部环境对实验结果的干扰。
（2）实验操作流程，实验操作应按照标准化的操作流程进行，严格控制每一个操作步骤，避免操作失误。
（3）实验操作记录，实验操作过程中需要做好详细的记录，包括标本信息、操作步骤、操作人员等信息，以便后续的结果分析和追溯。
3. 结果判读。
结果判读是临床微生物检验的最后一步，也是决定临床诊断的关键环节。
在进行结果判读时，需要注意以下几点：（1）结果解读标准，对于不同的微生物检验结果，需要根据相应的标准进行解读，避免主观因素对结果的影响。
（2）结果报告准确性，结果报告应准确无误，包括微生物的种类、数量、药敏信息等内容，以便医生进行合理的临床诊断和治疗。
（3）结果保存与追溯，检验结果需要进行有效的保存和追溯，以便后续的质控和审查。
标本采集、运送标准操作规程
4 7
血培养 淋球菌培养
立即 30分钟
1小时 30分钟
阳性结果3天以上，阴性结果7天 2天
8
真菌培养
1小时
2小时
3天后
细菌室项目检验周期表
9 解脲、人型支原体培养及药敏、衣原体培 养 1小时 2小时 2天后
11
一般涂片革兰氏染色
1小时
2小时
5小时
当天下午
12
涂片找抗酸杆菌
1小时
2小时
5小时
当天下午
Байду номын сангаас
查询申请医师，补足标本信息。
仅有申请单而无标本或无菌容器内无标本
与原送检部门联系，退回申请单，要求重送标本
标本外漏及明显受污染（如开塞） 标本收集不符合采集要求 样本混入消毒液 或防腐剂
与原送检部门联系，退回申请单，建议重送标本。 退回申请单，及时通知临床，告知正确收集方法，要求重送标本 退回申请单，及时通知临床，建议重送标本。
13
新型隐球菌墨汁染色
1小时
1小时
5小时
当天下午
• 注： 1. 细菌室正常上班时间为周一至周六
全天、周日上午；其他时间（包括中午、 夜班、周日下午、）常规培养请送急诊化 验室。 • 2．各类血清学检测周一至周五做；支原体、 衣原体检查周一至周六上午做，其余时间 标本一律不接收。 • 3． 空气培养、物表监测周六、周日不做， 于周一至周五打电话给细菌室告之数量。
【标准操作程序】
• 3. 粪便样本
养：
• 5.1采集指征： • 当腹泻患者出现以下任何一种情况时建议采集粪便标本，进行细菌培
粪便涂片镜检白细胞＞5/HP 体温＞38.5℃ 重症腹泻 血便或便中有脓液 未经抗菌药物治疗的持续性腹泻病人
临床微生物标本采集与运送标准操作流程
临床微生物标本采集与运送标准操作流程下载提示：该文档是本店铺精心编制而成的，希望大家下载后，能够帮助大家解决实际问题。
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微生物标本操作流程
微生物标本操作流程一、采集标本1.根据需要使用的微生物种类，选择采集适当的标本类型，如血液、尿液、呼吸道分泌物、伤口分泌物等。
2.采集前洗手，戴好手套，保证操作无菌。
3.根据标本类型选择适当的采集方法，如穿刺、切开、吸引等。
4.采集标本时避免污染和损伤，采集的标本量要充足，确保后续实验的需要。
5.采集后立即将标本放入合适的容器中，并用合适的保存液固定标本。
二、保存标本1.封闭保存a.无菌标本应尽快处理。
b.根据需要，选择适当的保存方式：常温、4℃、-20℃，-80℃等。
c.使用密封标本袋、离心管等避免样本污染。
d.根据需求添加保存液，如生理盐水、甘油、琼脂糖等。
2.运输保存a.标本运输前应按照需要将标本进行适当保存。
c.标本运输时需要严格遵守相关的运输规定和防护措施，避免标本在运输过程中受到污染或损坏。
三、处理标本1.无菌条件下进行标本处理。
2.打开封闭的标本容器时，应尽量减小环境污染。
3.首先进行外部检查，检查标本是否完整，有无明显破损或渗漏。
4.根据需要，将标本分为不同的试管或培养皿中，避免不同菌种相互干扰。
5.针对具体需求，对标本进行不同的处理，如离心、稀释、加酶处理等。
四、传递标本1.打开封闭的标本容器时，应尽量减小环境污染。
3.准备适当的传递容器和传递材料，避免标本在传递过程中受到损坏或污染。
4.标本传递时应尽快送至指定的实验室，避免标本在传递过程中受到温度变化、时间延误等因素的影响。
五、清洗操作区域和工具1.实验完成后，需要对操作区域进行清洁2.清洗操作区域可以使用含有消毒剂的清洁剂，如含有氯己定的漂白粉或消毒液。
3.清洗使用过的工具，如采集器具和传递容器等，使用适当的清洁剂和消毒液进行清洗和消毒，保证无菌状态。
微生物标本操作流程的重点是保持标本的无菌状态，避免标本的污染和损伤。
在每一步操作中，都要严格遵守操作规程和消毒措施，以确保标本的质量和准确性。
此外，还需要根据具体实验需求，选择适当的保存液、保存条件和传递方法。
临床微生物标本规范化采集和送检
临床微生物标本规范化采集和送检临床微生物标本规范化采集和送检是确保实验室检测结果准确性和可靠性的关键步骤。
在临床诊断和治疗过程中，微生物标本的采集和送检必须严格按照规范进行，以保证检测结果的科学性和临床应用的有效性。
本文将对临床微生物标本规范化采集和送检的相关问题进行详细讨论。
一、微生物标本的采集1. 采集工具采集微生物标本时，应使用无菌采集工具，如无菌棉签、无菌注射器、无菌拭子等。
采集工具应一次性使用，避免交叉感染。
2. 采集方法（1）棉签采集法：适用于采集分泌物、排泄物等标本。
将无菌棉签蘸取适量标本，轻轻涂抹于无菌培养基表面，注意避免棉签与培养基接触过紧，以免污染。
（2）拭子采集法：适用于采集皮肤、黏膜等表面标本。
将无菌拭子轻轻擦拭采集部位，将拭子置于无菌培养基中，轻轻按压使标本附着于培养基表面。
（3）注射器采集法：适用于采集深部组织、关节液等标本。
将无菌注射器刺入采集部位，抽取适量标本后，将注射器置于无菌培养基中，拔出活塞使标本流出。
3. 采集注意事项（1）严格遵守无菌操作原则，防止标本污染。
（2）采集标本时，应尽量减少对标本的挤压，避免细胞破裂、毒素释放等现象。
（3）采集标本后，应尽快送检，避免长时间存放导致病原体死亡或变异。
二、微生物标本的送检1. 送检时间微生物标本采集后，应尽快送检，一般不超过2小时。
如无法及时送检，应将标本置于4℃冷藏保存，并在24小时内送检。
2. 送检途径微生物标本应采用专用运送容器，避免与其他物品接触。
标本运送过程中，应注意保持容器密封，防止标本污染。
3. 标本接收实验室接收微生物标本时，应详细核对标本信息，包括患者姓名、性别、年龄、采集部位、采集时间等。
如发现标本不符合要求，应立即与临床工作人员沟通，重新采集标本。
4. 标本处理实验室接收标本后，应按照实验室规程进行对标本的处理，包括开盖、分区、接种、培养等。
在处理过程中，严格遵守无菌操作原则，防止标本污染。
临床微生物检验标本采集规范要求★
24小时尿
记录尿量，将尿液混匀后取适量用于 检验。
粪便标本采集
自然排便
排便后用干净竹签取粪便 表面部分。
直肠拭子
在特殊情况下，如肠道感 染，可用直肠拭子采集粪 便。
粪便量
一般需采集足够量的粪便 用于检验。
呼吸道标本采集
痰液
患者自行咳出痰液，避免唾液和 鼻咽部分泌物。
支气管肺泡灌洗
在特殊情况下，如重症肺炎，可通 过支气管肺泡灌洗采集呼吸道标本 。
确定采集时间
根据患者的病情和检验目的，选择最 佳的采集时间，如空腹采集、餐后采 集等。
注意采集时间与用药时间的间隔，避 免药物对检验结果的影响。
采集人员防护措施
采集人员应穿戴符合要求的防护服、手套、口罩等，确保自 身安全。
采集过程中应遵循无菌操作原则，避免交叉感染和环境污染 。
02
标本采集方法
足或采集方法不当导致检验结果出现偏差。
03
标准化采集时间
根据疾病类型和病情发展，选择合适的采集时间可以提高检验准确性。
例如，对于急性感染患者，应在发热期采集标本；对于慢性感染患者，
应选择在疾病活动期采集。
保障患者安全
减少交叉感染风险
遵循无菌操作原则可以降低交叉感染的风险，保护患者安全。
避免患者不适
采集过程中，应避免接触非检 验部位，确保标本不受污染。
采集后应及时送检，避免长时 间存放导致污染。
防止标本变质
采集的标本应尽快送检，避免长时间 存放导致变质。
保存过程中应定期检查，确保标本质 量。
对于需要长时间保存的标本，应采取 适当的保存措施，如低温、干燥等。
其他注意事项
采集前应了解患者病情和用药情 况，避免干扰检验结果。
临床微生物实验室标本处理流程详细
微生物实验室标本处理流程涂片革兰染色，其他形
态：1.弧形菌属根据标本种类标本接种后油镜下观察染色 2.弯
曲菌3.酵母菌上显板挑选可疑菌落，35°C培养，情况和细菌形
态4其他菌：鉴定参照《全国必要时可做18~24h 检验操作规
程3版》） CO2，厌氧培养 G+球菌G-球菌：主要奈瑟G-杆菌 G+
杆菌（分芽菌属和布兰汉菌属（多为污为主孢和无染，结合
临芽孢）床）触酶（+）触酶试验氧化酶触酶（-）：链球菌属
氧化酶（+）：氧化酶(-): 血浆凝固酶非发酵菌（不动，嗜肠杆
菌属麦除外）血浆凝固酶血浆凝固酶（+）（-）参照《全国
检验操作规一般采用肠杆菌属鉴定板程3版》鉴定，并做链条，
沙门志贺加做血清学球菌属药敏鉴定葡萄糖O/F F（+）：金F （-）：新生霉新生霉素参照《全国检验操作规程按照肠杆菌属
做药敏微球菌试验并报告黄色葡萄素（+）：（-）：腐生3版》
鉴定按照非发酵菌球菌葡萄球菌属做药敏试验并报告表皮葡萄
球菌备注：此图为粗略图，以全国检验操作规程3版为准按照
葡萄球标本处理：1.痰液：血板+麦康凯（插管痰注明）菌属做
药敏 2.大便：血板+麦康凯+SS平板（稀便注明）试验，报
告 3.尿：血板+麦康凯（中段尿注明，用大环取样）
4.棉签取样的标本: 血板+麦康凯(最好以生理盐水湿润后接种)
5.带菌量少的标本：需要增菌处理注意事项：接种标本后平板
注意注明接种时间和标本编号，性病衣原体筛查要留标本于冰
箱中。
支原体标本避免干燥和高温，及时处理为宜。
临床微生物标本采集和运送规范
➢ 可疑细菌性心内膜炎,在1～2h内采集3份血标本,如 果24h后阴性,再采集3份以上的血标本。
12
脑脊液标本采集送检规范
❖ 采集时间：最好在抗菌药物使用前采集。 ❖ 采集方法：通常用腰穿的方法采集脑脊液，
➢ 采集数量：对于细菌性肺炎，痰标本送检每天1次，连 续2～3天。不建议24h内多次采集，除非痰液外观性状 出现改变。
➢ 标本运送：标本应尽快送检（1-2h内），如不能及时
送检，室温保存≤2h，4℃冰箱保存≤24h。
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生殖道标本采集送检规范
❖ 应由临床医师采集，用无菌棉拭子采集。淋球菌 检查时，不论男女尿道及子宫颈均需用拭子插入 尿道及子宫颈3cm深取样送检，要避免受阴道分 泌物污染。
离体后回迅速自溶。肺炎链球菌和流感嗜血杆菌 离体后极易死亡。）。延迟送检时一定不能放冰 箱，肺炎链球菌和流感嗜血杆菌等对温度敏感的 细菌在冰箱会很快死亡。 ❖ 各种无菌体液标本，如胸腹水、浆膜腔积液及各 种穿刺液等亦可注入血培养瓶以提高培养的阳性 率。
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尿液标本采集运送规范
❖ 采集时间：尽量在抗菌药物使用前（多数药物从尿道 排泄）。
15
痰标本采集运送规范
❖ 采集时间：尽量在使用抗菌药物之前 ❖ 采集方法： ➢ 自然咳痰：以晨痰为佳。咳痰前应清洁口腔如刷牙和
漱口，然后用力咳出呼吸道深部痰，直接吐入于无菌 容器中。痰少或无痰者可用3-5%NaCl水溶液5ml雾化吸 入5min导痰（气道高反应如哮喘病人不宜采用此法）。 对于难于自然咳痰者可用微生物室提供的一次性无菌 吸痰杯抽取气管深部分泌物。 ➢ 小儿取痰法 最好用微生物实验室提供的一次性无菌 吸痰杯抽取气管深部分泌物。
临床微生物室标本处理及操作流程ppt课件
弹性纤维
库什曼螺旋体
呈链排列的革兰阳性球菌和革兰阴性球杆菌。缺乏鳞状上 皮细胞提示混合厌氧菌感染
几种细菌的混合形态，缺乏鳞状上皮细胞=混合厌氧菌感染。 如果是呼吸道标本可能是吸入性肺炎。报告临床医生“提示 吸入性肺炎”
你看见多少种形态？
呼吸道标本中未被染色的，有折射的杆菌=抗酸杆菌
呈链排列的革兰阳性球菌？或革兰阳性分枝杆菌？
)1-2种机会致病菌 （查阅凝固酶阴性葡萄球菌的注释）
若为腐生葡萄球菌，则处理与其他致病菌相同； 其他的凝固酶阴性葡萄球菌则视为污染
进行鉴定和药敏，若数量< 105CFU/ml， 仍然对可能的致病菌进行操作
是
> 104 CFU/ml
导管尿
过夜培养
< 104 CFU/ml
继续培养；
否 随后观察；发送初步的培养阴性报告
1-2种机会致病菌（查阅凝固酶阴性葡萄球菌的以上相同注释
多种肠道细菌或混杂的皮肤菌丛； 重新采集清洁标本.
进行鉴定和药敏，若数量< 104CFU/ml， 仍然对可能的致病菌进行操作
若为腐生葡萄球菌， 则处理与其他致病菌相同； 其他的凝固酶阴性葡萄球菌则视为污 染
评价尿培养的标准
病人 无症状者 有症状者，不固定的
标本质量
脓痰
唾液or诱导痰 (?)
粘液样痰 带血痰
用革兰氏染色来评估 呼吸道标本是否合格
痰标本>10鳞状上皮细胞/每低倍视野=拒 收
有PMN的痰标本，中性粒细胞多，且鳞状上皮细胞特别 少=接受，进行培养
粘液丝
胞内细菌 ——提示感染 细胞内细菌
柱状纤毛上皮细胞
肺泡巨噬细胞
滑石颗粒
见于迁延长时间的呼吸道疾病 淀粉样小体
微生物检验流程及操作标准
微生物检验流程及操作标准微生物检验的流程包括以下步骤：1. 标本采集：根据患者的症状和规章制度正确采集标本，及时将采集到的标本送至检验科进行接种处理。
在运送标本的过程中，需要保持相应的温度和氧气，以防止标本干燥。
2. 镜检：检验人员运用显微镜直接观察标本，辨别相关致病菌的形态与数目，并进行初步判断。
必要时，还需要对标本进行染色后再观察，以对致病菌的性质和来源进行鉴别，更能排除污染因素，使标本致病菌的检出率得到大幅度提升。
3. 分离培养：采集的标本中不可避免地会吸附细菌，如果在镜检环节发现标本上吸附的细菌，就需要对标本实施分离纯化，并将其接种于适宜的培养基上，如显色培养基、血平板培养基、营养琼脂培养基等。
再将空气和温度调整至适合细菌生长的数值，获得便于进一步鉴定的细菌。
4. 细菌鉴定：检验人员通过细菌形态、菌落特点、酶类检测、血清学试验、生化反应等方式鉴定分析分离获得的标本，明确致病原因。
微生物检验的操作标准如下：1. 尽量在病程早期、症状典型以及在使用抗生素之前采集标本。
2. 标本应使用无菌容器盛放。
3. 血液为无菌液体，因此在采集时要避免皮肤的正常菌群污染。
多采用血培养瓶运送，随后放入血培养系统自动培养。
如有报阳则进行下一步检验：涂片镜检报给临床初步结果；需氧和厌氧瓶分别转种血平板，巧克力平板与厌氧血平板等；随后进行菌种鉴定以及药敏试验。
4. 脑脊液标本一般需要进行离心，以富集细胞。
一般检验流程为进行涂片镜检，包括革兰染色，抗酸染色与墨汁染色等。
增菌管进行增菌，分离培养转至血平板，巧克力平板，沙保弱平板等。
5. 痰液镜检一般包括革兰染色与抗酸染色，分离培养多用巧克力平板和血平板。
6. 尿液常做定量检测，取10微升尿液进行连续划线。
7. 粪便常用革兰染色做菌群比检测；分离培养多用麦康凯与SS平板。
8. 各类微生物标本应通过传递窗进行传递。
以上信息仅供参考，建议咨询专业人士获取准确信息。
临床微生物标本采集和运送规范
脓液或伤口分泌物标本 采集运送标准
❖ 本卷须知 ❖ 迅速送往实验室，1小时内不能培养应将标本冷藏。 ❖ 皮肤消毒对培养结果至关重要。 ❖ 不要仅送检脓液。脓液不能代表伤口特点，应在病灶
活动区域或基底部采集标本。 ❖ 除非有渗出物，枯燥、结痂伤口一般不做培养 ❖ 标记：不要只写“伤口〞标记标本，应有专门的描述
5
二、临床各类标本的采集、 运送及保存标准
6
血培养的采集、运送标准
❖ 采集程序: ❖ 皮肤消毒程序：推荐三步法 〔酒精→碘伏→酒精〕 ❖ 培养瓶消毒程序：75%酒精消毒 ❖ 静脉穿刺和培养瓶接种程序
❖ 采血量：成人8-10ml，儿童1-3ml。 骨髓采集量1-2ml ❖ 采血时间和数量: ❖ 采血时间:在寒战或体温顶峰到来之前0.5-1h，或于寒战
储存 环境
标本来源
4℃冰 箱
痰、尿液、粪便、气管冲洗物、导尿管、静脉导管、脓液和伤口分泌物 细菌或真菌培养；无菌体液（胸腹水、心包液、关节液、鞘膜积液、胆 汁）真菌培养；支原体培养；衣原体检查；血清学检查（包括ASO、RF、 肥达反应）
室温 脑脊液、生殖道、眼、耳、鼻、喉、血培养、血管导管尖、活检组织细
❖ 注意：从静脉取血；不要与血气和血沉标本一起采血； 不推荐血入瓶前换针头；不推荐静脉血直接入瓶；不宜 在静脉导管或静脉留置口采血〔除非疑心导管相关性血 流感染〕。
8
血培养的采血量
❖ 成人采血量5-10ml〔最好8-10ml〕，儿童采血量1-3ml 〔不超过总血量的1％〕。血液和肉汤之比为1：5~1： 10。骨髓采集量1-2ml。
❖ 应注明具体标本来源如眼标本注明是眼睑、结膜 还是角膜，并注明左眼还是右眼。
18
脓液或伤口分泌物标本 采集运送标准
微生物标本采集操作规程
微生物标本采集操作规程基本原则1.发现感染应及时采集微生物标本作病原学检查，三级医院微生物标本送检率不应低于60%。
2.尽量在抗菌药物使用之前采集标本。
3.标本采集时应严格无菌操作，减少或避免机体正常菌群及其它杂菌污染。
4.标本采集后应立即送至细菌室。
床旁接种可提高病原菌检出率。
5.以棉拭子采集的标本如咽拭子、肛拭或伤口拭子，宜插入运送培养基送检。
6.送检标本应注明姓名、床号、标本来源、检验目的和标本采集具体时间，使细菌室能准确及时接种相应的培养基和适宜的培养环境，提高阳性检出率。
一、血液与骨髓的送检方法1.一般原则:在出现临床症状后应尽快抽血样作培养，最好在发热初期、高热或寒战时，原则上应选择在抗菌药物应用之前，对已应用药物而病情不允许停药的患者应在下一次用药前采血。
2.采血部位：肘静脉。
疑似细菌性心内膜炎时，以肘动脉或股动脉采血为宜，切忌在静滴抗菌药物的静脉处采取血标本。
3.采血最佳时间与频率：急性败血症应在治疗前24小时内抽血3次或者更多次，并在不同部位，如左右手臂或颈部，分别做厌氧、需氧培养以及内毒素、降钙素原检测；急性心内膜炎在治疗前1-2小时内分别在3个不同部位抽血样；怀疑伤寒病人，在病程第1-2周内采静脉血液；肺炎链球菌在寒战、高热或者休克时；布鲁杆菌感染除在发热期采血，还要多次采血，一般是24小时抽3-4次；分枝杆菌感染早期采血样阳性率高。
怀疑菌血症因尽早采血，体温上升阶段采血可提高阳性率，但要防止因等待而延误时机，对已用抗菌药物而不能停药者，可在下次用药前采血。
对疑为伤寒病人，在第1-3周内采集骨髓是最佳时间，在病灶或髂前（后）上棘处严格消毒后抽取骨髓1ml 作细菌培养。
4.采血部位的局部皮肤应严格消毒。
将采集的血液注入血培养瓶前，认真识别相应颜色的瓶，并仔细检查培养瓶有无变色或混浊。
过火消毒针头，血培养瓶撕掉塑料盖后，瓶口不是无菌部位必须消毒。
消毒不能用碘酒消毒而是75%酒精消毒。
微生物实验室标本处理程序
微生物实验室标本处理程序
1.目的
规范标本处理标准操作规程，
2.范围
临床微生物标本
3.职责
微生物检验人员严格执行本程序
4.程序
4. 1血液标本
接收标本后，立即对标本进行编号、登记。
门诊病人要同时登记住址、联系电话等信息。
将血培养瓶置于全自动血培养仪中培养。
4.2痰标本
4.2. 1接收编号、登记后的痰标本，加入痰消化剂或无菌生理盐水处理。
用无菌棉签挑取标本分别涂布于血琼脂平板、巧克力琼脂平板、中国蓝平板的第一区，然后用接种环划第二、第三区..…
4.2 3同时做痰涂片镜检
4.3咽拭子标本涂布于血琼脂平板、巧克力琼脂平板、麦康凯平板的第一区，然后用
接种环划第二、第三区..…
4.4脑脊液、胸腹水等穿刺液
床边抽取体液标本1〜2ml注入多功能体液培养瓶或需氧血培养瓶，即送实验室。
接收标本后，立即对标本进行编号、登记，置孵育箱培养。
脑脊液标本需涂片检查。
4.5粪便或肛拭标本
接收标本后，立即对标本进行编号、登记，取粪便脓血部位标本根据检验申请单要求选择平板，立即接种。
4.6尿标本
接收标本后，立即对标本进行编号、登记，将尿标本混匀，用10^1定量接种环立即接种血琼脂平板、中国蓝平板，分离细菌和菌落计数。
临床微生物标本规范化采集和送检【院级】
第五节：胃肠道标本
胃肠道感染，包括细菌性痢疾、微生物引起的胃肠炎、细菌性食物中毒、 肠道感染、消化性溃疡和抗生素相关性腹泻等疾病，是细菌、真菌、病毒、 原虫和寄生虫经口腔进入消化道后一定条件下引起的胃肠道功能障碍。由于 引起胃肠道感染的微生物种类繁多，诊断比较困难，因此加强对胃肠道标本 的病原微生物检测具有重要临床意义。正确的标本采集和及时送检是保证胃 肠道感染细菌学检验质量的关键。
四)实验室拒收原则
对于没有将患者和采集信息标识完整的标本应及时联系临床医师，补全信息对于标 本容器贴错标签、送检容器不合格、送检时间超过规定时间、样本保存不当、有明显的污 染等时应拒收。
第六节：生殖道标本
生殖系统感染主要包括外阴部病变、尿道炎、阴道炎、阴道病、宫颈炎、子宫 内膜炎和盆腔炎。病原体包括细菌、真菌、淋病奈瑟菌、解脲脲原体和人型支原 体、沙眼衣原体等。各类感染的临床症状和体征比较相似，临床不易区分。通过 检测明确诊断对于治疗，尤其是保证患者治疗依从性至关重要。
二)标本采集
首先应应无菌生理盐水或注射用水清洁创面 1.表面拭子：采用无菌棉拭子用力刮取创面，置无菌试管内，封闭管口； 2.组织细菌定量培养的标本采取：在无菌条件下，切取深度烧伤痂下组织,以0.3-0.5克 为宜， 3.厌氧培养：不能用拭子，而应采用注射器抽吸的方法采集深部、创面边缘的标本。
ቤተ መጻሕፍቲ ባይዱ
三)标签及申请单：
四)标签及申请单
每份标本都应贴上标签并标明必要信息，在检验申请单上填写足够的有关 临床资料。包括病人情况（病区、病人姓名、住院号）、标本情况（标本类 型、检验目的、采集部位、采集方法、采集时间等）和病人用药等信息。
五)标本运输
标本应在室温下15分钟内送到检验科。如果超过2小时送达，冷藏保存。
临床微生物标本采集作业指导书
临床微生物标本采集作业指导书一、引言本文档旨在提供临床微生物标本采集作业的指导，以确保标本采集的质量和准确性。
本指导书适用于医疗机构的相关工作人员，包括医生、护士和实验室技术人员等。
二、目的准确的微生物标本采集是诊断和治疗感染病例的重要环节。
本指导书的目的是提供清晰的指导，确保标本的采集过程符合规范，以减少错误和污染的风险，从而提高诊断的准确性。
三、采集前准备在进行微生物标本采集之前，需要做好以下准备工作：1.了解标本类型和采集方法：不同类型的标本需要采集不同的方法，例如血液标本、尿液标本和呼吸道标本等。
在采集前要了解每种标本的采集方法和要求。
2.准备采集工具和材料：根据标本类型和采集方法，准备好相应的工具和材料，例如采血针、尿液收集容器和标本袋等。
3.按照消毒和无菌要求准备采集区域：在采集前要确保采集区域干净、消毒和无菌。
根据需要，可以使用消毒剂和无菌覆盖物等。
四、标本采集步骤4.1 血液标本采集血液标本采集是常见的微生物标本采集方法之一。
下面是血液标本采集的步骤：1.确定采集部位：通常选择患者的上臂静脉作为采集部位。
2.消毒：用75%乙醇消毒采集部位，采用无菌棉球擦拭。
3.选择合适的采血针：根据患者的年龄和采血需要选择合适的采血针。
4.采集血液：在消毒后，用采血针穿刺患者的静脉，收集所需的血液量。
5.采集完毕后，用无菌棉球和胶布固定针头，然后将血液转移到标本管中。
6.标本管标记：在标本管上正确标记患者的信息和采集时间等。
4.2 尿液标本采集尿液标本采集常用于泌尿系统感染的诊断。
以下是尿液标本采集的步骤：1.洗手：采集前要洗手并戴好一次性手套。
2.选择合适的容器：选择容量合适的尿液收集容器。
3.女性患者：清洁外阴部，将尿液收集容器放置在外阴，以接收尿液。
4.男性患者：将尿液收集容器放置在清洁的阴茎上方，以接收尿液。
5.患者采集尿液：患者尽量采集中段尿，避免采集到开始或结束的尿液。
6.收集完毕后将尿液收集容器密封，标记患者的信息和采集时间等。
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尿培养操作流程
二、标本采集和运送 (一)容器： l、由不与尿液成份发生反应的惰性材料制成； 2、洁净、无菌、加盖、密封、防渗漏； 3、不含防腐剂和抑菌剂，一次性使用； 4、容积应>50ml、开口—直径应>4cm、具有较宽的底部、盒盖易于开启。 (二)标本采集方法 注意尽量采集晨尿标本，应保证尿液在膀胱内停留4h以上。 1、清洁中段尿 是最常用获得尿培养标本的方法(该方法很难使尿标本做到不被污染，需对结果进行评价)。 留取标本前须向病人详细说明标本留取的方法和注意事项： (1)睡前少饮水，以免稀释尿液 (2)女性病人用手分开大阴唇，男性病人翻上包皮，用肥皂将会阴部仔细清洗，然后以清水冲 洗尿道口周围。 (3)前段尿排去，将中段尿约10/20ml直接排入专用的无菌容器中。 2、耻骨上膀胱穿刺法 严格按无菌操作，使用注射器直接从耻骨上经皮穿入膀胱，吸取尿液。该方法是评估膀胱内 细菌感染的“金标准”。
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血培养操作流程
临床知识
当微生物侵入血液迅速繁殖超出免疫系统清除这些微生物的能力时形成菌血症或 真菌血症 血培养常见菌：革兰阴性菌主要包括大肠杆菌，肺炎克雷伯菌，阴沟肠杆菌，产 气肠杆菌，伤寒沙门菌，绿脓杆菌，鲍曼不动杆菌等；革兰阳性菌主要包括金黄 色葡萄球菌，凝固酶阴性葡萄球菌，念珠菌属等。菌血症是临床医学急症，引起 菌血症的细菌通常是多重耐药菌，尽快采集血液进行培养(血培养)和准确的抗生 素敏感试验报告对危重患者感染的诊断，治疗和预后有重要的临床意义，血培养 是把静脉穿刺获得的血液接种到一个或多个培养瓶中，用来发现、识别细菌或其 它可培养分离的微生物。
中级报告：报告直接抗菌药物敏感试验结果和细菌种属的初步鉴定结果 最终报告：报告细菌种属名和标准抗菌药物敏感试验结果
2．阴性报告： 普通血培养3天无细菌生长可（电话）报告为：“72h培养未见细菌生长”，但培 养瓶要继续培养至7/5天，如果发现有菌生长，可发补充/最终报告。培养至所须时间 仍为阴性，应转种巧克力平板/血平板。某些特殊致病菌培养时间需延长
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血培养操作流程
四、结果报告
1．阳性结果报告 初级报告：阳性血培养结果非常重要，应该立即口头报告给医生， 包括：革兰染色特性和形态，血培养阳性的瓶数和其它的鉴定信息(如革兰阳性球 菌疑似为葡萄球菌等)。报告之前，应该回顾一下患者近期标本微生物培养情况，这 些结果有助于解释感染微生物的来源。同时记录报告的日期，时间，内容以及接受 报告人的姓名。
各类临床微生物标本规范 操作流程
天地人公司售后服务部
天地人生物科技有限公司技术部
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目录
血培养操作流程 尿培养操作流程 痰培养操作流程 粪便培养操作流程 皮肤脓肿，抽吸液等培养操作流程
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血培养操作流程
二、血标本采集和运送 1．采血指征：一般患者出现以下一种体症时可作为采血的重要指征：发热 (≥38℃)或低温(≤36℃)，寒战，白细胞增多(计数大1×109/L，特别有“核左移” 未成熟的或杆状核白细胞)，皮肤粘膜出血，昏迷，多器官衰竭，血压降低，CRP 升高及呼吸快，特殊患者(如血液病)出现粒细胞减少(成熟的多形核白细胞 <1000×109/L)，血小板减少等，或同时具备上述几种体症的临床可疑菌血症应采 集血培养。新生儿菌血症，应该增加尿液和脑脊液培养。对入院危重感染患者在 未进行系统性抗菌药物治疗之前，应及时采集血培养。
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尿培养操作流程
(三)结果观察和结果解释 1、菌落计数：(1)采用0.001ml接种量者，将平板菌落数乘以103(CFU／m1)；(2)采用 0.01m1接种量者，将平板菌落数乘以102(CFU／m1)。 2、一般解释标准：单种细菌苗落数>105CFU／ml可能为感染；<104CFU／ml可能为污染， 在两者之间需要根据病人的临床表现进行评估。 3、不同来源标本结果解释(见表1)
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尿培养操作流程
三、实验室检查 (一)标本的验收 1、工作人员应首先检查化验单所提供的信息，信息应包括：标本收集时间、标本收集方式、 病人是否已使用抗生素等。对信息不全者应设法和临床医师取得联系，在没有获得可靠信息之 前，任何标本都不能随意丢弃。 2、根据标本采集时间、所用容器确定标本是否合格。 3、对不合格的标本注明原因，退回，并做记录。 (二)培养基选择和标本接种 根据标本来源及临床诊断选择适合的培养基和培养条件。 1、一般培养：将收集标本的容器轻轻旋转混匀，用定量接种环或无菌微量加样器取尿液 0.00lml接种于血平板和麦康凯平板或中国兰平板，35-37℃培养18～24h。对导尿、耻骨上膀 胱穿刺、已使用抗生素治疗的病人的标本应增加一个0.01ml接种量。 2、特殊培养：对怀疑有苛氧菌感染者应采用耻骨上膀胱穿刺法或导尿法采集样本，加种一 块巧克力平板，置5％CO2环境中培养48h。对临床要求真菌、淋病奈瑟菌及结核杆菌培养者， 可参照有关章节选择接种相应的特殊培养基进行培养。 3、经18～24h培养无菌生长者，应将所有培养基继续培养24h。
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尿培养操作流程
尿培养检查的临床指征(有下列情况之一者，应进行尿培养) (1)有典型的尿路感染症状；
(2)肉眼脓尿或血尿；
(3)尿常规：白细胞和／或亚硝酸盐阳性； (4)不明原因的发热，无其他局部症状； (5)留置导尿管的病人出现发热； (6)膀胱排空功能受损； (7)泌尿系统疾病手术前。
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尿培养操作流程
一、相关临床知识 (一)概述 尿道感染是指尿道内有大量微生物繁殖而引起的尿路炎症。从肾脏排泌出来的尿液正常情况 下是无菌的。如果在尿液中分离出细菌(排除污染因素)即称为菌尿，同时伴有感染症状者称为 尿路感染。尿路感染并非是一种单一的疾病，而是一种临床综合症。根据感染部位可分为上尿 路感染(肾盂肾炎)及下尿路感染(膀胱炎)，男性还可出现前列腺炎。不同部位同时感染也很常见。 (二)易感人群 尿路感染是最常见的感染之一，可发生于各个年龄段的人群，好发女性，男：女比为1：10。 (三)发病机理及常见致病菌 1、上行感染：肠道菌群逆行感染是泌尿系感染最常见的方式。女性尿道宽而短，且尿道口 距肛门较近而常被粪便细菌污染，故更易感染；此外，女性阴道菌群也是尿路感染病原菌的又 一个主要来源。这种方式引起的感染多为单一细菌感染，大肠埃希菌是主要致病菌，其次是克 雷伯菌属和变形杆菌属(后两者远远少于前者)，有时也会发生混合感染。 2、泌尿系统解剖结构和生理功能改变引起的感染：如留置导尿管，肾盂造瘘术，尿路结石， 尿路重建、前列腺肥大，膀胱排空能力受损等，不仅有利于微生物的粘附和侵入，使感染易发， 而且改变了尿路感染的致病菌范围，其感染菌除上述的大肠埃希菌、克雷伯菌属和变形杆菌属 以外，其他革兰阴性杆菌如肠杆菌属，普罗威登菌属、沙雷菌属、不动杆菌属、假单胞菌属也 是常见的致病菌；此外，由血浆凝固酶阴性葡萄球菌、肠球菌和酵母菌等引起的感染也很常见； 并且容易发生多种微生物的混合感染，易被误认为标本污染。 3、血行感染：是一种比较少见的感染方式。菌血症病人，血液中的细菌可通过血流进入肾 脏，引起感染。常见的病原菌有葡萄球菌、伤寒沙门菌、念珠菌和结核分枝杆菌等。 4、直接感染：外伤或肾周围器官发生感染时，细菌可直接侵入肾脏引起感染。 10 2017/9/15
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血培养操作流程
4．静脉穿刺和培养瓶接种程序 1)用注射器无菌穿刺取血后，勿换针头直接注入血培养瓶， 2)血标本接种到培养瓶后，轻轻混匀以防血液凝固。立即送检，切勿冷藏。 5．采血量 成人采血量是8～l0ml，儿童l～5ml。血液和肉汤之比为1：5～l：10。 6．血培养份数和采血时间 采血培养应该尽量在使用抗菌药之前进行，在24h内采集2～3份血培养(一次静脉采血注入到 多个培养瓶中应视为单份血培养)。对间歇性寒战或发热应在寒战或体温高峰到来之前0.5～1h 采血液，或于寒战或发烧后lh进行。特殊的全身性和局部感染患者采血培养的建议： 1)可疑急性原发性菌血症、真菌血症、脑膜炎、骨髓炎、关节炎或肺炎，应在不同部位采集 2～3份血标本。 2)不明原因发热，如隐性脓肿，伤寒热和波浪热，先采集2～3份血标本，24～36 h后估计体 温升高之前(通常在下午)再采集2份以上。 3)可疑细菌性心内膜炎，在l～2h内采集3份血标本，如果24h后阴性，再采集3份以上的血标 本。入院前两周内接受抗菌药物治疗的患者，连续三天，每天采集2份。选用可中和或吸附抗 菌药物的培养基。 7．标本运送 采血后应该立即送检，如不能立即送检，需室温保存或置35℃～37℃孵箱中，切勿冷藏。
பைடு நூலகம்
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血培养操作流程
四、结果报告
1．阳性结果报告 初级报告：阳性血培养结果非常重要，应该立即口头报告给医生， 包括：革兰染色特性和形态，血培养阳性的瓶数和其它的鉴定信息(如革兰阳性球 菌疑似为葡萄球菌等)。报告之前，应该回顾一下患者近期标本微生物培养情况，这 些结果有助于解释感染微生物的来源。同时记录报告的日期，时间，内容以及接受 报告人的姓名。
2．皮肤消毒程序：严格执行以下三步法： 1）70％酒精擦拭静脉穿刺部位待30s以上。 2)1％～2％碘酊作用30s或10％碘伏60s，从穿刺点向外画圈消毒，至消毒 区域直径达3cm以上。 3)70％酒精脱碘。 3．培养瓶消毒程序 1)70％酒精擦拭血培养瓶橡皮塞，作用60s。