微生物标本采集规范(1)

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微生物标本采集规范

• 2、下呼吸道标本
（1）自然咳痰法以晨痰为佳。用清水反复漱口，用力咳出呼吸道深部的痰，痰液直接吐入无菌容器中，尽快送检。否则有的细菌（如肺炎链球菌、流感嗜血杆菌）在外界可能死亡。不能及时送检的标本，室温保存≤2h。要求采到肺深部的痰液，不要唾液。
• （2）诱导痰：在医护人员指导下，用3 NaCL诱导咳出痰液，用于结核分枝杆菌和肺孢子菌检测。
临床常见微生物学检验标本通常有血液、痰液、尿液、粪便、伤口的脓液、胸水、腹水、脑脊液及泌尿生殖系统的分泌物等，下面分别介绍各种标本的采集方法。
一、呼吸道标本采集规范
病原体种类繁多而复杂使呼吸道感染病原诊断成为难题
➢细菌 ➢真菌（包括肺孢子菌） ➢病毒 ➢支原体、衣原体与立克次体 ➢原虫 ➢寄生虫
（二）采集方法
1、咽拭子及鼻拭子采集前患者应用冷开水反复漱口，拭子的选择：要求无菌、不含抑制剂；预先沾湿拭子（非常重要）；由检查者将舌向外拉，使腭垂尽可能向外牵引，将棉拭子通过舌根到咽后壁或腭垂的后侧，涂抹数次以取得标本。对化脓性扁桃体炎或口腔念珠菌病，直取病灶部位，拭子要避免接触口腔及舌粘膜。减少污染。立即送检。室温保存。接种同痰
（一）采集指征 •凡是发热、咳嗽和咳痰，痰呈脓性、粘稠或血性，并伴有胸痛、气急，肺部闻及湿罗音，外周白细胞总数及中性粒细胞比例明显增高，X 线检查提示肺部有炎性浸润或胸腔积液，甚至出现感染性休克和呼吸衰竭等患者，应采集痰液或下呼吸道标本。
•对可疑烈性呼吸道传染病（如SARS、肺炭疽、肺鼠疫等）患者采集检验标本时必须注意生物安全防护。
2．耻骨弓上膀胱穿刺采集尿使用无菌注射器直接从耻骨上经皮肤消毒穿入膀胱吸取尿液，是评估膀胱内细菌感染的“金标准”方法，但患者不易接受，主要用于厌氧菌培养或留取标本困难的婴儿尿标本的采集。

临床微生物样本采集规范

临床微生物样本采集规范临床微生物样本采集规范1. 范围和目的本规范适用于临床微生物样本的采集、处理和管理，旨在保证样本采集的质量和规范性，确保临床微生物诊断结果的准确性和可靠性。

2. 术语和定义（1）微生物：指包括细菌、真菌、病毒、支原体、立克次体、螺旋体等在内的微小生物体。

（2）临床样本：指从患者体内采集的各种生物标本，如血液、口腔、鼻咽部、骨髓、尿液、痰液、脑脊液等。

（3）采集容器：指用于采集临床样本的容器，如血液采集管、尿样瓶、培养皿等。

（4）采集套装：指一次完整的样本采集过程中所需的所有采集工具和材料。

3. 采集前准备（1）确定采集部位、时间和采集方式，注意患者的生命体征和病情变化。

（2）准备好所需的采集套装和采集容器，在样本采集前做好标签，并核对患者信息。

（3）认真阅读所有相关规范和实验室要求，确保样本采集符合要求。

4. 采集操作步骤（1）根据采集部位和样本类型选择合适的采集套装。

（2）采集前应让患者了解采集的目的和过程，并获得其同意。

（3）采集前要检查采集部位，患者的身体状态和生命体征，确保采集过程安全和无痛苦。

（4）采血时应注意采血量、采血速率、采血部位、采血方式等。

（5）尿样采集时应注意尿样的采集量、采集时间、采集方式、保护好样本的完整性和纯度。

（6）痰液采集时应注意痰液的颜色、黏度、量和纯度，选择合适的采集器具和采集方式。

（7）脑脊液采集时应注意采集部位、采集方式、采集量、采血顺序和样本处理标准等。

（8）其他临床样本采集时，应根据具体要求和操作规范，选择合适的采集方法和器具。

5. 样本运输和储存（1）在采集后，立即将样本放入相应的采集容器中，尽快送至实验室进行处理。

（2）若无法立即处理样本，应按要求在采集容器中注明采集时间和采集者信息，并存储在规定温度下，以便后续处理。

（3）运输过程中应遵循规范，确保样本不泄漏、不污染，并尽快送至目的地。

（4）储存过程中应保持样本的纯度和完整性，控制储存温度，在保质期内使用。

微生物标本采集原则

微生物标本采集原则血液标本：采血时间：应在抗生素治疗前、发热初期或高峰时为好。

方法：以无菌方法从患者静脉采血，血液抽出后，立即以无菌操作注入双相培养瓶中，充分混匀后送检。

采血量：成人3-5ml；小孩1-3ml。

脑积液标本：方法：由临床医生以无菌操作作腰椎穿刺，取收集于第一支无菌试管中的脑脊液（2-3ml）立即送检。

穿刺液标本（胸水、腹水、心包积液及关节液等）：方法：用无菌方法用注射器抽取体内可疑感染部位的液体（胸水、腹水、心包积液及关节液等），立即以无菌操作注入双相培养基瓶中，充分混匀后送检。

痰标本：采集时间：一般以晨痰为好。

方法：在流取痰标本前用清水反复漱口（务必刷牙），以减少常居菌污染，后尽量咳出气管深部痰标本，吐入无菌容器内立即送检。

咽拭标本：用无菌棉拭纸搽拭患者鼻烟部黏膜，置无菌试管内送检。

尿液标本：方法：留取标本前先清洗外阴或尿道口，弃去前段尿，留取中段尿于无菌容器内送检。

标本量：5-7ml。

生殖道标本：女性：用无菌棉拭采集阴道或宫颈分泌物盖回试管内送检。

男性：务必将尿道口清洗干净，用无菌男性棉拭采集尿道分泌物。

采集前列腺液时将按摩流出的前列腺液滴于无菌男性棉拭送检。

浓液及创伤感染分泌物标本：封闭性脓肿标本：消毒局部皮肤或黏膜表面后，用注射器抽取，将注射器针头盖回立即送检。

开放性伤口分泌物：先用无菌生理盐水冲洗伤口表面，用无菌棉拭尽量取伤口深处分泌物送检。

表面皮肤刮片标本（真菌培养）：在病灶皮肤表面用玻片轻轻刮取，将皮肤表皮刮起，将无菌棉拭用无菌生理盐水弄湿涂取刮起的皮削送检。

粪便标本：自然排便后，用无菌棉拭挑取其浓血、粘液部分送检。

注：1、所有标本采集容器都应是一次性、经过灭菌及带盖的无菌容器。

2、请各位医生及护士严格按照无菌操作原则采集标本，否则将会误导临床诊断和治疗等后果。

3、标本采集时如有疑问请致电检验科质询。

微生物标本的采集

伤口微生物标本采集法（一）——表面伤口微生物标本的采集
慢创中心吴帅
在压疮的整个治疗中，创面分泌物的培养是其中不可或缺的一个环节，下面具体介绍分泌物培养的留取方法及注意事项。

采集方法：
（1）用无菌生理盐水充分冲洗，以去除表面的渗出物、坏死组织和残留的敷料纤维，确保伤口是干净的。

（2）用无菌棉拭子擦涂创面的边缘和基底，应用10点取材法沿数字走“之”字形涂抹，拭子要不停转动，并以一定压力擦拭创面，确保拭子吸收足够的伤口渗液。

（3）拭子放在运送培养基中立即送检。

注意事项：
（1）采样时为了减少定植菌的混入，建议先轻轻擦去创面处皮肤表面的脓液，擦拭时如使用棉球容易使棉絮遗留在伤口内，因此建议使用完整的无菌方纱。

（2）为了不混入消毒液影响细菌生长，应该采用无菌生理盐水充分冲洗，避免使用消毒液擦拭伤口表面。

（3）焦痂不应用于细菌培养，要去除坏死和失活的组织，再做培养，因为细菌最多在坏死和正常组织之间。

（4）采集压疮边缘的脓性分泌物，不要采集创口周围的渗液。

（5）如果渗液较多，能抽出液体来，就尽量使用穿刺的方法采集标本，棉拭子对细菌有一定的抑菌作用。

微生物检验标本采集规范

微生物检验标本采集规范
正确采集、运送、保存及处理微生物检验标本，对于保证微生物检验质量至关要，为了准确检出病原菌，避免漏检及误诊，临床医护人员及实验室工作人员应掌握微生物检验标本采集、运送、保存及处理原则。

下面是yjbys 小编为大家带来的关于微生物检验标本采集规范的知识，欢迎阅读。

标本采集的一般原则：
1、早期采集：采集时间最好是病程早期，急性期，且必须在使用抗菌药物(俗称消炎药)之前采集，确保病原菌的检出;
2、无菌操作：采集标本时应尽量减少或避免感染部位附近皮肤或黏膜常居菌群污染和防止外源性细菌污染标本，采集的标本盛于无菌容器内送检。

盛装标本的容器不能使用消毒剂处理，标本中也不得添加防腐剂，以免降低病原菌的分离率;
3、适量标本：标本量过少可能导致假阴性结果。

各种标本采集注意事项：
一、呼吸道标本采集
(1) 送检指征：凡是发热、咳嗽和咳痰，痰呈脓性，黏稠或血性，并伴有胸痛，气急，外周血白细胞总数及中性粒细胞比例明显增高，应采集痰液或下呼吸道标本。

(2) 标本采集时间：a、以晨痰为好，患者清晨用凉开水反复漱口后用力自气管咳出第一口痰，将痰采集于无菌容器中尽快送检。

b、在应用抗菌药物之前采集标本。

二、脓液及创伤感染分泌物标本采集
(1) 送检指征：红、肿、热、痛和功能障碍是化脓性感染的五个典型特征。

临床微生物标本采集规范

（3）最后用75%酒精脱碘，待酒精挥发干燥后采血。
新生儿及对碘过敏的患者，只能用 75%酒精消毒60s，待穿刺部位酒精挥发干燥后穿刺采血。
2.培养瓶消毒程序：（1）用75%酒精（不要用碘液消毒）消毒血培养瓶橡皮塞，作用60秒。（2）用无菌纱布或无菌棉签擦去橡皮塞表面剩余的酒精，然后注入血液。
❖ 2. 有肉眼脓尿或血尿； ❖ 3. 尿常规检查白细胞或亚硝酸盐阳性； ❖ 4. 有不明原因的发热，无其他局部症状； ❖ 5. 留置导尿管的患者出现发热； ❖ 6. 膀胱排空功能受损； ❖ 7. 泌尿系统疾病手术前；
（二）尿培养标本采集方法
标本采集应在使用抗生素之前，避免消毒剂污染标本。
❖ 清洁中段尿留取清晨清洁中段尿标本，先用肥皂水仔细清洗会阴部，再用清水冲洗尿道口周围；将前段尿排去，留取中段尿10ml左右于无菌容器内，立即加盖送检，2h内接种。该方法简单、易行，是最常用的尿标本收集方法，但是容易受到皮肤细菌污染。
要求： ✓ 严格无菌操作，不允许在皮肤消毒后用手按
压静脉，除非带有无菌手套。 ✓ 不推荐采血和接种血培养瓶更换注射器针头，
采用真空采血装置能降低污染率。
（三）血培养标本采集和运送
1.采集时间
在使用抗菌药物之前
寒战和发烧开始出现2小时内，此时为采集血培养标本进行病原菌培养的最佳时机。
疑似感染性心内膜炎或导管相关性感染时，患者呈持续菌血症状态，需要在24小时内多次采集血培养，以提高检出率
❖ 留置导尿管收集尿液：留置导尿患者应消毒导尿管上端外部及尿管口，采取无菌操作方法，用注射器通过导尿管吸取尿液。注意防止混入消毒剂，不能从尿液收集袋中采集尿液。长期留置导尿管患者常规尿培养没有临床意义,应在更换新导尿管后抽取，导尿管留置时间延长易导致定植菌大量繁殖。

临床微生物标本规范化采集和送检

2 本需要清除正常菌群和标签和申请单信息要完整
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严格无菌操作
1.在抗菌药物使用前采集标本。
临床疑似感染的患者, 必须先采集微生物标本送检, 再使用抗菌药物进
行治疗。
2.无菌部位的标本更具有临床价值, 有菌部位采集的标本需要清除正常菌群和定植细菌才有意义。
应尽量送检无菌部位的标本, 尤其是血培养。有菌部位标本应避免 “正常菌群导致标本的污染”。人体很多部位, 如下呼吸道（痰液标本）、鼻窦、皮肤伤口等处的正常菌群极易污染标本。因此, 从这些部位采集标本, 要尽可能降低这些部位正常菌群或定植细菌对标本污染的可能性。有菌部位的标本不是最理想的微生物标本。
临床微生物标本规范化采集和送检
总则
疾病的正确诊治需要以正确的病原学检测作为指导, 而正确的病原学检测其前提是采集和送检合格标本。因此, 必须规范微生物标本的采集和运送, 避免因标本的不合格, 产生错误的病原学检测结果而误导临床治疗。
微生物标本采集基本原则
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在抗菌药物使用前采集标本
无菌部位的标本更具有临床价值, 有菌部位采集的标
粪便标本采集法
1.自然排便法
患者在干燥清洁便盆（避免使用坐式或蹲式马桶）内自然排便后, 挑取有脓血、黏液部分的粪便2-3g（液体粪便则取絮状物1-3ml）放入无菌便盒内送检。若无黏液、脓血, 则在粪便上多点采集送检。此为常规方法。
2. 直肠拭子法
用肥皂水将肛门周围洗净, 将占有无菌生理盐水的棉拭子插入肛门4-5cm （儿童为2-3cm）。棉拭子与直肠粘膜表面接触, 轻轻旋转拭子, 可明显在拭子上见到粪便。将带有粪便标本的棉拭子插入运送培养基, 立即送检。本方法仅适用于排便困难的患者或婴幼儿, 不推荐使用拭子做常规标本。

临床微生物标本规范化采集和送检

临床微生物标本规范化采集和送检临床微生物标本规范化采集和送检是确保实验室检测结果准确性和可靠性的关键步骤。

在临床诊断和治疗过程中，微生物标本的采集和送检必须严格按照规范进行，以保证检测结果的科学性和临床应用的有效性。

本文将对临床微生物标本规范化采集和送检的相关问题进行详细讨论。

一、微生物标本的采集1. 采集工具采集微生物标本时，应使用无菌采集工具，如无菌棉签、无菌注射器、无菌拭子等。

采集工具应一次性使用，避免交叉感染。

2. 采集方法（1）棉签采集法：适用于采集分泌物、排泄物等标本。

将无菌棉签蘸取适量标本，轻轻涂抹于无菌培养基表面，注意避免棉签与培养基接触过紧，以免污染。

（2）拭子采集法：适用于采集皮肤、黏膜等表面标本。

将无菌拭子轻轻擦拭采集部位，将拭子置于无菌培养基中，轻轻按压使标本附着于培养基表面。

（3）注射器采集法：适用于采集深部组织、关节液等标本。

将无菌注射器刺入采集部位，抽取适量标本后，将注射器置于无菌培养基中，拔出活塞使标本流出。

3. 采集注意事项（1）严格遵守无菌操作原则，防止标本污染。

（2）采集标本时，应尽量减少对标本的挤压，避免细胞破裂、毒素释放等现象。

（3）采集标本后，应尽快送检，避免长时间存放导致病原体死亡或变异。

二、微生物标本的送检1. 送检时间微生物标本采集后，应尽快送检，一般不超过2小时。

如无法及时送检，应将标本置于4℃冷藏保存，并在24小时内送检。

2. 送检途径微生物标本应采用专用运送容器，避免与其他物品接触。

标本运送过程中，应注意保持容器密封，防止标本污染。

3. 标本接收实验室接收微生物标本时，应详细核对标本信息，包括患者姓名、性别、年龄、采集部位、采集时间等。

如发现标本不符合要求，应立即与临床工作人员沟通，重新采集标本。

4. 标本处理实验室接收标本后，应按照实验室规程进行对标本的处理，包括开盖、分区、接种、培养等。

在处理过程中，严格遵守无菌操作原则，防止标本污染。

(完整版)微生物标本采集及保存要求

微生物标本采集及保存要求一、总则：用于培养的标本在收集时应注意严格无菌操作和及时送检，检测后标本应妥善保存。

二、临床标本的采集（一）下呼吸道分泌物（痰液）令患者早上起床后用清水濑口，不要刷牙，立即从下部呼吸道咳出第一口痰，吐在无菌塑料痰盒中，及时送检。

（二）、尿液（中段尿）护理人员协助采取中段尿约3ml入无菌试管中，及时送检。

（三）、粪便：取有粘液、脓血部分的粪便置玻璃大便专用管中，如为稀水便，可直接收集于玻璃管中，及时送检。

（四）、眼、耳、鼻、喉拭子：将棉拭子沾取少许无菌生理盐水（如沾取的太多，可在无菌生理盐水瓶壁上挤去多余的水份），然后采取可疑部位的分泌物，倒悬于无菌试管内,及时送检。

（五）、脓液：用沾有生理盐水的棉拭子沾取脓液，要尽量多取一些，然后将棉拭置于无菌试管中，及时送检。

（六）、：1、凡怀疑菌血症和败血病的患者，采血培养时，应尽量在未使用抗菌素前采血，如已使用抗菌素，应尽量选择抗菌素在体内浓度最低时采血，应在病人第二次使用抗菌素之前采集血培养标本。

当然在病人发热或寒颤时采集也可。

2、成人每次采血5—10ml，小儿采血2—3ml；3、严格消毒病人采血部位和血培养瓶口，抽一定量血液后，无菌注入血培养瓶内，轻轻摇匀，4、从抽血到接种入瓶，动作要快，防止血液凝固，同时要及时送检。

（七）、穿刺液：胸腹水、心包液、关节腔液、鞘膜积液：严格无菌抽取后，注入含肝素抗凝的无菌试管中，轻轻颠倒试管10余次，使肝素与穿刺液混匀达到抗凝的目的，或直接无菌注入血培养瓶内及时送检。

（八）、胆汁：由专科医生以无菌方法取引流液10ml注入无菌试管。

（九）、脑脊液：以无菌方法取脑脊液3-5ml，置无菌试管内，常温保存送检，如只做培养可直接无菌注入血培养瓶内，及时送检。

（十）、生殖器官标本：阴道、子宫颈及前列腺等分泌物应由医师采集，收集于无菌试管内送检。

如疑为淋病奈瑟菌感染，做培养检查时，采集的标本应床旁接种并及时放入孵箱培养。

微生物标本采集方法及注意事项

微生物标本采集方法及注意事项一、粪便标本采集和处理(1)采集方法1.自然排便法：取新鲜粪便的黏液、脓血、或絮状物等有意义成分，2～3g 或 1～2 m1，盛无菌容器内或置于保存液或增茵液内送检;若疑似霍乱者应置于碱性蛋白胨水中(PH8.6)。

2. 直肠拭子法：难以获得粪便或排便困难患者及幼儿可采用此法，将拭子前端用无菌甘油或生理盐水湿润,然后插入肛门约 4～5cm(幼儿 2～3cm)，轻轻在直肠内旋转。

擦取直肠表面粘液后取出，盛于无菌试管中或保存液中送检。

(2) 注意事项1.尽可能在抗生素使用之前采集标本。

2.所挑取的粪便不应接触其他部位(如便盆)，粪便样本中不应混入尿液及其他异物，采集过程应尽量无菌操作。

3.不应用厕纸收集粪便。

4.对同一病人在同一天不宜重复送检。

5.宜在感染急性期(通常是5d-7d内)采集标本。

6.下列腹泻患者应连续3d送检标本--社区获得性腹泻(入院前或72h内出现症状)--医院腹泻(入院72h后出现症状)，且至少有下列情况之一：大于65岁并伴有内科疾病、HIV感染、粒缺(中性粒细胞--怀疑肠道感染的`非腹泻性表现。

7.肠炎和发热病人建议做血培养。

8.伤寒沙门菌感染时骨髓培养高出血培养。

9新鲜粪便标本应在采集后尽快送检，不应超过2h。

(3)标本拒收干燥的拭子、含钡粪便、黄软成形便、干便、明显污染的粪便、一日内重复送检的标本，应设法与临床医师联系，可要求重新留取标本，并做好记录，在没有与医师沟通之前标本不应丢弃，仍按实验室标本保存原则存放。

二、尿液标本采集和处理(1)采集方法1. 中段尿采集法：清晨起床后用肥皂水清洗尿道口和外阴部，再用清水冲洗尿道口周围，然后排尿弃去前段尿液，收集中段尿 5～10ml盛于带盖的无菌容器内立即送检，采集后于0.5h内进行接种。

2. 耻骨上膀胱穿刺法：评估膀胱内细菌感染的“金标准”。

培养结果与临床病情矛盾时可采用此法，一般较少应用。

3. 导尿法：采用无菌技术用注射器经导尿管抽取尿液，导取 10～15ml 尿液，置无菌容器中送检，尿液标本不能通过收集袋引流管口流出的方式采集。

临床微生物标本采集和运送规范

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脓液或伤口分泌物标本采集运送标准
❖ 本卷须知 ❖ 迅速送往实验室，1小时内不能培养应将标本冷藏。 ❖ 皮肤消毒对培养结果至关重要。 ❖ 不要仅送检脓液。脓液不能代表伤口特点，应在病灶
活动区域或基底部采集标本。 ❖ 除非有渗出物，枯燥、结痂伤口一般不做培养 ❖ 标记：不要只写“伤口〞标记标本，应有专门的描述
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二、临床各类标本的采集、运送及保存标准
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血培养的采集、运送标准
❖ 采集程序: ❖ 皮肤消毒程序：推荐三步法〔酒精→碘伏→酒精〕 ❖ 培养瓶消毒程序：75%酒精消毒 ❖ 静脉穿刺和培养瓶接种程序
❖ 采血量：成人8-10ml，儿童1-3ml。骨髓采集量1-2ml ❖ 采血时间和数量: ❖ 采血时间:在寒战或体温顶峰到来之前0.5-1h，或于寒战
储存环境
标本来源
4℃冰箱
痰、尿液、粪便、气管冲洗物、导尿管、静脉导管、脓液和伤口分泌物细菌或真菌培养；无菌体液（胸腹水、心包液、关节液、鞘膜积液、胆汁）真菌培养；支原体培养；衣原体检查；血清学检查（包括ASO、RF、肥达反应）
室温脑脊液、生殖道、眼、耳、鼻、喉、血培养、血管导管尖、活检组织细
❖ 注意：从静脉取血；不要与血气和血沉标本一起采血；不推荐血入瓶前换针头；不推荐静脉血直接入瓶；不宜在静脉导管或静脉留置口采血〔除非疑心导管相关性血流感染〕。
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血培养的采血量
❖ 成人采血量5-10ml〔最好8-10ml〕，儿童采血量1-3ml 〔不超过总血量的1％〕。血液和肉汤之比为1：5~1： 10。骨髓采集量1-2ml。
❖ 应注明具体标本来源如眼标本注明是眼睑、结膜还是角膜，并注明左眼还是右眼。
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脓液或伤口分泌物标本采集运送标准

微生物标本采集操作规程

微生物标本采集操作规程基本原则1.发现感染应及时采集微生物标本作病原学检查，三级医院微生物标本送检率不应低于60%。

2.尽量在抗菌药物使用之前采集标本。

3.标本采集时应严格无菌操作，减少或避免机体正常菌群及其它杂菌污染。

4.标本采集后应立即送至细菌室。

床旁接种可提高病原菌检出率。

5.以棉拭子采集的标本如咽拭子、肛拭或伤口拭子，宜插入运送培养基送检。

6.送检标本应注明姓名、床号、标本来源、检验目的和标本采集具体时间，使细菌室能准确及时接种相应的培养基和适宜的培养环境，提高阳性检出率。

一、血液与骨髓的送检方法1.一般原则:在出现临床症状后应尽快抽血样作培养，最好在发热初期、高热或寒战时，原则上应选择在抗菌药物应用之前，对已应用药物而病情不允许停药的患者应在下一次用药前采血。

2.采血部位：肘静脉。

疑似细菌性心内膜炎时，以肘动脉或股动脉采血为宜，切忌在静滴抗菌药物的静脉处采取血标本。

3.采血最佳时间与频率：急性败血症应在治疗前24小时内抽血3次或者更多次，并在不同部位，如左右手臂或颈部，分别做厌氧、需氧培养以及内毒素、降钙素原检测；急性心内膜炎在治疗前1-2小时内分别在3个不同部位抽血样；怀疑伤寒病人，在病程第1-2周内采静脉血液；肺炎链球菌在寒战、高热或者休克时；布鲁杆菌感染除在发热期采血，还要多次采血，一般是24小时抽3-4次；分枝杆菌感染早期采血样阳性率高。

怀疑菌血症因尽早采血，体温上升阶段采血可提高阳性率，但要防止因等待而延误时机，对已用抗菌药物而不能停药者，可在下次用药前采血。

对疑为伤寒病人，在第1-3周内采集骨髓是最佳时间，在病灶或髂前（后）上棘处严格消毒后抽取骨髓1ml 作细菌培养。

4.采血部位的局部皮肤应严格消毒。

将采集的血液注入血培养瓶前，认真识别相应颜色的瓶，并仔细检查培养瓶有无变色或混浊。

过火消毒针头，血培养瓶撕掉塑料盖后，瓶口不是无菌部位必须消毒。

消毒不能用碘酒消毒而是75%酒精消毒。

2024版临床微生物标本采集规范

临床微生物标本采集规范•微生物标本采集意义与原则•临床常见微生物标本采集方法•微生物标本采集注意事项与操作规范•微生物标本运输、保存和处理流程目录•临床微生物实验室检测技术应用与进展•总结回顾与拓展思考01微生物标本采集意义与原则准确诊断指导治疗监测病情变化预防和控制感染通过采集微生物标本，可以对病原体进行准确鉴定和分类，为医生提供准确的诊断依据。

通过对微生物标本的连续检测，可以及时了解患者病情的变化情况，为医生调整治疗方案提供依据。

根据微生物标本的检测结果，医生可以选择针对性的治疗药物和方法，提高治疗效果。

通过对微生物标本的检测和分析，可以及时发现和控制感染源，防止感染的扩散和传播。

无菌操作正确选择采集部位采集足量标本及时送检01020304在采集微生物标本时，必须严格遵守无菌操作原则，避免污染标本和引入外源性微生物。

根据不同的病原体和感染类型，选择正确的采集部位，以提高标本的阳性率和准确性。

采集足够量的标本，以保证检测的准确性和可靠性。

采集后的微生物标本应及时送检，避免延误诊断和治疗。

血液标本通过静脉采血或末梢采血获得，用于检测血液中的病原体和抗体等。

尿液标本通过患者自行排尿或导尿获得，用于检测泌尿系统感染等。

粪便标本通过患者自行排便或灌肠获得，用于检测肠道感染和寄生虫病等。

呼吸道标本通过鼻咽拭子、喉拭子、痰液等获得，用于检测呼吸道感染和肺部感染等。

生殖道标本通过阴道分泌物、宫颈分泌物、前列腺液等获得，用于检测生殖道感染和性传播疾病等。

其他标本如脑脊液、穿刺液、组织活检等，用于检测相应部位的感染和病变情况。

微生物标本类型及来源02临床常见微生物标本采集方法血液及骨髓标本采集建议在患者寒战或发热初起时采集，同时在使用抗生素之前采集。

成人一般选择肘静脉，新生儿和婴儿选择颈静脉或股静脉。

成人一般采集8-10ml，儿童采集3-5ml，婴儿采集1-2ml。

严格无菌操作，避免污染，同时防止溶血。

采集时间采集部位采集量注意事项一般建议清晨第一次尿，即晨尿。

微生物标本采集指南

转运拭子
鼻咽
用无菌拭子经鼻轻轻插入鼻咽后部，慢慢旋转拭子5秒，吸收分泌物
喉
用压舌板压舌，用无菌拭子从咽后、扁桃体和发炎区采样
喉拭子培养不能用于会厌发炎的病人
眼结膜
分别用（无菌盐水预湿）拭子绕每一个结膜取标本
采集完即接种培养基
直接接种BAP和巧克力平板
立即送检
常温
阴性：3天
阳性：随时报告危急期，最终报告及时发出。
亚急性心内膜炎：从不同部位采3套，间隔≥15min，如24h内为阴性，需再采3套。
注意事项同脑脊液
骨髓
注意彻底消毒，因许多微生物，尤其葡萄球菌通常存在皮肤表面或近表层处，易造成污染。
血培养专用瓶≥1ml
无
注意事项同脑脊液
脑脊液
注意彻底消毒，因许多微生物，尤其葡萄球菌通常存在皮肤表面或近表层处，易造成污染。
血培养专用瓶（血液：肉汤=1：5～10为宜）
成人：5～10ml/瓶
婴儿：
1～2 ml/瓶
≤2h
常温
禁止冷藏
阴性：5天
阳性：随时报告危急期，最终报告及时发出。
建议从不同部位采2～3套（一套为1瓶需氧瓶＋1瓶厌氧瓶或2瓶需氧瓶）
急性脓毒血症：10min内从不同部位采2～3套；
急性心内膜炎：1～2h内从不同部位采3套；
最小量
痰、下呼吸道标本、肺泡灌洗液、支气管刷、气管抽吸物
用温开水清洗或漱口去除口腔表面细菌
指导病人从肺深部咳出痰液，采集到无菌容器内
无菌容器
＞1ml
≤2h
常温
阴性：2天
阳性：及时发出。
1∕d
对于不能产生标本的病人，应该抽吸获得标本
最好的标本应≤10个鳞状细胞∕LPF，WBC≥25个/ LPF

临床微生物标本采集须知1

临床微生物标本采集须知临床微生物标本的采集应在抗生素应用前或停药一周后进行，如不能停用抗生素，应于下次抗生素应用前采集。

各种标本采集后应立即送检；无菌部位的标本采集应严格无菌操作。

一下呼吸道标本【标本送检指征】1 咳嗽、咳痰：痰液可为脓性、血性、铁锈色或红棕色胶胨样痰。

2 咯血：肺结核病人常痰中带血。

3 呼吸困难4 发热5 胸痛：当炎症病变累及壁层胸膜时，会发生胸痛。

肺部感染的患者有25～50％可能发生菌血症，应同时作血培养。

【标本采集方法】1 自然咳痰法：晨痰为佳，用温开水漱口数次（为减少口腔正常菌群污染标本），深咳呼吸道深部痰（非后鼻部分泌物、非唾液）留于无菌容器内。

对于痰量少或无痰的患者可采用雾化吸入45℃10％NaCL水溶液，使痰液易于排出。

对咳痰少的幼儿，可轻轻压迫胸骨上部的气管，使其咳嗽。

2 支气管镜采集法：用支气管镜在肺内病灶附近用导管吸引或用支气管刷直接取。

3 胃内采痰法：无自觉症状的肺结核病人尤其婴幼儿不会咳嗽，有时将痰误咽入胃中，可采集胃内容物做结核分支杆菌培养。

4 气管穿刺法：主要用于厌氧菌培养5 小儿取痰法：用弯压舌板向后压舌，将拭子伸入咽部，小儿经压舌刺激咳嗽，可喷出肺部或气管分泌物粘在拭子上送检。

幼儿还可用手指轻叩胸骨柄上方，以诱发咳痰。

【注意事项】1 晨痰为好。

多数病人清晨痰较多，易于采集。

且清晨痰含有的病理成分较多，会增加培养的阳性率。

2 有1/4-1/2肺部感染患者可能发生菌血症，应同时作血培养。

3 能在抗菌药物应用之前采集标本，标本采集后应立即送检，否则可暂存于4℃冰箱。

二上呼吸道标本【标本送检指征】1 病毒性普通感冒伴有明显咽痛时，怀疑为咽部链球菌感染，应做细菌培养。

2 细菌性咽－扁桃体炎：明显咽痛、畏寒、发热，体温可达39℃以上。

3 上呼吸道感染易并发鼻窦炎、中耳炎、气管－支气管炎，需送相应部位分泌物或痰液进行细菌培养。

【标本的采集方法】嘱患者先用清水漱口，由检查者将其舌外拉使悬雍垂尽可能向外牵引, 用压舌板将舌向下向外压，用无菌棉拭子越过舌根到咽后壁或悬雍垂的后侧,反复擦拭数次然后送检，拭子应避免触及舌、口腔粘膜和唾液。