临床微生物标本采集规范ppt课件
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微生物标本的正确采集运送及注意事项PPT课件
管理流程不严密
缺乏完善的标本采集、运送和保存流程，以及有效的监督和质量控制 机制。
针对性解决方案提
01
加强人员培训
提高操作人员对微生物标本采集和运送规范的认识和技能水平。
02
完善设备设施
提供适当的采集工具、保存容器和运送设备，确保标本质量。
03
优化管理流程
建立完善的标本采集、运送和保存流程，加强监督和质量控制，确保标
标本标识不清
导致无法准确识别标本来源和 采集时间，影响后续检测和诊 断。
运送条件不符合要求
如温度控制不当、运送时间过 长等，可能导致标本中微生物
的死亡或增殖。
问题产生原因分析
人员操作不规范
缺乏专业培训或经验不足的操作人员可能导致标本采集和运送过程 中的问题。
设备设施不完善
缺乏适当的采集工具、保存容器和运送设备，可能导致标本质量下 降。
微生物标本的正确采 集运送及注意事项 PPT课件
REPORTING
目录
• 微生物标本采集概述 • 微生物标本采集方法 • 微生物标本运送与保存 • 微生物标本处理与检测 • 微生物标本采集运送中常见问题及解决方案 • 总结与展望
PART 01
微生物标本采集概述
REPORTING
采集目的与意义
01
采样方法
使用无菌铁锹或土壤钻进行土壤采 集，将土壤样品装入无菌袋中并标 记相关信息。
人体微生物采集
采样部位选择
根据研究目的选择合适的采样部位，如皮肤、口腔、肠道等。
采样方法
使用无菌棉签或拭子进行皮肤或口腔粘膜的擦拭；或使用无菌粪便收集器进行 肠道微生物的收集。注意避免使用消毒剂或抗生素等药物影响微生物的活性。
标本处理
缺乏完善的标本采集、运送和保存流程，以及有效的监督和质量控制 机制。
针对性解决方案提
01
加强人员培训
提高操作人员对微生物标本采集和运送规范的认识和技能水平。
02
完善设备设施
提供适当的采集工具、保存容器和运送设备，确保标本质量。
03
优化管理流程
建立完善的标本采集、运送和保存流程，加强监督和质量控制，确保标
标本标识不清
导致无法准确识别标本来源和 采集时间，影响后续检测和诊 断。
运送条件不符合要求
如温度控制不当、运送时间过 长等，可能导致标本中微生物
的死亡或增殖。
问题产生原因分析
人员操作不规范
缺乏专业培训或经验不足的操作人员可能导致标本采集和运送过程 中的问题。
设备设施不完善
缺乏适当的采集工具、保存容器和运送设备，可能导致标本质量下 降。
微生物标本的正确采 集运送及注意事项 PPT课件
REPORTING
目录
• 微生物标本采集概述 • 微生物标本采集方法 • 微生物标本运送与保存 • 微生物标本处理与检测 • 微生物标本采集运送中常见问题及解决方案 • 总结与展望
PART 01
微生物标本采集概述
REPORTING
采集目的与意义
01
采样方法
使用无菌铁锹或土壤钻进行土壤采 集，将土壤样品装入无菌袋中并标 记相关信息。
人体微生物采集
采样部位选择
根据研究目的选择合适的采样部位，如皮肤、口腔、肠道等。
采样方法
使用无菌棉签或拭子进行皮肤或口腔粘膜的擦拭；或使用无菌粪便收集器进行 肠道微生物的收集。注意避免使用消毒剂或抗生素等药物影响微生物的活性。
标本处理
《微生物标本采集》ppt课件
采集量
成人一般采集5-10ml，儿童根据年龄和体重适 当减少。
尿液标本的采集
01
采集时间
一般选择清晨第一
次尿，即晨尿。
02
采集方法
清洁尿道口后，留 取中段尿于无菌容
器中。
04
注意事项
女性患者应避开月
03
经期；留取尿液前
避免大量饮水。
采集量
一般留取10-20ml 。
粪便标本的采集
采集时间
选择患者腹泻时或怀疑有肠道感染时 进行采集。
微生物标本的安全管理要求
01
严格遵守生物安全相关规定，确保微生物标本 的安全处理和管理。
02
对具有潜在危险的微生物标本进行分类和管理， 采取必要的防护措施。
03
建立微生物标本的登记和追踪制度，确保标本来源 和去向的可追溯性。
04
对废弃的微生物标本进行安全处理，防止对环境造 成污染。
防止微生物标本污染的措施与方法
05
微生物标本的质量控制与安 全管理
微生物标本的质量控制措施
建立完善的微生物标本采集、运输、 保存和处理的操作规程，确保标本 质量。
建立标本质量监测和反馈机制，对 不合格标本进行及时处理和改进。
对采集人员进行专业培训，提高其 操作技能和质量意识。
定期对采集器具、试剂和耗材进行 质量检查和评估，确保其符合相关 标准。
选择合适的容器
根据采集标本的类型和后 续检测需求，选择合适的 容器，如无菌试管、培养 皿等。
准备试剂
根据检测需求，准备相应 的试剂，如培养基、抗凝 剂、保存液等。
检查容器与试剂
在使用前检查容器和试剂 是否完好无损、无污染， 并在有效期内。
告知患者采集标本的注意事项
临床微生物标本采集ppt课件
24
【标本采集注意事项】
1 采集时间：应在急性期采样，以提高检出 率，应在抗生素应用前或停药一周后采集标本， 如不能停用抗生素，应于下次抗生素应用前采 集。
2 送检：应立即送检，室温条件下不能超过 2h。如不能立即送检，则保存于4℃冰箱待送 出。
25
化脓和创伤标本的微生物检验
一、标本送检指征 1 局部症状：红、肿、热、痛和功能障碍是
20
【标本采集注意事项】
1.尽量采集晨尿标本，应保证尿液在膀胱内 停留4h以上。（一般于晨起第一次尿液送 检。）
2.应选在抗菌药物应用之前。
3.标本采集后应尽快送检，1h内接种。
4.标本运送过程中必须保证其安全，防止
溢出，避免细菌污染。
21
粪便标本微生物检验的采集
一、标本送检指征 1 急性腹泻：大便次数明显增多，腹痛，里
7.鼻拭子法：用被无菌盐水湿润的棉拭子 （尖端的棉花必须紧密）直接插入鼻腔约2cm， 对鼻黏膜用力旋转，然后取出。
8. 鼻咽拭子法：用无菌拭子经鼻轻轻插入 鼻咽部后部，慢慢旋转拭子5s，吸收分泌物， 然后取出。
15
【标本采集注意事项】
1 采集时间：
（1）以晨痰为好。多数病人清晨痰较多，易 于采集。且清晨痰含有的病理成分较多。会增 加培养的阳性率。
18
2 耻骨上膀胱穿刺：使用无菌注射器直接从 耻骨上经皮穿入膀胱吸取尿液，是评估膀胱 内细菌感染的“金标准”方法，但有一定的 痛苦，病人难以接受。主要用于厌氧菌培养 或留取标本困难的婴儿尿标本的采集。
3 直接导尿：按常规方法对会阴部进行清 洗消毒后，用导尿管直接经尿道插入膀胱， 获取膀胱尿液。可减少尿液标本的污染，准 确地反映膀胱感染情况。但有可能将下尿道 的细菌引入膀胱，导致继发感染，一般不提 倡使用。
【标本采集注意事项】
1 采集时间：应在急性期采样，以提高检出 率，应在抗生素应用前或停药一周后采集标本， 如不能停用抗生素，应于下次抗生素应用前采 集。
2 送检：应立即送检，室温条件下不能超过 2h。如不能立即送检，则保存于4℃冰箱待送 出。
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化脓和创伤标本的微生物检验
一、标本送检指征 1 局部症状：红、肿、热、痛和功能障碍是
20
【标本采集注意事项】
1.尽量采集晨尿标本，应保证尿液在膀胱内 停留4h以上。（一般于晨起第一次尿液送 检。）
2.应选在抗菌药物应用之前。
3.标本采集后应尽快送检，1h内接种。
4.标本运送过程中必须保证其安全，防止
溢出，避免细菌污染。
21
粪便标本微生物检验的采集
一、标本送检指征 1 急性腹泻：大便次数明显增多，腹痛，里
7.鼻拭子法：用被无菌盐水湿润的棉拭子 （尖端的棉花必须紧密）直接插入鼻腔约2cm， 对鼻黏膜用力旋转，然后取出。
8. 鼻咽拭子法：用无菌拭子经鼻轻轻插入 鼻咽部后部，慢慢旋转拭子5s，吸收分泌物， 然后取出。
15
【标本采集注意事项】
1 采集时间：
（1）以晨痰为好。多数病人清晨痰较多，易 于采集。且清晨痰含有的病理成分较多。会增 加培养的阳性率。
18
2 耻骨上膀胱穿刺：使用无菌注射器直接从 耻骨上经皮穿入膀胱吸取尿液，是评估膀胱 内细菌感染的“金标准”方法，但有一定的 痛苦，病人难以接受。主要用于厌氧菌培养 或留取标本困难的婴儿尿标本的采集。
3 直接导尿：按常规方法对会阴部进行清 洗消毒后，用导尿管直接经尿道插入膀胱， 获取膀胱尿液。可减少尿液标本的污染，准 确地反映膀胱感染情况。但有可能将下尿道 的细菌引入膀胱，导致继发感染，一般不提 倡使用。
微生物标本采集-PPT
快速、准确、效能
三、痰标本采集方法
➢ 自然咳痰 以晨痰为佳。用清水反复漱口， 用力咳出呼吸道深部的痰，痰液直接吐入 无菌容器中，尽快送检。否则有的细菌 （如肺炎球菌、流感嗜血杆菌）在外界可 能死亡。痰量极少者可用雾化吸入加温至 45℃的10％NaCl水溶液，使痰液易于排出。 要求采到肺深部的痰液，不要唾液。
快速、准确、效能
一、标本采集和处理的原则
➢‧可能致病源，收集到越多越好，保持 其活性
➢‧非无菌部位，避免污染:消毒 ➢‧减少增生:低温保存及使用输送培养
基 ➢无菌部位‧避免污染:确实消毒
快速、准确、效能
发现感染应及时采集微生物标本作病原学检查 最好是病程早期、急性期或症状典型时，而且必 须在使用抗生素或其他抗菌药物之前采集 标本采集时应严格无菌操作，采集的标本应无外源 性污染，减少或避免机体正常菌群及其它杂菌污染 要收集足够量的标本 标本采集后应立即送至微生物室
➢对于婴幼儿，抽血量不应超过患者总 血量的1%。
➢血标本量不足：血液体积少于血培养 瓶标签上推荐血量的80%
快速、准确、效能
➢对于疑似菌血症者，建议采集2-3套血 培养
➢有研究表明一套血培养阳性率为65%， 2套80%，3套96%
快速、准确、效能
为什么要送检厌氧瓶？
➢正视厌氧瓶的功能！ ➢ 增加采血量 ➢ 增加兼性厌氧菌的分离机会 ➢ 增加厌氧菌的分离机会
制生长 ➢ 在当时所有培养方法不能培养的微生物(局
限性)
快速、准确、效能
临床医生要合理用好两种数据
➢1. 本地区、本单位病原流行病学资 料，指导经验用药。（微生物室、院 感办、临床科室）
➢2.药敏试验报告，纠正经验用药。 重视病原学检查,尽可能在应用抗
三、痰标本采集方法
➢ 自然咳痰 以晨痰为佳。用清水反复漱口， 用力咳出呼吸道深部的痰，痰液直接吐入 无菌容器中，尽快送检。否则有的细菌 （如肺炎球菌、流感嗜血杆菌）在外界可 能死亡。痰量极少者可用雾化吸入加温至 45℃的10％NaCl水溶液，使痰液易于排出。 要求采到肺深部的痰液，不要唾液。
快速、准确、效能
一、标本采集和处理的原则
➢‧可能致病源，收集到越多越好，保持 其活性
➢‧非无菌部位，避免污染:消毒 ➢‧减少增生:低温保存及使用输送培养
基 ➢无菌部位‧避免污染:确实消毒
快速、准确、效能
发现感染应及时采集微生物标本作病原学检查 最好是病程早期、急性期或症状典型时，而且必 须在使用抗生素或其他抗菌药物之前采集 标本采集时应严格无菌操作，采集的标本应无外源 性污染，减少或避免机体正常菌群及其它杂菌污染 要收集足够量的标本 标本采集后应立即送至微生物室
➢对于婴幼儿，抽血量不应超过患者总 血量的1%。
➢血标本量不足：血液体积少于血培养 瓶标签上推荐血量的80%
快速、准确、效能
➢对于疑似菌血症者，建议采集2-3套血 培养
➢有研究表明一套血培养阳性率为65%， 2套80%，3套96%
快速、准确、效能
为什么要送检厌氧瓶？
➢正视厌氧瓶的功能！ ➢ 增加采血量 ➢ 增加兼性厌氧菌的分离机会 ➢ 增加厌氧菌的分离机会
制生长 ➢ 在当时所有培养方法不能培养的微生物(局
限性)
快速、准确、效能
临床医生要合理用好两种数据
➢1. 本地区、本单位病原流行病学资 料，指导经验用药。（微生物室、院 感办、临床科室）
➢2.药敏试验报告，纠正经验用药。 重视病原学检查,尽可能在应用抗
临床微生物标本的采集ppt课件
3、做好包装和防护
临床标本及感染性物质，不管运送距 离有多远，应严格注意标本的包装，并且应 采取安全防护措施。
精选课件
19
标本送检样本
精选课件
20
标本的接受、处理原则
当标本送至实验室时，应有病人基本信息、标本来源、采集时 间等。
实验室遇到下列情况标本时拒绝接受 1.不正确的运送温度 2.不正确的运送工具 3.延长送检时间 4.标本容器上未贴病人信息或贴错 5.标本有泄漏 6.盛标本的容器有破损 7.标本有明显污染 8.标本量不足或已干涸 9.24h内重复送检的标本（不包括血培养） 10.对某种试验不适合的标本
精选课件
21
临床常见标本 采集、运送与
接种
精选课件
22
临床常见的标本：
血液 痰及鼻咽分泌物 尿液 粪便 穿刺液（脑脊液、胆汁、胸腹水等） 脓液及创伤感染分泌物 生殖道
精选课件
23
血液
正常人的血液是无菌 的。当细菌侵入时可引 起菌血症或败血症。
精选课件
24
血液培养的意义：
菌血症 感染性心内膜炎 临床不明原因的感染 假体植入后感染（人工关节、人工瓣膜） 静脉导管相关性感染 肺炎
精选课件
51
常见临床标本的采集及处理
泌尿生殖道标本
二、生殖道和尿道标本 送检指针：
女性患者
外阴阴道炎 细菌性阴道炎
阴道溃疡 尿道炎 宫颈炎 子宫颈炎 子宫内膜炎 输卵管炎 卵巢脓肿
精选课件
男性患者
尿道炎 附睾炎 前列腺炎 生殖器
52
标本采集（根据不同感染种类和病变特征采集不同的标本）
尿道分泌物
精选课件
44
泌尿生殖道标本
一、尿液标本 适应症：尿路感染
临床标本及感染性物质，不管运送距 离有多远，应严格注意标本的包装，并且应 采取安全防护措施。
精选课件
19
标本送检样本
精选课件
20
标本的接受、处理原则
当标本送至实验室时，应有病人基本信息、标本来源、采集时 间等。
实验室遇到下列情况标本时拒绝接受 1.不正确的运送温度 2.不正确的运送工具 3.延长送检时间 4.标本容器上未贴病人信息或贴错 5.标本有泄漏 6.盛标本的容器有破损 7.标本有明显污染 8.标本量不足或已干涸 9.24h内重复送检的标本（不包括血培养） 10.对某种试验不适合的标本
精选课件
21
临床常见标本 采集、运送与
接种
精选课件
22
临床常见的标本：
血液 痰及鼻咽分泌物 尿液 粪便 穿刺液（脑脊液、胆汁、胸腹水等） 脓液及创伤感染分泌物 生殖道
精选课件
23
血液
正常人的血液是无菌 的。当细菌侵入时可引 起菌血症或败血症。
精选课件
24
血液培养的意义：
菌血症 感染性心内膜炎 临床不明原因的感染 假体植入后感染（人工关节、人工瓣膜） 静脉导管相关性感染 肺炎
精选课件
51
常见临床标本的采集及处理
泌尿生殖道标本
二、生殖道和尿道标本 送检指针：
女性患者
外阴阴道炎 细菌性阴道炎
阴道溃疡 尿道炎 宫颈炎 子宫颈炎 子宫内膜炎 输卵管炎 卵巢脓肿
精选课件
男性患者
尿道炎 附睾炎 前列腺炎 生殖器
52
标本采集（根据不同感染种类和病变特征采集不同的标本）
尿道分泌物
精选课件
44
泌尿生殖道标本
一、尿液标本 适应症：尿路感染
临床微生物标本采集PPT医学课件
二、痰标本中常见病原体
细菌
金黄色葡萄球菌、凝固酶阴性葡萄球菌、肺炎链球菌、A群链球菌、肠球菌卡他莫拉菌、脑膜炎奈瑟菌、白喉棒状杆菌、类白喉棒状杆菌、结核分枝杆菌、炭疽芽胞杆菌、流感嗜血杆菌、克雷伯杆菌、铜绿假单胞菌、大肠埃希菌、百日咳杆菌、军团菌、支原体和衣原体等
真菌
白假丝酵母菌、隐球菌、曲霉菌和毛霉菌等
真菌
念球菌、曲霉菌、隐球菌、球孢子菌
厌氧菌
拟杆菌、产气荚膜梭菌
三、临床意义
血液感染是一种危重的全身感染，对其进行病原菌的检验，提供病原学的诊断极为重要。 当少量细菌侵入血液循环，为一过性，不繁殖或很少繁殖，不引起或仅引起轻微的炎症反应者称为菌血症,若有全身性炎症反应的表现称为脓毒症。血液标本的细菌培养是诊断菌血症的基本而重要的方法，若从患者血液中检出细菌，一般视为病原菌感染，提示有菌血症。
其他
放线菌（衣氏放线菌、诺卡菌）
三、临床意义
由创伤、手术、侵入性器械操作等外科治疗引起的感染最为常见。细菌造成伤口感染一般认为需每克组织内细菌数量在105 ～106个以上。外伤性创伤感染以葡萄球菌和链球菌多见，且易发生混合感染。烧伤创面最常见革兰阴性杆菌感染，如铜绿假单胞菌等，次为革兰阳性球菌感染，可单独也可混合细菌感染。
真菌性肺炎
支原体肺炎
细菌性肺炎
第六节 粪便
一、标本采集
用药前自然排便，采集脓血、黏液部分2～3g。外观无异常的粪便应从粪便的表面不同部位取材。液体便取絮状物1～2ml,置无菌容器内送检。如排便困难或婴幼儿患者，可用直肠拭子法采集标本。
粪便标本送检 对住院的腹泻成人患者，应采集住院3日内粪便标本送检，标本采集后应尽快送检，有条件的提倡使用运送培养基。
细菌种类
细菌
金黄色葡萄球菌、凝固酶阴性葡萄球菌、肺炎链球菌、A群链球菌、肠球菌卡他莫拉菌、脑膜炎奈瑟菌、白喉棒状杆菌、类白喉棒状杆菌、结核分枝杆菌、炭疽芽胞杆菌、流感嗜血杆菌、克雷伯杆菌、铜绿假单胞菌、大肠埃希菌、百日咳杆菌、军团菌、支原体和衣原体等
真菌
白假丝酵母菌、隐球菌、曲霉菌和毛霉菌等
真菌
念球菌、曲霉菌、隐球菌、球孢子菌
厌氧菌
拟杆菌、产气荚膜梭菌
三、临床意义
血液感染是一种危重的全身感染，对其进行病原菌的检验，提供病原学的诊断极为重要。 当少量细菌侵入血液循环，为一过性，不繁殖或很少繁殖，不引起或仅引起轻微的炎症反应者称为菌血症,若有全身性炎症反应的表现称为脓毒症。血液标本的细菌培养是诊断菌血症的基本而重要的方法，若从患者血液中检出细菌，一般视为病原菌感染，提示有菌血症。
其他
放线菌（衣氏放线菌、诺卡菌）
三、临床意义
由创伤、手术、侵入性器械操作等外科治疗引起的感染最为常见。细菌造成伤口感染一般认为需每克组织内细菌数量在105 ～106个以上。外伤性创伤感染以葡萄球菌和链球菌多见，且易发生混合感染。烧伤创面最常见革兰阴性杆菌感染，如铜绿假单胞菌等，次为革兰阳性球菌感染，可单独也可混合细菌感染。
真菌性肺炎
支原体肺炎
细菌性肺炎
第六节 粪便
一、标本采集
用药前自然排便，采集脓血、黏液部分2～3g。外观无异常的粪便应从粪便的表面不同部位取材。液体便取絮状物1～2ml,置无菌容器内送检。如排便困难或婴幼儿患者，可用直肠拭子法采集标本。
粪便标本送检 对住院的腹泻成人患者，应采集住院3日内粪便标本送检，标本采集后应尽快送检，有条件的提倡使用运送培养基。
细菌种类
微生物样本采集的标准化与规范化ppt课件
4）咽用压舌板压舌；用无菌拭子在后咽部、扁桃体 和其它感染部位采集标本；怀疑白喉可用无菌拭
子从患者病变部位假膜及其边缘取材立刻送检。 肉汤拭子≤2小时，室温；拭子：≤1小时，室温， 1次/天。
咽拭子标本采集
3. 尿
外尿道多寄居有正常菌群，故采集尿液时 更应注意无菌操作，常用清洁中段尿作为 送检标本。中段尿用于细菌培养，最好用 晨尿。诊断泌尿系感染的细菌学标准一般 为菌落计数≥105CFU/ml。针对于老年人多 重症及卧床患者排尿困难，可相应采用导 尿管采集标本。采集和容器为无菌尿瓶， 标本量≥1毫升，条件≤2小时，室温，1次/ 天。
3）肛拭子：小心将拭子插入肛门，大约在括约肌之 上2-3厘米；轻轻旋转拭子采集肛门隐窝的标本；
要在拭子上明显看到粪便，才能检测腹泻病原体 。拭子采集，≤2小时，室温，1次/天。除了长期
卧床、无便（如中毒性痢疾）患者及频繁腹泻患
者，不推荐做拭子常规培养。用于检测淋病奈瑟 菌、志贺菌、弯曲菌、B群链球菌的肛携带者以及 不能留取粪便标本的患者。可检测霍乱弧菌。
培养瓶消毒程序：
用75％酒精擦拭血培养瓶橡皮塞（不能用含碘消 毒剂），作用60s。用无菌纱布或无菌棉签清除橡 皮塞表面残余液体．然后注入血液。
血 培 养 标 本 采 集 流 程 需氧和厌氧血培养瓶
采集次数
急性脓毒血症 10分钟内从不同部位抽血2-3次； 急性感染性心内膜炎 从不同部位抽血3次，每次
10. 褥疮
褥疮拭子培养的临床意义不大。应选择供 活检组织或注射器吸出物。以无菌盐水清 洗褥疮表面；如不做活检，用力以拭子抹 取褥疮基底部；将拭子置入肉汤培养基中 。≤2小时，室温，1次/天/来源。
参考文献
汪复 张婴元 吴菊芳等，实用抗感染治疗学 ，北京： 人民卫生出版社，2004，24 ~33.
子从患者病变部位假膜及其边缘取材立刻送检。 肉汤拭子≤2小时，室温；拭子：≤1小时，室温， 1次/天。
咽拭子标本采集
3. 尿
外尿道多寄居有正常菌群，故采集尿液时 更应注意无菌操作，常用清洁中段尿作为 送检标本。中段尿用于细菌培养，最好用 晨尿。诊断泌尿系感染的细菌学标准一般 为菌落计数≥105CFU/ml。针对于老年人多 重症及卧床患者排尿困难，可相应采用导 尿管采集标本。采集和容器为无菌尿瓶， 标本量≥1毫升，条件≤2小时，室温，1次/ 天。
3）肛拭子：小心将拭子插入肛门，大约在括约肌之 上2-3厘米；轻轻旋转拭子采集肛门隐窝的标本；
要在拭子上明显看到粪便，才能检测腹泻病原体 。拭子采集，≤2小时，室温，1次/天。除了长期
卧床、无便（如中毒性痢疾）患者及频繁腹泻患
者，不推荐做拭子常规培养。用于检测淋病奈瑟 菌、志贺菌、弯曲菌、B群链球菌的肛携带者以及 不能留取粪便标本的患者。可检测霍乱弧菌。
培养瓶消毒程序：
用75％酒精擦拭血培养瓶橡皮塞（不能用含碘消 毒剂），作用60s。用无菌纱布或无菌棉签清除橡 皮塞表面残余液体．然后注入血液。
血 培 养 标 本 采 集 流 程 需氧和厌氧血培养瓶
采集次数
急性脓毒血症 10分钟内从不同部位抽血2-3次； 急性感染性心内膜炎 从不同部位抽血3次，每次
10. 褥疮
褥疮拭子培养的临床意义不大。应选择供 活检组织或注射器吸出物。以无菌盐水清 洗褥疮表面；如不做活检，用力以拭子抹 取褥疮基底部；将拭子置入肉汤培养基中 。≤2小时，室温，1次/天/来源。
参考文献
汪复 张婴元 吴菊芳等，实用抗感染治疗学 ，北京： 人民卫生出版社，2004，24 ~33.
临床微生物标本采集规范 ppt课件
❖ 好的微生物检验标本可提升实验室工作效率及病患 照顾质量，降低医疗成本。
微生物样本采样基本原则
1.及时采集微生物标本作病原学检查Байду номын сангаас2.在抗菌药物使用前采集标本 3.采样时严格执行无菌操作 4.采样后立即送检甚至床旁接种尤其是厌氧培养 5.棉拭子标本宜用运送培养基 6.混有正常菌群污染标本，不可置肉汤培养 7.标本容器须灭菌处理，但不得使用消毒剂 8.送检标本应注明来源和检验目的
说明：实验数据表明细菌入血后约1小时，寒战和发 烧开始出现2小时内，此时为采集血培养标本进行 病原菌培养的最佳时机。在不同的时间点采血只有 在以下情况才有必要：疑似感染性心内膜炎或其他 血管内（如导管相关性感染）感染患者的连续性菌 血症。
2.采集部位
要求：从两侧上肢静脉采血，“双瓶双侧”采血 培养。至少做到“双侧双瓶”。必要时从下肢静 脉采血做第三套血培养。
9. CRP升高
对入院危重感染患者未进行系统性抗菌药物治疗之 前，应及时采集血培养。
（二）血培养检测消毒程序
1.皮肤消毒程序：严格执行三步法（防止皮肤寄生菌污染） （1）用75%酒精擦拭静脉穿刺部位待30s以上； （2）然后用1%-2%碘酊作用30秒或10%碘伏作用60秒， 从穿刺点向外画圈消毒，至消毒区域直径达3cm以上； （3）最后用75%酒精脱碘，待酒精挥发干燥后采血。 新生儿及对碘过敏的患者，只能用75%酒精消毒60s， 待穿刺部位酒精挥发干燥后穿刺采血。
说明：除特殊情况之外，在采取血培养后的2至5天 内，无需重复采取血培养。因为抗菌治疗的2至5 天内，血液中的细菌不会立即消失。研究证明， 血培养只做1套的检出率为65%，做2套和3套的 检出率分别为80%和96%。单瓶的血培养检出率 不高，而且结果很难做出临床解释。
微生物样本采样基本原则
1.及时采集微生物标本作病原学检查Байду номын сангаас2.在抗菌药物使用前采集标本 3.采样时严格执行无菌操作 4.采样后立即送检甚至床旁接种尤其是厌氧培养 5.棉拭子标本宜用运送培养基 6.混有正常菌群污染标本，不可置肉汤培养 7.标本容器须灭菌处理，但不得使用消毒剂 8.送检标本应注明来源和检验目的
说明：实验数据表明细菌入血后约1小时，寒战和发 烧开始出现2小时内，此时为采集血培养标本进行 病原菌培养的最佳时机。在不同的时间点采血只有 在以下情况才有必要：疑似感染性心内膜炎或其他 血管内（如导管相关性感染）感染患者的连续性菌 血症。
2.采集部位
要求：从两侧上肢静脉采血，“双瓶双侧”采血 培养。至少做到“双侧双瓶”。必要时从下肢静 脉采血做第三套血培养。
9. CRP升高
对入院危重感染患者未进行系统性抗菌药物治疗之 前，应及时采集血培养。
（二）血培养检测消毒程序
1.皮肤消毒程序：严格执行三步法（防止皮肤寄生菌污染） （1）用75%酒精擦拭静脉穿刺部位待30s以上； （2）然后用1%-2%碘酊作用30秒或10%碘伏作用60秒， 从穿刺点向外画圈消毒，至消毒区域直径达3cm以上； （3）最后用75%酒精脱碘，待酒精挥发干燥后采血。 新生儿及对碘过敏的患者，只能用75%酒精消毒60s， 待穿刺部位酒精挥发干燥后穿刺采血。
说明：除特殊情况之外，在采取血培养后的2至5天 内，无需重复采取血培养。因为抗菌治疗的2至5 天内，血液中的细菌不会立即消失。研究证明， 血培养只做1套的检出率为65%，做2套和3套的 检出率分别为80%和96%。单瓶的血培养检出率 不高，而且结果很难做出临床解释。
培训护士临床微生物标本采集规范ppt课件
血培养检测采血指征
临床上疑为败血症、脓毒血症或其他血液感染的患者 1. 发热（≥38℃）或低温（≤36℃） 2. 寒战 3. 白细胞增多（>10×109/L、“核左移”、未成熟白 细胞增多） 4. 粒细胞减少（成熟的多核白细胞<1×109/L） 5. 血小板减少 6．皮肤粘膜出血 7．昏迷，休克 8．多器官衰竭 9. CRP升高
擦除过多的分泌物和排出液，用无菌棉拭子 采取阴道口内4cm内侧壁或后穹窿处分泌物
宫颈分泌物
先清除阴道和宫颈局部分泌物，然后轻压宫颈使 宫颈内分泌物流出，用女性拭子插入宫颈管1-2cm转 动并停留10～30s采取分泌物，置入灭菌试管内送检
注意事项
生殖器是开放性器官，标本采集过程中应严格遵
循无菌操作规程以减少杂菌污染
血培养检测消毒程序
皮肤消毒程序
1.75%酒精擦拭静脉穿刺部位待30s以上
2.1%-2%碘酊作用30秒或10%碘伏作用60秒，从穿刺 点向外画圈消毒，至消毒区域直径达3cm以上
3.75%酒精脱碘，待酒精挥发干燥后采血
培养瓶瓶塞消毒
用75%酒精消毒培养瓶塞，充分待干待干60秒
注意：塑料帽下面的橡皮塞并非是无菌的，必须进
抽吸液体
耳
内耳：对复杂的、反复的或慢性顽固的中耳炎做鼓 膜穿刺术，接触耳鼓室先用肥皂水清洗耳道再用 注射器收集液体；对破裂的鼓室，借助耳科诊视
器，用软杆拭子收集液体
外耳：用湿拭子将耳道的任何碎屑或痂皮拭去；在 外耳道用力旋转拭子取样
鼻或鼻咽分泌物
直接用拭子涂抹病灶部位，切勿接触周围粘膜或皮 肤，标本立即送检
9.眼、耳、鼻、咽拭子
标本采集规范
标本采集
眼
结膜：分别用（无菌盐水预湿）拭子绕每一个结
最新微生物标本采集PPT课件
注意事项
女性患者应避开月经期； 留取标本前避免大量饮水 或使用利尿剂；标本采集 后应及时送检。
粪便标本的采集
1 2
采集时间 在患者急性期或用药前采集。
采集方法
用无菌棉签蘸取粪便异常部分或黏液、脓血部分， 约2-5g。
3
注意事项 标本应新鲜，不可混入尿液或其他物质；如无法 立即送检，应放入专用保存液中保存。
THANKS
感谢观看
05
06
对采集到的标本进行妥善保存和运输，确 保其生物活性和稳定性。
02
微生物标本采集前的准备
了解患者的病情与病史
询问患者病史
查看实验室检查结果
包括既往感染史、手术史、过敏史等， 以评估患者感染风险。
如血常规、尿常规等，为标本采集提 供辅助信息。
了解患者症状
如发热、咳嗽、腹泻等，有助于判断 感染部位和可能的病原体类型。
呼吸道标本的采集
采集时间
在患者发病早期或用药前采集。
采集方法
根据病情选择咽拭子、鼻咽拭子、 痰液等标本类型进行采集。
注意事项
咽拭子、鼻咽拭子采集前应漱口 或擦拭口腔；痰液标本应深咳后 留取，避免口腔污染；标本采集
后应立即送检。
其他部位标本的采集
脑脊液标本
通过腰椎穿刺术获取，注意无菌 操作，防止污染。
注意事项
在重新采集标本时，应注意采集部位、采集方法、采集时间等因素，确保新采集的标本符合 质量要求。同时，对于特殊类型的微生物感染，如厌氧菌感染等，应采用特殊的采集方法和 处理流程。
06
微生物标本采集的安全防护与规范操 作
微生物标本采集的安全防护措施
个人防护
穿戴适当的防护服，包括实验服、手套、口罩和 护目镜，以防止微生物污染和感染。
临床微生物标本采集规范ppt课件
精品课件
10
微生物让人类步步为营， 我们应该追求： “准确的病原学诊断” “针对性病原学治疗”
正确的微生物标本采集和运送， 是准确的病原学诊断的前提！
精品课件
11
标本规范化采集的重要性
❖ 正确采集、处理与运送细菌培养的标本直接关系到 致病菌培养的正确性与阳性率的高低，是临床细菌 检验成功的关键。
（二）血培养检测消毒程序
1.皮肤消毒程序：严格执行三步法（防止皮肤寄生菌污染） （1）用75%酒精擦拭静脉穿刺部位待30s以上； （2）然后用1%-2%碘酊作用30秒或10%碘伏作用60秒， 从穿刺点向外画圈消毒，至消毒区域直径达3cm以上； （3）最后用75%酒精脱碘，待酒精挥发干燥后采血。 新生儿及对碘过敏的患者，只能用75%酒精消毒60s， 待穿刺部位酒精挥发干燥后穿刺采血。
我国痰培养现状
❖ 标本送检率低 ❖ 苛养菌检出率极低 ❖ 结果重复性差 ❖ 报告速度慢 ❖ 感染菌与污染菌不易区分 ❖ 药敏结果与治疗反应存在差距
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36
❖ 标本采集方法
咳痰标本
医师或护士直视下采集标本
病人先漱口，去除表面的菌群
教育病人深咳，收集从下呼吸道咳出的痰液
❖ 临床上约半数咳痰标本不合格！
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7
“正确的微生物学检验始自正确的 标本采取。临床医师、护师及检 验技师都必须通晓其要领。”
著名的临床微生物检验专著Manual of Clinical Microbiology 的主编Patrick Murray
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8
标本采集和运送是细菌培养成 功的最最重要的关键
但由于标本的采集和运送常由护士或医 生或病人自己完成，所以也是最不容易做好 的事情，而且不知道问题所在之处，造成的 后果是:
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的污染率通常是≤3%。研究表明，经过专门 培训的熟练抽血者采集血培养的污染率为3%， 而未经培训的住院医生和护士污染率则达 11%。因此对临床护士就血培养标本采集进 行专门的、严格的培训是非常必要的。
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20
2.培养瓶消毒程序： （1）用75%酒精消毒血培养瓶橡皮塞，作用60秒。 （2）用无菌纱布或无菌棉签清除橡皮塞表面剩余的酒 精，然后注入血液。
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19
要求： ✓ 严格无菌操作，不允许在皮肤消毒后用手按
压静脉，除非带有无菌手套。 ✓ 不推荐采血和接种血培养瓶更换注射器针头，
采用真空采血装置能降低污染率。 说明：无论采用何种采血方法，血培养可接受
精品课件
3
❖ 低免疫人群急剧上升：艾滋病、移植医学国际间 交通的快速便捷使得当今疾病传播无国界的概念。
❖ 气候变暖，人口快速增长，都市化进程加快，伴 随人口密度和人口流动增加，清洁水源不足和卫 生设施的不完善，以及生态破坏造成人与媒介生 物接触机会增多（动物微生物向人类的袭击）等。
❖ 人类还没有足够的能力战胜病原体。
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14
标本收集部位
非无菌部位 眼 耳 呼吸道 肠胃道 泌尿道 皮肤 毛发
精品课件
无菌部位 血液 脊髓液 胸膜液 腹膜液 关节液
15
一、血培养标本采集规范
精品课件
16
相似规模医院的血培养数
• 国内多数三甲综合医院2～10 瓶/天 • 复旦大学中山医院20～50瓶/天 • 香港玛丽医院200瓶/天 • 台湾大学医院300瓶/天 • 我院约10～20瓶/天
临床医生最不能接受的问题:阳性率低
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9
国内微生物标本的采集目前存在的问题 ：
标本送检率低 从全国来看，抗感染治疗 前，送检相关标本可能只占应送标本的一半 左右，与抗菌药物应用率之高形成鲜明的反 差。一些医师在经验性治疗受挫后方送标本， 此时已失去阳性培养的机会。
标本有缺陷 正确收集各种临床标本， 关注特检标本采样与送检的方法和条件，是 完成病原学诊断的先决条件。
（二）血培养检测消毒程序
1.皮肤消毒程序：严格执行三步法（防止皮肤寄生菌污染） （1）用75%酒精擦拭静脉穿刺部位待30s以上； （2）然后用1%-2%碘酊作用30秒或10%碘伏作用60秒， 从穿刺点向外画圈消毒，至消毒区域直径达3cm以上； （3）最后用75%酒精脱碘，待酒精挥发干燥后采血。 新生儿及对碘过敏的患者，只能用75%酒精消毒60s， 待穿刺部位酒精挥发干燥后穿刺采血。
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7
“正确的微生物学检验始自正确的 标本采取。临床医师、护师及检 验技师都必须通晓其要领。”
著名的临床微生物检验专著Manual of Clinical Microbiology 的主编Patrick Murray
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8
标本采集和运送是细菌培养成 功的最最重要的关键
但由于标本的采集和运送常由护士或医 生或病人自己完成，所以也是最不容易做好 的事情，而且不知道问题所在之处，造成的 后果是:
❖ 病原生物的抗药性产生的速度已超过新型抗生素 发明的速度（细菌耐药性的快速发展)。
精品课件
4
提高感染样本送检率 加强细菌耐药监测
关注细菌性疾病的病原学诊断，已成为 临床工作者、临床微生物与微生态工作者、 药学家和从事感染控制的工作者共同关注的 热门焦点。
精品课件
5
成功治疗感染症的因素
‧成功分离病原菌 –标本收集、运送、保存 –标本处理方法 –检验医师专业知识
‧医师判读病原菌培养结果 ‧选择适当治疗方法
精品课件
6
临床医生要合理用好两种数据
❖ 1. 本地区、本单位病原流行病学资料，指导 经验用药。（微生物室、院感科、临床科室）
❖ 2.药敏试验报告，纠正经验用药。 重视病原学检查,尽可能在应用抗菌药物之
前留取标本送检。以提高病原学诊断率,为选 药和调整药物提供依据。
❖ 标本质量的好坏直接影响诊断结果的正误，不当的 标本可导致假阴性、假阳性结果的出现，因此标本 采集与处理的规范化是准确、及时地向临床提供重 要的临床感染信息的基础。
❖ 好的微生物检验标本可提升实验室工作效率及病患 照顾质量，降低医疗成本。
精品课件
12
如何提高细菌阳性检出率
标本采集时机
标本采集方法
临床微生物标本 采集规范
精品课件
1
世界人口死因 感染性疾病：25％
抗生素时代，感染仍是人 类健康的主要“杀手”
精品课件
2
高死亡率原因
❖ 新现传染病：近30年，已有近30种新的病原 生物，其中包括HIV、 SARS、禽流感和各种 新型肝炎病毒等引起的各种疾病。
❖ 再现传染病：以往已被认为得到很好控制的 传染病，如结核、登革热等的流行和传播又 重新抬头。
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17
（一）血培养检测采血指征 临床上疑为败血症、脓毒血症或其他血液感染的 患者 1. 发热（≥38℃）或低温（≤36℃） 2. 寒战 3. 白细胞增多（>10×109/L，特别有“核左移”未 成熟的或杆状核白细胞增多） 4. 粒细胞减少（成熟的多核白细胞<1×109/L） 5. 血小板减少 6．皮肤粘膜出血 7．昏迷，休克 8．多器官衰竭 9. CRP升高 在评估可疑新生儿败血症时，除发热或低烧外，很 少培养出细菌，应该补充尿液和脑脊液培养。 前对，入应院及危时重采感集染血患培者养未精。进品课行件系统性抗菌药物治疗之 18
标本的质与量
标本的运送与保存
镜检筛选合格标本
高质量、多种分离培养基
培养环境
合理的收费制度
精品课件13Fra bibliotek微生物样本采样基本原则
1.及时采集微生物标本作病原学检查 2.在抗菌药物使用前采集标本 3.采样时严格执行无菌操作 4.采样后立即送检甚至床旁接种尤其是厌氧培养 5.棉拭子标本宜用运送培养基 6.混有正常菌群污染标本，不可置肉汤培养 7.标本容器须灭菌处理，但不得使用消毒剂 8.送检标本应注明来源和检验目的
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10
微生物让人类步步为营， 我们应该追求： “准确的病原学诊断” “针对性病原学治疗”
正确的微生物标本采集和运送， 是准确的病原学诊断的前提！
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11
标本规范化采集的重要性
❖ 正确采集、处理与运送细菌培养的标本直接关系到 致病菌培养的正确性与阳性率的高低，是临床细菌 检验成功的关键。
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20
2.培养瓶消毒程序： （1）用75%酒精消毒血培养瓶橡皮塞，作用60秒。 （2）用无菌纱布或无菌棉签清除橡皮塞表面剩余的酒 精，然后注入血液。
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要求： ✓ 严格无菌操作，不允许在皮肤消毒后用手按
压静脉，除非带有无菌手套。 ✓ 不推荐采血和接种血培养瓶更换注射器针头，
采用真空采血装置能降低污染率。 说明：无论采用何种采血方法，血培养可接受
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3
❖ 低免疫人群急剧上升：艾滋病、移植医学国际间 交通的快速便捷使得当今疾病传播无国界的概念。
❖ 气候变暖，人口快速增长，都市化进程加快，伴 随人口密度和人口流动增加，清洁水源不足和卫 生设施的不完善，以及生态破坏造成人与媒介生 物接触机会增多（动物微生物向人类的袭击）等。
❖ 人类还没有足够的能力战胜病原体。
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标本收集部位
非无菌部位 眼 耳 呼吸道 肠胃道 泌尿道 皮肤 毛发
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无菌部位 血液 脊髓液 胸膜液 腹膜液 关节液
15
一、血培养标本采集规范
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16
相似规模医院的血培养数
• 国内多数三甲综合医院2～10 瓶/天 • 复旦大学中山医院20～50瓶/天 • 香港玛丽医院200瓶/天 • 台湾大学医院300瓶/天 • 我院约10～20瓶/天
临床医生最不能接受的问题:阳性率低
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9
国内微生物标本的采集目前存在的问题 ：
标本送检率低 从全国来看，抗感染治疗 前，送检相关标本可能只占应送标本的一半 左右，与抗菌药物应用率之高形成鲜明的反 差。一些医师在经验性治疗受挫后方送标本， 此时已失去阳性培养的机会。
标本有缺陷 正确收集各种临床标本， 关注特检标本采样与送检的方法和条件，是 完成病原学诊断的先决条件。
（二）血培养检测消毒程序
1.皮肤消毒程序：严格执行三步法（防止皮肤寄生菌污染） （1）用75%酒精擦拭静脉穿刺部位待30s以上； （2）然后用1%-2%碘酊作用30秒或10%碘伏作用60秒， 从穿刺点向外画圈消毒，至消毒区域直径达3cm以上； （3）最后用75%酒精脱碘，待酒精挥发干燥后采血。 新生儿及对碘过敏的患者，只能用75%酒精消毒60s， 待穿刺部位酒精挥发干燥后穿刺采血。
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“正确的微生物学检验始自正确的 标本采取。临床医师、护师及检 验技师都必须通晓其要领。”
著名的临床微生物检验专著Manual of Clinical Microbiology 的主编Patrick Murray
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标本采集和运送是细菌培养成 功的最最重要的关键
但由于标本的采集和运送常由护士或医 生或病人自己完成，所以也是最不容易做好 的事情，而且不知道问题所在之处，造成的 后果是:
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提高感染样本送检率 加强细菌耐药监测
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成功治疗感染症的因素
‧成功分离病原菌 –标本收集、运送、保存 –标本处理方法 –检验医师专业知识
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临床医生要合理用好两种数据
❖ 1. 本地区、本单位病原流行病学资料，指导 经验用药。（微生物室、院感科、临床科室）
❖ 2.药敏试验报告，纠正经验用药。 重视病原学检查,尽可能在应用抗菌药物之
前留取标本送检。以提高病原学诊断率,为选 药和调整药物提供依据。
❖ 标本质量的好坏直接影响诊断结果的正误，不当的 标本可导致假阴性、假阳性结果的出现，因此标本 采集与处理的规范化是准确、及时地向临床提供重 要的临床感染信息的基础。
❖ 好的微生物检验标本可提升实验室工作效率及病患 照顾质量，降低医疗成本。
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如何提高细菌阳性检出率
标本采集时机
标本采集方法
临床微生物标本 采集规范
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1
世界人口死因 感染性疾病：25％
抗生素时代，感染仍是人 类健康的主要“杀手”
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2
高死亡率原因
❖ 新现传染病：近30年，已有近30种新的病原 生物，其中包括HIV、 SARS、禽流感和各种 新型肝炎病毒等引起的各种疾病。
❖ 再现传染病：以往已被认为得到很好控制的 传染病，如结核、登革热等的流行和传播又 重新抬头。
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（一）血培养检测采血指征 临床上疑为败血症、脓毒血症或其他血液感染的 患者 1. 发热（≥38℃）或低温（≤36℃） 2. 寒战 3. 白细胞增多（>10×109/L，特别有“核左移”未 成熟的或杆状核白细胞增多） 4. 粒细胞减少（成熟的多核白细胞<1×109/L） 5. 血小板减少 6．皮肤粘膜出血 7．昏迷，休克 8．多器官衰竭 9. CRP升高 在评估可疑新生儿败血症时，除发热或低烧外，很 少培养出细菌，应该补充尿液和脑脊液培养。 前对，入应院及危时重采感集染血患培者养未精。进品课行件系统性抗菌药物治疗之 18
标本的质与量
标本的运送与保存
镜检筛选合格标本
高质量、多种分离培养基
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1.及时采集微生物标本作病原学检查 2.在抗菌药物使用前采集标本 3.采样时严格执行无菌操作 4.采样后立即送检甚至床旁接种尤其是厌氧培养 5.棉拭子标本宜用运送培养基 6.混有正常菌群污染标本，不可置肉汤培养 7.标本容器须灭菌处理，但不得使用消毒剂 8.送检标本应注明来源和检验目的
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微生物让人类步步为营， 我们应该追求： “准确的病原学诊断” “针对性病原学治疗”
正确的微生物标本采集和运送， 是准确的病原学诊断的前提！
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标本规范化采集的重要性
❖ 正确采集、处理与运送细菌培养的标本直接关系到 致病菌培养的正确性与阳性率的高低，是临床细菌 检验成功的关键。