微生物标本采集规范
微生物标本采集规范
• 2、下呼吸道标本
（1）自然咳痰法 以晨痰为佳。用清水反复漱口， 用力咳出呼吸道深部的痰，痰液直接吐入无菌容 器中，尽快送检。否则有的细菌（如肺炎链球菌、 流感嗜血杆菌）在外界可能死亡。不能及时送检 的标本，室温保存≤2h。要求采到肺深部的痰液， 不要唾液。
• （2）诱导痰：在医护人员指导下，用3 NaCL诱导咳 出痰液，用于结核分枝杆菌和肺孢子菌检测。
临床常见微生物学检验标本通常有血液、 痰液、尿液、粪便、伤口的脓液、胸水、腹水、 脑脊液及泌尿生殖系统的分泌物等，下面分别 介绍各种标本的采集方法。
一、呼吸道标本采集规范
病原体种类繁多而复杂 使呼吸道感染病原诊断成为难题
➢细菌 ➢真菌（包括肺孢子菌） ➢病毒 ➢支原体、衣原体与立克次体 ➢原虫 ➢寄生虫
（二）采集方法
1、咽拭子及鼻拭子 采集前患者应用冷开水反复漱口， 拭子的选择：要求无菌、不含抑制剂； 预先沾湿拭子（非常重要）； 由检查者将舌向外拉，使腭垂尽可能向外牵引，将棉拭子 通过舌根到咽后壁或腭垂的后侧，涂抹数次以取得标本。 对化脓性扁桃体炎或口腔念珠菌病，直取病灶部位，拭 子要避免接触口腔及舌粘膜。减少污染。 立即送检。室温保存。 接种同痰
（一）采集指征 •凡是发热、咳嗽和咳痰，痰呈脓性、粘稠或血 性，并伴有胸痛、气急，肺部闻及湿罗音，外 周白细胞总数及中性粒细胞比例明显增高，X 线检查提示肺部有炎性浸润或胸腔积液，甚至 出现感染性休克和呼吸衰竭等患者，应采集痰 液或下呼吸道标本。
•对可疑烈性呼吸道传染病（如SARS、肺炭疽、 肺鼠疫等）患者采集检验标本时必须注意生物 安全防护。
2．耻骨弓上膀胱穿刺采集尿 使用无菌注射器直 接从耻骨上经皮肤消毒穿入膀胱吸取尿液，是评 估 膀胱内细菌感染的“金标准”方法，但患者不 易接 受，主要用于厌氧菌培养或留取标本困难的 婴儿尿 标本的采集。
临床微生物样本采集规范
临床微生物样本采集规范临床微生物样本采集规范1. 范围和目的本规范适用于临床微生物样本的采集、处理和管理，旨在保证样本采集的质量和规范性，确保临床微生物诊断结果的准确性和可靠性。
2. 术语和定义（1）微生物：指包括细菌、真菌、病毒、支原体、立克次体、螺旋体等在内的微小生物体。
（2）临床样本：指从患者体内采集的各种生物标本，如血液、口腔、鼻咽部、骨髓、尿液、痰液、脑脊液等。
（3）采集容器：指用于采集临床样本的容器，如血液采集管、尿样瓶、培养皿等。
（4）采集套装：指一次完整的样本采集过程中所需的所有采集工具和材料。
3. 采集前准备（1）确定采集部位、时间和采集方式，注意患者的生命体征和病情变化。
（2）准备好所需的采集套装和采集容器，在样本采集前做好标签，并核对患者信息。
（3）认真阅读所有相关规范和实验室要求，确保样本采集符合要求。
4. 采集操作步骤（1）根据采集部位和样本类型选择合适的采集套装。
（2）采集前应让患者了解采集的目的和过程，并获得其同意。
（3）采集前要检查采集部位，患者的身体状态和生命体征，确保采集过程安全和无痛苦。
（4）采血时应注意采血量、采血速率、采血部位、采血方式等。
（5）尿样采集时应注意尿样的采集量、采集时间、采集方式、保护好样本的完整性和纯度。
（6）痰液采集时应注意痰液的颜色、黏度、量和纯度，选择合适的采集器具和采集方式。
（7）脑脊液采集时应注意采集部位、采集方式、采集量、采血顺序和样本处理标准等。
（8）其他临床样本采集时，应根据具体要求和操作规范，选择合适的采集方法和器具。
5. 样本运输和储存（1）在采集后，立即将样本放入相应的采集容器中，尽快送至实验室进行处理。
（2）若无法立即处理样本，应按要求在采集容器中注明采集时间和采集者信息，并存储在规定温度下，以便后续处理。
（3）运输过程中应遵循规范，确保样本不泄漏、不污染，并尽快送至目的地。
（4）储存过程中应保持样本的纯度和完整性，控制储存温度，在保质期内使用。
临床微生物检验标本采集程序
临床微生物检验标本采集程序1 标本采集的基本原则：1.1 严格的无菌操作，避免污染，避免来自寄生菌的污染，应当保证每份样本代表感染过程｡1.2 选择正确的解剖部位、合适时间、合乎规程技术，采集样本。
1.3 选择合适的部位采集用于厌氧菌培养的样本。
1.4 要收集足够量的样本，量少可能导致假阴性结果。
1.5 应尽可能在病人使用抗菌药物前采集样本，如不能停用抗菌药物，应于下次抗菌药物应用前采集。
1.6 血培养样本在病人寒颤和发热初起时为最佳时机。
1.7 导尿留取样本时，不可从尿袋中采集样本。
引流液样本不能直接从引流袋放出，因引流液在袋中潴留时间太长容易滋生细菌。
1.8 各类微生物样本不宜加防腐剂1.9 盛标本的容器须先经灭菌（煮沸、高热、或高压灭菌），但不得用消毒剂或酸类处理。
1.10 有些临床标本还要注意采集的时机和部位，如伤寒沙门菌的阳性检出率，发病的第1～2 周采集血液，第3～4 周采集大便和尿液，阳性率较高。
1.11 样本的运送处理和储存规定1.11.1 样本2h之内送到实验室。
1.11.2 血培养瓶如果不能及时送检，应置室温保存（但不得超过24 小时）。
禁止将不能及时送检的血培养瓶放置冰箱保存。
1.11.3 淋病奈瑟菌和脑膜炎奈瑟菌培养时，样本不能放4℃条件保存，应在30min内送检，并注意保温。
1.11.4 痰培养疑为嗜血杆菌、肺炎链球菌感染时，应立即送检，因为这些细菌在自然环境中极易死亡。
1.11.5 导管样本如不能在规定时间内送检，应在盛装导管的容器中加少量无菌生理盐水，以免导管干燥，病原微生物死亡。
1.11.6 活检组织样本和眼分泌物样本应在30min内送检，如样本较小或不能在规定时间内送检，应在盛装组织的容器中加少量无菌生理盐水，以免样本干燥，病原微生物死亡。
不可用纱布包裹组织样本。
2 常见临床微生物标本的采集方法。
2.1 血液及骨髓样本2.1.1 检验项目：血液及骨髓培养。
2.1.2 适应症病人出现以下临床表现：发热（38℃）或低温（36℃）、寒战、白细胞增多（白细胞数>10×109/L，特别有“核左移”时）、皮肤粘膜出血、昏迷、多器官衰竭、血压降低、C反应蛋白升高及呼吸加快、血液病患者出现粒细胞减少、血小板减少等临床可疑血流感染时应采集血液样本进行血培养及骨髓培养。
微生物检验标本采集规范
微生物检验标本采集规范
正确采集、运送、保存及处理微生物检验标本，对于保证微生物检验质量至关要，为了准确检出病原菌，避免漏检及误诊，临床医护人员及实验室工作人员应掌握微生物检验标本采集、运送、保存及处理原则。
下面是yjbys 小编为大家带来的关于微生物检验标本采集规范的知识，欢迎阅读。
标本采集的一般原则：
1、早期采集：采集时间最好是病程早期，急性期，且必须在使用抗菌药物(俗称消炎药)之前采集，确保病原菌的检出;
2、无菌操作：采集标本时应尽量减少或避免感染部位附近皮肤或黏膜常居菌群污染和防止外源性细菌污染标本，采集的标本盛于无菌容器内送检。
盛装标本的容器不能使用消毒剂处理，标本中也不得添加防腐剂，以免降低病原菌的分离率;
3、适量标本：标本量过少可能导致假阴性结果。
各种标本采集注意事项：
一、呼吸道标本采集
(1) 送检指征：凡是发热、咳嗽和咳痰，痰呈脓性，黏稠或血性，并伴有胸痛，气急，外周血白细胞总数及中性粒细胞比例明显增高，应采集痰液或下呼吸道标本。
(2) 标本采集时间：a、以晨痰为好，患者清晨用凉开水反复漱口后用力自气管咳出第一口痰，将痰采集于无菌容器中尽快送检。
b、在应用抗菌药物之前采集标本。
二、脓液及创伤感染分泌物标本采集
(1) 送检指征：红、肿、热、痛和功能障碍是化脓性感染的五个典型特征。
临床微生物标本规范化采集和送检
4
严格无菌操作
1.在抗菌药物使用前采集标本。
临床疑似感染的患者, 必须先采集微生物标本送检, 再使用抗菌药物进
行治疗。
2.无菌部位的标本更具有临床价值, 有菌部位采集的标本需要清除正常菌 群和定植细菌才有意义。
应尽量送检无菌部位的标本, 尤其是血培养。有菌部位标本应避免 “正常菌群导致标本的污染”。人体很多部位, 如下呼吸道（痰液标本）、 鼻窦、皮肤伤口等处的正常菌群极易污染标本。因此, 从这些部位采集标 本, 要尽可能降低这些部位正常菌群或定植细菌对标本污染的可能性。有 菌部位的标本不是最理想的微生物标本。
临床微生物标本规范化采集和送检
总则
疾病的正确诊治需要以正确的病原学检测作为指导, 而正确的病原学 检测其前提是采集和送检合格标本。因此, 必须规范微生物标本的采集和运 送, 避免因标本的不合格, 产生错误的病原学检测结果而误导临床治疗。
微生物标本采集 基本原则
1
在抗菌药物使用前采集标本
无菌部位的标本更具有临床价值, 有菌部位采集的标
粪便标本采集法
1.自然排便法
患者在干燥清洁便盆（避免使用坐式 或蹲式马桶）内自然排便后, 挑取有 脓血、黏液部分的粪便2-3g（液体粪 便则取絮状物1-3ml）放入无菌便盒 内送检。若无黏液、脓血, 则在粪便 上多点采集送检。此为常规方法。
2. 直肠拭子法
用肥皂水将肛门周围洗净, 将占有无 菌生理盐水的棉拭子插入肛门4-5cm （儿童为2-3cm）。棉拭子与直肠粘 膜表面接触, 轻轻旋转拭子, 可明显在 拭子上见到粪便。将带有粪便标本的 棉拭子插入运送培养基, 立即送检。 本方法仅适用于排便困难的患者或婴 幼儿, 不推荐使用拭子做常规标本。
临床微生物标本规范化采集和送检
临床微生物标本规范化采集和送检临床微生物标本规范化采集和送检是确保实验室检测结果准确性和可靠性的关键步骤。
在临床诊断和治疗过程中，微生物标本的采集和送检必须严格按照规范进行，以保证检测结果的科学性和临床应用的有效性。
本文将对临床微生物标本规范化采集和送检的相关问题进行详细讨论。
一、微生物标本的采集1. 采集工具采集微生物标本时，应使用无菌采集工具，如无菌棉签、无菌注射器、无菌拭子等。
采集工具应一次性使用，避免交叉感染。
2. 采集方法（1）棉签采集法：适用于采集分泌物、排泄物等标本。
将无菌棉签蘸取适量标本，轻轻涂抹于无菌培养基表面，注意避免棉签与培养基接触过紧，以免污染。
（2）拭子采集法：适用于采集皮肤、黏膜等表面标本。
将无菌拭子轻轻擦拭采集部位，将拭子置于无菌培养基中，轻轻按压使标本附着于培养基表面。
（3）注射器采集法：适用于采集深部组织、关节液等标本。
将无菌注射器刺入采集部位，抽取适量标本后，将注射器置于无菌培养基中，拔出活塞使标本流出。
3. 采集注意事项（1）严格遵守无菌操作原则，防止标本污染。
（2）采集标本时，应尽量减少对标本的挤压，避免细胞破裂、毒素释放等现象。
（3）采集标本后，应尽快送检，避免长时间存放导致病原体死亡或变异。
二、微生物标本的送检1. 送检时间微生物标本采集后，应尽快送检，一般不超过2小时。
如无法及时送检，应将标本置于4℃冷藏保存，并在24小时内送检。
2. 送检途径微生物标本应采用专用运送容器，避免与其他物品接触。
标本运送过程中，应注意保持容器密封，防止标本污染。
3. 标本接收实验室接收微生物标本时，应详细核对标本信息，包括患者姓名、性别、年龄、采集部位、采集时间等。
如发现标本不符合要求，应立即与临床工作人员沟通，重新采集标本。
4. 标本处理实验室接收标本后，应按照实验室规程进行对标本的处理，包括开盖、分区、接种、培养等。
在处理过程中，严格遵守无菌操作原则，防止标本污染。
微生物检验标本的正确采集及注意事项
微生物检验标本的正确采集及注意事项
正确采集临床微生物标本，直接影响到微生物培养鉴定结果。
可靠的检验结果可以指导临床诊断治疗，为临床科学用药和成功的感染控制提供依据，是正确、合理使用抗菌药物，延缓细菌耐药，减少抗菌药物滥用和监测医院感染的第一步，也是最重要的一步。
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一、血液标本的采集
1、采集方法
（1）75%酒精清洁局部皮肤。
（2）待皮肤干后，再用2%—2。
5%碘酒从穿刺点中心部位开始消毒，范围不应小于5cm（直径），且不能用手指触摸消毒后的皮肤。
（3）皮肤碘酒干后（约1min），穿刺采集血液，采血量成人5—10ml，婴幼儿1—5ml。
（4）采血后立即在床旁接种培养瓶，并迅速轻摇，充分混匀防止凝固，但又不可剧震以防溶血。
2、注意事项
（1）怀疑菌血症应尽早采血，体温上升（38。
5℃）采血可提高阳性率，但也要防止因等待而延误时机。
（2）对已经使用抗菌药物，而又不能停药者，也应在下次用药前采血。
切忌不要在静滴抗菌药物的静脉处采取血标本，也不能从静脉导管及动脉插管中取血。
（3）培养基与血液之比以10：1为宜，以稀释血液中的抗生素，抗体等杀菌物质;有人主张对接受抗菌药物治疗的病人，培养基与采血量之比可为20：1或大于这个比例。
临床微生物标本采集规范
6.血培养标本的运送
要求：（1）采集后的血培养瓶应在1小时之内 送往实验室。
（2）血培养瓶在接种前和接种后均不得冷藏和 冷冻。
说明：血培养瓶冷藏或冷冻会将一些微生物杀 灭，将装着液体的容器冰冻也会使容器破裂。
7.血培养的培养周期
要求：自动化血培养仪的标准血培养周期为5天。
说明：有研究表明，95%-97%的有临床价值的 细菌会在3-4天内被自动血培养系统检出，目 前仍推荐5天的培养周期。特殊情况可适当延 长培养时间。如临床怀疑布鲁菌感染，可延 长培养至28天等。
我国痰培养现状
❖ 标本送检率低 ❖ 苛养菌检出率极低 ❖ 结果重复性差 ❖ 报告速度慢 ❖ 感染菌与污染菌不易区分 ❖ 药敏结果与治疗反应存在差距
❖ 标本采集方法
咳痰标本
医师或护士直视下采集标本
病人先漱口，去除表面的菌群
教育病人深咳，收集从下呼吸道咳出的痰液
❖ 临床上约半数咳痰标本不合格！
咳痰途经口咽部 不可避免地受到污染
✓ 由于婴幼儿患者厌氧菌所致菌血症比较罕见， 婴幼儿血培养可以仅用需氧瓶，为提高检出 率、区分污染菌，应采用两只需氧瓶为一组 血培养。仍然采用双侧双瓶的采血方式。
✓ 真菌血培养采用需氧血培养瓶采集标本。采 用中和/灭活抗菌药物的血培养瓶可提高真菌 的检出率。自动化血培养系统不能用于双相 真菌的检测。
国内微生物标本的采集目前存在的问题 ：
标本送检率低 从全国来看，抗感染治疗 前，送检相关标本可能只占应送标本的一半 左右，与抗菌药物应用率之高形成鲜明的反 差。一些医师在经验性治疗受挫后方送标本， 此时已失去阳性培养的机会。
标本有缺陷 正确收集各种临床标本， 关注特检标本采样与送检的方法和条件，是 完成病原学诊断的先决条件。
临床微生物检验标本采集规范要求★
24小时尿
记录尿量，将尿液混匀后取适量用于 检验。
粪便标本采集
自然排便
排便后用干净竹签取粪便 表面部分。
直肠拭子
在特殊情况下，如肠道感 染，可用直肠拭子采集粪 便。
粪便量
一般需采集足够量的粪便 用于检验。
呼吸道标本采集
痰液
患者自行咳出痰液，避免唾液和 鼻咽部分泌物。
支气管肺泡灌洗
在特殊情况下，如重症肺炎，可通 过支气管肺泡灌洗采集呼吸道标本 。
确定采集时间
根据患者的病情和检验目的，选择最 佳的采集时间，如空腹采集、餐后采 集等。
注意采集时间与用药时间的间隔，避 免药物对检验结果的影响。
采集人员防护措施
采集人员应穿戴符合要求的防护服、手套、口罩等，确保自 身安全。
采集过程中应遵循无菌操作原则，避免交叉感染和环境污染 。
02
标本采集方法
足或采集方法不当导致检验结果出现偏差。
03
标准化采集时间
根据疾病类型和病情发展，选择合适的采集时间可以提高检验准确性。
例如，对于急性感染患者，应在发热期采集标本；对于慢性感染患者，
应选择在疾病活动期采集。
保障患者安全
减少交叉感染风险
遵循无菌操作原则可以降低交叉感染的风险，保护患者安全。
避免患者不适
采集过程中，应避免接触非检 验部位，确保标本不受污染。
采集后应及时送检，避免长时 间存放导致污染。
防止标本变质
采集的标本应尽快送检，避免长时间 存放导致变质。
保存过程中应定期检查，确保标本质 量。
对于需要长时间保存的标本，应采取 适当的保存措施，如低温、干燥等。
其他注意事项
采集前应了解患者病情和用药情 况，避免干扰检验结果。
微生物标本采集
微生物标本采集微生物标本采集是一项基础且重要的工作，对于临床诊断、疾病防控以及科学研究都具有至关重要的作用。
本文将详细介绍微生物标本采集的基本原则、采集方法、注意事项以及标本的保存与运送。
一、微生物标本采集的基本原则1.及时性：微生物标本采集应在患者出现症状或怀疑感染微生物时尽快进行，以便获取具有代表性的标本。
2.无菌操作：采集微生物标本时，必须遵循无菌操作原则，避免污染标本，确保检测结果的准确性。
3.适量：采集的微生物标本应足够进行所需检测，同时避免过量采集，减少对患者造成的不适。
4.适宜的标本类型：根据微生物的生长特性、感染部位以及检测目的，选择适宜的标本类型。
5.标本标识：采集的微生物标本应进行清晰、准确的标识，包括患者姓名、标本类型、采集时间等信息。
二、微生物标本采集方法1.皮肤、黏膜表面：使用无菌棉签或无菌注射器，轻轻擦拭或抽取皮肤、黏膜表面的分泌物。
2.血液：采用无菌注射器抽取静脉血，避免皮肤消毒剂污染。
3.呼吸道标本：采用无菌吸痰管或纤维支气管镜采集呼吸道分泌物；咳痰患者应采集清晨第一口痰。
4.尿液：采集清洁中段尿，必要时可采用导尿术。
5.粪便：采集粪便标本时，应避免粪便与尿液混合，采用无菌容器。
6.生殖道分泌物：男性患者采用无菌拭子采集尿道口分泌物；女性患者采集宫颈分泌物。
7.组织标本：在无菌条件下，切取感染部位的组织，放入无菌容器。
三、微生物标本采集注意事项1.采集前准备：了解患者的病情、用药情况以及采集部位，确保采集时机适宜。
2.消毒：采集部位应进行充分消毒，避免污染标本。
3.避免污染：采集过程中，避免触及非无菌部位，确保无菌操作。
4.采集量：根据检测需求，采集适量的标本。
5.标本保存：采集后的微生物标本应尽快送检，无法及时送检的标本应妥善保存。
四、微生物标本保存与运送1.温度：根据微生物的生长特性，选择适宜的保存温度。
一般而言，细菌标本应在4℃保存，病毒标本应在-70℃保存。
微生物样本采集的标准化与规范化ppt课件
子从患者病变部位假膜及其边缘取材立刻送检。 肉汤拭子≤2小时，室温；拭子：≤1小时，室温， 1次/天。
咽拭子标本采集
3. 尿
外尿道多寄居有正常菌群，故采集尿液时 更应注意无菌操作，常用清洁中段尿作为 送检标本。中段尿用于细菌培养，最好用 晨尿。诊断泌尿系感染的细菌学标准一般 为菌落计数≥105CFU/ml。针对于老年人多 重症及卧床患者排尿困难，可相应采用导 尿管采集标本。采集和容器为无菌尿瓶， 标本量≥1毫升，条件≤2小时，室温，1次/ 天。
3）肛拭子：小心将拭子插入肛门，大约在括约肌之 上2-3厘米；轻轻旋转拭子采集肛门隐窝的标本；
要在拭子上明显看到粪便，才能检测腹泻病原体 。拭子采集，≤2小时，室温，1次/天。除了长期
卧床、无便（如中毒性痢疾）患者及频繁腹泻患
者，不推荐做拭子常规培养。用于检测淋病奈瑟 菌、志贺菌、弯曲菌、B群链球菌的肛携带者以及 不能留取粪便标本的患者。可检测霍乱弧菌。
培养瓶消毒程序：
用75％酒精擦拭血培养瓶橡皮塞（不能用含碘消 毒剂），作用60s。用无菌纱布或无菌棉签清除橡 皮塞表面残余液体．然后注入血液。
血 培 养 标 本 采 集 流 程 需氧和厌氧血培养瓶
采集次数
急性脓毒血症 10分钟内从不同部位抽血2-3次； 急性感染性心内膜炎 从不同部位抽血3次，每次
10. 褥疮
褥疮拭子培养的临床意义不大。应选择供 活检组织或注射器吸出物。以无菌盐水清 洗褥疮表面；如不做活检，用力以拭子抹 取褥疮基底部；将拭子置入肉汤培养基中 。≤2小时，室温，1次/天/来源。
参考文献
汪复 张婴元 吴菊芳等，实用抗感染治疗学 ，北京： 人民卫生出版社，2004，24 ~33.
微生物血培养真菌标本采集及处理标准操作规程
微生物血培养真菌标本采集及处理标准操
作规程
微生物血培养真菌标本采集及处理的标准操作规程如下：
1. 皮肤消毒程序：用消毒液从穿刺点向外画圈消毒，至消毒区域直径达5cm以上，待消毒液挥发干燥后（常需30s以上）穿刺采血。
2. 静脉穿刺和培养瓶接种程序：
用10ml注射器无菌穿刺取血后，排尽针头内空气，勿换针头（如果行第二次穿刺或用头皮针取血时，应换针头）。
采血后直接注入血培养瓶，先注5ml于厌氧培养瓶，并注意避免注入空气，后注其它培养瓶，轻轻混匀以防血液凝固或严格按厂商推荐的方法采血。
3. 采血部位：通常为肘静脉，疑为细菌性心内膜炎时以肘动脉或股动脉采血为宜，切忌在静滴抗菌药物的静脉处采血。
对于成人患者，每次发热时应该分别在两个部位采集血标本以帮助区分是病原菌还是污染菌。
不应从留置静脉或动脉导管取血，因为导管易被固有菌群污染。
4. 采血次数和血量：对于成年患者，应该同时分别在两个部位采集血标本，在两个不同部位分离到同样菌种才能
确定是病原菌。
疑为心内膜炎时，为提高阳性检出率，可酌情不同部位、不同时间，多次采血或动脉采血进行培养。
采血量过少会明显降低阳性率。
5. 血液标本采集后应立即送检，不能及时送检者应置室温暂存，勿放冰箱。
以上步骤完成后，即可将处理好的标本送往实验室进行进一步的检测和分析。
同时，需要注意在整个操作过程中要严格遵守无菌操作规范，以避免污染和误差的产生。
临床微生物标本采集和运送规范
脓液或伤口分泌物标本 采集运送标准
❖ 本卷须知 ❖ 迅速送往实验室，1小时内不能培养应将标本冷藏。 ❖ 皮肤消毒对培养结果至关重要。 ❖ 不要仅送检脓液。脓液不能代表伤口特点，应在病灶
活动区域或基底部采集标本。 ❖ 除非有渗出物，枯燥、结痂伤口一般不做培养 ❖ 标记：不要只写“伤口〞标记标本，应有专门的描述
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二、临床各类标本的采集、 运送及保存标准
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血培养的采集、运送标准
❖ 采集程序: ❖ 皮肤消毒程序：推荐三步法 〔酒精→碘伏→酒精〕 ❖ 培养瓶消毒程序：75%酒精消毒 ❖ 静脉穿刺和培养瓶接种程序
❖ 采血量：成人8-10ml，儿童1-3ml。 骨髓采集量1-2ml ❖ 采血时间和数量: ❖ 采血时间:在寒战或体温顶峰到来之前0.5-1h，或于寒战
储存 环境
标本来源
4℃冰 箱
痰、尿液、粪便、气管冲洗物、导尿管、静脉导管、脓液和伤口分泌物 细菌或真菌培养；无菌体液（胸腹水、心包液、关节液、鞘膜积液、胆 汁）真菌培养；支原体培养；衣原体检查；血清学检查（包括ASO、RF、 肥达反应）
室温 脑脊液、生殖道、眼、耳、鼻、喉、血培养、血管导管尖、活检组织细
❖ 注意：从静脉取血；不要与血气和血沉标本一起采血； 不推荐血入瓶前换针头；不推荐静脉血直接入瓶；不宜 在静脉导管或静脉留置口采血〔除非疑心导管相关性血 流感染〕。
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血培养的采血量
❖ 成人采血量5-10ml〔最好8-10ml〕，儿童采血量1-3ml 〔不超过总血量的1％〕。血液和肉汤之比为1：5~1： 10。骨髓采集量1-2ml。
❖ 应注明具体标本来源如眼标本注明是眼睑、结膜 还是角膜，并注明左眼还是右眼。
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脓液或伤口分泌物标本 采集运送标准
微生物标本采集操作规程
微生物标本采集操作规程基本原则1.发现感染应及时采集微生物标本作病原学检查，三级医院微生物标本送检率不应低于60%。
2.尽量在抗菌药物使用之前采集标本。
3.标本采集时应严格无菌操作，减少或避免机体正常菌群及其它杂菌污染。
4.标本采集后应立即送至细菌室。
床旁接种可提高病原菌检出率。
5.以棉拭子采集的标本如咽拭子、肛拭或伤口拭子，宜插入运送培养基送检。
6.送检标本应注明姓名、床号、标本来源、检验目的和标本采集具体时间，使细菌室能准确及时接种相应的培养基和适宜的培养环境，提高阳性检出率。
一、血液与骨髓的送检方法1.一般原则:在出现临床症状后应尽快抽血样作培养，最好在发热初期、高热或寒战时，原则上应选择在抗菌药物应用之前，对已应用药物而病情不允许停药的患者应在下一次用药前采血。
2.采血部位：肘静脉。
疑似细菌性心内膜炎时，以肘动脉或股动脉采血为宜，切忌在静滴抗菌药物的静脉处采取血标本。
3.采血最佳时间与频率：急性败血症应在治疗前24小时内抽血3次或者更多次，并在不同部位，如左右手臂或颈部，分别做厌氧、需氧培养以及内毒素、降钙素原检测；急性心内膜炎在治疗前1-2小时内分别在3个不同部位抽血样；怀疑伤寒病人，在病程第1-2周内采静脉血液；肺炎链球菌在寒战、高热或者休克时；布鲁杆菌感染除在发热期采血，还要多次采血，一般是24小时抽3-4次；分枝杆菌感染早期采血样阳性率高。
怀疑菌血症因尽早采血，体温上升阶段采血可提高阳性率，但要防止因等待而延误时机，对已用抗菌药物而不能停药者，可在下次用药前采血。
对疑为伤寒病人，在第1-3周内采集骨髓是最佳时间，在病灶或髂前（后）上棘处严格消毒后抽取骨髓1ml 作细菌培养。
4.采血部位的局部皮肤应严格消毒。
将采集的血液注入血培养瓶前，认真识别相应颜色的瓶，并仔细检查培养瓶有无变色或混浊。
过火消毒针头，血培养瓶撕掉塑料盖后，瓶口不是无菌部位必须消毒。
消毒不能用碘酒消毒而是75%酒精消毒。
2024版临床微生物标本采集规范
临床微生物标本采集规范•微生物标本采集意义与原则•临床常见微生物标本采集方法•微生物标本采集注意事项与操作规范•微生物标本运输、保存和处理流程目录•临床微生物实验室检测技术应用与进展•总结回顾与拓展思考01微生物标本采集意义与原则准确诊断指导治疗监测病情变化预防和控制感染通过采集微生物标本，可以对病原体进行准确鉴定和分类，为医生提供准确的诊断依据。
通过对微生物标本的连续检测，可以及时了解患者病情的变化情况，为医生调整治疗方案提供依据。
根据微生物标本的检测结果，医生可以选择针对性的治疗药物和方法，提高治疗效果。
通过对微生物标本的检测和分析，可以及时发现和控制感染源，防止感染的扩散和传播。
无菌操作正确选择采集部位采集足量标本及时送检01020304在采集微生物标本时，必须严格遵守无菌操作原则，避免污染标本和引入外源性微生物。
根据不同的病原体和感染类型，选择正确的采集部位，以提高标本的阳性率和准确性。
采集足够量的标本，以保证检测的准确性和可靠性。
采集后的微生物标本应及时送检，避免延误诊断和治疗。
血液标本通过静脉采血或末梢采血获得，用于检测血液中的病原体和抗体等。
尿液标本通过患者自行排尿或导尿获得，用于检测泌尿系统感染等。
粪便标本通过患者自行排便或灌肠获得，用于检测肠道感染和寄生虫病等。
呼吸道标本通过鼻咽拭子、喉拭子、痰液等获得，用于检测呼吸道感染和肺部感染等。
生殖道标本通过阴道分泌物、宫颈分泌物、前列腺液等获得，用于检测生殖道感染和性传播疾病等。
其他标本如脑脊液、穿刺液、组织活检等，用于检测相应部位的感染和病变情况。
微生物标本类型及来源02临床常见微生物标本采集方法血液及骨髓标本采集建议在患者寒战或发热初起时采集，同时在使用抗生素之前采集。
成人一般选择肘静脉，新生儿和婴儿选择颈静脉或股静脉。
成人一般采集8-10ml，儿童采集3-5ml，婴儿采集1-2ml。
严格无菌操作，避免污染，同时防止溶血。
采集时间采集部位采集量注意事项一般建议清晨第一次尿，即晨尿。
微生物检验标本的正确采集方法及注意事项
56医药健闻微生物检验标本的正确采集方法及注意事项刘洋 （河南京城皮肤中医院，河南郑州 450000）常见的微生物检验标本包括以下几种类型：血、骨髓、静脉导管标本，痰及下呼吸道标本，尿液标本，大便标本，生殖道系统标本，眼、耳、鼻、咽拭子标本。
血、骨髓、静脉导管标本正确采集方法：（1）先用75%酒精对静脉穿刺部位擦拭消毒30 s 以上，用一根碘棉签从穿刺点向外1.5~2 cm 的直径范围内再次消毒60 s 。
（2）使用75%酒精对血培养瓶和橡皮塞子消毒60 s 。
在血液注入血培养瓶前，先用无菌纱布或者棉签将橡皮塞子表面的残余酒精清除干净。
（3）在穿刺前或穿刺期间，佩戴乳胶手套将静脉进行固定，防止滑动，但是不可接触穿刺点；使用注射器无菌穿刺取血后，可直接注入血培养瓶中；在血标本进入到培养瓶后，轻轻颠倒混匀并立即送检，以免血液凝固。
（4）成人的采血量是8~10 ml ，儿童的采血量是1~3 ml ，骨髓采血量是1~2 ml 。
注意事项：（1）静脉采血的部位通常为肘静脉，不建议从动脉采血。
患者疑是细菌性心内膜炎时，可以选择肘动脉或者股动脉采血，勿要在静脉滴注抗菌药物时进行采血。
（2）使用注射器无菌穿刺取血后勿换针头，直接注入血培养瓶。
如果需要进行第二次穿刺，需要更换针头。
（3）多次采血时，应在不同部位的血管穿刺，以排除皮肤菌丛污染的可能。
除非无法从静脉穿刺处取血，否则不能从静脉植入管内取血。
（4）若是从静脉植入管内取血，应该同时自外周静脉采集血液进行培养，以协助判读血培养阳性结果，同时在申请单上注明标本类型。
（5）采血前，应该将患者信息、采血时间、部位、采血量写在标签上，并贴在培养瓶上。
（6）有血的培养瓶若不能立即送检，可放室温保存，切不可放入冰箱。
痰及下呼吸道标本正确采集方法：（1）能够自行取痰的患者，在清晨起床后未进食前，先用漱口水漱口，去除口腔细菌，再用清水漱口，深呼吸后用力咳出气管深处的痰液，放置于无菌集痰器中并盖好瓶盖；无法咳痰或者不合作的患者，需要帮助其采取卧位，由上而下叩击背部，并戴好无菌手套，将无菌集痰器分别连接吸引器和无菌吸痰器，按吸痰法将痰吸入无菌集痰器内，并盖好瓶盖，收集好后立即送检。
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提高感染样本送检率及 送检质量 加强细菌耐药监测
热词
精准医疗
精准医疗：需要精准结果数据支持，来源于正 确的微生物学检验
“正确的微生物学检验始自正确的 标本采取。临床医师、护师及检 验技师都必须通晓其要领。”
著名的临床微生物检验专著Manual of Clinical Microbiology 的主编Patrick Murray
尿液标本--采集方法
（2）导尿管导尿：按常规方法对会阴部进行清洗消毒 后，用导尿管直接经尿道插入膀胱，获取膀胱尿液。 可减少尿液标本的污染，准确地反映膀胱感染情况。 必须新鲜留置的（不超过24小时），可以从上导管接 口处留取，但不可从下尿袋口留取。 长期（超过24小时）留置导尿患者，应在更换新尿管 时留取尿标本。留置导尿管有定值菌定值，留取的标 本是污染的，标本不可取。必须更换新的导尿管。 严格无菌操作，且必须在标签处注明标本采集方法。 （自己留取、导尿），标签贴在下端。
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微生物标本采集规范
主要内容
1
2
前言
尿液标本
3
血液标本 穿刺液标本 脓液分泌物标本
4 5
6
呼吸道标本
热词
超级细菌
“多重耐药菌”引起全社会关注
卫生部办公厅关于加强多重耐药菌医院感染 控制工作的通知卫办医发〔2008〕130号
卫生部办公厅关于抗菌药物临床应用管理有 关问题的通知办医发〔2009〕38号 卫生部办公厅关于进一步加强抗菌药物临床应 用管理的通知（卫办医发〔2008〕48号） 抗菌药物临床应用管理办法（2012）
4、血培养的采集程序
防止皮肤寄生菌或环境微生物引起的污染 是血培养的关键问题，采血前严格执行消毒 程序是十分重要的。
（二）血培养标本的采集和运送
1）严格执行皮肤消毒程序：
采集血培养标本之前首先做好手卫生。 ①三步法 1) 75%酒精擦拭静脉穿刺部位，待干30s以上； 2) 1%~2%碘酊作用30s或10%碘伏60s，从穿刺点向外画圈消毒至消毒区 域直径达3cm以上； 3) 75%酒精脱碘：对碘过敏的患者，用75%酒精消毒60s，待酒精挥发 干燥后采血。穿刺点消毒后不可再接触。 ②一步法：0.5%葡萄糖酸洗必泰作用30 s（不适用于2个月以内的新生儿 ），或70%异丙醇消毒后自然干燥。 用注射器无菌穿刺取血后，勿换针头(如果行第二次穿刺，换针头)， 直接注入血培养瓶。 一定要颠倒混匀
丛玉隆，根据大量资料报道，在实验误 差中，分析前的误差占总误差的70%左右
前
言
垃圾
垃圾
垃圾
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“茶尿门”
浙江记者用茶水代替 尿液去10家医院做了 检查，有6家医院说 尿道发炎。 结论：检验中质量控 制体系只能保证合格 样本检测的正确。 对于发生在检验前不 合格的样本进行检测 其结果肯定是错误的。
脓液及烧伤、创伤、组织标本标 本
3.采集方法 开放性脓肿的脓性分泌物：先以无菌生理盐水冲 洗拭去溃疡表面渗出物，尽可能抽取脓肿与正常 组织交界处的脓液，置于注射器内送检。 如用拭子送检，先以无菌生理盐水冲洗拭去溃疡 表面渗出物或者痂，露出肉芽组织，再用无菌生 理盐水蘸湿拭子擦取溃疡基底部或肉芽组织附近 边缘部位的分泌物送检。
全球面临的严峻问题
2014年9月21日，美国总统签署行政令，发布 防治耐药菌的国家战略 -减慢耐药菌发展及防止耐药菌感染传播 2015年3月27日美国政府公布一项为期5年的 国家行动计划–大幅削减抗生素的不当使用，以 应对“紧迫而严重”的细菌耐药威胁
关注细菌性疾病的病原学诊断，已成为临 床工作者共同关注的热门焦点问题。
2）血培养瓶消毒：静脉穿刺点选定后，去除血培养瓶的塑料
瓶帽，切勿打开金属封口环和胶塞，使用70%异丙醇或75%乙醇消毒，自 然干燥60s。
（二）血培养标本的采集和运送
3）培养瓶接种程序：
抽取血液后，不要换针头，直接注入血培养瓶中，轻轻颠 倒混匀，以防血液凝固。一定要颠倒混匀。 严格防止将空气注入厌氧瓶中。 需氧瓶和厌氧瓶间的血标本分配 1）采血量充足的患者 先注入厌氧瓶，后注入需氧瓶。 2） 采血量不足的患者 先将足量血标本注入需氧瓶，再将剩余血液注入厌氧瓶。 有利于分离出真菌、铜绿假单胞菌和嗜麦芽窄食单胞菌。
正确的标本采集和运送是细菌 培养成功的最最重要的关键
但由于标本的采集和运送常由护士或医生或病 人自己完成，所以也是最不容易做好的事情，而且 不知道问题所在之处，造成的后果是: 临床医生最不能接受的问题:阳性率低
目前现状
标本污染率太高 1、延误病人诊治 2、使医患关系更加紧张，容易激发矛盾 3、浪费医护时间 4、增加医疗成本
标本管理是核心难题
标本采集与处理不符合要求，则微生物培养的结果毫无意义。故病人 检验前做适当准备和标本正确采集是检验质量保证的重要环节之一。
一、尿液标本
1.送检指征 2.采集时机 嘱咐患者睡前少饮水，晨起第一次尿液（使尿液 在膀胱内潴留一夜或至少4h以上），以中段尿为 宜，必要时行导尿术或膀胱穿刺采集尿液。 应在抗生素应用前或停药一周后采集标本，如不 能停用抗生素，应于下次抗生素应用前采集。 3.采集方法 1）清洁中段尿 2）导尿管导尿
五、呼吸道标本
上呼吸道标本
采集方法 上呼吸道标本包括鼻、鼻咽、咽拭子标本。应根 据临床表现和感染部位的不同有选择性采集标本 ，以便更好地分离出病原菌。采集时预先要用无 菌生理盐水蘸湿拭子，并直取感染部位，减少污 染。
上呼吸道标本
3.采集方法 ① 鼻拭子的采集：最好使用扩鼻器，先用无菌
尿液标本--采集方法
（1）清洁中段尿1～3ml，加盖立即送检（不超过2h） 泌尿道与外界相通，有皮肤定植菌生长，一定要清洗。
女性：先以肥皂水清洗外阴部，再以无菌生理盐水洗净，用 无菌纱布擦拭，用手指将阴唇分开排尿，弃去前段尿，留取 中段尿。 男性：翻转包皮，用肥皂水清洗尿道口，再以无菌生理盐水 清洗，留取中段尿。 婴幼儿：先以无菌生理盐水棉球清洗其外阴部或外生殖器， 将无菌尿杯对准尿道口，用胶布固定好，待尿排出后立即送 检。 该方法简单、易行，是最常用的尿培养标本收集方法，但很容 易受到会阴部细菌污染，应由医护人员采集或在医护人员指导 下由患者正确留取。
（二）血培养标本的采集和运送
1、采集时机、频率
1）用抗菌药物之前采集。 2）推荐在寒战或高热高峰前后半小时采集；
实验数据显示，细菌进入血流的时间是在间歇热发生前大 约1h。Thompson等观察到血培养的阳性率与病人发热波峰 并不相关。作为实际需要，只要符合采血指征，血培养应 该立刻进行（或者短时间内）。 美国临床和实验室标准协会（CLSI）《血培养的原则和规 程；批准指南》
三、穿刺液标本
脑脊液 胸水 腹水 胆汁 心包液 关节液 鞘膜液
在正常人体中，上述体液均是无菌的。 即使病人有感染的情况下其含菌量往往也是比 较少的，我院采用增菌培养。
穿刺液标本
1.采集指征 2.采集时机尽量在使用抗菌药物前，或停止用药1-2d后
、下次用药前，或选择血药浓度较低时抽取。
需氧瓶
厌氧瓶
儿童瓶
（二）血培养标本的采集和运送
同时采集2-3套血培养标本 一套： 需氧、厌氧双份标本培养 2004年Cockerill研究显示病原菌阳性率：
一套65%， 两套80%， 三套96%。 1套 需氧瓶 厌氧瓶
标签粘贴处
标 签
标 签
我院血培养模式选择：
1、双侧双瓶（推荐）：从左侧肘静脉采血接种一套 培养瓶，再从右侧肘静脉采血接种另一套培养瓶。 2、双侧单瓶：从左侧肘静脉采血接种需氧瓶，再从 右侧肘静脉采血接种另一需氧瓶。 3、单侧双瓶：从一侧肘静脉采血接种一套培养瓶。 不建议： 1、动脉血，诊断价值不如静脉血； 2、静脉留置导管，因常伴有高污染率。如必须从留 置导管中采血，也应同时从外周静脉采集另一血标 本，以帮助阳性结果的判读。
脑脊液、胸腹水等无菌穿刺液标本
脑脊液、胸腹水等无菌穿刺液标本，切不可从长 期（超过24小时）留置导管中留取，标本极易污 染，有必要应新鲜留置导管再留取。 确有培养必要而又不能再重新留置导管的，应备 注 备注： 直接穿刺 留置导管
四、脓液及烧伤、创伤组织标本
1.采集指征 当局部出现红、肿、热、痛及功能障碍等全部或 部分症状，伴或不伴全身症状，怀疑以下疾病时 应采集可疑感染部位、异物、组织或脓液标本做 病原培养： （1）软组织的急性化脓性炎症：如疖、痈、急性 蜂窝织炎、丹毒等； 桃体炎、急性 化脓性乳突炎、急性乳房炎；
⑴一般情况下只采集需氧瓶。 有以下高危因素时应该也考虑使用厌氧瓶：
其母亲产褥期患腹膜炎的新生儿，慢性口腔炎或鼻窦炎，蜂窝组织炎，有腹 腔感染的症状和体症，咬伤，接受类固醇治疗的粒缺患者。 ⑵儿童的皮肤消毒： ⅰ 2个月以下的患儿使用70％异丙醇； ⅱ 2个月以上的儿童可使用洗必泰或参考成人血培养皮肤消毒程序。 儿童采血量少是由于： 1.儿童总血容量少； 2.采血困难； 3.发生菌血症的儿童其血液中细菌浓度较高； 对于婴幼儿，用于血培养的血量不应超过患者总血量的1％； 评估儿童导管相关性感染，应同时采集外周血和导管血
3. 采集方法 由临床医生按相应规程严格无菌操作穿刺
抽取标本或外科手术采集标本。 （1）直接穿刺：严格消毒皮肤，同血培养程序，用注射 器无菌抽取或引流体内可疑感染部位的液体，直接接种于 血培养瓶中，立即送检。如疑为厌氧菌感染，可注入厌氧 血培养瓶内。 （2）导管引流：必须新鲜留置的，超过24h有定植菌生长 ，不可取，标本不能直接从引流袋放出，因为引流液在袋 中潴留时间太长容易滋生细菌。 4、采集标本量 同血培养
脓液及烧伤、创伤、组织标本
1.采集指征 （3）脓肿：扁桃体脓肿、咽部脓肿、咽旁脓肿、 脑脓肿、肺脓肿、肝脓肿、脓胸、腹腔脓肿、肾 皮质化脓性感染、肾周围炎和肾周脓肿、直肠肛 管周围脓肿； （4）创伤感染：术后切口感染、导管感染、脐带 残端感染。 2.采集时机 使用抗菌药物前，停止用药1-2天后，下次用药前 ，或血药浓度较低时采集。