微生物检验方法PPT课件

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《微生物检验技术》课件

《微生物检验技术》课件

食品中常见的微生物种类:细菌 、霉菌、酵母菌等。
微生物在食品中的分布特点:食 品的种类、加工方式、储存条件 等对微生物的分布有显著影响。
微生物的来源:食品生产、加工 、运输、储存等环节中可能引入
的微生物。
食品中微生物的检测方法与操作
01
02
03
04
传统检测方法
培养法、镜检法等。
现代检测技术
免疫分析法、PCR技术、生物 传感器等。
消毒灭菌效果的监测
对医院环境、医疗器械等进行 微生物学检测,评估消毒灭菌 效果,确保医疗安全。
抗菌药物敏感性试验
通过抗菌药物敏感性试验,指 导临床医生合理选用抗菌药物 ,降低耐药性的产生。
感染暴发调查
在发生医院感染暴发时,进行 流行病学调查和溯源分析,查 找感染源和传播途径,采取有
效控制措施。
疫苗的研究与开发
病原微生物的分离与鉴定
从患者体内分离出病原微生物,并进行鉴定,为疫苗的研制提供基础 资料。
疫苗株的筛选
通过微生物检验技术对病原微生物进行筛选,选择适合作为疫苗株的 菌株或病毒株。
疫苗制备过程的监控
在疫苗制备过程中,对原材料、半成品和成品进行质量检验和安全性 评估,确保疫苗的安全性和有效性。
疫苗效果评价
微生物的生长与繁殖
微生物的生长
微生物生长是指微生物细胞数目的增加和质量的增加。其生 长过程分为迟缓期、对数生长期、稳定期和衰亡期。
微生物的繁殖
微生物繁殖是微生物生长的必然结果,繁殖方式包括二分裂 、出芽生殖、孢子生殖等。繁殖过程中,微生物的遗传物质 会复制并传递给后代。
微生物的生理生化特性
微生物的代谢
利用微生物降解污染物,处理废水、废气等,降低环境污染。

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个人防护措施及注意事项说明
实验服与护目镜
进入实验室需穿着实验服,佩戴合适的护目镜, 防止试剂飞溅或粉尘刺激。
手套与口罩
根据实验需要选择合适的手套和口罩,避免皮肤 接触有害试剂或吸入有害气体。
实验操作规范
规范实验操作,避免产生气溶胶或飞溅物,减少 交叉污染的风险。
实验废弃物处理及环保要求讲解
废弃物分类处理
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目录
• 微生物学基础 • 医学微生物学概述 • 常见病原微生物介绍 • 微生物检验技术与方法 • 临床标本中常见病原微生物检测实例分析 • 实验室安全与防护措施
01 微生物学基础
微生物定义与分类
微生物定义
微生物是一类形体微小、结构简单、 必须借助光学显微镜或电子显微镜 才能看到的微小生物。
微生物生长与繁殖
01
微生物营养
微生物从外界环境中摄取和利用营养物质的过程称为营养。微生物营养
类型有光能自养型、光能异养型、化能自养型和化能异养型四类。
02 03
微生物生长
微生物在适宜的环境条件下,通过摄取营养物质、合成细胞物质、增加 细胞数量的过程称为生长。生长曲线可分为迟缓期、对数期、稳定期和 衰亡期四个时期。
通过对微生物基因组进行测序和 分析,了解其基因组成和功能, 为微生物的鉴定和分型提供准确
依据。
基因芯片技术
将大量特异性基因探针固定在芯 片上,通过与待测微生物DNA杂
交来鉴定其种类和型别。
宏基因组学技术
通过对环境中所有微生物的基因 组进行高通量测序和分析,了解 微生物群落的组成和功能,为环 境微生物检测和生态学研究提供
尿液标本中常见病原微生物检测实例分析
尿常规检查

微生物检验7ppt课件

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新生儿结膜分泌物可见胞内、胞外大量革兰阴性双球菌可 初步诊断为淋球菌性结膜炎
4.分离培养与鉴定
选择培养基如MTM,Martin-Lewis(ML) ,或NYC
置于5%CO2气体条件下35~37℃孵育 每隔24h观察平板
(1)形态和生化学鉴定
可疑菌落
直径0.5~1mm,灰褐色、光滑、半透明呈露滴 状凸起的菌落
血琼脂平板或巧克力琼脂平板上呈光滑、湿润、 透明或半透明、直径1~2mm的不溶血、圆形、灰兰色菌
落 卵黄琼脂平板上为无色、光滑、湿润奶油状菌落 在液体培养基中呈轻度或中度混浊生长,无菌膜 脑膜炎奈瑟菌于孵育24h后在培养基上发生自溶
3.生化特性
氧化酶阳性,触酶阳性(除延长奈瑟菌外) 对糖分解能力、硝酸盐还原能力和DNA合
革兰阴性球菌
奈瑟菌属(Neisseria) 布兰汉菌属(Branhamella)
概述
“伯杰鉴定细菌学手册”第9版
将奈瑟菌属和布兰汉菌属归于群4,将奈瑟菌属、莫拉 菌属、金氏菌属和不动杆菌属都归于奈瑟菌科
奈瑟菌属中的淋病奈瑟菌(N.gonorrhoeae)、脑 膜炎奈瑟菌(N.meningitidis)以及莫拉菌属中的 卡他莫拉菌(M.catarrhalis)是主要的致病菌。
告为阴性
(二)淋病奈瑟菌
1.检验程序
2.标本采集
阴道和宫颈分泌物
用无菌塑料棒涤纶拭子,伸入阴道后穹隆或宫颈内1cm处 停留10~15秒时间,蘸取
采集尿道分泌物
弃去前段脓性分泌物,留取后段作为标本
尿液 直肠肛拭标本
废弃第一根污染棉签,用第二根棉签醮取的分泌物
新生儿结膜炎时应采取眼结膜表面分泌物
目前对卡他莫拉菌是归属尚未定论
第一节 奈瑟菌属

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第17页/共80页
二、无菌检查
4.供试品的无菌检查
•无菌检查法包括
• 薄膜过滤法 • 直接接种法
•只要供试品性质允许,应采用薄膜过滤法。 •供试品无菌检查所采用的检查方法和检验条件应与方法适 用性试验确认的方法相同。 •无菌试验过程中,若需使用表面活性剂、灭活剂、中和剂 等试剂,应证明其有效性,且对微生物无毒性。
3d
培养基
生孢梭菌
空白
1支
枯草芽孢杆菌
各2支 胰酪大豆胨液体
白色念珠菌 黑曲霉
培养基
20~25℃
5d
【10版:改良
马丁培养基】
结空果白判定:
1支
空白对照管应无菌生长,若加菌的培养基管均生长良好,判该培养基的灵敏
度检查符合规定。
16
第16页/共80页
二、无菌检查
3.方法适用性试验(方法验证试验)
•当 进 行 产 品 无 菌 检 查 法 时 , 应 进 行 方 法 适 用 性 试 验 , 以 确 认 所 采 用 的 方 法 适 合 于 该产品的无菌检查。若检验程序或产品发生变化可能影响检验结果时,应重新进 行方法适用性试验。 •验 证 时 , 按 “ 供 试 品 的 无 菌 检 查 ” 的 规 定 及 下 列 要 求 进 行 操 作 。 对 每 一 试 验 菌 应 逐一进行验证。 •方法适用性试验也可与供试品的无菌检查同时进行 。
24
第24页/共80页
二、无菌检查
4.供试品的无菌检查
•结 果 判 断
• 当符合下列至少一个条件时方可判试验结果无效: • (1)无菌检查试验所用的设备及环境的微生物监控结果 不符合无菌检查法的要求。 • (2)回顾无菌试验过程,发现有可能引起微生物污染的 因素。 • (3)供试品管中生长的微生物经鉴定后,确证是因无菌 试验中所使用的物品和(或)无菌操作技术不当引起的。

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• 培养基46±1ºC水浴 保温。
• 倾注前先加TTC于营 养琼脂中,加入量比 例为1ml/1L。
• 小心旋转培养皿勿将 培养基溢出。
菌落总数测定
• 琼脂凝固后,翻转 平板,置36 ±1ºC 温箱内培养48 ±2h.
• 若有太多水珠在皿盖 上,应先倒置打开, 以免湿度大使菌成片 状生长。
菌落总数测定ቤተ መጻሕፍቲ ባይዱ
• 乳糖发酵管36 ±1ºC下培养24 ±2h -----不产气------大肠菌群阴性------报 告
大肠菌群测定
• 革兰氏染色------呈现阴性 • 乳糖发酵管36 ±1ºC下培养24 ±2h ------
产气------大肠菌群阳性------报告
沙门氏菌检验
• 需氧和兼性厌氧的革兰氏阴性,最适生 长温度37 ºC,对营养要求不高,能在普通 培养基上生长.
• 同一来源的链状菌落 作为一个菌落。
霉菌、酵母菌计数
• 检样-----做成几个适当倍数的稀释液-----选择3个适宜稀释度,各取1ml分别加入灭 菌培养基内------每皿内加入适量培养基----- 25~28ºC下培养5d ------菌落计数-----报告
菌落总数PK霉菌、酵母菌
• 营养琼脂
• 报告表示:100mg(ml)检样内大肠菌 群最可能数(MPN)
大肠菌群测定
• 检样------稀释------乳糖胆盐发酵管9支 36 ±1ºC下培养24 ±2h ------不产气-----大肠菌群阴性
产气------分离培养
大肠菌群测定
• 以无菌操作将检样25g(ml)加入225ml 灭菌生理盐水中,充分振摇或使用匀浆 机制成1:10的均匀稀释液。吸取1ml该 稀释液沿管壁徐徐注入含有9ml灭菌生理 盐水中,混合均匀,制成1:100的稀释 液。

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细菌与菌落
细 单个细菌 菌 显微镜观察
菌 单个细胞繁殖 落 肉眼可见
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细菌菌落形态
a.大小: b.形态: c.隆起度: d.菌落边缘: e.表面性状: f.表面光泽: g.颜色透明度:
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细菌菌落形态
影响菌落特征的因素:
✓同种菌落--特征相似 ✓生长环境 ✓邻近菌落 ✓细胞空间位置不同
耐热物品、接种环、 试管口等
玻璃器皿、金属用具、 等耐热物品 全部微生 物
培养基、生理盐水、 玻璃器皿等
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热力灭菌原理
微生 物
高温
蛋白 变性
代谢 故障
死亡
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湿热灭菌优点
➢水蒸汽穿透力强 ➢菌体蛋白质吸收水分易凝固 ➢蒸汽凝结成水,放出潜热,提高物体温度 湿热灭菌比干热效果好
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水份
aw
用来衡量有多少水分可以用来生长
p aw = p0 0 < aw < 1
p = 实际水蒸气压 p0= 纯水蒸气压
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温度
对温度适应能力分 种类 最低℃ 最佳℃ 最高℃ 嗜热菌 40—45 55—75 60—90 嗜温菌 5—15 30—45 35—47 低温菌 -5—5 25—30 30—35 嗜冷菌 -5—5 12—15 15—20
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15
15
细菌结构
基本结构:细胞壁、细胞膜、细胞质、核质 特殊结构:荚膜、鞭毛、菌毛、芽孢
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微生物检验(ppt版)

微生物检验(ppt版)
•芽胞抗原:
有免疫原性和血清学诊断价值
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第十四页,共七十五页。
炭疽(tànjū)毒素:
--保护性抗原〔PA)、致死因子〔LF〕、 水肿
因子〔EF〕三个组分
--单独皆无致病性,与PA结合才显示出致 病性
--具有抗吞噬和免疫原性
15
第十五页,共七十五页。
抵抗力:
--芽胞抵抗力很强,煮沸10min或干热(ɡàn rè)140℃ 3h才能杀灭
在,亦可自甲壳动物、蝇、蜱中别离出 能引起多种野生动物和家畜感染〔羊、马、狗、猫、
鸟、鱼等〕 正常人粪便带菌率达10%左右,70%的人可短期带 菌。新生儿、免疫功能降低者,易受该菌感染
42
第四十二页,共七十五页。
致病物质: 李斯特菌溶血素O(LLO)——主要毒力因子 内在素——外表(wàibiǎo)蛋白〔侵袭性蛋白〕 磷脂酶C
(yìzhì)
噬菌体裂解(liè jiě)
(shēnɡ huà)
动 响生 串
荚 青毒

化珠


膜 霉力 肿 素试
确定报告


胀 抑验
试制


第二十一页,共七十五页。
21
痰、呕吐物、CSF及 炎症分泌物
2%兔血清肉 汤快速增菌 37℃4h
0.2ml注射小白鼠 腹腔,8h后解剖
荚膜肿胀试验
直接涂片
荚膜染色 G染色 初步报告
食物中毒在国内、外均为常见 中毒食物大多无腐败、变质现象,感官性
状正常,应引起注意
30
第三十页,共七十五页。
二、微生物特性(tèxìng)
形态与染色:
- G+大杆菌 -生长6h后即形成(xíngchéng)圆形芽胞、

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菌种保藏的目的: 防止优良性状菌种的退化或变异。 注意:在实际工作中菌种的退化或变异是 难以避免的。微生物的遗传与变异是正常 的生物进化规律,变异是绝对的,稳定性 是相对的。
(一)菌种保藏的目的和意义
菌种保藏的意义: 微生物菌种是珍贵的自然资源,通过 分离纯化得到的微生物纯培养物,还必须 通过各种保藏技术使其在一定时间内不死 亡,不会被其他微生物污染,不会因发生 变异而丢失重要的生物学性状,否则就无 法真正保证微生物研究和应用工作的顺利 进行。因此,菌种或培养物保藏是一项最 重要的微生物学基础工作,具有重要意义。
(四) 菌种的衰退与复壮
2、菌种衰退的实质
菌种的衰退是发生在细胞群体中的一个由量 变到质变的逐步演变过程。 注意:开始时,在一个大群体中仅个别细胞发生 负变,这时如不及时发现并采取有效措施,而 一味移种传代,则群体中这种负变个体的比例 逐步增大,最后让它们占了优势,从而使整个 群体表现出严重的衰退。 所以,在开始时所谓“纯”的菌株,实际上其中 已包含着一定程度的不纯因素;同样,到了后 来,整个菌种虽已“衰退”了,但也是不纯的, 即其中还有少数尚未衰退的个体存在着。
(四) 菌种的衰退与复壮
1、菌种衰退的表现 2、菌种衰退的实质 3、菌种的复壮
(四) 菌种的衰退与复壮
1、菌种衰退的表现
(1)生长速度缓慢,产孢子越来越少。 (2)代谢产物生产能力或其对宿主寄生能力的下 降。 (3)其他原有的典型性状变得不典型,如:最易 觉察到的是菌落和细胞形态的改变。 (4)对产量性状来说,菌种的负变就是衰退。 (5)抗不良环境条件(抗噬菌体、抗低温等)能 力的减弱等。
Байду номын сангаас
(三)菌种保藏的方法
2、冷冻干燥保藏法 将微生物或孢子冷冻,然后在减压情 况下利用升华现象除去水分,使细胞的代 谢、生理等生命活动处在停止状态下进行 长期保藏。

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目 录
• 微生物检验概述 • 微生物检验的基本原理与方法 • 微生物检验的样品采集与处理 • 微生物检验的常用技术与操作 • 微生物检验的质量控制与保证 • 微生物检验的挑战与发展趋势
01
微生物检验概述
微生物检验的定义与重要性
定义
微生物检验是对环境中的微生物进行定性、定量和鉴定的一种技术,通过特定 的方法和技术手段,对微生物的种类、数量、生理生化特性、遗传物质等进行 分析和研究。

04
微生物检验的常用技术与操作
显微镜技术
光学显微镜
01
利用可见光和光学透镜成像,可观察细菌、真菌等微生物的形
态和结构。
电子显微镜
02
利用电子束成像,能够观察更细微的结构,如病毒、细菌的超
微结构等。
相差显微镜
03
利用光的相位差原理,可观察无色透明的微生物,如支原体、
衣原体等。
培养基制备技术
01
补体结合试验
利用补体参与抗原抗体反 应,形成复合物并激活补 体系统,用于检测微生物 抗原或抗体。
微生物的分子生物学检测方法
PCR技术
应用聚合酶链式反应(PCR)技术扩 增微生物特异性基因片段,实现快速 、灵敏的微生物检测。
生物信息学分析
应用生物信息学方法对微生物基因组 数据进行挖掘和分析,揭示微生物种 类、进化关系等信息。
脱羧酶试验等。
酶活性检测
检测微生物产生的特定酶活性 ,如过氧化氢酶试验、氧化酶
试验等。
抗生素敏感性试验
检测微生物对抗生素的敏感性 ,以指导临床用药。
微生物的血清学试验
凝集试验
应用特异性抗体与微生物 抗原结合,形成可见的凝 集现象,用于鉴定微生物 种类。

微生物检验PPT培训课件

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特点是靶分子固定在细胞中,细胞固定在载玻 片上,以固定的细胞代替纯化的核酸,然后将 载玻片浸入溶有探针的溶液里,探针进入组织 细胞与靶分子杂交,而靶分子仍固定在细胞内。
检测特定生物有机体之间是否存在 亲缘关系
1.待检菌株的DNA双链 2.用碱或热变性使双链解开(DNA的变性) 3. 将单链DNA在硝酸纤维素膜上的固定 4.加放射性标记的DNA或RNA 5.保温(一般是66℃,24h)进行互补碱基配
应 用: (1)检测特定生物有机体之间是否存在亲缘关系; (2)用来揭示核酸片段中某一特定基因的存在与否、
拷贝数及表达丰度。
杂交的类型
(1)按杂交对象:
DNA-DNA RNA-DNA
(2)按作用环境:
固相杂交:是将参加反应的一条核酸链先固定在固体支 持物上,一条反应核酸(标记探针)游离在溶液中。
二、核酸探针的工作原理
两条碱基互补的DNA链在适当条件下按碱 基配对原则形成杂交DNA分子。根据DNA遗 传序列的相对稳定性和互补原则,用已知特异 的碱基序列作成有标记的一小段单链(或核苷 酸序列)与被检测材料进行分子杂交。如果被 检测材料中病原的遗传序列与探针具有互补的 碱基序列,就会形成杂交双链,从而证明它们 之间具有一定程度的同源性。(p108)
感器的探针利用
第二节 PCR技术检测微生物
一、 PCR反应的基本原理
聚合酶链反应(Polymerase Chain Reaction, PCR)就是模板DNA、引物以及四种脱氧核糖核 苷三磷酸(dNTPs )在DNA聚合酶的催化作用下 所发生的酶促聚合反应,PCR反应是由变性--退 火--延伸三个基本反应步骤构成的。
对(杂交) 6.用缓冲溶液洗脱未杂交的部分 7.测定膜的放射性,计算杂交率

微生物检验(PPT)

微生物检验(PPT)
第一页,共十六页。
第二页,共十六页。
第三页,共十六页。
细胞(xìbāo)数量的测定方法----七种方 法
测定微生物生长的方法很多,各种方法均有 其优缺点,也不是在任何情况下都适用。在 微生物学(wēi shēnɡ wù xué)工作中一般常用的是平皿 菌落计数法、计数器法和比浊法。至于哪种 方法比较适合你,得根据你的具体条件而定。
广泛应用于水、牛奶、食物、药品等 各种材料的细菌检验,是最常用的活菌计 数法
第十页,共十六页。
4、比浊法
比浊法是根据菌悬液的透光量间接地测定细 菌的数量。细菌悬浮液的浓度在一定范围内与 透光度成反比,与光密度成正比,所以,可用 光电比色计测定菌液,用光密度(OD值)表示样 品菌液浓度。
此法简便快捷,但只能(zhī nénɡ)检测含有大量 细菌的悬浮液,得出相对的细菌数目,对颜色 太深的样品,不能用此法测定。
第四页,共十六胞计数器进行计数。取一定体积的样 品细胞悬液置于血细胞计数器的计数室内, 用显微镜观察计数。由于(yóuyú)计数室的容积是 一定的(O.1mm3),因而根据计数器刻度内的 细菌数,可计算样品中的含菌数。本法简便 易行,可立即得出结果。 本法不仅适于细菌计数,也适用于酵母 菌及霉菌孢子计数
第十二页,共十六页。
6、测定(cèdìng)细胞总氮量或总碳量
氮、碳是细胞的主要成分,含量较 稳定,测定(cèdìng)氮、碳的含量可以推知细 胞的质量。此法适于细胞浓度较高的样 品。
第十三页,共十六页。
7、颜色(yánsè)改变单位法〔colour change unit,简称CCU〕
这种方法通常用于很小,用一般的比浊法无法 计数的微生物,比方支原体等,因为支原体 的液体培养物是完全透明的,呈现为清亮透 明红色,因此无法用比浊法来计数,由于支 原体固体(gùtǐ)培养很困难,用cfu法也不容易计 数,因此需要用特殊的计数方法,即CCU法。 它是以微生物在培养基中的代谢活力为指标, 来计数微生物的相对含量的,下面以解脲脲 原体为例,简单介绍其操作:

微生物限度检验PPT课件

微生物限度检验PPT课件
- 表面活性剂、中和剂或灭活剂:应证明其有效性及 对微生物的生长和存活无影响。
- 供试液从制备至加入检验用培养基,不得超过1小 时。
- 供试液制备若需用水浴加温时,温度不应超过45℃。 - 供试液的体积:100ml。
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稀释剂( 中国药典2005版)
(1) 氯化钠-蛋白胨缓冲溶液 (2) 无菌磷酸盐缓冲液 (3) 无菌磷酸盐缓冲液
中国药典2005版
菌株名称
CMCC编号
大肠埃希氏菌(E. coli)
CMCC(B)44102
金黄色葡萄球菌(Sta. aureus) CMCC(B)26003
枯草芽孢杆菌(Bac. subtilis)
CMCC(B)63501
白色念珠菌(Can. albicans) 黑曲霉菌(Asp. niger)
CMCC(F)98001 CMCC(F)98003
一次检出为准
第一次结果超过规定标准,复 试两次,三次结果平均报告
不符合标准规定,取大于25g的 样品复试
不符合标准规定,取大于25g的 样品复试
一次检出为准
测定结果在规定的限度标准5 倍以内均为合格
6
验证目的
- 在于确认(寻找)一种有效的检验方法,如果样 品(药品)中有一定数量的微生物存在,那么采 用此法可以使得样品(药品)中的微生物得以检 出。
过滤
5x102 cfu/ml菌悬液 0.1 ml
菌种组:
5x102 cfu/ml菌悬液 0.1 ml
过滤
空白样品组:
过滤
计数A 计数B (阴性对照) 计数C (阳性对照) 计数D
- 充分验证样品(药品)本身对微生物生长的影响。
7
验证目的
确认一种检验方法。 验证实验 检验条件
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葡萄糖 2.5g 卵磷脂 1g 吐温80 7g 蒸馏水 1000mL ❖ 制法:先将卵磷脂在少量蒸馏水中加温溶解后,再与其它成分混合,加
热溶解,调pH为.2~7.3 分装,103.43kPa(121℃ 15 lb)20min 高 压灭菌。注意振荡,使沉淀于底层的吐温80 充分混合,冷却至25℃左 右使用。 ❖ 注:如无酪蛋白胨和大豆蛋白胨,也可用多胨代替。 ❖ 灭菌液体石蜡。 ❖ 灭菌吐温80。
微生物检验方法
一、总则 二、菌落总数 三、粪大肠菌群 四、霉菌和酵母菌
一、总则
1.范围 本规范规定了化妆品微生物学检验
的基本要求。 本规范适用于化妆品样品的采集、
保存及供检样品制备。
2.仪器和设备 天平 高压灭菌器 振荡器 三角瓶(250mL) 玻璃珠 玻璃棒 刻度吸管 (1 mL、10mL) 研钵或均质器恒 温水浴箱
固体样品
称取10g,加到90mL 灭菌生理盐水中,充分振荡混匀, 使其分散混悬,静置后,取上清液作为1:10 的检液。 如有均质器,上述水溶性膏、霜、粉剂等,可称10g 样 品加入90mL•灭菌生理盐水,均质1min~2min;疏水性 膏、霜及眉笔、口红等,称10g 样品,加10mL•灭菌液 体石蜡,10mL 吐温80,70mL 灭菌生理盐水,均质 3min~5min。
3 仪器和设备
三角瓶,250mL。 量筒,200mL。 pH 计或精密pH 试纸。 高压灭菌器。 试管:15×150mm。 灭菌平皿:直径9cm。 灭菌刻度吸管,10mL、1mL。 酒精灯。 恒温培养箱:36℃±1℃。 放大镜。
4 培养基和试剂
生理盐水
卵磷脂、吐温80—营养琼脂培养基
成分:蛋白胨 20g、牛肉膏 3g 、氯化钠 5g 、琼脂 15g、 卵磷脂1g、 吐温80 7g、 蒸馏水 1000mL
3.培养基和试剂
❖ 生理盐水(成分:氯化钠 8.5g) 蒸馏水加至1000mL,溶解后,分装到加 玻璃珠的三角瓶内,每瓶90mL,103.43kPa(121℃ 15 lb)20min高 压灭菌。
❖ SCDLP 液体培养基 ❖ 成分:酪蛋白胨 17g 大豆蛋白胨 3g 氯化钠 5g 磷酸氢二钾 2.5g
(1) 用灭菌吸管吸取1:10 稀释的 检液2mL,分别注入到两个灭菌 平皿内,每皿1mL。另取1mL 注 入到9mL 灭菌生理盐水试管中 (注意勿使吸管接触液面),更 换一支吸管,并充分混匀,制成1: 100 检液。吸取2mL,分别注入 到两个灭菌平皿内,每皿1mL。 如样品含菌量高,还可再稀释成1: 1000 1:10000,……等,每种稀 释度应换1 支吸管。 (3) 为便于区别化妆品中的 颗粒与菌落,可在每100mL 卵磷脂吐温80 营养琼脂中 加入1mL 0.5%的TTC 溶液,如有细 菌存在,培养后菌落呈红色, 而化妆品的颗粒颜色无变化。
5 供检样品的制备
液体样品
水溶性的液体样品,可量取10mL 加到90mL 灭菌生理盐水中,如样品少于 10mL,仍按10 倍稀释法进行。如为5mL 则加到45mL 灭菌生理盐水, 混匀后,制成1:10 检液。
油性液体样品,取样品10mL,先加5mL 灭菌液体石蜡混匀,再加10mL•灭 菌的吐温80,在40℃~44℃水浴中振荡混合10min,加入灭菌的生理盐 水75mL(在40℃~44℃水浴中预温),在40℃~44℃水浴中乳化,制成 1:10 的悬液。
二、菌落总数
1 范围
本规范规定了化妆品中菌落总数的检验方法。 本规范适用于化妆品菌落总数的测定。
2 定义
菌落总数(Aerobic bacterial count)是指 化妆品检样经过处理,在一定条件下培养后 (如培养基成分、培养温度、培养时间、pH 值、需氧性质等),1g(1mL)检样中所含 菌落的总数。所得结果只包括一群本方法规 定的条件下生长的嗜中温的需氧性菌落总数。 测定菌落总数便于判明样品被细菌污染的程 度,是对样品进行卫生学总评价的综合依据。
5 操作步骤
(2) 将融化并冷至45℃~50℃的卵磷脂吐温 80 营养琼脂培养基倾注到平皿内,每皿约 15mL,随即转动平皿,使样品与培养基充 分混合均匀,待琼脂凝固后,翻转平皿,置 36℃±1℃培养箱内培养48h±2h。另取一 个不加样品的灭菌空平皿,加入约15mL 卵 磷脂吐温80 营养琼脂培养基,待琼脂凝 固后,翻转平皿,置36℃±1℃培养箱内培 养48h±2h,为空白对照。
4 样品的采集及注意事项
➢ 所采集的样品,应具有代表性。 ➢ 供检验样品,应严格保持原有的包装状态。 ➢ 接到样品后,应立即登记,编写检验序号,并按检验要求尽快检验。
若只有一个样品而同时需做多种分析,如细菌、毒理、化学等,则宜 先取出部分样品做细菌检验,再将剩余样品做其它分析。 ➢ 在检验过程中,从打开包装到全部检验操作结束,均须防止微生物 的再污染和扩散, ➢ 所用器皿及材料均应事先灭菌,全部操作应在无菌室内进行,或在相 应条件下,按无菌操作规定进行。 ➢ 如检出粪大肠菌群或其它致病菌,自报告发出之日起该菌种及被检 样品应保存一个月。
制法:先将卵磷脂加到少量蒸馏水中,加热溶解,加入吐 温80,将其他成分(除琼脂外)加到其余的蒸馏水中, 溶解。加入已溶解的卵磷脂、 吐温80,混匀,调pH 值 为7.1~7.4,加入琼脂,103.43kPa(121℃ 15 lb) 20min 高压灭菌,储存于冷暗处备用。
0.5%氯化三苯四氮唑
成分:TTC 0.5g 蒸馏水 100mL溶解后过滤,103.43kPa (121℃ 15 lb)20min 高压灭菌,装于棕色试剂瓶,置 4℃冰箱备用。
膏、霜、乳剂半固体状样品 亲水性的样品:
称取10g,加到装有玻璃珠及90mL•灭菌生理盐水 的三角瓶中,充分振荡混匀,静置15min。用其上 清液作为1:10 的检液。
疏水性样品:称取10g,放到灭菌的研钵中,加
10mL 灭菌液体石蜡,研磨成粘稠状,再加入 10mL 灭菌吐温80,研磨待溶解后,加70mL 灭菌 生理盐水,在40℃~44℃水浴中充分混合,制成1: 10 检液。
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