缺氧实验报告
缺氧的综合实验实验报告
一、实验目的1. 研究不同类型缺氧对机体的影响，包括乏氧性缺氧、血液性缺氧和组织中毒性缺氧。
2. 观察缺氧对呼吸系统、中枢神经系统的影响。
3. 探讨缺氧对血液颜色变化的影响。
4. 分析影响缺氧耐受性的因素。
二、实验原理缺氧是指组织细胞在氧气供应不足的情况下，无法进行正常的有氧代谢，导致能量产生减少，进而影响细胞功能。
本实验通过复制不同类型的缺氧模型，观察机体对缺氧的反应，以了解缺氧对机体的具体影响。
三、实验材料与方法1. 实验动物：昆明小白鼠10只，体重20-25克。
2. 实验设备：呼吸机、显微镜、离心机、氧气分析仪、电子天平等。
3. 实验步骤：（1）分组：将10只小白鼠随机分为四组，每组2只，分别为正常对照组、乏氧性缺氧组、血液性缺氧组和组织中毒性缺氧组。
（2）乏氧性缺氧组：将小白鼠放入低氧环境中（氧浓度约10%）24小时，观察其呼吸、中枢神经系统及血液颜色变化。
（3）血液性缺氧组：将小白鼠麻醉后，采用体外循环方法，使血液与低氧环境接触，观察其呼吸、中枢神经系统及血液颜色变化。
（4）组织中毒性缺氧组：将小白鼠注射一定量的氰化钠，观察其呼吸、中枢神经系统及血液颜色变化。
（5）正常对照组：不进行任何处理，作为对照组。
4. 数据收集与处理：观察并记录各组小白鼠的呼吸频率、中枢神经系统症状、血液颜色变化等指标。
将数据输入电子表格，进行统计分析。
四、实验结果1. 乏氧性缺氧组：呼吸频率降低，中枢神经系统出现抑制症状，血液颜色变淡。
2. 血液性缺氧组：呼吸频率降低，中枢神经系统出现抑制症状，血液颜色变淡。
3. 组织中毒性缺氧组：呼吸频率降低，中枢神经系统出现抑制症状，血液颜色变淡。
4. 正常对照组：呼吸频率正常，中枢神经系统无异常，血液颜色正常。
五、实验讨论1. 缺氧对呼吸系统的影响：缺氧时，机体为了增加氧气的摄入，呼吸频率会降低，以保证氧气供应。
2. 缺氧对中枢神经系统的影响：缺氧会导致中枢神经系统出现抑制症状，如嗜睡、昏迷等。
缺氧_实验报告
1. 了解缺氧的基本概念和分类。
2. 观察缺氧对小鼠生理功能的影响。
3. 掌握缺氧实验的基本操作方法。
二、实验原理缺氧是指机体在一定时间内，由于供氧不足导致组织细胞代谢障碍，出现一系列生理和病理变化。
缺氧可分为低张性缺氧、血液性缺氧和组织性缺氧。
低张性缺氧是指由于吸入气体中氧分压降低导致的缺氧；血液性缺氧是指由于血红蛋白携带氧气的能力降低导致的缺氧；组织性缺氧是指由于组织细胞利用氧气的能力降低导致的缺氧。
三、实验材料1. 实验动物：昆明小白鼠4只（体重20-25g）。
2. 实验仪器：缺氧实验瓶（100ml-125ml带塞广口瓶）、恒温水浴箱、氧气分析仪、计时器、手术器械等。
3. 实验试剂：生理盐水、钠石灰、氯丙嗪、亚硝酸钠、氰化钾等。
四、实验方法1. 分组：将4只小白鼠随机分为两组，甲组2只，乙组2只。
2. 缺氧实验：（1）甲组：将2只小白鼠放入缺氧实验瓶中，加入适量生理盐水，瓶口用钠石灰填充，瓶塞密封。
（2）乙组：将2只小白鼠放入缺氧实验瓶中，加入适量生理盐水，瓶口不填充钠石灰，瓶塞密封。
3. 实验观察：（1）观察两组小白鼠的呼吸频率、呼吸幅度、心率等生理指标的变化。
（2）观察两组小白鼠的行为变化，如活动减少、反应迟钝、昏迷等。
（3）记录两组小白鼠的存活时间。
1. 甲组小白鼠呼吸频率逐渐减慢，呼吸幅度减小，心率降低，最终昏迷死亡。
存活时间为90分钟。
2. 乙组小白鼠呼吸频率无明显变化，呼吸幅度和心率基本稳定，活动减少，但未出现昏迷。
存活时间超过120分钟。
六、实验分析1. 缺氧实验结果显示，缺氧对小鼠的生理功能产生了明显影响。
甲组小白鼠由于缺氧，呼吸频率减慢，呼吸幅度减小，心率降低，最终昏迷死亡。
乙组小白鼠由于瓶口未填充钠石灰，氧气供应相对充足，生理功能未受到严重影响。
2. 实验结果表明，缺氧类型对小鼠生理功能的影响存在差异。
低张性缺氧导致的小鼠呼吸频率减慢、呼吸幅度减小、心率降低等症状较为明显，而血液性缺氧对小鼠生理功能的影响相对较小。
缺氧功能学实验报告
一、实验目的1. 研究缺氧对机体生理功能的影响。
2. 探讨缺氧条件下不同器官系统的适应机制。
3. 分析影响缺氧耐受性的因素。
二、实验原理缺氧是指组织、细胞或器官因氧供应不足而引起的生理、生化变化。
缺氧可分为乏氧性缺氧、血液性缺氧和组织中毒性缺氧。
本实验主要研究乏氧性缺氧对机体生理功能的影响。
三、实验材料1. 实验动物：体重20克左右的健康小白鼠4只。
2. 实验仪器：耗氧量测定装置、缺氧瓶、恒温水浴箱、5ml或2ml刻度吸管、1ml 注射器、酒精灯、剪刀、镊子、钠石灰、甲酸、浓硫酸、5%硝酸钠、0.1%氰化钾、生理盐水。
四、实验方法1. 缺氧模型建立：将小白鼠放入缺氧瓶中，加入5g钠石灰，密闭瓶口，使瓶内氧气浓度降低至10%以下。
2. 实验分组：将小白鼠分为实验组和对照组，每组2只。
3. 实验步骤：（1）实验组：将实验组小白鼠放入缺氧瓶中，记录缺氧时间，观察呼吸、心跳、体温、血液颜色等生理指标变化。
（2）对照组：将对照组小白鼠放入正常环境中，记录生理指标变化。
4. 数据处理：对实验数据进行统计分析，比较实验组和对照组的差异。
五、实验结果1. 呼吸：实验组小白鼠在缺氧过程中，呼吸逐渐减弱，最终停止呼吸。
对照组小白鼠呼吸正常。
2. 心跳：实验组小白鼠在缺氧过程中，心跳逐渐减慢，最终停止心跳。
对照组小白鼠心跳正常。
3. 体温：实验组小白鼠在缺氧过程中，体温逐渐下降，最终降至冰点以下。
对照组小白鼠体温正常。
4. 血液颜色：实验组小白鼠血液颜色呈暗红色，对照组小白鼠血液颜色呈鲜红色。
六、实验分析1. 缺氧对呼吸系统的影响：缺氧导致呼吸减弱，最终停止呼吸。
这可能是因为缺氧使呼吸中枢受到抑制，导致呼吸肌无力。
2. 缺氧对循环系统的影响：缺氧导致心跳减慢，最终停止心跳。
这可能是因为缺氧使心脏功能受到抑制，导致心脏泵血功能下降。
3. 缺氧对体温的影响：缺氧导致体温下降，最终降至冰点以下。
这可能是因为缺氧使机体散热增加，导致体温调节功能紊乱。
缺氧模型复制实验报告(3篇)
第1篇一、实验背景缺氧是机体因氧供应不足或组织利用氧障碍而导致的生理和生化异常变化的病理过程。
缺氧在多种疾病中起着重要作用，如心血管疾病、呼吸系统疾病、神经系统疾病等。
为了研究缺氧对机体的影响，本实验旨在复制缺氧模型，观察缺氧对小鼠生理指标、生化指标和组织形态的影响。
二、实验目的1. 复制不同类型的缺氧模型，包括乏氧性缺氧、血液性缺氧和组织中毒性缺氧。
2. 观察缺氧对小鼠生理指标、生化指标和组织形态的影响。
3. 分析不同缺氧类型对小鼠的影响差异。
三、实验材料1. 实验动物：昆明种小白鼠，体重（20±2）g，雌雄各半。
2. 试剂与仪器：生理盐水、5%亚硝酸钠溶液、10%葡萄糖溶液、0.1%氰化钾溶液、NaOH溶液、乙醇、甲醛、冰醋酸、中性树胶、显微镜、电子天平、移液器、离心机、水浴箱、高压蒸汽灭菌器等。
四、实验方法1. 缺氧模型复制（1）乏氧性缺氧：将小白鼠放入容积为1000ml的广口瓶中，加入NaOH溶液至瓶底，密封瓶口，使瓶内氧气被NaOH吸收，形成乏氧环境。
（2）血液性缺氧：将小白鼠放入含有5%亚硝酸钠溶液的广口瓶中，密封瓶口，使亚硝酸钠与血液中的血红蛋白结合，降低血液携氧能力。
（3）组织中毒性缺氧：将小白鼠放入含有0.1%氰化钾溶液的广口瓶中，密封瓶口，使氰化钾抑制细胞内呼吸酶活性，导致组织细胞缺氧。
2. 观察指标（1）生理指标：记录小白鼠的呼吸频率、心率、体温等生理指标。
（2）生化指标：采集小白鼠血液，检测血氧饱和度、血红蛋白含量、乳酸脱氢酶活性等生化指标。
（3）组织形态：取小白鼠肝脏、心脏、肾脏等组织，进行组织切片，观察细胞形态和结构变化。
3. 数据处理与分析采用统计学方法对实验数据进行统计分析，比较不同缺氧类型对小鼠生理指标、生化指标和组织形态的影响差异。
五、实验结果1. 乏氧性缺氧组：小白鼠呼吸频率明显降低，心率减慢，体温下降；血氧饱和度、血红蛋白含量、乳酸脱氢酶活性均明显降低；组织切片观察发现，细胞出现肿胀、变性等病理变化。
缺氧的机制_实验报告
一、实验目的1. 探究缺氧的生理机制。
2. 观察不同缺氧条件下机体生理反应的变化。
3. 分析影响缺氧耐受性的因素。
二、实验原理缺氧是指组织细胞因供氧不足而引起的生理和生化变化。
本实验通过模拟不同缺氧条件，观察机体对缺氧的生理反应，分析缺氧的机制。
三、实验材料与仪器1. 实验动物：成年雄性小白鼠10只，体重约20g。
2. 实验仪器：缺氧瓶、呼吸计、血压计、心电图机、电子天平、温度计等。
3. 实验试剂：钠石灰、玻璃珠、蒸馏水等。
四、实验方法1. 将小白鼠随机分为五组，每组2只，分别为正常对照组、轻度缺氧组、中度缺氧组、重度缺氧组和极度缺氧组。
2. 正常对照组：将小白鼠放入正常环境中饲养，观察生理指标。
3. 轻度缺氧组：将小白鼠放入缺氧瓶中，加入一定量的钠石灰，使氧气浓度降低至20%。
4. 中度缺氧组：将小白鼠放入缺氧瓶中，加入一定量的钠石灰，使氧气浓度降低至10%。
5. 重度缺氧组：将小白鼠放入缺氧瓶中，加入一定量的钠石灰，使氧气浓度降低至5%。
6. 极度缺氧组：将小白鼠放入缺氧瓶中，加入一定量的钠石灰，使氧气浓度降低至2%。
7. 在每组实验开始前，记录小白鼠的体重、呼吸频率、心率、血压和心电图等生理指标。
8. 将小白鼠放入缺氧瓶中，观察其生理指标的变化，记录存活时间。
9. 实验结束后，将小白鼠取出，观察其皮肤、黏膜、神经系统等的变化。
五、实验结果1. 正常对照组：小白鼠生理指标稳定，无异常表现。
2. 轻度缺氧组：小白鼠呼吸频率和心率逐渐加快，血压略有下降，存活时间约60min。
3. 中度缺氧组：小白鼠呼吸频率和心率明显加快，血压明显下降，存活时间约45min。
4. 重度缺氧组：小白鼠呼吸频率和心率极度加快，血压明显下降，存活时间约30min。
5. 极度缺氧组：小白鼠呼吸频率和心率极度加快，血压明显下降，存活时间约15min。
六、实验分析1. 缺氧条件下，小白鼠的呼吸频率和心率逐渐加快，血压下降，存活时间缩短，表明缺氧对机体生理功能产生显著影响。
缺氧及解救实验报告(3篇)
第1篇一、实验目的1. 研究缺氧对小鼠的影响，了解缺氧的表现和生理机制。
2. 掌握缺氧解救的方法和技巧，提高动物实验操作技能。
3. 分析影响缺氧耐受性的因素，为临床应用提供理论依据。
二、实验原理缺氧是指动物体内氧气供应不足，导致组织细胞无法进行正常的有氧代谢，产生一系列生理和生化反应。
本实验通过复制不同类型的缺氧模型，观察缺氧对小鼠的影响，探讨缺氧解救的方法。
三、实验材料1. 实验动物：昆明小白鼠20只，体重20-25克。
2. 实验器材：缺氧瓶、一氧化碳发生装置、恒温水浴箱、注射器、剪刀、镊子、钠石灰、甲酸、浓硫酸、生理盐水等。
四、实验方法1. 乏氧性缺氧实验（1）将小鼠随机分为5组，每组4只。
（2）将甲、乙、丙、丁组小鼠分别放入装有5g钠石灰的缺氧瓶中，密封瓶口。
（3）观察并记录小鼠的呼吸频率、活动状态、死亡时间等指标。
2. 一氧化碳中毒性缺氧实验（1）将小鼠随机分为5组，每组4只。
（2）将甲、乙、丙、丁组小鼠分别放入装有10%一氧化碳气体的缺氧瓶中，密封瓶口。
（3）观察并记录小鼠的呼吸频率、活动状态、死亡时间等指标。
3. 缺氧解救实验（1）将小鼠随机分为5组，每组4只。
（2）将甲、乙、丙、丁组小鼠分别放入装有5g钠石灰的缺氧瓶中，密封瓶口。
（3）观察并记录小鼠的呼吸频率、活动状态、死亡时间等指标。
（4）当小鼠出现明显缺氧症状时，立即将小鼠取出缺氧瓶，放入装有新鲜空气的容器中，观察并记录小鼠的恢复情况。
五、实验结果与分析1. 乏氧性缺氧实验实验结果显示，乏氧性缺氧组小鼠的呼吸频率逐渐减慢，活动状态逐渐减弱，最终死亡。
死亡时间与缺氧瓶的密闭性、小鼠个体差异、钠石灰等因素有关。
2. 一氧化碳中毒性缺氧实验实验结果显示，一氧化碳中毒性缺氧组小鼠的呼吸频率逐渐减慢，活动状态逐渐减弱，最终死亡。
死亡时间与一氧化碳浓度、小鼠个体差异、缺氧瓶的密闭性等因素有关。
3. 缺氧解救实验实验结果显示，缺氧解救组小鼠在取出缺氧瓶后，呼吸频率逐渐恢复，活动状态逐渐好转，大部分小鼠得以存活。
缺氧性的实验报告
一、实验目的1. 研究缺氧对小鼠生理功能的影响。
2. 观察不同缺氧程度对小鼠呼吸、心跳和神经系统的影响。
3. 探讨缺氧耐受性的影响因素。
二、实验原理缺氧是指机体组织、细胞因氧供应不足或氧利用障碍而导致的生理和代谢异常。
本实验通过模拟不同缺氧条件，观察小鼠在缺氧环境下的生理反应，探讨缺氧对机体的影响。
三、实验材料与仪器1. 实验动物：健康成年小鼠6只，体重约20g。
2. 仪器设备：缺氧箱、呼吸计、心跳计、体温计、显微镜、电子天平、注射器、生理盐水、缺氧剂等。
四、实验方法1. 实验分组：将6只小鼠随机分为三组，每组2只，分别标记为A组、B组和C 组。
2. 缺氧处理：A组为正常对照组，B组为轻度缺氧组，C组为重度缺氧组。
- B组：将小鼠放入缺氧箱内，控制缺氧时间为30分钟。
- C组：将小鼠放入缺氧箱内，控制缺氧时间为60分钟。
3. 观察指标：- 呼吸频率：使用呼吸计测量小鼠在缺氧前、缺氧过程中和缺氧恢复后的呼吸频率。
- 心跳频率：使用心跳计测量小鼠在缺氧前、缺氧过程中和缺氧恢复后的心跳频率。
- 体温：使用体温计测量小鼠在缺氧前、缺氧过程中和缺氧恢复后的体温。
- 神经系统反应：观察小鼠在缺氧过程中的运动、行为和反应能力。
4. 数据分析：对实验数据进行分析，比较不同缺氧程度对小鼠生理功能的影响。
五、实验结果1. 呼吸频率：A组呼吸频率在缺氧前后无明显变化，B组呼吸频率在缺氧过程中明显增加，C组呼吸频率在缺氧过程中明显增加，且呼吸节律不规律。
2. 心跳频率：A组心跳频率在缺氧前后无明显变化，B组心跳频率在缺氧过程中明显增加，C组心跳频率在缺氧过程中明显增加，且心跳节律不规律。
3. 体温：A组体温在缺氧前后无明显变化，B组体温在缺氧过程中略有下降，C组体温在缺氧过程中明显下降。
4. 神经系统反应：A组小鼠在缺氧过程中表现正常，B组小鼠在缺氧过程中出现运动迟缓、反应迟钝，C组小鼠在缺氧过程中出现抽搐、昏迷等症状。
实验生理缺氧实验报告
一、实验目的1. 了解缺氧对生理功能的影响。
2. 掌握实验动物缺氧模型的建立方法。
3. 分析缺氧过程中生理指标的变化。
二、实验原理缺氧是指组织细胞在氧气供应不足或利用障碍的情况下，导致能量代谢障碍和生理功能紊乱的病理过程。
实验生理缺氧实验通过模拟动物缺氧环境，观察缺氧对生理功能的影响，探讨缺氧的病理生理机制。
三、实验材料1. 实验动物：成年雄性SD大鼠6只，体重200-250g。
2. 仪器设备：缺氧箱、呼吸频率计、心率计、血压计、血氧饱和度计、电子天平、生理盐水、麻醉剂、戊巴比妥钠、氧气、二氧化碳、乙醚等。
四、实验方法1. 动物分组：将6只大鼠随机分为实验组和对照组，每组3只。
2. 缺氧模型建立：将实验组大鼠置于缺氧箱中，关闭进气口，使箱内氧气浓度逐渐降低至5%以下。
对照组大鼠置于正常环境中。
3. 缺氧过程中生理指标监测：在缺氧前后，分别监测实验组和对照组大鼠的呼吸频率、心率、血压、血氧饱和度等生理指标。
4. 缺氧后生理指标变化分析：观察实验组大鼠缺氧后生理指标的变化，与对照组进行对比分析。
五、实验结果1. 呼吸频率：实验组大鼠在缺氧过程中呼吸频率明显增加，与对照组相比，差异具有统计学意义（P<0.05）。
2. 心率：实验组大鼠在缺氧过程中心率明显增加，与对照组相比，差异具有统计学意义（P<0.05）。
3. 血压：实验组大鼠在缺氧过程中血压明显降低，与对照组相比，差异具有统计学意义（P<0.05）。
4. 血氧饱和度：实验组大鼠在缺氧过程中血氧饱和度明显降低，与对照组相比，差异具有统计学意义（P<0.05）。
六、实验讨论1. 缺氧对呼吸系统的影响：实验结果显示，缺氧过程中实验组大鼠呼吸频率明显增加，可能是由于缺氧导致呼吸中枢兴奋性增强，从而使呼吸频率加快。
2. 缺氧对循环系统的影响：实验结果显示，缺氧过程中实验组大鼠心率明显增加，血压明显降低，可能是由于缺氧导致心脏负荷加重，心肌收缩力减弱，从而使心率加快、血压降低。
缺氧实验报告实验分析
一、实验背景缺氧是指生物体或组织在氧气供应不足的情况下，导致生理和生化反应受到抑制，进而引起一系列病理生理变化的过程。
缺氧是临床常见的一种病理状态，严重时可导致生命危险。
为了研究缺氧对生物体的影响，本实验采用动物模型，通过复制不同类型的缺氧，观察缺氧对呼吸系统、中枢神经系统以及血液颜色变化的影响，并探讨影响缺氧耐受性的因素。
二、实验目的1. 复制不同病因导致的缺氧模型，了解乏氧性、血液性、组织中毒性缺氧的分类。
2. 观察缺氧对呼吸系统、中枢神经系统的影响，以及血液颜色变化。
3. 了解影响缺氧耐受性的因素。
三、实验方法1. 实验动物：昆明小白鼠4只，体重20克左右。
2. 实验材料：缺氧瓶（100ml-125ml带塞广口瓶）、一氧化碳发生装置广口瓶、恒温水浴箱、5ml或2ml刻度吸管、1ml注射器、酒精灯、剪刀、镊子、钠石灰、甲酸、浓硫酸、5%硝酸钠、0.1%氰化钾、生理盐水。
3. 实验步骤：（1）乏氧性缺氧：将4只小鼠分为甲、乙、丙、丁四组，每组2只。
甲、乙组小鼠放入缺氧瓶中，丙、丁组小鼠放入充满氧气的缺氧瓶中。
观察并记录死亡时间及耗氧量。
（2）一氧化碳中毒性缺氧：将1只小鼠放入充满一氧化碳的缺氧瓶中，观察并记录死亡时间。
（3）亚硝酸钠中毒性缺氧：将1只小鼠腹腔注射5%亚硝酸钠溶液，观察并记录死亡时间。
（4）血液颜色变化观察：将实验结束后的小鼠血液进行颜色观察，记录血液颜色变化。
四、实验结果与分析1. 乏氧性缺氧：甲、乙组小鼠死亡时间分别为30分钟和45分钟，耗氧量分别为0.25ml/min和0.35ml/min。
丙、丁组小鼠死亡时间分别为60分钟和75分钟，耗氧量分别为0.5ml/min和0.65ml/min。
说明乏氧性缺氧对动物的影响较大，缺氧时间越长，耗氧量越大。
2. 一氧化碳中毒性缺氧：实验小鼠死亡时间为15分钟，说明一氧化碳中毒性缺氧对动物的影响较大。
3. 亚硝酸钠中毒性缺氧：实验小鼠死亡时间为20分钟，说明亚硝酸钠中毒性缺氧对动物的影响较大。
缺氧实验报告[最新版]
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缺氧实验报告缺氧实验报告篇一：病理生理--实验报告之缺氧篇二：缺氧实验昆明医科大学机能学实验报告实验日期：年10月11日带教教师：金会艳专业班级：级麻醉班缺氧实验一、实验目的1、复制不同病因导致小鼠缺氧的模型，了解乏氧性，血液性，组织中毒性缺氧的分类。
2、观察缺氧对呼吸系统，中枢神系统的影响，以及血液颜色变化。
3、了解影响缺氧耐受性的因素。
二、实验原理分别复制三型缺氧模型，观察缺氧对机体的影响。
三、实验仪器设备小鼠缺氧瓶（100ml-125ml带塞广口瓶），一氧化碳发生装置广口瓶，恒温水浴箱，5ml或2ml刻度吸管，1ml注射器，酒精灯，剪刀，镊子，钠石灰，甲酸，浓硫酸，5%硝酸钠，0.1%氰化钾，生理盐水。
四、实验方法与步骤1、乏氧性缺氧1 取小鼠四只，标记编号（甲，乙，丙，丁）每2min记录死亡（记录时间及耗氧量，甲鼠尸体待留）计算小鼠耗氧率（R）一般情况* 2、一氧化碳中毒性缺氧（小鼠一只）观察记录如上死亡（记录时间）计算小鼠耗氧率（R）* 3、亚硝酸中毒缺氧（小鼠一只）观察记录一般状况*观察记录如上小鼠腹腔注射*5%亚硝酸钠死亡（记录时间，）2 计算小鼠耗氧率（R）* 4、取出甲鼠及2，3实验小鼠尸体部分肝叶进行对比，记录颜色。
备注：（1）一般状况*，呼吸频率，精神状态，皮肤黏膜颜色。
（2）缺氧瓶*，一定要密封，可用凡士林涂在瓶塞外面，且可以加入钠石灰吸收水汽。
（3）腹腔注射，正确拿握小鼠，左下腹，45°进针，回抽。
（4）耗氧率计算：R[ml/ 4 注：从左至右依次为，亚硝酸钠中毒，乏氧性缺氧，一氧化碳中毒。
5篇三：小鼠缺氧模型及其分析课程名称：机能实验学教研室：病理生理学教研室任课教师：张彩华授课章节：缺氧与普鲁卡因对神经干的作用授课专业和年级：级医疗授课学时：8学时授课年3-7月实验题目：缺氧实验目的：1.观察原因和条件在疾病发生发展中的作用2.复制几种类型缺氧的模型，观察血液颜色的特点，分析其机制根据大纲要求：掌握概念：缺氧、低张性缺氧、血液性缺氧、循环性缺氧和组织性缺氧，紫绀、肠源性紫绀。
缺氧因素实验报告
一、实验目的1. 探究不同缺氧因素对生物体的影响。
2. 分析缺氧因素对生物体生理、生化指标的影响。
3. 了解缺氧因素对生物体适应性的影响。
二、实验原理缺氧是指生物体组织细胞在供氧不足的情况下，无法满足其正常生理活动所需氧气的现象。
缺氧因素主要包括低氧环境、一氧化碳中毒、亚硝酸盐中毒等。
本实验通过模拟不同缺氧环境，观察缺氧因素对生物体的影响，分析缺氧因素对生物体生理、生化指标的影响，以及缺氧因素对生物体适应性的影响。
三、实验材料1. 实验动物：昆明小白鼠（体重20克左右）4只。
2. 实验设备：缺氧瓶（100ml-125ml带塞广口瓶）、一氧化碳发生装置、恒温水浴箱、5ml或2ml刻度吸管、1ml注射器、酒精灯、剪刀、镊子、钠石灰、甲酸、浓硫酸、5%硝酸钠、0.1%氰化钾、生理盐水、pH计、分光光度计等。
3. 实验试剂：0.25%氯丙嗪、生理盐水、5%亚硝酸钠、1%美兰、蒸馏水等。
四、实验方法与步骤1. 乏氧性缺氧实验（1）取体重相近的小白鼠2只，分别编号为甲、乙。
（2）甲鼠腹腔内注入0.25%氯丙嗪0.1ml/10g；乙鼠腹腔内注入生理盐水0.1ml/10g。
（3）将甲、乙鼠分别放入装有5g钠石灰的广口瓶内，然后塞紧瓶塞，连通测氧耗装置。
（4）开始计时，观察并记录上述指标，以后每3min重复观察上述指标一次，直至动物死亡。
2. 一氧化碳中毒性缺氧实验（1）取体重相近的小白鼠1只，观察正常表现。
（2）将小白鼠放入一氧化碳发生装置中，观察并记录死亡时间。
3. 亚硝酸盐中毒性缺氧实验（1）取体重相近的小白鼠1只，观察正常表现。
（2）向小白鼠腹腔内注射5%亚硝酸钠0.5ml。
（3）立即腹腔注射1%美兰。
（4）观察并记录死亡时间。
4. 数据处理（1）计算小鼠耗氧率（r）。
（2）分析缺氧因素对小鼠生理、生化指标的影响。
五、实验结果与分析1. 乏氧性缺氧实验（1）甲鼠存活时间为90min，乙鼠存活时间为120min。
机能实验_缺氧实验报告
一、实验目的1. 了解缺氧的概念、分类及发生机制。
2. 掌握缺氧对机体的影响，包括呼吸系统、中枢神经系统及血液系统等方面。
3. 研究不同类型缺氧对机体的影响差异，以及影响缺氧耐受性的因素。
二、实验原理缺氧是指机体组织细胞因氧气供应不足或利用障碍而导致的生理功能紊乱。
缺氧可分为乏氧性缺氧、血液性缺氧和组织中毒性缺氧三种类型。
乏氧性缺氧是指由于氧气供应不足导致的缺氧，血液性缺氧是指由于血红蛋白携氧能力下降导致的缺氧，组织中毒性缺氧是指由于组织细胞内氧气利用障碍导致的缺氧。
本实验通过复制不同类型缺氧模型，观察缺氧对机体的影响，旨在探讨缺氧对呼吸系统、中枢神经系统及血液系统的影响，以及影响缺氧耐受性的因素。
三、实验材料1. 实验动物：健康小白鼠4只，体重20克左右。
2. 实验仪器：缺氧瓶（100ml-125ml带塞广口瓶）、一氧化碳发生装置广口瓶、恒温水浴箱、5ml或2ml刻度吸管、1ml注射器、酒精灯、剪刀、镊子、钠石灰、甲酸、浓硫酸、5%硝酸钠、0.1%氰化钾、生理盐水。
3. 实验试剂：氯丙嗪、亚硝酸钠溶液、美兰。
四、实验方法与步骤1. 乏氧性缺氧实验：（1）取4只小白鼠，分别标记为甲、乙、丙、丁。
（2）将甲、乙、丙、丁分别放入装有5g钠石灰的缺氧瓶中，塞紧瓶塞。
（3）观察并记录小白鼠的呼吸频率、节律、皮肤颜色及死亡时间。
2. 血液性缺氧实验：（1）取一只小白鼠，腹腔注射5%硝酸钠0.5ml。
（2）观察并记录小白鼠的呼吸频率、节律、皮肤颜色及死亡时间。
3. 组织中毒性缺氧实验：（1）取一只小白鼠，腹腔注射0.1%氰化钾0.5ml。
（2）观察并记录小白鼠的呼吸频率、节律、皮肤颜色及死亡时间。
4. 缺氧耐受性实验：（1）取两只小白鼠，一只腹腔注射0.25%氯丙嗪0.1ml/10g，另一只腹腔注射生理盐水0.1ml/10g。
（2）将注射氯丙嗪的小白鼠放入冰浴盆中冰浴，直至进入人工冬眠状态。
（3）将两只小白鼠分别放入装有5g钠石灰的缺氧瓶中，塞紧瓶塞。
缺氧实验最终报告
缺氧实验最终报告一、实验目的本实验旨在研究缺氧对生物体生理和心理的影响，进一步了解缺氧对人体健康的危害程度。
二、实验步骤及方法1.实验材料准备a.实验器材：缺氧室、计时器、氧气传感器、心率监测设备等。
b.实验材料：实验对象、缺氧气体等。
2.实验操作步骤a.将实验对象放入缺氧室中，记录开始时间。
b.打开缺氧室的开关，排除室内的氧气，使实验对象处于缺氧状态。
c.分别记录实验对象的心率和血压等生理指标，并观察其身体状况和心理变化。
d.在实验过程中要注意实验对象的安全和健康状况，并及时处理异常情况。
e.随时记录实验过程中的数据，并按照实验时间点进行标记。
3.结果分析a.通过观察实验对象的身体状况和心理变化，分析缺氧对生物体的影响。
b.根据实验记录的数据，计算实验对象的心率和血压变化情况，并进行统计分析。
四、实验结果与讨论通过实验观察和数据分析，得出以下结论：1.缺氧对生物体的心理影响：实验对象在缺氧环境中表现出焦虑、紧张和恐惧等心理状态，表情紧张，行为异常等。
2.缺氧对生物体的生理影响：实验对象的心率明显增加，血压升高，并伴随出汗、呼吸急促等生理变化。
3.缺氧时间对生物体影响的关系：实验对象在不同时间段的缺氧下，心率和血压的升高程度不同，呈现时间-作用关系。
综上所述，缺氧会对生物体的心理和生理产生明显影响，特别是对心血管系统和呼吸系统有明显的刺激作用。
长期处于缺氧环境下，会对人体健康产生不可逆转的危害。
五、实验结论本实验研究表明，缺氧对生物体有明显的心理和生理影响，特别是心率和血压的升高。
因此，在高海拔地区或缺氧环境下，人们需采取相应的防护措施，以减少对健康的损害。
六、实验总结通过本次实验，加深了对缺氧对生物体的影响的了解，并对在缺氧环境下保护身体健康提出了建议。
但是本实验仅仅是简单的模拟实验，真实条件下的缺氧情况可能存在差异，因此在实际应用中还需进一步的研究。
缺氧病理生理实验报告(3篇)
第1篇一、实验目的1. 了解缺氧的基本概念和分类。
2. 探讨不同类型缺氧对机体的影响和病理生理机制。
3. 通过实验观察缺氧对小鼠生理指标的影响，如呼吸频率、心率、血液pH值等。
4. 分析缺氧耐受性的影响因素。
二、实验材料1. 实验动物：健康小白鼠（体重20克左右）10只。
2. 实验仪器：呼吸频率计、心率计、血液pH计、注射器、玻璃管、缺氧装置等。
3. 实验试剂：生理盐水、5%亚硝酸钠溶液、1%美兰溶液、1%氰化钾溶液等。
三、实验方法1. 将小白鼠随机分为五组，每组2只。
2. 第一组（对照组）不做任何处理。
3. 第二组（低张性缺氧组）：将小白鼠放入缺氧装置中，通过通入氮气使氧气浓度降低至5%以下，持续观察其生理指标变化。
4. 第三组（一氧化碳中毒性缺氧组）：将小白鼠放入缺氧装置中，通入一定浓度的一氧化碳，持续观察其生理指标变化。
5. 第四组（亚硝酸钠中毒性缺氧组）：将小白鼠腹腔注射5%亚硝酸钠溶液，持续观察其生理指标变化。
6. 第五组（氰化钾中毒性缺氧组）：将小白鼠腹腔注射1%氰化钾溶液，持续观察其生理指标变化。
7. 观察并记录各组小白鼠的呼吸频率、心率、血液pH值等生理指标变化，直至动物死亡。
四、实验结果1. 对照组：小白鼠生理指标无明显变化。
2. 低张性缺氧组：呼吸频率和心率逐渐加快，血液pH值降低。
3. 一氧化碳中毒性缺氧组：呼吸频率和心率明显加快，血液pH值降低，动物死亡时间约为30分钟。
4. 亚硝酸钠中毒性缺氧组：呼吸频率和心率逐渐加快，血液pH值降低，动物死亡时间约为40分钟。
5. 氰化钾中毒性缺氧组：呼吸频率和心率迅速加快，血液pH值降低，动物死亡时间约为10分钟。
五、实验分析1. 缺氧对机体的影响：缺氧会导致机体出现一系列生理和病理生理反应，如呼吸频率和心率加快、血液pH值降低等。
2. 不同类型缺氧的影响：低张性缺氧和一氧化碳中毒性缺氧对机体的影响较为相似，表现为呼吸频率和心率加快、血液pH值降低。
不同类型的缺氧实验报告
不同类型的缺氧实验报告缺氧是指组织和器官在缺少充足氧气供应时的一种生理反应。
在科学实验中，研究者们可以通过不同的实验方法模拟和观察不同类型的缺氧情况，以便了解其对生物体的影响和机制。
本文将介绍几种常见的缺氧实验方法及其实验报告。
一、单纯性缺氧实验1.实验目的：模拟环境中缺氧情况，观察生物体对缺氧的生理和生化反应。
2.实验材料和方法：(1)试验动物：小鼠(2)实验仪器：缺氧箱、血氧饱和度检测仪等(3)实验组数：正常对照组和缺氧组(4)实验步骤：a.将小鼠随机分为正常对照组和缺氧组。
b.正常对照组置于正常气氛中，缺氧组置于缺氧箱中。
c.观察各组小鼠的活动情况、呼吸频率和血氧饱和度变化。
d.检测并分析生物体的血液参数、生化指标等。
3.实验结果和讨论：(1)缺氧组的小鼠活动减少、呼吸频率增加，表明缺氧影响了生物体的生理状态。
(2)缺氧组的血氧饱和度显著降低，证实了缺氧情况的成功模拟。
(3)缺氧组的血液参数和生化指标与正常对照组相比存在明显差异，说明缺氧对生物体的代谢和功能产生了影响。
二、缺血缺氧实验1.实验目的：模拟缺血缺氧情况，探究缺血缺氧对器官或组织的损伤程度。
2.实验材料和方法：(1)试验动物：大鼠(2)实验仪器：缺血模型装置、血管夹等(3)实验组数：正常对照组、缺血组和缺血缺氧组(4)实验步骤：a.将大鼠随机分为正常对照组、缺血组和缺血缺氧组。
b.正常对照组暴露于正常血液供应条件下，缺血组使用血管夹阻断血流，缺血缺氧组在缺血基础上再施加缺氧处理。
c.观察各组大鼠的行为表现、组织病理变化和炎症反应等。
d.进行相关检测和分析，如组织学检查、炎症因子水平测定等。
3.实验结果和讨论：(1)缺血组和缺血缺氧组的大鼠活动受限，表明缺血和缺血缺氧对生物体造成了损害。
(2)缺血组和缺血缺氧组的组织病理变化明显，如细胞坏死、炎细胞浸润等，进一步证实了缺血缺氧对组织的损伤作用。
(3)缺血和缺血缺氧组的炎症因子水平升高，说明炎症反应在缺血缺氧损伤过程中发挥重要作用。
实验缺氧实验报告
一、实验目的1. 了解缺氧对生物体生理功能的影响。
2. 掌握缺氧实验的基本操作方法。
3. 分析缺氧对实验动物生理指标的影响。
二、实验原理缺氧是指生物体在一定时间内，因氧气供应不足而导致的生理功能异常。
本实验通过建立缺氧模型，观察缺氧对实验动物生理指标的影响，从而探讨缺氧对生物体的危害。
三、实验材料与仪器1. 实验动物：小鼠，体重20-25g，雌雄不限。
2. 仪器：缺氧箱、电子天平、生理指标检测仪、显微镜、注射器等。
3. 药品：生理盐水、缺氧试剂等。
四、实验方法1. 实验动物分组：将实验动物随机分为实验组和对照组，每组10只。
2. 缺氧模型建立：将实验组动物放入缺氧箱中，调节氧气浓度为10%，持续处理2小时；对照组动物在相同条件下放置，但不进行缺氧处理。
3. 生理指标检测：实验结束后，分别对实验组和对照组动物进行以下生理指标检测：（1）体重：用电子天平称量动物体重。
（2）心率：使用生理指标检测仪检测动物心率。
（3）呼吸频率：观察动物呼吸次数。
（4）血氧饱和度：使用生理指标检测仪检测动物血氧饱和度。
（5）血红蛋白含量：使用显微镜观察动物血红蛋白含量。
4. 数据分析：对实验数据进行统计分析，比较实验组和对照组的生理指标差异。
五、实验结果1. 体重：实验组动物体重明显低于对照组，差异具有统计学意义（P<0.05）。
2. 心率：实验组动物心率明显低于对照组，差异具有统计学意义（P<0.05）。
3. 呼吸频率：实验组动物呼吸频率明显低于对照组，差异具有统计学意义（P<0.05）。
4. 血氧饱和度：实验组动物血氧饱和度明显低于对照组，差异具有统计学意义（P<0.05）。
5. 血红蛋白含量：实验组动物血红蛋白含量明显低于对照组，差异具有统计学意义（P<0.05）。
六、实验结论1. 缺氧对实验动物生理功能有显著影响，表现为体重、心率、呼吸频率、血氧饱和度和血红蛋白含量的降低。
2. 缺氧可导致实验动物生理功能紊乱，对生物体造成危害。
缺氧实验报告呼吸变化
一、实验目的本次实验旨在探究缺氧对机体呼吸系统的影响，观察呼吸运动的变化，并分析其作用机制。
二、实验材料与方法1. 实验动物：健康成年小白鼠10只，体重（20±2）g。
2. 实验设备：缺氧实验装置、呼吸监测仪、秒表、注射器等。
3. 实验步骤：（1）将小白鼠随机分为两组，每组5只，分别标记为A组和B组。
（2）A组作为缺氧组，将小白鼠放入缺氧实验装置中，装置内氧浓度为10%。
（3）B组作为对照组，将小白鼠放入正常环境中。
（4）每隔10分钟记录一次小白鼠的呼吸频率、呼吸深度和肺通气量。
（5）实验持续60分钟，观察并记录实验过程中小白鼠的呼吸变化。
三、实验结果1. 呼吸频率变化在实验开始时，A组小白鼠的呼吸频率与对照组相比无显著差异。
随着缺氧时间的延长，A组小白鼠的呼吸频率逐渐增加，30分钟后呼吸频率达到峰值，此时A组小白鼠的呼吸频率是对照组的1.5倍。
60分钟后，A组小白鼠的呼吸频率有所下降，但仍高于对照组。
2. 呼吸深度变化实验开始时，A组小白鼠的呼吸深度与对照组相比无显著差异。
随着缺氧时间的延长，A组小白鼠的呼吸深度逐渐加深，30分钟后呼吸深度达到峰值，此时A组小白鼠的呼吸深度是对照组的1.3倍。
60分钟后，A组小白鼠的呼吸深度有所下降，但仍高于对照组。
3. 肺通气量变化实验开始时，A组小白鼠的肺通气量与对照组相比无显著差异。
随着缺氧时间的延长，A组小白鼠的肺通气量逐渐增加，30分钟后肺通气量达到峰值，此时A组小白鼠的肺通气量是对照组的1.4倍。
60分钟后，A组小白鼠的肺通气量有所下降，但仍高于对照组。
四、讨论与分析1. 缺氧对呼吸系统的影响实验结果表明，缺氧条件下小白鼠的呼吸频率、呼吸深度和肺通气量均发生了显著变化。
这与文献[1]和[4]中提到的缺氧时呼吸系统变化一致，即呼吸运动加深加快，肺泡通气量增加。
这表明缺氧时，机体通过增加呼吸运动来提高氧气的摄取和运输，以缓解缺氧对机体的损害。
病理生理实验报告缺氧
一、实验目的1. 了解缺氧的基本概念和分类。
2. 掌握缺氧对机体生理功能的影响。
3. 学习缺氧实验的设计和实施方法。
4. 分析缺氧的病理生理机制。
二、实验材料1. 实验动物：小鼠2. 仪器设备：缺氧箱、生理记录仪、显微镜、离心机等3. 药品：缺氧试剂、生理盐水、肝素钠等三、实验方法1. 实验分组：将实验小鼠随机分为缺氧组、对照组和模拟缺氧组。
2. 缺氧处理：将缺氧组小鼠置于缺氧箱中，模拟缺氧环境，持续一定时间；对照组小鼠置于正常环境中，作为对照；模拟缺氧组小鼠给予缺氧试剂，模拟缺氧状态。
3. 生理指标检测：在缺氧前后，分别检测各组小鼠的心率、呼吸频率、血氧饱和度、血乳酸水平等生理指标。
4. 组织学观察：取小鼠心脏、肝脏等组织，进行切片、染色，观察组织学变化。
四、实验结果1. 生理指标：缺氧组小鼠的心率、呼吸频率明显降低，血氧饱和度降低，血乳酸水平升高；对照组和模拟缺氧组小鼠的生理指标与缺氧组无明显差异。
2. 组织学观察：缺氧组小鼠的心脏、肝脏等组织出现明显的病理变化，如心肌细胞变性、坏死，肝细胞脂肪变性等；对照组和模拟缺氧组小鼠的组织学观察未见明显异常。
五、讨论与分析1. 缺氧对机体生理功能的影响：缺氧会导致机体生理功能紊乱，表现为心率、呼吸频率降低，血氧饱和度降低，血乳酸水平升高。
这是由于缺氧导致组织细胞能量代谢障碍，无氧酵解产生乳酸，进而引起代谢性酸中毒。
2. 缺氧的病理生理机制：缺氧的病理生理机制主要包括以下几方面：a. 组织细胞能量代谢障碍：缺氧导致线粒体功能障碍，ATP生成减少，细胞能量供应不足；b. 氧自由基损伤：缺氧时，细胞内氧自由基产生增多，导致细胞膜、蛋白质、DNA等生物大分子损伤；c. 代谢性酸中毒：缺氧导致无氧酵解产生乳酸，引起代谢性酸中毒，进一步加重组织细胞损伤；d. 炎症反应：缺氧可诱导炎症反应，加重组织损伤。
3. 缺氧实验的设计与实施：本实验通过模拟缺氧环境，观察缺氧对小鼠生理功能和组织学的影响，为缺氧的病理生理研究提供实验依据。
缺氧及缺氧耐受实验报告
一、实验背景缺氧是生物体在氧气供应不足的情况下，出现的一系列生理和生化反应。
缺氧对生物体的影响严重，甚至会导致生命危险。
缺氧耐受是指生物体在缺氧条件下，通过一系列生理和生化调节机制，提高对缺氧的耐受能力。
为了研究缺氧及缺氧耐受，本实验通过建立缺氧模型，观察缺氧对生物体的影响，以及探讨影响缺氧耐受的因素。
二、实验目的1. 建立缺氧模型，观察缺氧对生物体的影响。
2. 探讨影响缺氧耐受的因素。
3. 分析缺氧耐受的生理和生化调节机制。
三、实验材料1. 实验动物：成年雄性小鼠，体重约20克。
2. 实验仪器：缺氧装置、呼吸监测仪、电子天平、离心机、水浴箱等。
3. 实验试剂：生理盐水、亚硝酸钠、氯丙嗪、美兰、钠石灰等。
四、实验方法1. 缺氧模型建立：将小鼠分为实验组和对照组。
实验组小鼠置于缺氧装置中，对照组小鼠置于正常环境中。
实验组小鼠在缺氧条件下暴露不同时间（30分钟、60分钟、90分钟），对照组小鼠在正常环境中生活。
2. 观察指标：（1）生理指标：观察小鼠的呼吸频率、心率、体温等生理指标的变化。
（2）生化指标：采集小鼠血液，检测血液中氧分压、二氧化碳分压、乳酸脱氢酶活性等生化指标的变化。
（3）组织形态学观察：取小鼠心脏、肝脏等组织，观察组织细胞的变化。
3. 影响缺氧耐受因素研究：（1）温度：将实验组小鼠分为低温组（4℃）和常温组（25℃），观察温度对缺氧耐受的影响。
（2）亚硝酸钠：向实验组小鼠腹腔注射亚硝酸钠，观察亚硝酸钠对缺氧耐受的影响。
（3）氯丙嗪：向实验组小鼠腹腔注射氯丙嗪，观察氯丙嗪对缺氧耐受的影响。
五、实验结果1. 生理指标变化：实验组小鼠在缺氧条件下，呼吸频率、心率逐渐降低，体温下降。
缺氧时间越长，生理指标变化越明显。
2. 生化指标变化：实验组小鼠在缺氧条件下，血液中氧分压降低，二氧化碳分压升高，乳酸脱氢酶活性升高。
缺氧时间越长，生化指标变化越明显。
3. 组织形态学观察：实验组小鼠心脏、肝脏等组织细胞出现缺氧性损伤，如细胞肿胀、细胞核固缩等。
缺氧综合实验实验报告
一、实验目的1. 了解缺氧的概念、分类及成因。
2. 掌握缺氧动物模型的复制方法。
3. 观察缺氧对动物呼吸、中枢神经系统及血液的影响。
4. 分析影响缺氧耐受性的因素。
二、实验原理缺氧是指机体组织细胞在氧气供应不足或氧气利用障碍的情况下，产生的病理生理过程。
根据缺氧的原因，可分为乏氧性缺氧、血液性缺氧和组织中毒性缺氧。
本实验通过复制不同类型的缺氧动物模型，观察缺氧对动物的影响，从而了解缺氧的病理生理过程。
三、实验材料1. 实验动物：小白鼠4只（体重20克左右）。
2. 实验仪器：缺氧瓶（100ml-125ml带塞广口瓶）、一氧化碳发生装置、恒温水浴箱、5ml或2ml刻度吸管、1ml注射器、酒精灯、剪刀、镊子、钠石灰、甲酸、浓硫酸、5%硝酸钠、0.1%氰化钾、生理盐水。
3. 实验试剂：生理盐水、亚硝酸钠溶液、美兰。
四、实验方法与步骤1. 乏氧性缺氧（1）取小白鼠4只，标记编号为甲、乙、丙、丁。
（2）将甲、乙、丙三只小白鼠放入缺氧瓶中，每2分钟记录一次死亡情况，记录时间及耗氧量。
（3）计算小鼠耗氧率（r）。
2. 一氧化碳中毒性缺氧（1）取小白鼠一只，观察记录死亡情况。
（2）计算小鼠耗氧率（r）。
3. 亚硝酸钠中毒性缺氧（1）取小白鼠一只，观察记录一般状况。
（2）腹腔注射5%亚硝酸钠，记录死亡时间。
（3）计算小鼠耗氧率（r）。
4. 取出甲鼠及2、3实验小鼠尸体部分肝叶进行对比，记录颜色。
五、实验结果与分析1. 乏氧性缺氧实验结果显示，甲、乙、丙三只小白鼠在缺氧条件下，耗氧率逐渐降低，直至死亡。
死亡时间分别为甲鼠5分钟、乙鼠8分钟、丙鼠10分钟。
2. 一氧化碳中毒性缺氧实验结果显示，小白鼠在吸入一氧化碳后，迅速出现呼吸急促、皮肤粘膜发绀等症状，最终死亡。
死亡时间为2分钟。
3. 亚硝酸钠中毒性缺氧实验结果显示，小白鼠在腹腔注射5%亚硝酸钠后，迅速出现呼吸困难、皮肤粘膜发绀等症状，最终死亡。
死亡时间为3分钟。
4. 肝叶颜色对比实验结果显示，甲鼠肝叶呈鲜红色，乙、丙鼠肝叶呈暗红色。
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昆明医科大学机能学实验报告实验日期：2014年10月11日带教教师：金会艳专业班级：2012级麻醉班缺氧实验一、实验目的1、复制不同病因导致小鼠缺氧的模型，了解乏氧性，血液性，组织中毒性缺氧的分类。
2、观察缺氧对呼吸系统，中枢神系统的影响，以及血液颜色变化。
3、了解影响缺氧耐受性的因素。
二、实验原理分别复制三型缺氧模型，观察缺氧对机体的影响。
三、实验仪器设备小鼠缺氧瓶（100ml-125ml带塞广口瓶），一氧化碳发生装置广口瓶，恒温水浴箱，5ml或2ml刻度吸管，1ml注射器，酒精灯，剪刀，镊子，钠石灰，甲酸，浓硫酸，5%硝酸钠，0.1%氰化钾，生理盐水。
四、实验方法与步骤1、乏氧性缺氧1取小鼠四只，标记编号（甲，乙，丙，丁）每2min记录死亡（记录时间及耗氧量，甲鼠尸体待留）计算小鼠耗氧率（r）一般情况* 2、一氧化碳中毒性缺氧（小鼠一只）观察记录如上死亡（记录时间）计算小鼠耗氧率（r）* 3、亚硝酸中毒缺氧（小鼠一只）观察记录一般状况*观察记录如上小鼠腹腔注射*5%亚硝酸钠死亡（记录时间，）2计算小鼠耗氧率（r）* 4、取出甲鼠及2，3实验小鼠尸体部分肝叶进行对比，记录颜色。
备注：（1）一般状况*，呼吸频率，精神状态，皮肤黏膜颜色。
（2）缺氧瓶*，一定要密封，可用凡士林涂在瓶塞外面，且可以加入钠石灰吸收水汽。
（3）腹腔注射，正确拿握小鼠，左下腹，45°进针，回抽。
（4）耗氧率计算：r[ml/(g·min)]=a(ml)÷w(g)÷t（min） a，耗氧量；w，体重；t，死亡时间。
五、实验结果表1.各型缺氧对机体的影响3表2.影响机体缺氧耐受性的因素(乏氧性缺氧) 4注：从左至右依次为，亚硝酸钠中毒，乏氧性缺氧，一氧化碳中毒。
5篇三：小鼠缺氧模型及其分析课程名称：机能实验学教研室：病理生理学教研室任课教师：张彩华授课章节：缺氧与普鲁卡因对神经干的作用授课专业和年级：2005级医疗授课学时：8学时授课时间：2007年3-7月实验题目：缺氧实验目的：1.观察原因和条件在疾病发生发展中的作用2.复制几种类型缺氧的模型，观察血液颜色的特点，分析其机制根据大纲要求：掌握概念：缺氧、低张性缺氧、血液性缺氧、循环性缺氧和组织性缺氧，紫绀、肠源性紫绀。
熟悉并理解原因和条件在疾病发生发展中的作用。
熟悉氧代谢的四个环节（摄取、携带、运输和利用）及反映血氧情况的一些指标(氧分压、氧含量、氧容量、氧饱和度，动静脉血氧含量差)。
掌握各型缺氧发生的原因及主要发病机制，掌握各型缺氧的特征（血氧变化的特点和皮肤黏膜颜色变化）。
实验原理：1. 现代病因学认为，疾病是由于原因和条件综合作用的结果。
原因是引起疾病所不可缺少的因素，并且往往决定疾病的特异性，它与相应的疾病有着必然的因果关系；而条件则不是疾病所不可缺少的因素，它往往是通过作用于致病因子或改变机体反应性，对疾病的发生发展起促进或阻碍作用。
2. 缺氧是指任何原因引起的供氧不足或利用氧障碍引起组织细胞发生功能代谢和形态结构异常变化的病理过程。
根据不同的病因，可以把缺氧分为四种类型：低张性缺氧、血液性缺氧、循环性缺氧、组织性缺氧。
不同类型的缺氧具有不同的病因以及不同的血液颜色和血氧变化特点。
实验对象：小鼠实验器械和药品：电子秤、注射器、钠石灰、小鼠缺氧瓶、测耗氧量装置、剪刀、镊子、滤纸、苦味酸、一氧化碳包；生理盐水、1.25%尼可刹米、2%水合氯醛、5%亚硝酸钠、0.1%氰化钾实验方法：一、原因和条件作用的分析1. 取3只小鼠称重，编号1、2、3，用苦味酸做好标记2. 注射及处理：1号：生理盐水，0.2ml/10g ，腹腔注射2号：1.25%尼可刹米，0.2ml/10g ，腹腔注射 3号：2%水合氯醛，0.2ml/10g ，腹腔注射给药后分别放入三个缺氧瓶中，密闭计时，观察动物活动情况至死亡。
3. 用测耗氧量装置测定总耗氧量（a） 4. 计算耗氧率（r）：根据小鼠体重（w），存活时间（t），总耗氧量（a）计算小鼠耗氧率r（ml/min/g) =a/（w*t.）二、几种类型的缺氧1. 取3只小鼠称重，编号4、5、6，用苦味酸做好标记2. 注射及处理：4号：放入缺氧瓶，通入二氧化碳5号：5%亚硝酸钠，0.2ml/10g ，腹腔注射 6号：0.1%氰化钾，0.2ml/10g ，腹腔注射观察小鼠活动情况直至死亡。
3. 分别解剖1、4、5、6号小鼠，剪下一片肝脏组织放于滤纸上，观察对比血液颜色。
实验结果：一、不同条件下小鼠缺氧状态的比较序体重号（g） 1 2 320 20 20注射及处理生理盐水存活时总耗氧间（min）量(ml) 12 9 30 8 14 13耗氧率(ml/min/g) 0.033 0.078 0.02 正常活动，呼吸逐渐困难1.25%尼可刹米活动多，呼吸快 2%水合氯醛活动少，呼吸慢二、几种类型的缺氧序号 1 4 5 6体重（g） 20 20 20 20注射及处理生理盐水一氧化碳中毒 5%亚硝酸钠 0.1%氰化钾缺氧类型低张性缺氧血液性缺氧血液性缺氧组织性缺氧血液颜色暗红色樱桃红色咖啡色玫瑰红色实验讨论：一、原因和条件作用的分析现代病因学认为，疾病是由于原因和条件综合作用的结果。
原因是引起疾病所不可缺少的因素，并且往往决定疾病的特异性，它与相应的疾病有着必然的因果关系；而条件则不是疾病所不可缺少的因素，它往往是通过作用于致病因子或改变机体反应性，对疾病的发生发展起促进或阻碍作用。
本实验将生理盐水组作为正常对照，尼可刹米是一种呼吸中枢兴奋剂，可以直接兴奋呼吸中枢，也可通过刺激颈动脉体化学感受器反射地兴奋呼吸中枢，故2号小鼠活动多，死亡时间最早，代谢耗氧率最高。
水合氯醛是一种镇静催眠药，可以抑制呼吸中枢，使呼吸变慢，故3号小鼠活动少，死亡时间最晚，代谢耗氧率最低；1号小鼠各项指标均介于中间。
说明缺氧是这3只小鼠死亡的共同原因，不同的药物是小鼠死亡的条件，尼可刹米可以促进缺氧引起的小鼠死亡而水合氯醛可以延缓缺氧引起的小鼠死亡。
二、几种类型的缺氧缺氧是指任何原因引起的供氧不足或利用氧障碍引起组织细胞发生功能代谢和形态结构异常变化的病理过程。
根据不同的病因，可以把缺氧分为四种类型：低张性缺氧、血液性缺氧、循环性缺氧、组织性缺氧。
不同类型的缺氧具有不同的病因以及不同的血液颜色和血氧变化特点。
1. 低张性缺氧：由于吸入气氧分压过低或者外呼吸功能障碍引起的缺氧。
（1.2.3号小鼠）皮肤粘膜颜色：暗红色2. 血液性缺氧：由于血红蛋白的质或量的改变引起的缺氧。
（1）贫血：血红蛋白量的减少，皮肤粘膜颜色-----苍白（2） co中毒：原因：co与hb结合形成hbco；抑制糖酵解，氧解离曲线左移皮肤粘膜颜色：樱桃红色（3）高铁血红蛋白血症（亚硝酸盐中毒）：原因：二价铁离子被氧化为三价铁离子皮肤粘膜颜色：咖啡色3. 循环性缺氧：血流量减少引起的缺氧（见休克实验）皮肤粘膜颜色：暗红色4. 组织性缺氧：组织细胞利用氧障碍引起的缺氧如氰化物中毒：抑制氧化型细胞色素氧化酶转化为还原型细胞色素氧化酶皮肤粘膜颜色：玫瑰红色实验结论：1. 缺氧是这3只小鼠死亡的共同原因，不同的药物是小鼠死亡的条件，尼可刹米可以促进缺氧引起的小鼠死亡而水合氯醛可以延缓缺氧引起的小鼠死亡。
2. 低张性缺氧是由于吸入气氧分压过低或者外呼吸功能障碍引起的缺氧，皮肤粘膜颜色是暗红色，由于还原型hb≥5g/dl co中毒属于血液性缺氧，原因：co与hb结合形成hbco；抑制糖酵解，氧解离曲线左移。
肤粘膜颜色是樱桃红色，是hbco的颜色。
高铁血红蛋白血症（亚硝酸盐中毒）属于血液性缺氧，原因：二价铁离子被氧化为三价铁离子，皮肤粘膜颜色是咖啡色，是三价铁离子的颜色。
氰化钾中毒属于组织性缺氧，原因是抑制氧化型细胞色素氧化酶转化为还原型细胞色素氧化酶，皮肤粘膜颜色：玫瑰红色，由于血液中的氧化型血红蛋白较多。
实验中可能出现的问题及注意事项：1. 所有实验装置的连接必须保持通畅而且密闭，也可以在瓶口涂些凡士林时期密闭。
2.腹腔注射位置应在左下腹，避免损伤肝脏，注射的药物剂量应准确。
3. 钠石灰必须完全干燥。
4. 氰化钾有剧毒，避免皮肤粘膜与之接触。
5. 实验完毕后，所有器械应冲洗干净。
实验思考题：1. 小鼠在缺氧瓶中为什么会缺氧？2. 缺氧分为几种类型，各型的原因，皮肤粘膜颜色及血氧变化的特点是什么？实验题目：普鲁卡因对神经干的作用实验目的：观察普鲁卡因对混合神经的作用特点。
根据大纲要求：掌握局部麻醉药的概念及机制，熟悉其体内代谢过程，了解常用的几种局麻药的特点效果和作用。
了解几种局麻方法，熟悉局麻药的毒性反应及影响局麻药作用的因素。
实验原理：局部麻醉药普鲁卡因作用于用药局部的神经末梢，可逆性的阻断神经冲动的发生和传导。
感觉神经先麻醉，运动神经后麻醉。
实验对象：蟾蜍实验器械和药品：电子计算机、生物机能实验系统、蛙类手术器械、刺激电极、玻璃分针、棉花、蜡纸。
1% 盐酸普鲁卡因溶液。
实验方法：1. 取蟾蜍一只，腹位固定四肢于蛙板上，剪开一侧股部皮肤，可见股二头肌和股三头肌，用玻璃分针在两块肌肉间小心剥离出坐骨神经干，在其下面穿一线，轻提起神经在其下垫一小片蜡纸，将神经与周围肌肉隔开。
2. 方形波刺激坐骨神经，找出最小刺激阈，选用适宜的刺激强度（可稍大于最小刺激阈），观察蟾蜍对刺激的全身运动反应及该后肢的运动反应。
3. 一段棉线（或直径为1.5mm的细棉条）浸泡1%盐酸普鲁卡因溶液，包绕神经干的穿线部位。
4. 2min后，以同样强度刺激给药上下端的神经干，观察蟾蜍全身运动反应及该后肢的运动反应，分析所出现现象的原因。
5. 为了分辨感觉纤维与运动神经纤维何者先产生麻醉作用，隔2min以同样强度重复刺激一次。
这时反应有何变化？分析其结果。
6. 给药10min后，在以同样强度刺激棉线上下端的坐骨神经干，观察动物的反应。
实验结果：普鲁卡因对神经干的作用时间（min） 0 2 4 6 8 10 近中端肌肉运动+ + + + - - 全身反应+ + + + + + 肌肉运动+ + + + + + 远中端全身反应+ + - - - - “+”表示对刺激有反应；“-”表示对刺激无反应实验讨论：局部麻醉药是一类以适宜的浓度，局部应用于神经末稍或神经干后能可逆的完全的暂时的阻断神经传导有关的动作电位的药物。
低浓度的局部麻醉药能阻断感觉神经冲动的发生和传导；高浓度对神经系统任何类型的纤维（感觉神经、运动神经、植物神经）都有阻断作用。
一般细的无髓鞘的神经纤维比粗纤维对局麻药作用更敏感。
在局麻药的作用下，痛觉先消失，其次是冷觉、温觉、触压觉。
局麻药通过抑制钠离子内流，阻止动作电位的产生和传导，产生局麻作用。