蛋白酶实验
蛋白酶的测定方法
蛋白酶活性采用茚三酮比色法测定1、试剂配制①1%的酪素溶液：用 pH7.4 的 0.2M 磷酸盐缓冲溶液配制。
PH为7.4的0.2M磷酸盐缓冲溶液：0.2M 磷酸氢二钠（27.8g NaHPO4·2H2O溶于 1L 蒸馏水中）19ml 加 0.2M 磷酸二氢钾（53.65g KH2PO4溶于 1L 蒸馏水中）81ml 即成。
②0.1N 硫酸。
③20%硫酸钠。
④2%茚三酮液：2g 茚三酮溶于 100ml 丙酮。
⑤甲苯。
⑥甘氨酸标准溶液：取 0.1g 甘氨酸溶液水中，定容 1L，则得 1ml 含 0.02mg 氨基氮的标准液。
再稀释 10 倍做成标准液。
标准曲线的绘制：分别吸取工作液 1,3,5,7,9,13ml 移于50ml 容量瓶中，加 1ml 的茚三酮，冲洗瓶颈后在沸水浴上加热10min，将获得的着色溶液用蒸馏水稀释至刻度。
在风光光度计上于 500nm 处比色测定颜色深度。
以光密度为纵坐标，以氨基氮浓度为横坐标，绘制曲线。
2、操作步骤称 4g 风干土，置于 50ml 三角瓶中，加 20ml1%酪素溶液和 1ml 甲苯，小心振荡后用木塞盖紧，在30℃恒温箱中培养 24h。
培养结束后，于混合物中加 2ml0.1N 硫酸和 12ml 20% 硫酸钠液，以沉淀蛋白质，然后离心 15min(6000 转/min)。
取上清液2ml，置于 50ml 容量瓶中，按绘制标准曲线显色的方法进行比色测定。
为了消除土壤中原来含有的氨基氮引起的误差，每一土样需做无基质对照，整个实验需做无土对照。
无土对照：不加土样，其他操作与样品实验相同。
无基质对照：以等体积的水代替基质，其他操作与样品实验相同。
蛋白酶活性，以 24 小时后1g 土壤中氨基氮的毫克数表示。
3、结果计算NH2-N(mg)=a×5式中 a——从标准曲线查的氨基氮毫克数5——换算成 1g 土的系数。
蛋白酶活力测定实验报告
蛋白酶活力测定实验报告
实验目的：
通过测定蛋白酶的活力，了解其功能和活性。
实验原理：
蛋白酶是一类能够水解蛋白质的酶，可以将蛋白质分解为多肽和氨基酸。
蛋白酶活力是指单位时间内酶水解蛋白质的能力，通常以单位时间内水解的底物的量来表示。
本实验使用的方法是酶促反应测定法。
首先，将待测蛋白酶与底物混合，反应一定时间后，停止反应并添加淀粉溶液产生反应终止剂，最后用碘化钾溶液滴定反应产物。
实验步骤：
1. 预备试剂：制备蛋白酶和底物的工作液，制备淀粉溶液和反应终止剂，制备碘化钾溶液。
2. 实验装置：准备滴定装置和试管架。
3. 设置实验条件：保持温度恒定，控制pH值。
4. 实验操作：在试管中加入待测蛋白酶和底物工作液，反应一定时间后，加入淀粉溶液和反应终止剂，最后用碘化钾溶液滴定。
5. 记录数据：记录滴定所需碘化钾的体积，计算出酶活力。
实验结果：
根据实验数据，计算出蛋白酶的活力，通常以单位时间内水解的底物的量来表示。
实验讨论：
分析实验结果，比较不同条件下蛋白酶的活力差异，并讨论影响蛋白酶活力的因素。
实验结论：
通过分析实验结果，得出结论，总结蛋白酶活力与其他因素之间的关系，并提出可能的应用前景。
实验总结：
总结实验过程，评价实验结果及数据，提出改进意见，并对今后可能的研究方向进行展望。
参考文献：
列出所参考的文献。
蛋白酶实验报告
一、实验目的1. 掌握蛋白酶活力的测定原理和方法。
2. 学习酶促反应动力学的基本知识。
3. 了解蛋白酶在不同条件下的活性变化。
二、实验原理蛋白酶是一种催化蛋白质水解的酶，其活性可通过测定在一定条件下水解底物产生氨的速率来表示。
本实验采用紫外分光光度法测定蛋白酶活力，通过测定反应体系中氨的生成速率，间接反映蛋白酶的活力。
三、实验材料与试剂1. 实验材料：- 酪蛋白：1g- 胰蛋白酶：适量- 磷酸氢二钠溶液（0.1mol/L）- 磷酸二氢钠溶液（0.1mol/L）- 氢氧化钠溶液（0.1mol/L）- 蒸馏水- 紫外分光光度计2. 试剂：- Folin试剂：1.25g钼酸铵溶于50ml水中，加入25ml硫酸，混匀，用蒸馏水定容至100ml- 草酸溶液：7.5g草酸溶于100ml水中- 硫酸铜溶液：5g硫酸铜溶于50ml水中，用蒸馏水定容至100ml- 酶标液：1mg/mL四、实验步骤1. 准备反应体系：取0.5g酪蛋白，加入5ml磷酸氢二钠溶液（0.1mol/L）和5ml 磷酸二氢钠溶液（0.1mol/L），混匀后加入适量的胰蛋白酶，使酶与底物比例约为1:100。
2. 预热反应体系：将反应体系放入水浴锅中，恒温40℃。
3. 启动反应：每隔一定时间（如30秒）取样，立即加入0.5ml氢氧化钠溶液（0.1mol/L）终止反应。
4. 测定氨含量：将终止反应后的样品加入0.5ml Folin试剂，混匀后加入0.5ml 硫酸铜溶液，再加入0.5ml草酸溶液，混匀后放入紫外分光光度计中，于波长620nm处测定吸光度。
5. 计算蛋白酶活力：根据标准曲线计算样品中氨的浓度，进而计算蛋白酶活力。
五、实验结果与分析1. 标准曲线绘制：以不同浓度的氨溶液为标准品，绘制标准曲线。
2. 蛋白酶活力计算：根据样品的吸光度值，从标准曲线中查找对应的氨浓度，计算蛋白酶活力。
3. 分析不同条件对蛋白酶活性的影响：通过改变温度、pH值、底物浓度等条件，观察蛋白酶活性的变化。
蛋白酶酶活测定方法
蛋白酶酶活测定方法一、实验原理：一定条件下不仅能够水解蛋白质中的肽键，也能够水解酰胺键和酯键，因此可用蛋白质或人工合成的酰胺及脂类化合物作为底物来测定蛋白酶的活力。
本实验选用酪蛋白为底物，测定微生物蛋白酶水解肽键的活力。
酪蛋白经蛋白酶作用后，降解成相对分子质量较小的肽和氨基酸，在反应混合物中加入三氯醋酸溶液，相对分子质量较大的蛋白质和肽沉淀下来，相对分子质量较小的肽和氨基酸仍留在溶液中，溶解于三氯醋酸（TCA）溶液的肽的数量与酶的数量和反应时间成正比。
在280nm波长下测定溶液吸光度的增加，计算酶的活力。
一分钟内1mg牛血清蛋白（BSA）相当的非蛋白性Lowry试液显色物质的增量值定义为一个蛋白酶活性单位（IU）。
二、试剂配制：A溶液：含2%KCl，1%TrltonX-100的50mM磷酸盐缓冲溶液（pH 6.0）试样TG酶溶液：直接取发酵样12000rpm离心5min，取上清测定。
底物溶液：精确称取底物二甲基酪蛋白0.250g，加入50mM PB缓冲溶液（pH 6.0）10mL，常温搅拌30min使其溶解后备用。
三、操作步骤：1. 试样1）将底物溶液放入37℃恒温水浴中预热备用2）试管中加入试样TG酶溶液0.2mL后放入恒温水浴中，10min后加入已预热的底物溶液1mL，立即振荡混合，于37℃反应60min3）反应结束后，加入12% TCA溶液1mL，再于37℃反应30min，使反应终止4）20℃,3000rpm，20min离心后取上清备用。
2.空白1）试管中加入已预热底物溶液1mL，再加入12% TCA溶液1mL，振荡混合后，于37℃反应60min2）加入试样TG酶溶液0.2mL，振荡混合后，于37℃反应30min3）20℃,3000rpm，20min离心后取上清备用。
四、Lowry法显色反应试管中分别加入试样清液和空白清液各0.2mL，加入A溶液1mL，振荡混合后室温下放置10min，然后加入试剂B 0.1mL，振荡混合后，于37℃反，空白的吸应30min。
福林酚法测定蛋白酶活力原理
福林酚法测定蛋白酶活力原理1. 引言：蛋白酶的神秘面纱哎呀，说到蛋白酶，大家可能会觉得这玩意儿离我们有点远。
其实不然，蛋白酶可是咱们身体里忙前忙后、默默奉献的小工人。
它们像一群勤劳的清道夫，帮我们分解食物中的蛋白质，让营养更好地被吸收。
不过，有时候我们得搞清楚这些小工人到底干了多少活儿，这时候就需要用到福林酚法了。
说到这儿，可能有人要问：啥是福林酚法？怎么听起来这么高大上？别急，我这就给大家捋捋这其中的门道。
2. 福林酚法的基本原理2.1 蛋白酶活力的测定首先，福林酚法其实是个很聪明的办法，它可以用来测定蛋白酶的活力。
蛋白酶，顾名思义，就是能把蛋白质搞得七零八落的那种酶。
我们要知道它的活力，就得看看它把蛋白质分解的效率如何。
简单来说，就是用这套方法来测一测它干了多少活儿。
咋测呢？这就需要一点点化学的小窍门了。
2.2 福林酚法的步骤那么，福林酚法到底怎么操作呢？这个过程其实没那么复杂，只要几个步骤就能搞定。
首先，我们需要一种叫做“福林酚试剂”的化学液体。
这个试剂像是福尔摩斯，能准确找出蛋白酶分解蛋白质后剩下的东西。
接下来，我们会把待测的蛋白质样品和福林酚试剂混合，然后放到一个小瓶里。
再往里面加上另一种试剂，这时候，瓶子里的液体就会发生颜色变化。
这种颜色的变化，就告诉我们蛋白酶的活力到底如何。
明白了吧？简单来说，颜色越深，蛋白酶活力越强。
3. 实验操作的细节3.1 样品准备为了让实验结果更准确，我们需要对样品进行准备。
首先，得把蛋白质样品溶解成一定浓度的液体。
这个过程就像是在做一道美味的汤，得控制好原料的比例，才能保证最终的味道。
我们通常会用去离子水来溶解，这样可以避免杂质影响结果。
接着，样品需要经过过滤，确保液体里没有大颗粒的沉淀物。
这样一来，实验才会更靠谱，像是给蛋白酶干活提供了一个干净整洁的环境。
3.2 反应时间与测量接下来，就是关键的反应时间了。
通常，我们会让样品和试剂反应一段时间，这个时间的长短可是有讲究的，太短了可能测不出准确的结果，太长了又可能产生误差。
蛋白酶活性的测定
实验四蛋白酶活力的测定一、实验目的1、了解蛋白酶活力测定的原理；2、掌握蛋白酶活力测定的方法。
二、实验原理蛋白酶在一定条件下不仅能够水解蛋白质中的肽键，也能够水解酰胺键和酯键，因此可用蛋白质或人工合成的酰胺及酯类化合物作为底物来测定蛋白酶的活力。
本实验选用酪蛋白为底物，测定微生物蛋白酶水解肽键的活力。
酪蛋白经蛋白酶作用后，降解成相对分子质量较小的肽和氨基酸，在反应混合物中加入三氯醋酸溶液，相对分子质量较大的蛋白质和肽就沉淀下来，相对分子质量较小的肽和氨基酸仍留在溶液中，溶解于三氯醋酸溶液中的肽的数量正比于酶的数量和反应时间。
在280nm波长下测定溶液吸光度的增加，就可计算酶的活力。
三、实验试剂①微生物蛋白酶萃取液（0.01g/ml）：称取1.0g酶制剂，加100ml蒸馏水搅拌30min，在4℃下离心分离后，将上层清夜置于冰箱中保存，使用前稀释一定倍数；② 0.02mol/L磷酸盐缓冲液（pH7.5）；③ 1%酪蛋白溶液：取1.0g酪蛋白，加100ml 0.2mol/L磷酸盐缓冲液（PH7.5），加热并搅拌使它完全分散，然后置于冰箱中保存；④ 5%三氯醋酸（TCA）溶液。
四、实验步骤1、将5%TCA溶液和1%酪蛋白溶液在37℃下保温。
2、取四支15ml具塞试管，分别标上记号A1、A0、B1和B0。
在A1和A0试管中各吸入0.20ml酶液，在B1和B0试管中各吸入0.40ml酶液，分别用0.2mol/L 磷酸盐缓冲液定容至2.00ml。
在A0和B0试管中各吸入6.00ml5%三氯醋酸溶液，上述四支试管都置于37℃水浴中保温。
3、在各试管中吸入2.00ml 1%酪蛋白溶液，在37℃下保温10min（准确计时）后，再向A1和B1试管中吸入6.00ml5%三氯醋酸溶液。
4、将试管从水浴中取出，在室温下放置1h，用少量上清液润湿滤纸后过滤，保留滤出液。
5、在280nm波长下，分别以A0和B0滤液为空白，测定A1和B1滤液的吸光度。
（食品化学）实验四、蛋白酶酶活力的测定
实验四、蛋白酶酶活力的测定一、原理以酪蛋白为反应底物，令蛋白酶在其最适宜条件下反应一定时间，用三氯乙酸终止反应后过滤或离心得上清液，用Folin比色法测上清液中蛋白酶解物的浓度，计算蛋白酶活力。
蛋白酶活力定义：在一定的条件下，每分钟水解酪蛋白生成与1μg酪氨酸相当的三氯醋酸可溶物所需的木瓜蛋白酶的量，为1个酶活力单位（u）。
二、材料、仪器与试剂（一）材料：木瓜蛋白酶（二）仪器：可见-紫外分光光度计、水浴锅、天平、具塞刻度试管（10、15ml）、漏斗、滤纸、试管架，容量瓶、移液管（1、10ml）、烧杯（25ml）、玻璃棒。
（三）试剂：1福林试剂(Folin试剂)市场购买的Folin试剂。
此溶液使用时加2倍蒸馏水稀释，即成已稀释3倍的福林试剂。
2、中性稀释液－pH7.2磷酸盐缓冲液称取磷酸二氢钠(NaH2PO4·2H2O)31.2g,定容至1000mL,即成0.2mol/L溶液(A液)。
称取磷酸氢二钠(Na2HPO4·12H2O)71.63g,定容至1000mL,即成0.2mol/L 溶液(B液)。
取A 液28mL 和B 液72mL,再用蒸馏水稀释1倍,即成0.1mol pH7.2的磷酸盐缓冲液。
3、酪蛋白溶液2g恒重的酪蛋白，用0.5mol/LNaOH溶液润湿后加入80ml pH7.2磷酸盐缓冲液，沸水浴溶解，冷却后，用1 mol/L盐酸调至pH 7.0，再用磷酸盐缓冲液定容至100ml，得浓度为2%的酪蛋白溶液。
临用现配。
4、三氯醋酸溶液称取三氯乙酸(CCL3COOH)65.4g,定容至1000mL，得0.4mol/L三氯乙酸(TCA)溶液5、酪氨酸标准溶液精确称取精确称取在105℃烘箱中烘至恒重的酪氨酸0.1000g，逐步加入6mL 1N盐酸使溶解,用0.2N盐酸定容至100mL,其浓度为1000μg/mL,再用水稀释5倍，得到200μg/mL的酪氨酸标准溶液。
取200μg/mL的标准酪氨酸溶液，配成不同浓度的溶液（0、20、40、60、80、100μg/mL）6、样品溶液称取木瓜蛋白酶0.100g, 置于研钵中,加入相应的缓冲液定容至50mL,得到稀释500倍的酶液（当天配制、稀释）。
实验四蛋白酶活力的测定
实验四、蛋白酶活力的测定1.实验目的掌握用Folin-酚法测定蛋白酶活力的方法，与Azocasein（偶氮酪蛋白）法作为比较。
2.实验原理蛋白酶在一定的温度和pH下，水解酪素底物产生含有酚基的氨基酸（如酪氨酸、色氨酸），在碱性条件下，将福林试剂还原，生成钼蓝和钨蓝，其颜色的深浅与酚基氨基酸含量成正比，通过在660nm测定其吸光度，可得到酶解产生的酚基氨基酸的量，计算出蛋白酶活力，以此代表蛋白酶的总酶活力。
酶活单位定义：在37℃、相应的pH条件下，在1min内水解酪蛋白底物，产生相当于1µg酚类化合物（由酪氨酸等同物表示）的酶量，为1个酶活单位。
3.主要仪器和试剂试剂：0.1mg/mL L-酪氨酸标准贮备溶液、0.55mol/LNa2CO3、福林试剂、Casein溶液、TCA 溶液仪器设备：恒温水浴锅、分光光度计、pH计，分析天平、秒表。
4.实验步骤（1）标准曲线绘制取三支试管（一支空白，两支样品管），分别向三支试管中准确加入5mLcasein基质液，将三支管放入37℃水浴中预热10min分别向两支样品管中加入1mL稀释酶液，准确计时，反应30min，取出迅速加入5mLTCA；空白管先加TCA预热30min再加稀释酶液，摇匀。
将三支试管继续置于37℃水浴中放置30min，取出，迅速冷却至室温。
三支试管中反应液用滤纸过滤。
另取三支试管（一支空白。
两支样品管），分别吸取上述相应的滤除液2mL，加入碳酸钠溶液5mL，稀Folin试剂1mL，摇匀，在37℃水浴中放置30min，取出，迅速冷却至室温。
以空白管为对照调仪器零点，在分光光度计波长660nm下，用比色皿分别测二支样品管中酶液的吸光度，取平均值，通过标准曲线求出生成的酪氨酸的含量。
5.数据处理。
蛋白酶比活力实验报告
一、实验目的1. 了解蛋白酶比活力的概念及测定方法。
2. 掌握利用比色法测定蛋白酶比活力的原理和操作步骤。
3. 通过实验，了解蛋白酶在不同条件下的活性变化，为实际应用提供参考。
二、实验原理蛋白酶比活力是指单位质量的蛋白质所具有的酶活性。
在实验中，通过测定蛋白酶在一定条件下对底物（如酪蛋白）的水解程度，可以计算出蛋白酶的比活力。
本实验采用比色法，通过测定底物水解产生的产物（如酪氨酸）的吸光度变化，间接反映蛋白酶的活性。
三、实验材料与仪器1. 实验材料：- 蛋白酶样品- 酪蛋白- 0.02mol/L pH7.5磷酸盐缓冲液- 0.1mol/L Folin-酚试剂- 0.4mol/L三氯乙酸- 0.05mol/L氢氧化钠溶液- 2.5mol/L硼砂缓冲溶液（pH10.5）- 680nm比色计2. 实验仪器：- 磁力搅拌器- 移液器- 电子天平- 恒温水浴锅- 10mL具塞试管- 50mL容量瓶- 试管架四、实验步骤1. 准备实验试剂：- 配制0.1mol/L Folin-酚试剂：将钨酸钠、钼酸钠、磷酸、盐酸、硫酸锂、液溴等试剂按比例混合，微火回流加热10小时，加入碳酸钠和蒸馏水，定容至1000mL。
- 配制0.4mol/L三氯乙酸溶液：称取三氯乙酸16.34g，用水溶解并定容至500mL。
- 配制0.05mol/L氢氧化钠溶液：按GB601配制。
- 配制2.5mol/L硼砂缓冲溶液（pH10.5）：称取硼酸钠19.08g，加水溶解并定容至1000mL，称取氢氧化钠4.0g，加水溶解并定容至1000mL，取甲液500mL乙液400mL混合，用水稀释至1000mL。
2. 实验操作：- 将酪蛋白溶解于0.02mol/L pH7.5磷酸盐缓冲液中，配制成2%酪蛋白溶液。
- 将蛋白酶样品用0.02mol/L pH7.5磷酸盐缓冲液稀释至适宜浓度。
- 取10mL具塞试管，加入2%酪蛋白溶液1mL，然后加入蛋白酶溶液1mL，置于37℃恒温水浴锅中反应30分钟。
蛋白酶比活力实验报告
蛋白酶比活力实验报告蛋白酶比活力实验报告引言：蛋白酶是一类能够水解蛋白质的酶，广泛存在于生物体内。
通过测定蛋白酶的比活力，可以评估其催化反应的速率和效率。
本实验旨在通过比较不同条件下蛋白酶的活力，探究影响蛋白酶活性的因素。
实验方法：1. 实验材料准备：- 蛋白酶溶液：从动物组织中提取的蛋白酶溶液，浓度为10 mg/mL。
- 底物溶液：使用明胶作为蛋白酶的底物，浓度为1%。
- 缓冲液：pH值为7.4的磷酸盐缓冲液。
- 试管：用于混合反应液的透明试管。
- 恒温水浴：用于控制反应温度的设备。
2. 实验步骤：- 步骤一：在不同温度下测定蛋白酶的活力。
- 将5 mL蛋白酶溶液和5 mL底物溶液混合，并放置于恒温水浴中，分别设置不同温度条件（如25℃、37℃、50℃）。
- 在反应开始后的1分钟、2分钟、3分钟等时间点，取出一定量的反应液，立即停止反应。
- 使用布拉德福法测定反应液中未被水解的底物浓度，计算蛋白酶的比活力。
- 步骤二：在不同pH条件下测定蛋白酶的活力。
- 在不同pH值的缓冲液中，重复上述步骤一的实验操作。
- 测定不同pH条件下蛋白酶的比活力，并比较其差异。
实验结果：1. 温度对蛋白酶活力的影响：- 在25℃、37℃和50℃下进行实验，测得蛋白酶的比活力分别为0.05 U/mg、0.1 U/mg和0.02 U/mg。
- 结果显示，蛋白酶的活力随着温度的升高而增加，但当温度过高时（如50℃），蛋白酶的活力反而下降。
2. pH值对蛋白酶活力的影响：- 在pH为7.4、8.0和9.0的缓冲液中进行实验，测得蛋白酶的比活力分别为0.08 U/mg、0.06 U/mg和0.04 U/mg。
- 结果显示，蛋白酶的活力在中性条件下（pH 7.4）最高，而在酸性和碱性条件下，蛋白酶的活力均降低。
讨论与结论：通过本实验，我们可以得出以下结论：1. 温度对蛋白酶活力有显著影响，适宜的温度可以提高蛋白酶的催化效率，但过高的温度会导致酶的变性，从而降低活力。
蛋白酶活性电泳实验
蛋白酶活性电泳活性电泳(明胶酶谱法)一、实验原理明胶酶谱法的基本过程是先将样品进行非还原性SDS-PAGE（含0.1%明胶）电泳分离，然后在缓冲系统中使样品中的酶恢复活性，在各自的迁移位置水解凝胶里的明胶，最后用考马斯亮蓝将凝胶染色，再脱色，在蓝色背景下可出现白色条带，条带的强弱与酶的量和比活成正比。
复性原理：在电泳过程中，SDS与样品中的酶结合（可逆性结合），破坏其氢键、疏水键而使酶不能发挥其分解明胶的作用，而只有当将胶置Triton中震荡洗脱时，由于SDS被Triton结合而去除，从而使酶恢复了活性，此步注意上样缓冲液中不能含有DTT等还原性物质。
通过不同孔径凝胶电泳达到分离蛋白的目的，而活性电泳又能保证蛋白的活性，在孵育条件下，酶对明胶的水解使后期染色出现白色条带，得以定位目的酶。
通过对该位置酶的回收与质谱鉴定，得到该酶部分氨基酸序列。
二、材料与方法1试剂与溶液配制1.1试剂和仪器：酪氨酸，酪蛋白，明胶（猪源），Tris，Glycine，TEMED，SDS，过硫酸铵，考马斯亮蓝R250购自sigma公司，为电泳纯；Triton X-100，CaCl2·2H2O，Brij-35（十二烷基聚乙二醇醚），NaCl，乙酸，乙酸钠，碳酸钠，甲醇，乙酸，盐酸，三氯乙酸，福林试剂均为国产分析纯；30%丙烯酰胺溶液（29:1），非还原性5×蛋白上样缓冲液，预染彩虹蛋白marker等购自康为世纪公司。
水为去离子水或超纯水。
主要仪器：紫外分光光度计电泳仪垂直电泳槽高速离心机milipore超滤管等1.2溶液配制1.2.1 5×SDS-PAGE电泳缓冲液配法：称取Tris 15.1g，Glycine 94g，加适量去离子水溶解，加入SDS 5.0g，加水至约800ml，注意尽量减少气泡生成，完全溶解后定容至1000ml，室温保存。
使用时用去离子水稀释至1×，新配置的电泳液可重复使用1-2次，最好使用新鲜配制的电泳液。
蛋白酶活性电泳实验
蛋白酶活性电泳活性电泳(明胶酶谱法)一、实验原理明胶酶谱法的基本过程是先将样品进行非还原性SDS-PAGE（含0.1%明胶）电泳分离，然后在缓冲系统中使样品中的酶恢复活性，在各自的迁移位置水解凝胶里的明胶，最后用考马斯亮蓝将凝胶染色，再脱色，在蓝色背景下可出现白色条带，条带的强弱与酶的量和比活成正比。
复性原理：在电泳过程中，SDS与样品中的酶结合（可逆性结合），破坏其氢键、疏水键而使酶不能发挥其分解明胶的作用，而只有当将胶置Triton中震荡洗脱时，由于SDS被Triton结合而去除，从而使酶恢复了活性，此步注意上样缓冲液中不能含有DTT等还原性物质。
通过不同孔径凝胶电泳达到分离蛋白的目的，而活性电泳又能保证蛋白的活性，在孵育条件下，酶对明胶的水解使后期染色出现白色条带，得以定位目的酶。
通过对该位置酶的回收与质谱鉴定，得到该酶部分氨基酸序列。
二、材料与方法1试剂与溶液配制1.1试剂和仪器：酪氨酸，酪蛋白，明胶（猪源），Tris，Glycine，TEMED，SDS，过硫酸铵，考马斯亮蓝R250购自sigma公司，为电泳纯；Triton X-100，CaCl2·2H2O，Brij-35（十二烷基聚乙二醇醚），NaCl，乙酸，乙酸钠，碳酸钠，甲醇，乙酸，盐酸，三氯乙酸，福林试剂均为国产分析纯；30%丙烯酰胺溶液（29:1），非还原性5×蛋白上样缓冲液，预染彩虹蛋白marker等购自康为世纪公司。
水为去离子水或超纯水。
主要仪器：紫外分光光度计电泳仪垂直电泳槽高速离心机milipore超滤管等1.2溶液配制1.2.1 5×SDS-PAGE电泳缓冲液配法：称取Tris 15.1g，Glycine 94g，加适量去离子水溶解，加入SDS 5.0g，加水至约800ml，注意尽量减少气泡生成，完全溶解后定容至1000ml，室温保存。
使用时用去离子水稀释至1×，新配置的电泳液可重复使用1-2次，最好使用新鲜配制的电泳液。
蛋白酶检测操作
蛋白酶检测操作蛋白酶检测是生物化学领域中一项重要的实验技术，用于检测和研究蛋白质的活性、浓度以及其他相关特性。
它在生物医学研究、药物开发和生物工程等领域具有广泛的应用。
本文将介绍蛋白酶检测的操作步骤和注意事项。
蛋白酶检测操作主要包括以下几个步骤：1. 样品制备：首先，需要准备待测蛋白样品。
样品可以是纯化的蛋白，也可以是细胞裂解液或组织提取物。
在制备样品时，需要注意避免蛋白质的降解和氧化，可以添加蛋白酶抑制剂来保护样品的完整性。
2. 底物选择：根据待测蛋白酶的类型和特性，选择适合的底物。
底物通常是一种特定的肽链或蛋白质，其结构和序列可以被蛋白酶特异性地识别和降解。
常用的底物有荧光标记的肽链和色素标记的蛋白质。
3. 反应条件优化：确定最适合蛋白酶反应的条件，包括温度、pH值和反应时间等因素。
不同的蛋白酶对反应条件有不同的要求，需要根据实际情况进行优化。
4. 反应监测：通过测定反应产物的生成量或底物的降解程度，来监测蛋白酶的活性。
可以使用荧光、吸光度或质谱等技术进行监测。
在进行监测时，需要注意选择适当的检测方法和仪器，确保结果的准确性和可靠性。
5. 数据分析：根据实验结果，进行数据分析和统计处理。
可以计算蛋白酶的活性值、浓度值或其他相关参数，用于研究和比较不同样品之间的差异。
蛋白酶检测操作需要注意以下几个方面：1. 样品处理：样品制备过程中需要注意避免蛋白质的降解和氧化。
可以在样品中添加蛋白酶抑制剂来保护样品的完整性。
2. 反应条件优化：不同的蛋白酶对反应条件有不同的要求，需要根据实际情况进行优化。
可以通过尝试不同的温度、pH值和反应时间等条件，来确定最适合蛋白酶反应的条件。
3. 底物选择：选择适合的底物是蛋白酶检测的关键。
底物的结构和序列应该能够被蛋白酶特异性地识别和降解，同时生成的反应产物应该能够方便地进行监测和分析。
4. 反应监测：选择适当的检测方法和仪器，确保结果的准确性和可靠性。
根据实验需求，可以使用荧光、吸光度或质谱等技术进行监测。
蛋白酶活力测定
3
在实际应用中，蛋白酶活力测定具有广泛的应用 价值，如食品工业中蛋白质水解、洗涤剂生产中 的酶催化反应等。
研究展望
随着生物技术的不断发展，蛋白酶活力测定技术也在不断改进和完善。未来，可以通过开发 新型的蛋白酶活力测定方法，提高测定灵敏度和特异性，进一步拓展其应用范围。
在研究蛋白酶的底物特异性、抑制剂作用机制等方面，可以结合计算机模拟技术、光谱学技 术等手段，深入探究酶的催化机制和作用机理。
随着蛋白质组学和代谢组学研究的深入，蛋白酶活力测定在生物标志物发现、疾病诊断和治 疗等方面的应用将更加广泛。同时，随着人类对生物大分子结构和功能的认识不断深入，蛋 白酶活力测定在药物设计和发现等领域也将发挥更加重要的作用。
THANKS
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数据记录与处理
06 详细记录实验数据，并进行必
要的计算和处理，以得出实验 结论。
实验操作技巧
温度控制
确保酶反应在恒温条件下进行，以减 少温度对酶活力的影响。
02
pH调节
使用适当的缓冲液调节反应液的pH值， 以保证酶活力的稳定。
01
03
避免污染
在整个实验过程中，要严格控制实验 环境，避免样品和试剂受到污染。
对照实验
进行对照实验时，要确保对照组与实 验组条件一致，以消除误差对实验结 果的影响。
05
04
精确测量
在实验过程中，要使用精确的测量工 具和方法，确保实验数据的准确性。
05
结果分析与解读
结果分析
酶活力单位
通过实验数据，计算出蛋白酶的酶活力单位， 以评估酶的催化活性。
酶促反应速率
分析酶促反应速率，了解酶促反应的进程和 快慢。
底物浓度与酶活力的关系
蛋白酶活性检测实验报告
一、实验目的1. 学习和掌握蛋白酶活性检测的基本原理和方法。
2. 了解蛋白酶的特性和作用。
3. 通过实验，学会使用相关仪器和操作技能。
二、实验原理蛋白酶是一种能够水解蛋白质的酶，其活性是指在一定条件下，蛋白酶催化蛋白质水解的能力。
蛋白酶活性检测通常采用紫外分光光度法，通过测定反应体系中蛋白质的降解程度来评估蛋白酶的活性。
三、实验材料与仪器1. 实验材料：（1）蛋白酶样品（2）底物：酪蛋白（3）缓冲液：磷酸盐缓冲液（pH 7.0）（4）其他试剂：硫酸铜、碘化钾、氢氧化钠等2. 实验仪器：（1）紫外分光光度计（2）恒温水浴锅（3）电子天平（4）移液器（5）试管（6）烧杯四、实验步骤1. 准备实验试剂和仪器。
2. 配制底物溶液：称取一定量的酪蛋白，加入适量磷酸盐缓冲液，溶解后备用。
3. 设置实验组：（1）取若干个试管，分别加入不同浓度的蛋白酶样品。
（2）在每个试管中加入相同体积的底物溶液。
（3）将试管放入恒温水浴锅中，设定温度为37℃，反应一定时间。
4. 设置对照组：（1）取若干个试管，分别加入相同体积的蛋白酶样品和底物溶液。
（2）将试管放入恒温水浴锅中，设定温度为37℃，反应一定时间。
5. 测定反应体系中蛋白质的降解程度：（1）取一定体积的反应体系，加入硫酸铜和碘化钾溶液。
（2）用紫外分光光度计测定反应体系的吸光度。
（3）根据吸光度计算蛋白质的降解程度。
6. 数据处理和分析：（1）绘制蛋白酶活性与酶浓度、反应时间的关系曲线。
（2）分析蛋白酶的特性和作用。
五、实验结果与分析1. 实验结果：（1）不同浓度的蛋白酶样品对底物溶液的降解程度不同。
（2）随着反应时间的延长，蛋白质的降解程度逐渐增加。
2. 分析：（1）蛋白酶的活性与酶浓度呈正相关，即酶浓度越高，活性越强。
（2）在一定反应时间内，蛋白酶活性随着反应时间的延长而增加，但当反应时间过长时，活性逐渐降低，可能是因为蛋白酶自身发生降解。
六、实验结论1. 通过本实验，掌握了蛋白酶活性检测的基本原理和方法。
蛋白酶检测操作
蛋白酶检测操作1. 概述蛋白酶检测是一种用于检测样品中蛋白酶活性和浓度的实验操作。
蛋白酶是一类能够降解蛋白质的酶，其活性和浓度的检测对于许多生物学和生化学研究非常重要。
本文将介绍蛋白酶检测的基本原理、常用的实验方法和操作步骤，并简要介绍一些常见的蛋白酶检测试剂和设备。
2. 基本原理蛋白酶检测的基本原理是通过特定的底物或试剂与蛋白酶发生反应来间接或直接测定蛋白酶的活性或浓度。
常用的蛋白酶检测方法包括颜色反应法、荧光法和质谱法等。
2.1 颜色反应法颜色反应法是一种常用的蛋白酶活性测定方法，其原理是将蛋白酶作用于特定的底物后，产生的产物与某些指示剂发生颜色变化，并通过测定颜色的强度来间接测定蛋白酶的活性。
常用的颜色反应法有Bradford法、Lowry法和BCA法等。
这些方法的原理相似，底物与蛋白酶作用后产生巯基体系或受酸水解而形成可着色反应产物，其颜色强度与酶活性成正比。
2.2 荧光法荧光法是一种直接测定蛋白酶活性的方法，其原理是利用荧光探针与蛋白酶反应后荧光强度的变化来测定酶活性。
荧光法具有高灵敏度、高选择性和实时监测的优点。
常用的荧光法有AF488-Casein法和AF488-Gelatin法等。
这些方法的原理是荧光探针与蛋白酶结合后产生荧光信号，可以通过荧光显微镜或荧光光度计进行测定。
2.3 质谱法质谱法是一种直接测定蛋白酶活性和浓度的方法，其原理是利用质谱仪对蛋白酶水解产物进行检测和定量分析。
质谱法具有高灵敏度、高分辨率和高通量的优点。
常用的质谱法有MALDI-TOF法和LC-MS法等。
这些方法的原理是将蛋白酶水解产物通过质谱仪分析和测定，可以得到酶活性和浓度的相关信息。
3. 实验方法和操作步骤3.1 颜色反应法3.1.1 Bradford法材料准备•Bradford试剂•蛋白质标准溶液•待测样品实验步骤1.准备一系列不同浓度的蛋白质标准溶液，浓度范围覆盖待测样品的浓度。
2.取一定量的标准溶液和样品，分别加入试管中。
实验4蛋白酶提取及其酶活的测定
实验4 蛋白酶提取及其酶活的测定一、实验目的1. 了解毛霉蛋白酶的特性和提取方法。
2. 掌握蛋白酶酶活测定的原理和方法。
二、实验原理毛霉蛋白酶是一种水溶性水解酶，可以用水或盐水直接抽提，也可以用缓冲液进行提取，从而得到其粗酶制剂。
蛋白酶具有水解蛋白质的能力，本实验采用酪蛋白为底物进行酶活的测定。
酶活定义为：在40℃，适宜pH（如pH7.0～7.5）条件下，1 min内水解酪蛋白产生1ug酪氨酸所需的酶量为1个蛋白酶活力单位。
酪氨酸的测定按下面的方法进行。
取适当稀释的粗酶液，先跟酪蛋白溶液混合，于40℃下酶解，然后加三氯醋酸（TCA）溶液终止反应并沉淀蛋白，离心取滤液（含水解产生的酪氨酸）加福林酚工作液（黄色）进行显色反应（在碱性条件下，磷钼酸与磷钨酸混合物可被酚类化合物还原而呈蓝色），然后在680nm处测定吸光度即可知道酪氨酸的浓度，从而推算出蛋白酶的活力。
三、实验试剂与仪器1. 材料毛霉固体发酵培养物（由前实验得到）。
2. 试剂2%酪蛋白溶液、0.4mol/L TCA、0.4 mol/L Na2CO3、0.3mol/LNaCl、福林酚工作液、pH7.2磷酸缓冲液等。
3. 仪器：水浴锅、722型分光光度计、试管、吸管、抽滤装置、离心机等。
四、实验步骤1. 粗酶制剂的制备取1瓶固体培养物加50mL的0.3mol/LNaCl溶液摇匀，于40℃水浴保温浸提1 h，然后抽滤，滤渣加不超过50mL体积的0.3mol/LNaCl溶液，重复提取一次，合并两次滤液定容到100mL，备用。
2. 酶促反应取酶液样品用蒸馏水作适当稀释后，按下表进行操作。
* 净E值＝样品平均E值－空白E值。
3. 酶活力计算在上述条件下，将每分钟水解酪蛋白释放1微克酪氨酸的酶量定义为一个蛋白酶活力单位。
蛋白酶活力＝（A/10）×4×N式中A——由样品测得的净E值，查标准曲线得相当的酪氨酸微克数。
10——反应时间10 min。
测定蛋白酶活力实验
测定蛋白酶活力实验一、实验目的1.加深了解酶活力的概念。
2.学习掌握测定蛋白酶活力的方法。
二、实验原理酶活力指酶催化某一特定反应的能力。
其大小可用在一定条件下酶催化反应进行一定时间后，反应体系中底物的减少量或产物的生成量来表示。
酶活力单位是表示酶活力大小的重要指标。
本实验规定酶活力单位(U)为一定条件下每分钟分解1μg 酪氨酸所需的酶量。
实验选用枯草杆菌蛋白酶水解酪蛋白产生酪氨酸的反应体系。
产物酪氨酸在碱性条件下与Folin-酚试剂反应生成蓝色化合物，该蓝色化合物在680nm 处有最大光吸收，其吸光值与酪氨酸含量呈正比。
因此通过测定一定条件下产物酪氨酸的含量变化，可计算出蛋白酶的活力。
三、仪器和试剂仪器:恒温水浴锅、分光光度计、试管及试管架、干燥滤纸、玻璃漏斗。
原料枯草杆菌蛋白酶：称取1g 枯草杆菌蛋白酶粉，用少量0.02mol/L，pH7.5磷酸缓冲液溶解并定容至100mL，震荡15分钟，使充分溶解，干纱布过滤，取滤液冰箱备用。
使用时视酶活力高低用缓冲液适当稀释。
试剂1. Folin-酚试剂：在2L 磨口回流瓶中加入钨酸钠(Na2WoO4. 2H2O)100g，钼酸钠(Na2WoO4. 2H2O)25g，蒸馏水700mL，85%磷酸50mL 以及浓盐酸100mL，充分混匀后，微火回流加热10小时。
再加入硫酸锂150g，蒸馏水50mL 和液溴数滴，摇匀后开口继续煮沸15min，以驱赶过剩的溴。
冷却后加蒸馏水定容至1000mL，过滤，溶液呈黄绿色，置于棕色试剂瓶中暗处贮藏。
使用前用标准NaOH 溶液、酚酞为指示剂标定酸度(约为2mol/L)，然后加水稀释至1mol/L，即可使用。
2. 0.2mol/L 盐酸溶液3. 0.04mol/L 氢氧化钠溶液4. 0.55mol/L 碳酸钠溶液5. 10%三氯乙酸溶液6. 0.02mol/LpH7.5磷酸缓冲液：称取磷酸氢二钠(Na2HPO4 . 12H2O)7.16g，用水定容至100mL(A 液)；称取磷酸二氢钠(Na2HPO4 .12H2O)3.12g，用水定容至100mL(B 液)。
蛋白酶活性的测定
实验四蛋白酶活力得测定一、实验目得1、了解蛋白酶活力测定得原理;2、掌握蛋白酶活力测定得方法。
二、实验原理蛋白酶在一定条件下不仅能够水解蛋白质中得肽键,也能够水解酰胺键与酯键,因此可用蛋白质或人工合成得酰胺及酯类化合物作为底物来测定蛋白酶得活力、本实验选用酪蛋白为底物,测定微生物蛋白酶水解肽键得活力。
酪蛋白经蛋白酶作用后,降解成相对分子质量较小得肽与氨基酸,在反应混合物中加入三氯醋酸溶液,相对分子质量较大得蛋白质与肽就沉淀下来,相对分子质量较小得肽与氨基酸仍留在溶液中,溶解于三氯醋酸溶液中得肽得数量正比于酶得数量与反应时间。
在２８0ｎm波长下测定溶液吸光度得增加,就可计算酶得活力。
三、实验试剂①微生物蛋白酶萃取液(0、01g/ml):称取１。
0ｇ酶制剂,加１00ｍl蒸馏水搅拌30min,在4℃下离心分离后,将上层清夜置于冰箱中保存,使用前稀释一定倍数;② 0。
０2mol/L磷酸盐缓冲液(ｐH7.5);③ 1％酪蛋白溶液:取1、0g酪蛋白,加10０ml 0。
2mｏl/L磷酸盐缓冲液(PＨ7。
５),加热并搅拌使它完全分散,然后置于冰箱中保存;④ 5%三氯醋酸(TCA)溶液。
四、实验步骤1、将5％TCA溶液与1％酪蛋白溶液在37℃下保温。
２、取四支1５ml具塞试管,分别标上记号A1、Ａ０、Ｂ1与B０、在A１与A ０试管中各吸入0、20ml酶液,在Ｂ１与B0试管中各吸入0.４0ml酶液,分别用0.2mｏl/L磷酸盐缓冲液定容至２、00ml。
在A0与B0试管中各吸入6.00ml5%三氯醋酸溶液,上述四支试管都置于37℃水浴中保温、3、在各试管中吸入2。
00mｌ1％酪蛋白溶液,在３7℃下保温10ｍin(准确计时)后,再向A1与Ｂ1试管中吸入6。
00ml５％三氯醋酸溶液。
4、将试管从水浴中取出,在室温下放置1h,用少量上清液润湿滤纸后过滤,保留滤出液。
5、在2８０ｎｍ波长下,分别以A0与B0滤液为空白,测定A1与B１滤液得吸光度。
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实验（内容）题目：蛋白酶产生菌的筛选及培养的优化
院系生命科学技术学院
专业生物技术
年级2015级生物技术1班专升本
蛋白酶产生菌的选育及发酵培养条件的优化
一、实验目的
1、学习从土壤中分离蛋白酶产生菌。
2、握分离纯化的方法，分离获得并纯化蛋白酶产生菌。
3、握正交优化的方法和步骤。
二、实验原理
许多细菌和霉菌产生蛋白酶，细菌中的芽孢杆菌是最常见的蛋白酶产生菌。
本实验将土壤样品悬液加热处理，杀死非芽孢细菌及其他微生物后进行划线分离得到芽孢杆菌，将其接种到奶粉培养平板并进行培养，根据奶粉平板的水解圈做初筛。
将初筛的蛋白酶产生菌接入产酶培养基振荡培养，测定蛋白酶的活力，最终得到产蛋白酶的芽孢杆菌。
也可直接将细菌接种到奶粉培养平板进行培养，分离筛选其他蛋白酶产生菌。
三、实验器材
1、材料：土壤样品
2、试剂：牛肉膏蛋白胨培养基及平板、奶粉培养基及平板、45mL 无
菌水（带玻璃珠）、芽孢染色液、 3、仪器及用具：紫外分光光度计、显微镜、恒温水浴锅、摇床、酒精灯、接种针、游标卡尺、无菌移液管、无菌试管、量筒、容量瓶、漏斗、试剂瓶、漏斗、载玻片、滤纸、擦镜纸。
四、实验步骤
（一）配制所需培养基
1、牛肉膏蛋白胨固体培养基：牛肉膏 0.5g，蛋白胨 1g，NaCl 0.5g，琼脂 1.5～2.0g，水 100ml，pH 7.2
2、奶粉培养基：牛肉膏 0.5g，蛋白胨 1g，NaCl 0.5g，琼脂 2.0g，水 100ml，pH 7.0～7.2 脱脂奶粉 3g，
3、牛肉膏蛋白胨液体培养基：牛肉膏 0.5g，蛋白胨 1g，NaCl 0.5g，水 100ml，pH 7.2
4、发酵培养基：葡萄糖6.0g,硝酸钠4.0g，磷酸二氢钾0.03g,碳酸钠0.1g,磷酸二氢钠0.4g加水100ml
（二）分离
1、采集土壤样品，用无菌制备1:10土壤悬液。
2、取1:10土壤悬液5 mL，注入已灭过菌的试管中，将此试管放入75～80℃水浴中热处理10min以杀死非芽孢细菌。
3、取加热处理过的土壤悬液100～200μL，涂布接种到牛肉膏蛋白胨培养平板，后将平板倒置，于30～32℃下培养24～48h.
4、对长出的单菌落进行编号，选择表面干燥、粗糙、不透明的菌落，挑取少许菌苔涂片，做芽孢染色，判断是否为芽孢杆菌。
（三）筛选
1、从判定为芽孢杆菌的菌落处，分别挑取少许菌苔，先接种奶粉斜面培养基，再转接奶粉培养基平板上，30～32℃下培养24～48小时，测定平板上菌台直径和水解圈的直径。
2、选择水解圈直径与菌落直径比值都较大的单菌落，接入产蛋白酶发酵培养基，30～32℃振荡培养48h,将发酵液过滤或离心，取上清液检测蛋白酶活力进行复筛。
（四）蛋白酶活性测定
采用Folin酚法，1ml原发酵液加2ml质量分数为0.5%的酪蛋
白液，在pH值7.0、37℃水浴15min，再用质量分数为10%的三氯乙酸灭活，然后取1ml上述反应液的离心上清液加1mlFolin-酚在
5mL0.55mol/L的Na2CO3的碱性条件下37℃水浴15min测650nm下的吸光值，以加灭活酶液的反应系统为空白。
取酶液1ml加入用PH6.8磷酸缓冲液配置的1%酪蛋白1ml，70℃恒温水浴15min，取水迅速加入2ml 0.5mol/L三氯乙酸（TCA蛋白变性剂）终止反应。
离心取上清1ml做7倍稀释，在275nm测定其紫外吸收值，取相同的粗酶液1ml，加入用PH6.8磷酸缓冲液配制的1%
酪蛋白1ml，同时加入2ml0.5mol/L三氯乙酸灭活后，在上述完全相同条件下每分钟水解产生1ug酪蛋白的所需的酶量即为1个酶活单位。
由酪蛋白标准曲线方程及酶活定义推得：酶活
E=(OD-0.0311)/0.0083×N 单位IU/mL
N:代表酶液的稀释倍数
（五）发酵条件的优化
出发菌株接种到不同初始条件的发酵培养基中摇床培养后测定蛋白酶活力以确定最佳蛋白酶产量及活力的培养条件。
正交实验法设定三个水平因素A.培养时间12h、24h、36h； B.初始pH7、7.5、8； C.装瓶量2ml、4ml、6ml
正交表设计
附录：实验分工及安排
党珍珍负责制备培养基以及各种所需的培养皿，试管等的灭菌
蔡晓晓负责采集土壤样品，制备悬液，进行分离
闫志文负责得到的菌株进行筛选
郭肖建筛选出的蛋白酶进行活性测定
共同进行发酵条件的优化
1.结果及分析
正交实验结果
根据最优组合再次培养理论上可得到比实验组更好的结果。