组培实验报告
植物组培实验报告
植物组培实验报告植物组培技术是指利用植物体细胞分裂和分化的能力,通过体外培养的方法,使其成为整株植物的过程。
该技术已经广泛应用于植物育种、遗传工程、植物繁殖等领域。
实验目的:本实验旨在研究植物组培技术对不同植物品种的影响,探究其在植物育种中的应用价值。
实验材料:本次实验选用了四种不同的植物品种,分别为玉米、小麦、水稻和大豆。
实验所需的试剂包括MS培养基、植物生长素、植物生长素和细胞分裂素等。
实验步骤:1.植物材料的准备将四种植物的种子经过消毒处理后,将其在无菌条件下播种在MS 培养基上。
2.植物细胞的分离将培养基上生长的植物幼苗取出,进行细胞分离。
将其放入含有植物生长素和细胞分裂素的液体培养基中,进行震荡培养。
3.植物组织的培养将分离出来的细胞放入含有植物生长素的液体培养基中,进行组织培养。
待组织生长出来后,再将其移植到含有植物生长素和细胞分裂素的液体培养基中,进行细胞分裂和分化。
4.植物的生长与繁殖将培养好的植物幼苗移植到含有适量营养物质的液体培养基中,进行生长。
当植物幼苗长大后,可以进行繁殖试验,检测组培植物在遗传性状上的变化。
实验结果:经过实验,我们发现不同植物品种对组培技术的适应性不同。
在四种植物品种中,水稻和大豆的组培效果最好,生长速度较快,成活率较高;而小麦的组培效果较差,生长速度较慢,成活率较低。
在遗传性状上,我们也发现组培植物与自然生长的植物有一定的差异,但并不影响其在植物育种中的应用。
结论:植物组培技术是一种高效、快速的植物育种方法。
通过本实验,我们发现植物品种对组培技术的适应性不同,需要根据具体品种加以调整。
虽然组培植物与自然生长的植物在遗传性状上存在差异,但并不影响其在植物育种中的应用。
植物组培技术的不断发展和完善,将会对植物育种和植物繁殖领域带来更多的变革。
组培实验的实验报告
一、实验名称植物组织培养二、实验目的1. 了解植物组织培养的基本原理和操作流程。
2. 掌握植物组织培养技术在植物繁殖、遗传改良和资源保护等方面的应用。
3. 培养实验操作能力和团队协作精神。
三、实验原理植物组织培养技术是利用植物细胞的全能性,通过无菌操作将植物组织(如茎尖、叶片、愈伤组织等)在特定的培养基上诱导分化,从而实现植物繁殖、遗传改良和资源保护等目的。
四、实验材料1. 植物材料:柳树茎尖、紫玉兰叶片。
2. 培养基:MS培养基、1/2MS培养基、1/4MS培养基。
3. 试剂:琼脂、蔗糖、葡萄糖、活性炭、硝酸铵、硝酸钠、磷酸二氢钾、硫酸镁、硼酸、氯化钙、氯化钾、氢氧化钠、氢氧化钾、盐酸、氯化钠、硫酸铁、硫酸锌、硫酸铜、抗坏血酸、维生素B6、吲哚丁酸、生长素、细胞分裂素等。
4. 实验器具:超净工作台、高压蒸汽灭菌器、培养皿、移液器、剪刀、镊子、酒精灯、酒精棉、无菌水等。
五、实验步骤1. 材料准备:将柳树茎尖和紫玉兰叶片洗净,用75%酒精消毒30秒,再用无菌水冲洗3次。
2. 培养基配制:按照实验要求,将不同浓度的MS培养基、1/2MS培养基和1/4MS培养基分别配制。
3. 接种:将消毒后的柳树茎尖和紫玉兰叶片接种到培养基上,每个培养基接种3个材料。
4. 培养条件:将接种后的培养基放入培养箱中,温度设置为25℃,光照强度为2000勒克斯,光照时间为12小时/天。
5. 观察记录:每隔7天观察一次培养材料的生长状况,记录其生长速度、颜色、形态等变化。
六、实验结果与分析1. 柳树茎尖培养:在MS培养基和1/2MS培养基上,柳树茎尖生长速度较快,颜色为绿色,叶片形状正常;在1/4MS培养基上,柳树茎尖生长速度较慢,颜色为淡绿色,叶片形状较小。
2. 紫玉兰叶片培养:在MS培养基和1/2MS培养基上,紫玉兰叶片生长速度较快,颜色为绿色,叶片形状正常;在1/4MS培养基上,紫玉兰叶片生长速度较慢,颜色为淡绿色,叶片形状较小。
组织培养实验报告
一、实验目的1. 掌握无菌操作的植物组织培养方法。
2. 通过配置MS培养基母液,掌握母液的配置和保存方法。
3. 通过诱导植物细胞形成愈伤组织,学习愈伤组织的建立方法。
4. 了解植物细胞通过分裂、增殖、分化、发育,最终长成完整再生植株的过程,加深对植物细胞全能性的理解。
二、实验原理植物组织培养是一种利用植物细胞的全能性,在人工条件下实现植物器官、组织或细胞再生为完整植株的技术。
其基本原理包括:1. 脱分化作用:原本已经分化停止生长的细胞,在人工培养基的诱导下,重新进入分裂状态,形成没有特定组织结构的细胞团,即愈伤组织。
2. 再分化作用:愈伤组织在一定条件下,可以分化为具有特定结构和功能的组织,如根、茎、叶等,最终形成完整的植株。
3. 植物激素:在组织培养过程中,植物激素如生长素(IAA)、细胞分裂素(CK)等起着关键作用,调节细胞分裂、分化和器官形成。
三、实验材料与仪器材料:1. 植物外植体:如叶片、茎段、芽等。
2. MS培养基母液:包括大量元素、微量元素、有机物、维生素和植物激素等。
3. 灭菌剂:如乙醇、HgCl2(或次氯酸钠)等。
仪器:1. 培养室2. 高压灭菌锅3. 水浴锅4. 解剖刀5. 三角烧瓶(100mL)6. 烧杯7. 量筒8. 培养皿9. 超净工作台10. 分析天平11. 镊子12. 剪刀13. 橡皮筋四、实验步骤1. 外植体消毒:将外植体放入含有乙醇、HgCl2(或次氯酸钠)的消毒液中浸泡5-10分钟,然后用无菌水冲洗干净。
2. 愈伤组织诱导:将消毒后的外植体接种到含有不同激素浓度和比例的MS培养基中,置于培养室内培养。
3. 愈伤组织继代培养:待愈伤组织形成后,将其转移到新的培养基中进行继代培养,以扩大愈伤组织数量。
4. 再分化培养:将愈伤组织转移到含有不同激素浓度和比例的培养基中,诱导其分化为根、茎、叶等器官。
5. 生根与移栽:待植物分化出根、茎、叶等器官后,将其移栽到土壤中,进行正常生长。
白菜组培实验报告(3篇)
第1篇一、实验简介实验名称:白菜组织培养实验目的:通过组织培养技术,了解白菜细胞在体外条件下的生长和分化规律,掌握植物组织培养的基本操作流程,为白菜的繁殖和育种提供技术支持。
实验时间:2021年10月1日至2021年11月30日实验地点:生物实验室实验材料:白菜种子、MS培养基、蔗糖、琼脂、活性炭、植物激素(生长素和细胞分裂素)、无菌水、无菌滤纸、消毒液等。
二、实验方法1. 实验材料准备(1)将白菜种子用消毒液浸泡消毒,然后用无菌水冲洗干净。
(2)准备MS培养基,加入适量的蔗糖和琼脂,溶解后倒入无菌培养皿中,制成固体培养基。
(3)将活性炭加入培养基中,以提高培养基的通气性。
2. 细胞诱导(1)将消毒后的白菜种子接种在固体培养基上,置于光照培养箱中培养。
(2)定期观察白菜种子在培养基上的生长情况,记录细胞生长、分化及死亡情况。
3. 细胞分化(1)待白菜种子长出愈伤组织后,将其转移到含有不同浓度植物激素的培养基上,观察愈伤组织分化情况。
(2)统计不同激素浓度下白菜愈伤组织的分化率。
4. 根芽分化(1)选取分化效果较好的愈伤组织,将其转移到含有生长素和细胞分裂素的培养基上,观察根芽分化情况。
(2)统计不同激素浓度下白菜根芽的分化率。
5. 实验数据统计与分析(1)记录白菜种子在培养基上的生长情况,包括细胞生长、分化及死亡情况。
(2)记录不同激素浓度下白菜愈伤组织的分化率及根芽的分化率。
(3)运用统计学方法对实验数据进行处理和分析。
三、实验结果与分析1. 细胞生长与分化在实验过程中,白菜种子在培养基上生长良好,细胞分裂旺盛,形成了愈伤组织。
在含有植物激素的培养基上,愈伤组织分化效果较好,细胞分化成根、芽、茎等器官。
2. 愈伤组织分化在实验中,不同激素浓度对白菜愈伤组织的分化影响显著。
当植物激素浓度适中时,愈伤组织分化效果较好,分化率为85%。
当激素浓度过高或过低时,愈伤组织分化效果较差,分化率分别为50%和60%。
组培实习工作报告总结5篇
组培实习工作报告总结5篇组培实习工作报告总结5篇实习可以获得适当的经济收入,改善经济状况,从而可以把实习的精力放在注重成长上。
下面给大家分享一些关于组培实习工作报告总结5篇,希望能够对大家有所帮助。
组培实习工作报告总结(精选篇1)转眼间的时间,近四个月的幼师实习就这么过去了。
这四个月在幼儿园教师的实习岗位上面自己是真的学习到了许多知识的,也体会到了不一样的感受,这是跟校园里面体会到的截然不同的一种感受。
这四个月的幼师工作和新环境的体验,让我飞速地成长了,能力上面,认识上面和责任上面都是在变化着,而且是在朝着积极的方面在变化。
现在将我这段时间有幼师实习中的工作做一个总结:作为一名幼师专业的学生,对于幼教工作的认识了解并不深,因为都是停留在理论认识上面,没有具体操作过。
但是通过这一次的实习,让我认识到我们要从事幼师工作,必须要尽到自己责任,我们的工作必须是从学生的健康成长上出发的,必须要关注他们的身体、心里双重的发展。
所以通过这一次的实习,我知道了在幼师工作中,我们对待在幼儿园学习的学生,我们不仅仅要关注他们的身体是否健康安全,我们还需要关注他们的心理是否开心,要注意调节他们的内心状况。
还有就是我们做幼儿教育的时候,不仅仅要教会他们知识,更是要教会他们常识,在幼儿园里面,对待孩子我们不仅仅要告诉他们认字、识图,更是要帮助他们学会生活习惯,比如要教会他们自己的事情自己做,比如自己的铅笔用完了要学会自己换新的,而不是一直在那等待或者哭让老师来帮忙弄,虽然哭着的小孩子挺让人怜惜心疼的,但是我也清楚我帮忙也只能帮一时,终究还是要靠他们自己的。
还有就是他们吃饭前和吃饭后,以及上完洗手间了,都必须要洗手,这是告诉他们要注意个人卫生,要有好的文明素质才行。
上面是工作的一些认识,下面总结下个人的成长:因为之前都是再以学生的角色在学习生活着,所以进入实习生活中的时候,都是非常不适应的,一下子进入了一个新的环境。
之前的自己习惯了依赖别人,但是到了工作当中,大家都在忙于自己的事情,无暇顾及我,所以我只能坚强起来,一步步地学习。
侧芽组培实验报告(3篇)
第1篇一、实验目的1. 掌握植物组织培养的基本原理和操作技术。
2. 学习侧芽诱导、增殖和生根的实验方法。
3. 研究不同培养基配比对侧芽生长的影响。
二、实验原理植物组织培养是利用植物细胞的全能性,通过离体培养的方式,使植物细胞再生为完整植株的过程。
侧芽组培是植物组织培养的一种方法,通过诱导植物侧芽的生长和增殖,实现快速繁殖。
三、实验材料与仪器1. 实验材料:- 植物材料:选取具有较强侧芽生长能力的植物(如柑橘、葡萄等)。
- 试剂:植物激素(如吲哚乙酸、吲哚丁酸、细胞分裂素等)、抗生素、琼脂、蔗糖等。
- 容器:无菌培养皿、试管、剪刀、镊子等。
2. 实验仪器:- 紫外线消毒灯、超净工作台、恒温水浴锅、显微镜、酒精灯等。
四、实验方法1. 侧芽诱导:- 将植物材料表面消毒后,切取侧芽作为外植体。
- 将外植体接种到含有不同激素浓度的培养基上,进行诱导培养。
- 观察侧芽的生长情况,筛选出诱导效果较好的培养基。
2. 侧芽增殖:- 将诱导出的侧芽转移到含有不同激素浓度的增殖培养基上。
- 定期更换培养基,观察侧芽的增殖情况。
- 筛选出增殖效果较好的培养基。
3. 侧芽生根:- 将增殖后的侧芽转移到含有生根激素的培养基上。
- 观察侧芽的生根情况,筛选出生根效果较好的培养基。
4. 培养基配比:- 通过实验,研究不同激素浓度、培养基配方对侧芽生长的影响。
五、实验结果与分析1. 侧芽诱导:- 经过实验,我们发现吲哚丁酸(IBA)和细胞分裂素(CTK)对侧芽诱导效果较好,最佳浓度为1mg/L。
- 在此条件下,诱导出的侧芽生长速度快,形态正常。
2. 侧芽增殖:- 经过实验,我们发现吲哚乙酸(IAA)和细胞分裂素(CTK)对侧芽增殖效果较好,最佳浓度为0.5mg/L。
- 在此条件下,增殖后的侧芽数量较多,生长速度快。
3. 侧芽生根:- 经过实验,我们发现吲哚丁酸(IBA)对侧芽生根效果较好,最佳浓度为1mg/L。
- 在此条件下,生根后的侧芽根系发达,生长速度快。
组培实验报告
一、实验简介实验名称:植物组织培养实验目的:通过植物组织培养技术,了解植物细胞生长、分化和再生的过程,掌握组培技术的操作方法,并应用于植物繁殖和遗传改良。
二、实验原理植物组织培养是利用植物细胞的全能性,通过特定的培养基和外界条件,使植物组织在体外进行生长、分化和再生,最终形成完整的植株。
该技术广泛应用于植物繁殖、遗传改良、基因工程等领域。
三、实验材料与仪器1. 实验材料:植物外植体(如叶片、茎段、愈伤组织等)培养基(MS培养基、改良MS培养基等)诱导培养基(1/2MS培养基、添加生长调节剂的培养基等)细菌培养基(如牛肉膏蛋白胨培养基)灭菌剂(如75%酒精、1%次氯酸钠溶液)其他:超净工作台、接种针、酒精灯、移液器、培养皿、培养箱等2. 实验仪器:电子天平高压蒸汽灭菌器移液器超净工作台培养箱显微镜四、实验步骤1. 材料预处理:选择健康、无病虫害的植物材料,用流水冲洗干净。
将外植体浸泡在1%次氯酸钠溶液中消毒5-10分钟,然后用无菌水冲洗3-5次。
将消毒后的外植体用无菌滤纸吸干水分。
2. 培养基制备:称取适量的培养基粉末,加入少量蒸馏水溶解。
将溶解后的培养基过滤除菌,加入适量的琼脂和生长调节剂。
将培养基倒入培养皿中,待凝固后备用。
3. 外植体接种:在超净工作台中,用无菌接种针将外植体接种到培养基上。
每个外植体接种3-5个,确保接种密度适宜。
4. 培养与观察:将接种后的培养皿放入培养箱中,控制适宜的温度、光照和湿度。
定期观察外植体的生长情况,记录愈伤组织形成、芽生长和根生长等过程。
5. 培养基调整与继代培养:当外植体形成愈伤组织或芽生长到一定长度时,可进行培养基调整和继代培养。
将愈伤组织或芽切割成小块,重新接种到新的培养基上。
根据生长情况,适时调整培养基成分和生长调节剂浓度。
五、实验结果与分析1. 愈伤组织形成:在适宜的培养基和条件下,外植体可形成愈伤组织。
愈伤组织是细胞增殖和分化的基础,是组织培养成功的关键。
茎段组培实验报告(3篇)
第1篇一、实验目的本实验旨在通过植物组织培养技术,以茎段为外植体,探究其再生能力和快速繁殖方法,为胡桃楸的遗传改良和种苗繁育提供技术支持。
二、实验材料1. 外植体:胡桃楸带芽茎段(长度约1-2厘米,直径约0.5-1厘米)。
2. 培养基:MS培养基(改良斯诺培养基)。
3. 激素:生长素(NAA)、细胞分裂素(KT)。
4. 灭菌剂:75%酒精、0.1%HgCl2。
5. 仪器设备:高压蒸汽灭菌锅、超净工作台、光照培养箱、剪刀、镊子等。
三、实验方法1. 外植体消毒:将茎段用流水冲洗30分钟,然后用75%酒精浸泡30秒,再用无菌水冲洗3次,最后用0.1%HgCl2浸泡10分钟,再用无菌水冲洗5次。
2. 培养基配制:将MS培养基加入蔗糖(30g/L)、琼脂(6.5g/L)和活性炭(1g/L),调pH值至5.8,高压蒸汽灭菌30分钟。
3. 外植体接种:将消毒后的茎段切成0.5-1厘米的段,接种到含有不同激素浓度(NAA 0.1mg/L、0.5mg/L、1mg/L,KT 0.1mg/L、0.5mg/L、1mg/L)的培养基中。
4. 培养条件:将接种后的培养皿放入光照培养箱,光照强度为2000-3000勒克斯,光照时间为12小时/天,温度为25-28℃。
5. 观察记录:每隔一定时间观察外植体的生长情况,包括芽的生长、生根情况等,并记录数据。
四、实验结果与分析1. 外植体生长情况在实验过程中,外植体在不同激素浓度下的生长情况如下:(1)NAA 0.1mg/L、0.5mg/L、1mg/L组:芽生长缓慢,生根率较低。
(2)KT 0.1mg/L、0.5mg/L、1mg/L组:芽生长较快,生根率较高。
(3)NAA 0.1mg/L+KT 0.1mg/L组:芽生长较快,生根率较高。
2. 外植体生根情况在实验过程中,外植体的生根情况如下:(1)NAA 0.1mg/L、0.5mg/L、1mg/L组:生根率较低,根生长较慢。
(2)KT 0.1mg/L、0.5mg/L、1mg/L组:生根率较高,根生长较快。
组培社会实践报告
一、前言随着生物技术的不断发展,植物组织培养技术已成为现代生物技术的重要组成部分。
通过组培技术,我们可以实现植物繁殖的快速、高效和大量化,为农业生产和生物研究提供了有力支持。
为了更好地了解和掌握组培技术,我们组织了一次组培社会实践,现将实践过程及成果报告如下。
二、实践目的1. 了解组培技术的基本原理和方法;2. 掌握组培操作流程,提高实际操作能力;3. 通过实践,培养团队协作精神,提高综合素质。
三、实践内容1. 组培基础知识学习在实践开始前,我们首先学习了组培技术的基本原理和方法。
通过查阅资料和课堂讲解,我们了解到组培技术是利用植物细胞的全能性,通过特定的培养基和环境条件,使植物组织再生出完整植株的一种技术。
2. 实验操作(1)外植体选取与消毒在实验过程中,我们选取了番茄作为研究对象。
首先,从市场购买新鲜的番茄果实,取出种子,进行表面消毒。
消毒剂为70%酒精和5%次氯酸钠溶液,消毒时间为30秒。
(2)愈伤组织诱导将消毒后的种子接种到MS培养基上,置于光照培养箱中培养。
在诱导过程中,我们观察愈伤组织的形成情况,记录愈伤组织的颜色、质地和生长速度。
(3)愈伤组织分化将愈伤组织接种到分化培养基上,培养条件与诱导培养基相同。
分化过程中,我们观察愈伤组织分化出芽和根的情况,记录分化成功率。
(4)植株再生与移栽将分化出的芽和根移植到营养土中,进行移栽。
在移栽过程中,我们注意保持土壤湿润,适当遮阴,以提高移栽成活率。
3. 数据分析通过对实验数据的分析,我们得出以下结论:(1)番茄种子消毒后,愈伤组织诱导成功率较高,约为80%;(2)愈伤组织分化成功率约为70%,其中芽分化成功率约为60%,根分化成功率约为40%;(3)移栽成活率约为60%。
四、实践总结1. 通过本次实践,我们掌握了组培技术的基本原理和方法,提高了实际操作能力;2. 在实验过程中,我们学会了团队合作,共同解决问题,培养了良好的团队精神;3. 通过实践,我们认识到植物组织培养技术在农业生产和生物研究中的重要作用。
组培实验报告
篇一:植物组织培养实验报告植物组织培养实验报告一、实验目的1.掌握无菌操作的植物组织培养方法;2.通过配置ms培养基母液,掌握母液的配置和保存方法; 3.通过诱导豌豆根、茎、叶形成愈伤组织学习愈伤组织的建立方法;4.通过诱导豌豆茎、叶形成愈伤组织学习愈伤组织的建立方法; 5.了解植物细胞通过分裂、增殖、分化、发育, 最终长成完整再生植株的过程, 加深对植物细胞的全能性的理解。
二、实验原理(一)植物组织培养植物组织培养是把植物的器官,组织以至单个细胞,应用无菌操作使其在人工条件下,能够继续生长,甚至分化发育成一完整植株的过程。
植物的组织在培养条件下,原来已经分化停止生长的细胞,又能重新分裂,形成没有组织结构的细胞团,即愈伤组织。
这一过程称为“脱分化作用”,已经“脱分化”的愈伤组织,在一定条件下,又能重新分化形成输导系统以及根和芽等组织和器官,这一过程称“再分化作用”。
(二)植物细胞的全能性植物细胞的全能性即是每个植物的本细胞或性细胞都具有该植物的全套遗传基因,在一定培养条件下每个细胞都可发育成一个与母体一样的植株。
(三)组织的分化与器官建成外植体诱导出愈伤组织后,经过继代培养,可以在愈伤组织内部形成一类分生组织即具有分生能力的小细胞团,然后,再分化成不同的器官原基。
有些情况下,外植体不经愈伤组织而直接诱导出芽、根。
(四)培养基的组成培养基中各成分的比例及浓度与细胞或组织的生长或分化所需要的最佳条件相近,似成功地使用该培养基进行组织培养的主要条件。
营养培养基一般由无机营养、碳源和能源、维生素、植物激素(生长调节剂)和包括有机氮、酸和复杂物质的添加剂组成。
三、实验器材高压灭菌锅、超净工作台、烘箱、培养室镊子、记号笔、橡皮筋、玻璃器皿、三角烧瓶、烧杯、量筒、剪刀、棉塞、绳子、牛皮纸、酒精灯、喷雾器等。
四、实验材料豌豆种子五、实验药品药品、70% 酒精、 0.1% 升汞、ms培养基、蒸馏水、naoh、 84消毒液、蔗糖、琼脂等。
组培实验的实习报告
一、实习背景随着生物技术的发展,植物组织培养技术作为一种无性繁殖的新技术,在农业、林业、医药等领域得到了广泛应用。
为了提高自身实践能力,我参加了为期一个月的组培实验实习。
本次实习旨在通过实践操作,了解植物组织培养的基本原理、技术流程以及实验方法,提高自己在植物组织培养方面的实际操作技能。
二、实习内容1. 实验目的(1)掌握植物组织培养的基本原理和实验技术;(2)了解植物组织培养在农业生产、医药研究等方面的应用;(3)提高自身动手操作能力和团队协作精神。
2. 实验材料(1)植物材料:柳树、紫玉兰、栀子花等;(2)培养基:MS培养基、1/2MS培养基、改良培养基等;(3)仪器设备:超净工作台、高压蒸汽灭菌器、培养箱、剪刀、镊子、解剖针等。
3. 实验方法(1)植物材料的采集与处理:选取生长健康的柳树、紫玉兰、栀子花等植物,采集其茎段、叶片等组织,进行消毒处理。
(2)外植体培养:将消毒处理后的外植体接种于MS培养基中,置于培养箱中培养。
(3)培养基的配制与灭菌:根据实验要求,配制不同成分的培养基,进行高压蒸汽灭菌。
(4)观察与记录:定期观察植物组织培养的生长状况,记录培养过程中的各项数据。
三、实习过程1. 实习初期在实习初期,我主要学习了植物组织培养的基本原理和实验技术。
通过查阅资料和老师的讲解,我对植物组织培养有了初步的了解。
在实验过程中,我严格按照操作规程进行操作,确保实验结果的准确性。
2. 实习中期在实习中期,我逐渐掌握了植物组织培养的实验技术。
在老师的指导下,我学会了培养基的配制、灭菌、接种等操作。
同时,我还参与了植物材料的采集、处理等工作。
在实验过程中,我遇到了一些问题,如外植体褐化、培养基污染等,通过查阅资料和请教老师,我找到了解决问题的方法。
3. 实习后期在实习后期,我参与了植物组织培养的整个流程。
从外植体的采集、处理到接种、培养,我都亲身体验了每个环节。
在实验过程中,我积累了丰富的实践经验,提高了自己的动手操作能力。
组培实验报告结果(3篇)
第1篇一、实验简介实验名称:植物组织培养实验实验目的:通过植物组织培养技术,探究植物细胞分裂、分化和再生能力,掌握植物组织培养的基本操作流程,并观察培养过程中植物组织的生长变化。
实验材料:水稻、玉米、小麦等植物叶片、茎段、愈伤组织等。
实验方法:采用植物组织培养技术,对植物叶片、茎段、愈伤组织进行体外培养,观察其在不同培养基、激素浓度、光照条件下的生长和分化情况。
二、实验结果与分析1. 培养基对植物组织生长的影响实验结果表明,不同培养基对植物组织的生长和分化具有显著影响。
其中,MS培养基(Murashige and Skoog培养基)对植物组织的生长和分化效果较好,愈伤组织诱导率和再生植株数量较高。
(1)MS培养基在MS培养基中,水稻叶片愈伤组织诱导率为80%,玉米叶片愈伤组织诱导率为75%,小麦叶片愈伤组织诱导率为70%。
再生植株数量分别为:水稻40株,玉米30株,小麦20株。
(2)改良MS培养基在改良MS培养基中,水稻叶片愈伤组织诱导率为70%,玉米叶片愈伤组织诱导率为65%,小麦叶片愈伤组织诱导率为60%。
再生植株数量分别为:水稻25株,玉米20株,小麦15株。
2. 激素对植物组织生长的影响实验结果表明,激素对植物组织的生长和分化具有显著影响。
其中,生长素(IAA)和细胞分裂素(KT)对植物组织的生长和分化效果较好。
(1)生长素和细胞分裂素浓度对愈伤组织诱导率的影响当生长素和细胞分裂素的浓度分别为0.5mg/L和0.1mg/L时,水稻叶片愈伤组织诱导率达到最高,为80%。
玉米叶片愈伤组织诱导率达到最高,为75%。
小麦叶片愈伤组织诱导率达到最高,为70%。
(2)生长素和细胞分裂素浓度对再生植株数量的影响当生长素和细胞分裂素的浓度分别为0.5mg/L和0.1mg/L时,水稻再生植株数量为40株,玉米再生植株数量为30株,小麦再生植株数量为20株。
3. 光照条件对植物组织生长的影响实验结果表明,光照条件对植物组织的生长和分化具有显著影响。
组培实验报告食管
一、实验简介实验名称:食管组织培养实验目的:通过食管组织培养实验,了解食管细胞的生长和分化规律,掌握组织培养技术,为食管疾病的研究和药物筛选提供体外模型。
二、实验材料与设备1. 实验材料:- 人食管组织样本- DMEM培养基(含10%胎牛血清)- 0.25%胰蛋白酶- 10%新生牛血清- 灭菌的细胞培养皿- 灭菌的移液枪- CO2培养箱- 光学显微镜2. 实验设备:- 超净工作台- 电子天平- 高速离心机- 恒温培养箱- 离心机三、实验方法1. 组织块制备- 将新鲜的人食管组织样本用无菌手术刀切成1mm×1mm×1mm的小块。
- 将组织块用无菌生理盐水清洗,去除血块和杂质。
- 将清洗后的组织块用0.25%胰蛋白酶消化5分钟,用无菌吸管轻轻吹打,使组织块分散成单个细胞。
2. 细胞培养- 将消化后的细胞悬液以1×10^5个细胞/毫升的密度接种于细胞培养皿中。
- 将培养皿放入CO2培养箱中,37℃、5%CO2条件下培养。
- 每天更换新鲜培养基,观察细胞生长情况。
3. 细胞传代- 当细胞铺满培养皿底部时,用0.25%胰蛋白酶消化细胞,制成细胞悬液。
- 将细胞悬液以1:2的比例传代培养。
4. 细胞形态观察- 利用光学显微镜观察食管细胞的形态变化,记录细胞生长、分化情况。
四、实验结果1. 细胞生长- 在培养过程中,食管细胞呈贴壁生长,细胞形态呈梭形、多边形,细胞间连接紧密。
- 随着培养时间的延长,细胞数量逐渐增多,细胞密度逐渐增大。
2. 细胞分化- 通过观察食管细胞的形态变化,发现细胞在体外培养过程中,可分化为食管黏膜细胞、食管腺细胞和食管肌细胞。
- 分化后的细胞具有特定的功能,如分泌黏液、分泌消化酶和收缩等功能。
五、实验结论通过本实验,我们成功培养了人食管细胞,并观察了细胞的生长和分化过程。
实验结果表明,食管细胞在体外培养条件下可以生长、增殖和分化,为食管疾病的研究和药物筛选提供了体外模型。
樱桃实验室组培实验报告(3篇)
第1篇一、实验目的本实验旨在通过植物组织培养技术,实现对樱桃树苗的快速繁殖和优良品种的培育。
通过无菌操作,观察和记录樱桃组培过程中的生长情况,分析影响组培效果的因素,为樱桃树苗的产业化生产提供技术支持。
二、实验原理植物组织培养技术是利用植物体细胞的全能性,通过离体培养的方式,使植物组织在适宜的培养基和条件下生长、分化,最终形成完整的植株。
本实验采用外植体(樱桃茎段)进行组培,通过调节培养基成分、激素比例和环境条件,诱导外植体脱分化、再分化,形成植株。
三、实验材料与方法1. 实验材料- 樱桃茎段:选择生长健壮、无病虫害的樱桃枝条,剪成长约2-3cm的小段。
- 培养基:MS培养基(添加植物生长激素:NAA 0.5mg/L、BA 1.0mg/L)。
- 消毒剂:70%酒精、无菌水、氯化汞。
- 其他试剂:琼脂、葡萄糖、维生素等。
2. 实验方法(1)外植体消毒:将樱桃茎段剪成约2-3cm的小段,用70%酒精消毒30秒,再用氯化汞消毒5分钟,最后用无菌水冲洗5-10分钟。
(2)接种:将消毒后的樱桃茎段接种到MS培养基中,每个培养基接种3个茎段。
(3)培养条件:将接种后的培养基放入恒温培养箱中,温度控制在25±2℃,光照强度为2000-3000lx,光照时间为12小时/天。
(4)观察记录:每隔一周观察并记录外植体的生长情况,包括愈伤组织形成、芽苗生长、生根等。
四、实验结果与分析1. 外植体生长情况在实验过程中,外植体表现出不同的生长情况。
部分外植体在培养基中形成了愈伤组织,并逐渐分化出芽苗;部分外植体则生长缓慢,甚至死亡。
2. 愈伤组织形成愈伤组织形成是组培成功的关键。
实验结果显示,添加NAA和BA的MS培养基有利于愈伤组织的形成。
3. 芽苗生长芽苗的生长速度与培养基成分、激素比例和环境条件密切相关。
实验结果表明,适宜的培养基成分、激素比例和环境条件有利于芽苗的生长。
4. 生根生根是组培过程中另一个重要的环节。
组培综合实验报告
一、实验简介实验名称:组培综合实验实验目的:通过本实验,了解组织培养的基本原理和操作流程,掌握植物组织培养技术,并应用于植物繁殖和育种。
二、实验原理植物组织培养是利用植物细胞的全能性,通过离体培养的方法,使植物细胞或组织在人工控制的环境下生长、发育,最终形成完整的植株。
本实验主要涉及以下原理:1. 细胞全能性:植物细胞具有全能性,即具有发育成完整植株的潜力。
2. 培养基:培养基是植物组织培养的基础,提供植物生长所需的营养物质、激素等。
3. 灭菌:灭菌是防止微生物污染的关键环节,保证培养过程的顺利进行。
4. 光照:光照是植物进行光合作用的必要条件,有利于植物生长。
三、实验材料与仪器1. 材料:(1)植物材料:选用健康、无病虫害的植物器官或组织。
(2)培养基:MS培养基、1/2MS培养基等。
2. 仪器:(1)超净工作台:用于无菌操作。
(2)接种针:用于接种植物材料。
(3)培养箱:用于培养植物材料。
(4)显微镜:用于观察植物细胞形态。
(5)剪刀、镊子、酒精灯、烧杯等。
四、实验步骤1. 材料准备:选取健康、无病虫害的植物器官或组织,用自来水冲洗干净,然后用无菌水浸泡一段时间。
2. 灭菌:将准备好的植物材料放入70%酒精中浸泡30秒,然后用无菌水冲洗干净,再用0.1%氯化汞溶液浸泡5分钟,最后用无菌水冲洗干净。
3. 接种:将灭菌后的植物材料用接种针接种到培养基上。
4. 培养基配制:根据实验需求,配制MS培养基或1/2MS培养基。
5. 培养过程:将接种后的培养基放入培养箱中,控制温度、光照等条件,观察植物材料的生长情况。
6. 观察与记录:定期观察植物材料的生长情况,记录生长状态、植株高度、叶片数量等。
7. 数据分析:对实验数据进行整理、分析,得出结论。
五、实验结果与分析1. 植物材料在培养基上的生长情况良好,部分材料分化出芽和根。
2. 通过观察和记录,发现不同植物材料的生长速度和分化能力存在差异。
3. 分析实验数据,得出以下结论:(1)植物组织培养技术可以成功应用于植物繁殖和育种。
组织培养_实验报告
一、实验目的1. 掌握无菌操作的基本技能,了解组织培养的基本原理。
2. 学习植物组织培养的具体操作步骤,包括外植体消毒、接种、培养及观察。
3. 了解植物细胞全能性在组织培养中的应用。
4. 分析实验过程中可能出现的问题及解决方法。
二、实验原理植物组织培养是利用植物细胞的全能性,通过在人工控制的条件下,将植物器官、组织或细胞诱导分化成完整植株的过程。
实验中,通常选用茎尖、叶片、愈伤组织等作为外植体,通过无菌操作,在含有植物激素和营养物质的人工培养基上培养,使外植体脱分化形成愈伤组织,再分化形成根、茎、叶等器官,最终发育成完整植株。
三、实验材料与仪器材料:1. 外植体:选取健康植物叶片、茎尖等。
2. 培养基:MS培养基、1/2MS培养基、诱导培养基等。
3. 植物激素:2,4-D、NAA、6-BA等。
4. 无菌器械:手术刀、镊子、剪刀、酒精灯、无菌培养皿等。
仪器:1. 高压灭菌锅2. 超净工作台3. 培养箱4. 显微镜四、实验步骤1. 外植体消毒:将外植体放入70%酒精中浸泡30秒,然后用无菌水冲洗3次,再放入1%氯化汞溶液中浸泡5-10分钟,最后用无菌水冲洗5-6次。
2. 外植体接种:将消毒后的外植体剪成小块,接种到诱导培养基上,每块外植体接种3-5块。
3. 培养:将接种后的培养皿放入培养箱中,在适宜的温度、光照和湿度条件下培养。
4. 观察与记录:定期观察外植体的生长情况,记录愈伤组织的形成、器官分化等过程。
五、实验结果与分析1. 愈伤组织形成:经过一段时间培养,外植体表面开始出现愈伤组织,颜色逐渐变深。
2. 器官分化:愈伤组织在适宜的激素浓度和条件下,可以分化出根、茎、叶等器官。
3. 植株再生:通过进一步培养,分化出的器官可以发育成完整植株。
六、讨论与总结1. 无菌操作的重要性:无菌操作是组织培养成功的关键,可以有效防止细菌、真菌等微生物的污染。
2. 植物激素的作用:植物激素在组织培养中起着重要作用,可以调控细胞的分裂、分化和发育。
组培个人社会实习报告总结范例五篇
组培个人社会实习报告总结范例五篇组培实习总结1:园艺组织培养实习这个暑假,学校给我们布置了一项任务,就是参加一次专业社会实践,我们观赏园艺专业的实践内容就是到当地园林部门进行了解、访问、索取材料,以及到园艺企事业部门参加社会实践,其中包括调查本行业生产状况和发展前景;了解行业对园艺人才的需求(数量、素质、业务能力等),时间不少于2周。
当得知这次暑假要进行社会实践时,我的心情很是兴奋,因为想到暑假过后,我就即将成为一名大三的学生了,为了能够在不久的将来从容地走上工作岗位,我决定要好好借这次实践的机会,多锻炼自己的动手能力和充实自己的基本专业知识。
通过联系,我有幸来到了厦门市园林植物园进行社会实践。
厦门植物园是以园林风景区建设为主体,具有植物科研科普、旅游服务、园林工程和绿化苗木生产等多功能的综合性植物园,以植物引种驯化、种质资源保护和开发利用为主要研究内容;是植物多样性保护和引种驯化的重要基地,植物学现场教学的理想场地。
也是进行科学普及教育、提高民众文化素养,以及旅游和休憩的场所。
植物园已建成的专类园(区)有13个,较有特色和优势的专类园(区)是:沙生植物区、棕榈植物区、藤本植物区、三角梅(市花)园、南洋杉植物区、苏铁植物区、竹类植物区、雨林植物区等。
实习一开始,在植物园一位见多识广的分类专家带领下,我与其他几位来自不同学校的实习生一同参观了每一个专类园,在这个汇集了6000多种形态各异植物的植物王国里,我们边走边认,一天下来,便认识了许多以前没有接触过的植物,有以观赏为目的的:如观花的美蕊花、紫蝉、蔷薇等;观叶的旅人蕉、变叶木、花叶良姜等;观果的吊瓜树、腊肠树等;还有松杉园中姿态各异的金钱松、雪松、落羽杉、活化石银杏等裸子植物;竹径中高低错落、婀娜多姿的毛竹、斑竹、佛肚竹等竹类植物;棕榈岛中充满南国风情的大王椰子、短叶鱼尾葵、加纳里海枣等棕榈科植物;百花厅中清新美丽的王莲、荷花、睡莲等水生植物;以保护和展示为目的的辣木、苦楝等乡土树种;以及可以作为经济作物的如糖棕、油棕、伊拉克蜜枣等植物……种类多到令我的眼睛目不暇接,感觉就像是好好地上了一堂观赏植物认种课,真可谓获益良多。
组培实习报告总结(精选7篇)
组培实习报告总结(精选7篇)工作总结主体部分常见的结构形态有三种。
要根据实际需要选择好。
你会写组培实习报告总结吗?下面小编给大家带来组培实习报告总结,希望大家喜欢!组培实习报告总结(篇1)我在__小学进行了一个多月的教育实习。
学高为师,身正为范,在这一个月里,作为一名实习教师,我坚持以教师身份严格要求自己,处处注意自己的言行和仪表,热心爱护实习学校的学生,本着对学生负责的态度尽全力做好班主任及教学的每一项工作;同时作为一名实习生,能够遵守实习学校的规章制度,尊重实习学校领导和老师,虚心听取他们的指导意见,并且和其他实习生一起团结合作完成实习学校给予我们的任务。
在这期间,通过理论与实践的结合、与学校、家长的沟通,进一步提高了我的教育技能,尤其是观察、分析和解决问题的实际工作能力。
本次教育实习的基本内容包括三部分:课堂教学、班主任工作和教育调查。
一、基本情况如下:1.课堂教学:听课60节,完成教案数为15份,上课节数为20节,其中新授课9节,复习课1节,练习课10节。
2.班主任工作:组织一次主题为“人月团圆,和谐小北”的中秋班会和一次“矛盾出现了,怎么办?”的团体心理活动课,取得了不错的效果。
3.教育报告;完成一份教育实习论文。
二、具体情况:三年的大学理论学习,各种各样的教育理论冲击着我的脑袋,我曾感到迷茫和无助,但通过这次实习,很好的将在课堂上学到的理论运用在实践中,在实践中筛选、磨砺出适合自己的理论指导,给我以后的教学工作指明的发向。
首先,要认真在备课。
第一天实习,黄老师就建议我们,作为新老师,在备课时,可以采取集体备课,集体设计教案,制作课件,集智慧之所长。
在备课时,不要过于追求形式上的多样性。
备课前既要备教材要备学生。
熟读教材、尊重教材,将教材中透漏出的信息传递给学生。
备课时的要结合学生的认知水平将教学重点和难点用教材语言用学生能读懂的语言简明扼要地呈现给学生。
同时上课前一定熟悉教案,反复试讲,理顺教学思路,从整体上把握教学设计的框架,提高教学德条理性和逻辑感染力,此外也要确定教学细节,尤其是新老师,避免上课时由于经验不足,无法应对各种状况外的事情。
组培实验报告肝
一、实验简介实验名称:肝细胞体外培养实验目的:1. 掌握肝细胞体外培养的基本技术。
2. 研究肝细胞在体外生长、分化的规律。
3. 为肝细胞疾病的研究和肝细胞移植提供技术支持。
二、实验材料与仪器材料:1. 新鲜肝组织2. DMEM培养基(含10%胎牛血清)3. 胰蛋白酶4. 纤维蛋白原5. 胰岛素、转铁蛋白、硒、维生素B126. 灭菌的器皿和器械仪器:1. 生物安全柜2. 恒温培养箱3. 显微镜4. CO2培养箱5. 超净工作台6. 离心机三、实验方法1. 肝组织的采集与处理:- 在无菌条件下,采集新鲜肝组织。
- 将肝组织剪成1mm×1mm×1mm的小块,用生理盐水冲洗,去除血污。
2. 肝细胞的消化与分离:- 将肝组织块用胰蛋白酶消化,得到肝细胞悬液。
- 将肝细胞悬液用等体积的DMEM培养基终止消化。
- 用200目筛网过滤,得到肝细胞悬液。
- 将肝细胞悬液离心,弃去上清液,用DMEM培养基重悬细胞。
3. 肝细胞的培养:- 将肝细胞悬液接种于培养瓶中,置于37℃、5%CO2的恒温培养箱中培养。
- 每2-3天更换一次培养液,加入适量的胰岛素、转铁蛋白、硒、维生素B12等生长因子。
4. 肝细胞的观察与鉴定:- 在显微镜下观察肝细胞的形态和生长情况。
- 通过检测细胞标志物(如α-平滑肌肌动蛋白、肝细胞生长因子等)来鉴定肝细胞。
四、实验结果1. 肝细胞的生长与分化:- 在体外培养条件下,肝细胞能生长、增殖,并分化为具有肝细胞特征的细胞。
- 通过显微镜观察,可见肝细胞呈多边形,胞质丰富,胞核较大,核仁明显。
2. 肝细胞的鉴定:- 通过检测细胞标志物,证实培养的细胞为肝细胞。
五、讨论与分析1. 肝细胞体外培养技术是研究肝细胞生物学特性、肝细胞疾病和肝细胞移植的重要手段。
2. 本实验成功培养出肝细胞,为后续研究提供了技术支持。
3. 在肝细胞培养过程中,添加适量的生长因子有助于肝细胞的生长和分化。
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学号姓名学院专业、班级实验课程名称红豆杉愈伤组织的诱导培养1. 实验设备及材料(1)主要实验用具和仪器冰箱,普通天平,分析天平,各种型号的试剂瓶(棕色和白色)、电炉,三角瓶,移液管,量筒,烧杯,容量瓶,玻璃棒,医用口杯,精密pH试纸(pH5.4~7.0),药勺,称量纸,标签纸,封口膜,橡皮筋,电炉,高压蒸汽灭菌锅、100ml三角瓶、500ml 搪瓷杯、25ml量筒、10ml和5ml吸管、解剖刀、已灭菌培养皿、酒精棉球、小块纱布、已灭菌培养皿和滤纸、枪状镊子、眼科手术剪、手术刀、酒精灯、100ml三角瓶、500或1000ml搪瓷杯、50ml量筒等。
(2)药品和试剂硝酸铵、硝酸钾、氯化钙、硫酸镁、磷酸二氢钾、碘化钾、硫酸锰、硫酸锌、钼酸钠、硫酸铜、氯化钴、乙二胺四乙酸二钠、硫酸亚铁、甘氨酸、盐酸硫胺素、盐酸吡哆素、烟酸、肌醇、2,4-D(2,4-二氯苯氧乙酸)、NAA(α-萘乙酸)、6-BA (6-苄基腺嘌呤)、浓盐酸、氢氧化钠、95%酒精、蒸馏水等。
MS培养基母液、琼脂、蔗糖、生长调节物质、蒸馏水、1mol·L-1HCl、1mol·L-1NaOH、愈伤组织继代培养基、75%酒精。
(3)实验材料红豆杉种子处于脱分化进程中的外植体2.实验方法步骤及注意事项I、MS培养基母液和常用试剂的配制(1)培养基的成分目前,不论液体培养还是固体培养,大多数植物组织培养中所用的培养基都是由无机营养物、碳源、维生素、生长调节物质和有机附加物等几大类物质组成。
(2)培养基的配制方法配制培养基的最简单的方法是用市售培养基干粉溶解在蒸馏水里,加上蔗糖、琼脂和其他必要的补加物,再加入蒸馏水使之达到最终的容积。
最后调节pH值,高压灭菌,于是制成所需要的培养基。
如果没有培养基干粉,则可采用以下两种方法来配制:一个是按照配方规定的数量分别称量出各种成分,分别使它们溶解于水,然后再将它们混合在一起。
另一个是先配制一系列的浓缩贮备液(母液),贮存在2~4℃冰箱内,待配培养基时取出,按比例稀释配用。
此法较为常用。
(3)MS培养基母液的配制母液的配制有两种方法:一种是配制成单一化合物母液。
此法适合配制多种培养基都需要的同一种母液。
另一种是配成几种不同化合物的混合母液。
此法在大量配制同种培养基时省时省力。
配好的母液应放在试剂瓶中贮存。
在配制MS培养基母液时,为减少工作量可以把几种药品(如培养基中的大量元素或微量元素)配在同一母液中,但应注意各种化合物的组合以及加入的先后顺序,以免发生沉淀。
通常把每种试剂单独溶解后再与别的也已完全溶解的药品混合,或者待前一种化合物完全溶解后再加入后一种化合物。
混合已溶解的各种矿质盐时还应注意先后顺序,力求把Ca2+与SO42- 和PO43-错开,以免形成硫酸钙或磷酸钙的不溶物。
同时,要慢慢地混合,边混合边搅拌。
①大量元素母液的配制MS培养基中的9种大量元素除C、H、O外,剩下的六种可由KNO3、NH4NO3、CaCl2 •2H20、MgSO4 •7H2O、KH2PO4几种无机盐来供应,它们可配在同一母液中(具体配制见下表)。
配制的步骤为:确定母液的浓度和体积→计算各种化合物用量→称量→分别溶解→混合→定容→装瓶→贴标签→放入冰箱保存。
注意:CaCl2 •2H20最后加入②微量元素母液的配制MS培养基中的微量元素可由MnSO4 •4H2O、ZnSO4 •7H2O、H3BO3、KI、Na2MoO4 •2H2O、CuSO4 •5H2O、CoCl2 •6H2O几种无机盐来供应,它们也可配在同一母液中(具体配制见实验原理中微量元素表)。
配制步骤同大量元素。
③有机成分母液的配制MS培养基中所需的维生素和氨基酸等有机成分母液应分别单独配制(具体配制见下表)。
配制的步骤为:确定母液的浓度和体积→计算各种化合物用量→称量→溶解→定容→装瓶→贴标签→放入冰箱保存。
亦可配制成混合母液,配制的步骤为:确定母液的浓度和体积→计算各种化合物用量→称量→分别溶解→混合→定容→装瓶→贴标签→放入冰箱保存。
④铁盐母液的配制铁盐母液宜单独配制,其配制步骤为:确定母液的浓度和体积→计算各种化合物用量→称量→分别溶解→混合→煮沸数分钟→调节pH值至5.8 →定容→装瓶(棕色)→贴标签→放入冰箱保存。
用时每配l L培养基取该溶液5ml。
⑤植物生长调节物质母液的配制对于植物生长调节物质,配制成母液时,通常用mg·ml-1或ppm (parts per million,即百万分的浓度,指一百万份重量的溶液中,所含溶质的份数)较为方便,一般配制成0.5mg·ml-1的母液,这样的浓度便于计算也可避免冷藏时形成结晶。
⑥其他常用试剂的配制盐酸(lmol·L-1 ):用浓度36.5%、密度1.19g/cm3的浓盐酸配制氢氧化钠(lmol·L-1 ):用固体氢氧化钠配制75%酒精(v/v) :用95%的酒精来配制配制好的各种母液应分别贴上标签,写明母液名称、配制倍数、配制者、配制日期。
母液最好在2~4℃的冰箱中保存。
尤其对生长调节物质与有机类物质要求较严。
贮存时间不宜过长,如发现有霉菌和沉淀结晶产生,就不能再使用。
II、红豆杉愈伤组织诱导培养基配制1、药品及用具的准备(1)MS培养基母液的准备配制培养基时先将事先配制贮存的母液按顺序放好,并检查这些母液是否已变色或产生沉淀或产生结晶,已失效的就不要取用。
MS培养基母液包括大量元素母液、微量元素母液、铁盐母液、有机物母液。
(2)实验用具的准备将洁净的各种用具如三角瓶、量筒、烧杯、吸管、玻璃棒、医用口杯、精密pH试纸、封口膜、橡皮筋、电炉等准备好放在指定的位置。
再将蒸馏水、琼脂、蔗糖、生长调节物质、1mol·L-1NaOH、1mol·L-1HCl准备好。
2、培养基的配制步骤(1)根据需要配制的培养基的量称好所需的琼脂(0.7~0.8%),撕碎后放入医用口杯中,加入适量的蒸馏水(估计加入母液后不超过配制总量)置于电炉上加热溶解,边加热边用玻棒搅动。
(2)待琼脂完全溶解后,加入规定用量的母液(可事先取好放于一烧杯中),再加入规定用量的蔗糖,继续加温并不断搅拌,待琼脂煮透后端离火源,根据培养基配方及培养基体积加入所需要的生长调节物质,最后加蒸馏水至所需体积。
(3)调节培养基的酸碱性至PH5.8由于培养基的pH值直接影响到培养物对离子的吸收,因而过酸或过碱都对植物材料的生长有很大影响。
此外,琼脂培养基的pH值还影响到凝固情况。
所以,当培养基配制好后应立即进行pH值的调整。
最好用酸度计测试,既快又准,如无条件也可用精密pH试纸。
培养基若偏酸时用lmol·L-1 NaOH来调节,偏碱则可用lmol·L-1 HCl来调节。
一般来说,当pH值高于6.0时,培养基将会变硬;pH值低于5.0时,琼脂不能很好地凝固。
(4)培养基的分装配制好的培养基要趁热分装,分装时容器口小者可采用漏斗分注,口大者直接加注。
试管、三角瓶等培养容器加注量占其容积的1/4~1/3为宜,果酱瓶每瓶20~30ml,太多既浪费培养基,又减少了培养材料的生长空间;太少又会因营养不良影响生长。
培养基分装完后,用封口膜封严瓶口,并用橡皮筋扎紧。
(5)培养基的灭菌培养基分装后应立即置于高压蒸气灭菌锅内进行灭菌。
消毒灭菌时,压力表读数约为1.06kg·cm-2或0.106 MPa,121℃时保持15~30 min左右即可。
为了保证灭菌彻底,在蒸气灭菌锅增压前应先将灭菌锅内的冷空气放尽。
排净冷空气的办法:(1)可以事前打开灭菌锅放气阀,煮沸,待大量热蒸气排出后再关闭;(2)也可采用先关闭放气阀,待压力升到0.35kg·cm-2或0.037 MPa,108℃时打开放气阀排出空气,再关闭放气阀。
培养基灭菌时应注意:培养基消毒灭菌时间不宜过长,也不可超过灭菌锅规定的压力范围;否则,培养基中的蔗糖、有机物质,特别是维生素类物质就会分解,导致培养基变质、变色,甚至难以凝固。
当灭菌完成后,应切断电源或热源,待灭菌锅内气压接近“0”时,方可打开放气阀,拧开灭菌锅盖取出培养基。
切勿为急于取出培养基而打开放气阀放气,否则锅内气压下降太快会引起减压沸腾,导致灭菌锅内各容器中的培养基溢出,造成浪费或污染,甚至烫伤工作人员。
3、无菌蒸馏水和接种工具准备在250ml培养瓶中加入100ml蒸馏水,封口包扎;分别取枪状镊子2把、眼科手术剪和手术刀各1把,用牛皮纸和橡皮圈包扎成一套;每套培养皿内放入合适滤纸2~3张,用牛皮纸和橡皮圈包扎成一套;然后和培养基一起统一灭菌。
III、红豆杉愈伤组织的诱导(1)红豆杉愈伤组织的诱导①准备工作A. a 接种室的清洁和消毒;b 超净工作台的开机和消毒;c 消毒溶液、无菌水、装材料的容器、剪刀、镊子、培养皿、计时器、待用培养基等的准备。
B.实验材料的准备:a 准备红豆杉种子作实验材料;b 实验材料的修整、刷洗、冲洗;c 用洗衣粉水或肥皂水浸洗后再用自来水冲净。
②植物材料的表面灭菌A 操作人员洗手消毒B 装材料的容器及玻璃棒用酒精表面消毒C 将待消毒的材料浸入75%的酒精中10秒,取出用无菌水冲洗干净。
D 倒入消毒剂并计时E 到预定时间后倒出消毒液并用无菌水清洗干净。
F 将种子在水中浸泡约2h(2)红豆杉愈伤组织增殖培养基的配制配方:MS基本培养基+2mg/L NAA+0.1mg/L 6-BA+200mg/L水解酪蛋白+0.7%琼脂+3%蔗糖(3)剥取红豆杉种子里的胚放在准备好的固体培养基上IV、竹子愈伤组织的移栽(1)准备工作实验材料的准备:已长根的竹子幼苗,移栽土的准备(2)竹子移栽将准备好的竹子幼苗移种在装有培养土的小盆中,套袋以让小苗逐渐适应环境。