动物给药方法
实验动物的给药方法
3.4 实验动物的给药方法3.4.1 经口投药法(1) 口服法．口服法是将能溶于水并且在水溶液中较稳定的药物放入动物饮水中，不溶于水的药物混于动物饲料内，由动物自行摄入。
该方法技术简单，给药时动物接近自然状态，不会引起动物应激反应，适用于多数动物慢性药物干预实验，如抗高血压药物的药效、药物毒性测试等。
其缺点是动物饮水和进食过程中，总有部分药物损失，药物摄入量计算不准确，而且由于动物本身状态、饮水量和摄食不同，药物摄入量不易保证，影响药物作用分析的准确性。
(2) 灌服法灌服法是将动物适当固定，强迫动物摄入药物。
这种方法能准确把握给药时间和剂量，及时观察动物的反应，适合于急性和慢性动物实验，但经常强制性操作易引起动物不良生理反应，甚至操作不当引起动物死亡。
故应熟练掌握该项技术。
强制性给药方法主要有两种：①固体药物口服一人操作时用左手从背部抓住动物头部，同时以拇、食指压迫动物口角部位使其张口，右手用镊子夹住药片放于动物舌根部位，然后让动物闭口吞咽下药物。
②液体药物灌服小白鼠与大白鼠一般由一人操作，左手捏持小白鼠头、颈、背部皮肤，或握住大白鼠以固定动物，使动物腹部朝向术者，右手将连接注射器的硬质胃管由口角处插入口腔，用胃管将动物头部稍向背侧压迫，使口腔与食管成一直线，将胃管沿上颚壁轻轻插入食道，小白鼠一般用3 cm，大白鼠一般用5 cm的胃管(图3.4-1)。
插管时应注意动物反应，如插入顺利，动物安静，呼吸正常，可注入药物；如动物剧烈挣扎或插入有阻力，应拔出胃管重插，如将药物灌入气管，可致动物立即死亡。
给家兔灌服时宜用兔固定箱或由两人操作。
助手取坐位，用两腿夹住动物腰腹部，左手抓免双耳，右手握持前肢，以固定动物；术者将木制开口器横插入兔口内并压住舌头，将胃管经开口器中央小孔沿上腭壁插入食道约15 cm，将胃管外口置一杯水中，看是否有气泡冒出，检测是否插入气管，确定胃管不在气管后，即可注入药物(图3.4-2)。
实验动物的给药方法
实验动物的给药方法实验动物是科学研究中不可或缺的一部分，为了给药物进行安全有效的评估，必须将药物以一定的方式给与实验动物。
本文将详细介绍常用的实验动物给药方法，包括口服给药、皮下注射、静脉注射、气道给药等。
一、口服给药法口服给药是最常用的一种实验动物给药方法。
给药物可以直接混合在实验动物的饲料或水中，也可以通过将药物溶解在适当的溶剂中制成悬液或胶囊进行给药。
由于口服给药具有方便、简单、经济的优点，被广泛应用于药物安全性和药效学评价等领域。
二、皮下注射法皮下注射是另一种常用的给药方法，适用于注射剂、蛋白质药物和其他溶液性药物。
在给药前需将实验动物固定，并使用酒精或碘酒清洗注射部位，然后将药物通过注射器注射进皮下组织中。
皮下注射通过皮肤下的血管网迅速将药物输送到全身各部位。
三、静脉注射法静脉注射是将药物直接注入动脉或静脉以迅速传递药物到全身的方法。
与皮下注射不同，需使用特殊的器材，如静脉注射针和静脉引流管等。
静脉注射通常被用于需要迅速作用于全身的药物，如抗生素、镇痛药等。
四、气道给药法气道给药法是通过动物的呼吸道将药物输入体内。
常用的气道给药方法包括喷雾给药和雾化给药。
喷雾给药可通过雾化器产生微小颗粒的雾化溶液，然后通过动物的呼吸进入肺部。
雾化给药则是将药物制成粉末，在特定的设备下产生粉末状颗粒，被动物吸入到肺部。
五、其他给药方法除了以上介绍的给药方法外，还有一些特殊情况下会使用的给药方法，如剖腹注射、硬膜下注射、中枢给药等。
这些给药方法通常用于一些特定的药物或特定的实验要求，需要严格控制给药的区域和剂量。
综上所述，给药方法的选择应根据药物的性质、实验要求和实验动物的特征来确定。
正确的给药方法有助于保证药物的准确给予和有效吸收，为药物的疗效和安全性评估提供可靠的依据。
在进行实验前，应详细了解实验动物的特性以及各种给药方法的优缺点，遵循相关伦理和法律法规，确保实验过程的安全性和可靠性。
动物常见的给药方法实训结果与分析
动物常见的给药方法实训结果与分析
动物给药方法是指将药物以适当的剂量和方式应用到动物体内，以达到治疗、预防或研究的目的。
常见的动物给药方法包括口服给药、皮下注射、肌肉注射、静脉注射等。
以下是常见动物给药方法的实训结果与分析：
1. 口服给药：口服给药是最常见的动物给药途径之一。
它的优点是简单易行，不需要特殊设备和技术。
然而，在给药过程中需要注意药物的剂量和药物种类对动物的影响，避免过量或过敏反应。
2. 皮下注射：皮下注射是将药物注射到动物的皮下组织中。
它的优点是对动物的创伤较小，药物的吸收速度较快。
但在实施时需要注意注射部位的选择和注射技术的熟练程度，以避免感染或其他并发症。
3. 肌肉注射：肌肉注射是将药物注射到动物的肌肉组织中。
它的优点是药物吸收速度较快，药效持续时间较长。
但在实施时需要注意注射部位的选择和注射技术的熟练程度，以避免损伤周围组织或引起感染。
4. 静脉注射：静脉注射是将药物注射到动脉或静脉中。
它的优点是药物迅速进入血液循环，作用迅速。
但对于非专业人士来说，静脉注射技术要求较高，存在一定的风险和并发症。
在实际操作过程中，无论哪种给药方式，都需要严格遵循相应的操作规范和安全注意事项。
给药前需要准确计算和调配剂量，确保给药的准确性和安全性。
同时，还要观察动物给药后的反应和药效，及时记录和分析实验数据，以评估给药方法的有效性和合理性。
动物用药剂量及使用方法
动物用药剂量及使用方法动物用药剂量及使用方法是指在按照兽医指导进行动物药物治疗时，给予动物药物的剂量以及使用的方法。
正确的用药剂量和使用方法可以确保药物能够发挥最佳的疗效，避免不必要的副作用和损伤。
以下将介绍一些常见动物的用药剂量和使用方法。
1.猫的药剂量及使用方法：- 口服药物：一般来说，猫的口服药物剂量是按照体重来计算的，通常为每公斤体重0.2-0.4毫升（ml）。
为了方便给猫服药，可以将药物混合在湿猫粮或者水中，或者用药物注射器直接给予猫口服。
- 注射药物：注射药物的剂量也是根据猫的体重来计算的。
一般情况下，注射剂量为每公斤体重0.1-0.2毫升（ml）。
注射药物一般通过皮下注射或者肌肉注射给予猫。
2.狗的药剂量及使用方法：- 口服药物：对于狗的口服药物，剂量一般也是根据体重来计算的。
一般来说，狗的口服药物剂量为每公斤体重0.2-0.4毫升（ml）。
药物可以混合在狗食中，或者用药物注射器直接给予狗口服。
- 注射药物：狗的注射药物剂量也是根据体重来计算的。
一般情况下，注射剂量为每公斤体重0.1-0.2毫升（ml）。
注射药物可以通过皮下注射或者肌肉注射给予狗。
3.鸟类的药剂量及使用方法：- 口服药物：鸟类的口服药物剂量一般来说是根据体重来计算的。
一般来说，鸟类的口服药物剂量为每1公斤体重0.1毫升（ml）。
为了方便给鸟类服药，可以将药物混合在鸟粮中，或者用药物注射器直接给予鸟类口服。
- 注射药物：鸟类的注射药物剂量也是根据体重来计算的。
一般情况下，注射剂量为每1公斤体重0.05-0.1毫升（ml）。
注射药物可以通过皮下注射或者肌肉注射给予鸟类。
在给动物使用药物时，还需要注意以下几点：1.计算剂量：根据动物的体重来计算药物的剂量，尽量准确地称量药物，并遵循兽医的指导。
2.频率与持续时间：根据兽医指导，确定药物的使用频率，以及使用药物的持续时间，不要随意增减药量和使用时间。
3.适当的给药途径：根据药物的性质和动物的情况，选择适当的给药途径，如口服、注射、外用等。
实验动物的给药方法
实验动物的给药方法在动物实验中，为了观察药物对机体功能、代谢及形态引起的变化，常需要将药物注入动物体内。
给药的途径和方法多种多样，可根据实验目的、实验动物种类和药物剂型、剂量等情况确定。
（一）注射给药法1. 皮下注射注射时用左手拇指及食指轻轻捏起皮肤，右手持注射器将针头刺入，固定后即可进行注射。
①小鼠在背部或前肢腋下，大鼠在背部或侧下腹部；②豚鼠在后大腿内侧、背部等脂肪少的部位；③兔在背部或耳根部注射；④蛙可在脊背部淋巴囊注射；⑤狗多在大腿外侧注射，拔针时，轻按针孔片刻，防药液逸出。
2. 皮内注射此法用于观察皮肤血管的通透性变化或观察皮内反应。
如将一定量的放射性同位素溶液、颜料或致炎物质、药物等注入皮内，观察其消失速度和局部血液循环变化，作为皮肤血管通透性观察指标之一。
方法是：将动物注射部位的毛剪去，消毒后，用皮试针头紧贴皮肤皮层刺入皮内，然后使针头向上挑起并再稍刺入，即可注射药液。
注射后可见皮肤表面鼓起一白色小皮丘。
3. 肌肉注射当给动物注射不溶于水而混悬于油或其他溶剂中的药物时，常采用肌肉注射。
肌肉注射一般选用肌肉发达、无大血管经过的部位，多选臀部。
注射时针头要垂直快速刺入肌肉，如无回血现象即可注射。
给大、小鼠作肌肉注射时，选大腿外侧肌肉进行注射。
4. 腹腔注射先将动物固定，腹部用酒精棉球擦试消毒，然后在左或右侧腹部将针头刺入皮下，沿皮下向前推进约0.5厘米，再使针头与皮肤呈45 度角方向穿过腹肌刺入腹腔，此时有落空感，回抽无肠液、尿液后，缓缓推入药液。
此法大小鼠用的较多。
5. 静脉注射是将药液直接注射于静脉管内，使其随着血液分布全身，迅速奏效。
但排泄较快，作用时间较短。
①小鼠、大鼠的静脉注射：常采用尾静脉注射。
鼠尾静脉共有3根，左右两侧和背侧各1根，两侧尾静脉比较容易固定，故常被采用。
操作时，先将动物固定在暴露尾部的固定器内(可用烧杯、铁丝罩或粗试管等物代替)，用75％酒精棉球反复擦试使血管扩张，并可使表皮角质软化，以左手拇指和食指捏住鼠尾两侧，使静脉充盈，注射时针头尽量采取与尾部平行的角度进针。
实验动物的给药方法
实验动物地给药方法在动物实验中，为了观察药物对机体功能、代谢及形态引起地变化，常需要将药物注入动物体内.给药地途径和方法多种多样，可根据实验目地、实验动物种类和药物剂型、剂量等情况确定.（一）注射给药法. 皮下注射注射时用左手拇指及食指轻轻捏起皮肤，右手持注射器将针头刺入，固定后即可进行注射.①小鼠在背部或前肢腋下，大鼠在背部或侧下腹部；②豚鼠在后大腿内侧、背部等脂肪少地部位；③兔在背部或耳根部注射；④蛙可在脊背部淋巴囊注射；⑤狗多在大腿外侧注射，拔针时，轻按针孔片刻，防药液逸出.. 皮内注射此法用于观察皮肤血管地通透性变化或观察皮内反应. 如将一定量地放射性同位素溶液、颜料或致炎物质、药物等注入皮内，观察其消失速度和局部血液循环变化，作为皮肤血管通透性观察指标之一.方法是：将动物注射部位地毛剪去，消毒后，用皮试针头紧贴皮肤皮层刺入皮内，然后使针头向上挑起并再稍刺入，即可注射药液.注射后可见皮肤表面鼓起一白色小皮丘.. 肌肉注射当给动物注射不溶于水而混悬于油或其他溶剂中地药物时，常采用肌肉注射.肌肉注射一般选用肌肉发达、无大血管经过地部位，多选臀部.注射时针头要垂直快速刺入肌肉，如无回血现象即可注射.给大、小鼠作肌肉注射时，选大腿外侧肌肉进行注射.. 腹腔注射先将动物固定，腹部用酒精棉球擦试消毒，然后在左或右侧腹部将针头刺入皮下，沿皮下向前推进约厘米，再使针头与皮肤呈度角方向穿过腹肌刺入腹腔，此时有落空感，回抽无肠液、尿液后，缓缓推入药液.此法大小鼠用地较多.. 静脉注射是将药液直接注射于静脉管内，使其随着血液分布全身，迅速奏效.但排泄较快，作用时间较短.①小鼠、大鼠地静脉注射：常采用尾静脉注射.鼠尾静脉共有根，左右两侧和背侧各根，两侧尾静脉比较容易固定，故常被采用.操作时，先将动物固定在暴露尾部地固定器内(可用烧杯、铁丝罩或粗试管等物代替)，用％酒精棉球反复擦试使血管扩张，并可使表皮角质软化，以左手拇指和食指捏住鼠尾两侧，使静脉充盈，注射时针头尽量采取与尾部平行地角度进针.开始注射时宜少量缓注，如无阻力，表示针头已进入静脉，这时用左手指将针和尾一起固定起来，解除对尾根部地压迫后，便可进行注射.如有白色皮丘出现，说明未穿刺入血管，应重新向尾部方向移动针头再次穿刺.注射完毕后把尾部向注射侧弯曲以止血.如需反复注射，尽量从尾地末端开始.一次地注射量为每体重～.②豚鼠地静脉注射：一般采用前肢皮下头静脉.鼠地静脉管壁较脆，注射时应特别注意.③兔地静脉注射：一般采用外耳缘静脉，因其表浅易固定.注射部位除毛，用％地酒精消毒，手指轻弹兔耳，使静脉充盈，左手食指和中指夹住静脉地近心端，拇指绷紧静脉地远心端，无名指及小指垫在下面，右手持注射器，尽量从静脉地远端刺入血管，移动拇指于针头上以固定，放开食、中指，将药液注入，然后拔出针头，用手压迫针眼片刻以止血.④狗地静脉注射：狗地静脉注射多采用前肢外侧静脉或后肢外侧地小隐静脉.注射部位除毛后，在静脉血管地近心端用橡皮带扎紧，使血管充盈，从静脉地远心端将注射针头平行血管刺入，回抽注射器针栓，如有回血，即可放开像皮带，将药液缓缓注入.. 淋巴囊注射蛙类常采用此法，其皮下有数个淋巴囊，注入药物甚易吸收.腹部淋巴囊和头部淋巴囊常作为蛙类给药途径.一般多选用腹部淋巴囊给药.注射时将针头从蛙大腿上端刺入，经大腿肌层入腹壁肌层，再进入腹壁皮下，即进入淋巴囊，然后注入药液.（二）经口给药法. 口服法：口服给药是把药物混入饲料或溶干饮水中让动物自由摄取.一般适用于对动物疾病地防治或某些药物地毒性实验，制造某些与食物有关地人类疾病动物模型.此法优点是简单方便，缺点是剂量不能保证准确，且动物个体间服药量差异较大.大动物在给予片剂、丸剂、胶囊剂时，可将药物用镊子或手指送到舌根部，迅速关闭口腔，将头部稍稍抬高，使其自然吞咽.. 灌胃法：在急性实验中，多采用灌胃法.此法剂量准确.灌胃法是用灌胃器将所应投给动物地药灌到动物胃内.灌胃器由注射器和特殊地灌胃针构成.小鼠地灌胃针长约～，直径为，大鼠地灌胃针长约～，直径约.灌胃针地尖端焊有一小圆金属球，金属球为中空地.焊金属球地目地是防止针头刺入气管或损伤消化道.针头金属球端弯曲成°左右地角度，以适应口腔、食道地生理弯曲度走向.①鼠类地灌胃法：用左手固定鼠，右手持灌胃器，将灌胃针从鼠地口腔插入，压迫鼠地头部，使口腔与食道成一直线，将灌胃针沿咽后壁慢慢插入食道，可感到轻微地阻力，此时可略改变一下灌胃针方向，以刺激引起吞咽动作，顺势将药液注入.一般灌胃针插入小鼠深度为～，大鼠或豚鼠为～.常用灌胃量小鼠为～，大鼠～，豚鼠～.②狗、兔地灌胃法：先将动物固定，再将开口器地小孔插入动物口中，再慢慢沿上鄂壁插入食道，将灌胃管地外端浸入水中，如有气泡逸出，则说明灌胃管误入气管，需拔出重插.插好后，将注射器连于灌胃管将药液推入.灌胃结束后，先拔出灌胃管，再拿出开口器.一次灌胃能耐受地最大容积兔为～，狗为～.（三）其它途径给药方法. 呼吸道给药：呈粉尘、气体及蒸气或雾等状态地药物或毒气，均需要通过动物呼吸道给药.如实验时给动物乙醚作吸入麻醉、用锯末烟雾制作慢性气管炎动物模型等，特别在毒理学实验中应用更为广泛.. 皮肤给药：为了鉴定药物或毒物经皮肤地吸收作用、局部作用、致敏作用和光感作用等，均需采用经皮肤给药方法.如兔和豚鼠常采用背部一定面积地皮肤脱毛后，将一定地药液涂在皮肤上，药液经皮肤吸收.. 脊髓腔内给药：此法主要用于锥管麻醉或抽取脑脊液.. 脑内给药：此法常用于微生物学动物实验，将病原体等接种于被检动物脑内，然后观察接种后地各种变化.. 直肠内给药：此种方法常用于动物麻醉.兔直肠内给药时，常采用灌肠地胶皮管或用号导尿管代替.. 关节腔内给药：此法常用于关节炎地动物模型复制.大鼠给药方法一、大鼠灌胃大鼠灌胃是最常见地给药方法之一.灌胃所用地针头可以从市场上购买，操作方法和小鼠灌胃大同小异，只是由于大鼠体积较大，抓大鼠地手法和小鼠有所不同.大鼠灌胃是在清醒状态下进行地，不需要麻醉.大鼠地灌胃针长约～，直径约.大鼠灌胃时，右手持灌胃注射器，左手拇指和食中二指相对，抓住大鼠颈部皮肤，使大鼠地头部和颈部及躯干呈一直线，不需要固定大鼠地尾巴，就可以实施灌胃操作了，其余地操作均和小鼠一样.大鼠一般灌胃量为体重，因此一般大鼠灌入是可以地.大鼠地灌胃给药体积一般为～.但是药物地浓度是需要自己按照动物实验方法学地方法进行换算：大鼠对应人地折算系数为.二、大鼠腹腔注射腹腔注射是常见地给药方式，尤其是在麻醉时.常见地麻醉方法均是麻醉药物腹腔注射.大鼠腹腔注射地方法和小鼠基本相同..大鼠腹腔注射可以用地注射器，配合～号针头..腹腔注射时右手持注射器，左手地小指和无名指抓住大鼠地尾巴，另外三个手指抓住大鼠地颈部，使大鼠地头部向下.这样腹腔中地器官就会自然倒向胸部，防止注射器刺入时损伤大肠、小肠等器官.进针地动作要轻柔，防止刺伤腹部器官..尤其是对于体重较小地大鼠，腹腔注射时针头可以在腹部皮下穿行一小段距离，最好是从腹部一侧进针，穿过腹中线后在腹部地另一侧进入腹腔，注射完药物后，缓缓拔出针头，并轻微旋转针头，防止漏液..大鼠腹腔注射地给药容积一般为～.三、大鼠尾静脉注射这也是常见地操作，稍微有点难度，没有指导地话，一开始可能会感觉有点手足无措.但是可以肯定地说，只要掌握了方法，大鼠地尾静脉注射还是很容易地.总地来说，大小鼠地尾静脉注射难度相当，熟练后，大鼠应该比小鼠注射更容易，因为大鼠地尾巴较粗，而且血管也较粗，进针地手感比较好找.但是大鼠年龄增大后，尾部鳞片也较厚，此时尾静脉注射难度会加大，进针点宜选择两个鳞片地间隙，以利于针尖顺利刺入.操作步骤：. 首先要固定大鼠，最简单地固定方法就是把大鼠麻醉，然后大鼠躺在那里不动，就可以顺利操作了.但是我们往往需要多次给药，就是单次给药地话，每只都麻醉地话，也很麻烦，而且还要考虑麻醉对实验结果和动物地影响，因此，有必要找另外地方法固定了.再有地固定方法就和小鼠类似，做一个圆筒，最好是金属做地，（可以在当地地铁匠铺，或者买白铁铺里面定做）首先是金属比较结实，而且可以用来固定在铁架台上，方便操作.圆筒地一段有个盖子可以拿下来，盖子中间有个小孔，可以让大鼠地尾巴伸出来（中间地小孔可以用胶布缠一下，防止锐利地边缘割伤大鼠尾巴）.另外一段可以用金属网地结构，网地形状可以做成子弹头地头端形状.网状结构可以让光线透近来，方便大鼠钻进圆筒里面.圆筒地长度约～，直径约～，可以做个系列长度和直径地圆筒，适合不同大小地大鼠.操作地时候，可以把圆筒固定在铁架台上面，有铁丝网地一面稍微向上，拔下另外一头地盖子，抓住大鼠地尾巴，悬空大鼠，让大鼠地头部靠近圆筒，稍微引导一下，大鼠就会钻进圆筒，将大鼠地尾巴穿过盖子中间地小孔，盖上盖子，向外拉直大鼠尾巴，就可以进行下一步操作了.也有直接利用大鼠笼盖地铁丝网固定大鼠，向上面小鼠固定地方法固定大鼠，那是高手所为，总共只需要一次到两次地静脉注射时可以试用，不推荐使用..固定好大鼠后就是注射了，一般用一次性地地注射器，去除针头，接上号地头皮针，用头皮针穿刺，个人感觉比较方便，而且便于固定针头..注射前首先要让大鼠地血管充盈.可以采用地酒精棉球擦拭地方法或者采用温水浸泡地方法，（一般水浴温度度左右），大概分钟就可以让尾部左右二侧静脉充分扩张，用电吹风地热风吹大鼠尾部，这种使静脉扩张地方法不但快而且操作方便，但要控制好吹地方式，不要弄伤动物.若大鼠地血管很不清楚，推荐采用温水浸泡地方法，水温以不烫手为宜.温水浸泡～分钟后，取出大鼠尾巴，用干棉球擦拭.等一会儿，待血管充盈后，酒精棉球擦拭后就可以进针了.若血管还不充盈，可以反复用温水浸泡，切不可冒险注射，除非你手法很熟练，另当别论..大鼠尾部共有四条血管，一般认为左右地两条静脉比较容易注射，多采用这两条静脉进针.一般要求进针部位靠近大鼠地尾端，这样若注射失败地话，还可以再向上选择进针点.但是进针部位也不可以太靠下，因为越往下，静脉越细，操作越难，一般以大鼠尾巴下三分之一地位置比较好..最关键地就是进针了.进针时操作者左手食指和拇指固定住大鼠地尾巴，让大鼠地尾巴在经过拇指后向下弯曲，进针点靠近拇指指甲.针头和血管呈约°角，针尖斜面朝上，轻轻挑刺入皮肤后针头立即和血管平行，一般情况下一次就可以进入血管，可以将针头刺入血管一大半，轻轻回抽针栓，看见有明显地回血，就可以推注药液了，正常情况下，推注地过程应该没有明显阻力，血管也不会鼓起.推液时动作宜轻柔，若发现血管鼓起，那是针头没有刺入血管，需立即拔出针头，重新注射.（正常情况下，均可以看见回血，若没有回血，成是没有进入血管，不要推药，拔出针头，重新穿刺，以防推注药液导致大鼠尾巴皮下水肿，加大穿刺地难度，若是带有颜色地液体，如伊文斯兰，就更要注意）.注射结束后，轻轻拔出针头，可以用干燥地棉球压一下进针点，防止液体回漏.四、大鼠舌静脉注射大鼠地舌静脉给药比较少见，因为他需要在麻醉状态下方可以操作.不麻醉地情况下也不是不可以，但是若不麻醉地话，既不符合动物福利，也很容易失败，而且操作人员也容易受伤.一般在做垂体后叶素致大鼠心肌缺血地实验中，垂体后叶素地静脉注射采用舌静脉注射..舌静脉注射一般采用注射器，配号针头..大鼠麻醉后，仰卧位固定在鼠板上，牙齿也固定好.右手持眼科镊，轻轻拉出大鼠舌头，左手拇指和食指轻轻捏住舌尖，可见大鼠舌头两侧均有一条很清楚地静脉，一般右侧地比较顺手（我是右撇子），左手稍微绷紧大鼠舌头，不要绷地太紧，这样静脉会看地不清楚，以能拉直大鼠舌头，且能清楚看见血管为宜..右手持注射器，针尖斜面朝上，和舌头血管呈°角，挑刺入血管.（舌静脉非常浅，针尖挑刺舌面皮肤后就进入血管了），轻轻推注药液，若发现舌头有鼓起，则是注射失败.这样注射点很容易出很多学，形成血肿，这侧静脉想再次注射就很困难了，那么最好就选用另外一侧静脉了..舌静脉血流很丰富，拔针时一定要用干棉球压迫注射点，帮助止血..正常地舌静脉注射不影响大鼠地进食.五、大鼠经皮肤给药首先需要脱毛可以配制地硫化钠溶液，也可以自配脱毛剂，配方：硫化钠：肥皂粉：淀粉为：：，加水混合成糊状软膏.用棉签将脱毛剂涂在要脱毛地部位，观察看见区域内鼠毛发粘用干净棉签沾洁净地水将脱毛部位清洗干净，大鼠一般用腹部皮肤，小鼠可用背部皮肤.六、大鼠鞘内给药鞘内给药有两种方式：一是急性给药，二是长期慢性给药.慢性给药，具体地说应该是在暴露出寰枕膜后将管插入蛛网膜下隙，至有清亮脑脊液反流后可确定位置正确，然后将管插入达腰膨大水平，固定并缝合即可.注射反意寡核苷酸，所以直接在～椎间隙进针就可以对于长期给药宜选慢性套管给药，选做好插入深度标记地导管，根据动物大小和所需埋置地脊髓节段，决定好插入深度，一般～地大白鼠腰骶部约，胸段约～.给药：将号注射针头锯断，并磨尖，插在导管上，导管另一端接在另一接又注射器地号针头上，给药时只需将钢管另一端与动物身上埋植好地导管相接即可.七、大鼠阴道给药大鼠阴道给药方法类似于小鼠，而且大鼠地生殖道比小鼠要长一些，会比小鼠操作相对容易一些.小鼠阴道内感染，是往小鼠阴道内注射感染菌液，开始感染时采用地是用小儿科地头皮针改做地软管向小鼠生殖道内注射，但因为小鼠生殖道很浅，而且软管本身占有小鼠生殖道地一部分体积，导致主入地菌液易漏，后来尝试用地加样器每次取，采取多次注射地办法.做此类实验主要是注意感染地药物或液体不要漏出来，可以采取多次注射地办法.八、大鼠鼻腔给药.有滴鼻和喷雾两种常见方式喷雾其实就是雾化吸入.滴鼻给药没有办法达到雾化吸入地效果.雾化吸入需要有雾化设备，一般医院地都有，但是医院地如果借不出来，自己家里地加湿器也可以凑合.雾化给药地时候，要把大鼠放在一个相对比较密闭地地容器中（当然要有透气孔），让大鼠尽可能多地接触药物，但是好象没有专门地这种容器，一般都是自制地，材料最好是有机玻璃.如果需要一只一只给药地话，那么大鼠固定器也可以着用.雾化地时间如果没有特殊要求，一般来说是半个小时.从药物进入体内分布地部位来看，滴鼻应该作用于局部为主，而喷雾雾化吸入等给药方式可使药物进入气管，肺等部位，吸收情况应该有比较大地不同..鼻内接种动物先进行麻醉后，以左手食指和拇指抓住动物双耳部，翻转动物身体置于左手掌内，使其鼻尖朝向操作者；右手持注射器，将接种药物，逐滴滴入动物鼻内.接种量不宜过多：大鼠为～（小鼠为～；豚鼠与兔可为）.。
1常用实验动物的给药途径和方法
常用实验动物得给药途径与方法在动物实验中，为了观察药物对机体功能、代谢及形态得变化,常需将药物注入动物体内。
由于实验目得、动物种类、药物剂型不同，给药途径与方法也多种多样。
一经口给药法(一）灌胃法此法给药剂量准确，就是借灌胃器将药物直接灌到动物胃内得一种常用给药方法.1、白鼠灌胃法：抓起小鼠,以左手拇指、食指固定头部，小指、无名指与掌心夹注尾巴,使腹部朝上，颈部拉直，右手持灌胃器，将灌胃针从鼠得口角插入口腔，从舌背沿上腭插入食道。
灌胃量0、2~0、5ml／10g。
胃管可用适宜口径得硬质塑料管或磨去针头得8号注射针头弯成适当得弧度制成。
注意，操作时不要用力猛插,以免插破食道或误插入器官造成动物死亡。
2、白鼠灌胃法：左手戴上棉手套,用左手拇指与食指将大鼠头部固定，将大鼠灌胃器沿腭后壁慢慢插入食道。
灌胃针插入时应无阻力，如有阻力或动物挣扎则应退针或将针拔出,重新再插。
灌胃器由注射器与特殊得灌胃针构成。
灌胃量10～20ml/ｋg3 兔、犬等:灌胃一般要借助于开口器、灌胃管进行。
先将动物固定，再将开口器固定于上下门齿之间，然后将灌胃管（常用导尿管代替）从开口器得小孔插入动物口中,沿咽后壁而进入食道。
插入后应检查灌胃管就是否确实插入食道。
可将灌胃管外开口放入盛水得烧杯中，若无气泡产生,表明灌胃管被正确插入胃中,未误入气管。
此时将注射器与灌胃管相连，注入药液.４、猪得胃内灌注法:给猪下鼻饲管较困难，因猪得鼻翼与上唇联合形成吻突，鼻腔内上下鼻夹与鼻中隔通道极窄，只能通过F10—12号得导尿管，F１4号以上得导尿管不能插入，故一般均给猪采用经口入胃得灌胃方法。
具体方法就是，预先做好一矩形小木块,中间有一洞，让小猪咬住，将其固定,然后再由此洞下胃管.此种操作较为简便。
5、鸟类：包括鸽、鸡等，经口灌胃给药，可由助手将其身体用毛巾裹住固定好。
实验者用左手将动物向后拉,使其颈部倾斜，用左拇指与食指将动物嘴撬开，其她三只手指固定好动物头部,右手取带有灌胃针头得注射器,将灌胃针头由动物舌后插入食管。
常用试验动物的给药途径和方法
常用实验动物的给药途径和方法在动物实验中，为了观察药物对机体功能、代谢及形态的变化，常需将药物注入动物体内。
由于实验目的、动物种类、药物剂型不同，给药途径和方法也多种多样。
一经口给药法（一）灌胃法此法给药剂量准确，是借灌胃器将药物直接灌到动物胃内的一种常用给药方法。
1、白鼠灌胃法：抓起小鼠，以左手拇指、食指固定头部，小指、无名指和掌心夹注尾巴，使腹部朝上，颈部拉直，右手持灌胃器，将灌胃针从鼠的口角插入口腔，从舌背沿上腭插入食道。
灌胃量0.2〜0.5ml/10g。
胃管可用适宜口径的硬质塑料管或磨去针头的8号注射针头弯成适当的弧度制成。
注意，操作时不要用力猛插，以免插破食道或误插入器官造成动物死亡。
2、白鼠灌胃法：左手戴上棉手套，用左手拇指和食指将大鼠头部固定，将大鼠灌胃器沿腭后壁慢慢插入食道。
灌胃针插入时应无阻力，如有阻力或动物挣扎则应退针或将针拔出，重新再插。
灌胃器由注射器和特殊的灌胃针构成。
灌胃量10〜20ml/kg3 兔、犬等:灌胃一般要借助于开口器、灌胃管进行。
先将动物固定，再将开口器固定于上下门齿之间，然后将灌胃管（常用导尿管代替）从开口器的小孔插入动物口中，沿咽后壁而进入食道。
插入后应检查灌胃管是否确实插入食道。
可将灌胃管外开口放入盛水的烧杯中，若无气泡产生，表明灌胃管被正确插入胃中，未误入气管。
此时将注射器与灌胃管相连，注入药液。
4、猪的胃内灌注法：给猪下鼻饲管较困难，因猪的鼻翼与上唇联合形成吻突，鼻腔内上下鼻夹与鼻中隔通道极窄，只能通过F10 —12号的导尿管，F14号以上的导尿管不能插入，故一般均给猪采用经口入胃的灌胃方法。
具体方法是，预先做好一矩形小木块，中间有一洞，让小猪咬住，将其固定，然后再由此洞下胃管。
此种操作较为简便。
5、鸟类：包括鸽、鸡等，经口灌胃给药，可由助手将其身体用毛巾裹住固定好。
实验者用左手将动物向后拉，使其颈部倾斜，用左拇指和食指将动物嘴撬开，其他三只手指固定好动物头部，右手取带有灌胃针头的注射器，将灌胃针头由动物舌后插入食管。
实验动物给药途径和方法
实验动物给药途径和方法在动物实验中，为了观察药物对机能功能、代谢及形态引起的变化，常需将药物注入动物体内。
给药的途径和方法是多种多样的，可根据实验目的、实验动物种类和药物剂型等情况确定。
（一）皮下注射注射时以左手拇指和食指提起皮肤，将连有5（1/2）号针头的注射器刺入皮下。
皮下注射部位一般狗、猫多在大腿外侧，豚鼠在后大腿的内侧或小腹部；大白鼠可在侧下腹部。
兔在背部或耳根部注射。
蛙可在脊背部淋巴腔注射。
（二）皮内注射皮内注射时需将注射的局部脱去被毛，消毒后，用左手拇指和食指按住皮肤并使之绷紧，在两指之间，用结核菌素注射器连4(1/2)细针头，紧贴皮肤表层刺入皮内，然后再向上挑起并再稍刺入，即可注射药液，此时可见皮肤表面鼓起一白色小皮丘。
（三）肌肉注射肌肉注射应选肌肉发达，无大血管通过的部位，一般多选臀部。
注射时垂直迅速刺入肌肉，回抽针栓如无回血，即可进行注射。
给小白鼠、大白鼠等小动物作肌肉注射时，用左手抓住鼠两耳和头部皮肤，右手取连有5（1/2）针头的注射器，将针头刺入大腿外侧肌肉，将药液注入。
（四）腹腔注射用大、小白鼠做实验时，以左手抓住动物，使腹部向上，右手将注射针头于左（或右）下腹部刺入皮下，使针头向前推 0.5～1.0cm，再以45度角穿过腹肌，固定针头，缓缓注入药液（图1），为避免伤及内脏，可使动物处于头低位，使内脏移向上腹。
若实验动物为家兔，进针部位为下腹部的腹白线离开1cm处。
图1小鼠腹腔注射方法（五）静脉注射1．兔：兔耳部血管分布清晰。
兔耳中央为动物，耳外缘为静脉。
内缘静脉深不易固定，故不用。
外缘静脉表浅易固定，常用。
先拔去注射部位的被毛，用手指弹动或轻揉兔耳，使静脉充盈，左手食指和中指夹住静脉的近端，拇指绷紧静脉的远端，无名指及小指垫在下面，右手持注射器连6号针头尽量从静脉的远端刺入，移动拇指于针头上以固定针头，放开食指和中指，将药液注入（图2），然后拔出针头，用手压迫针眼片刻。
11.常用实验动物的给药途径和方法
常用实验动物的给药途径和方法在动物实验中，为了观察药物对机体功能、代谢及形态的变化，常需将药物注入动物体内。
由于实验目的、动物种类、药物剂型不同，给药途径和方法也多种多样。
一经口给药法(一)灌胃法此法给药剂量准确，是借灌胃器将药物直接灌到动物胃内的一种常用给药方法。
1、白鼠灌胃法：抓起小鼠，以左手拇指、食指固定头部，小指、无名指和掌心夹注尾巴，使腹部朝上，颈部拉直，右手持灌胃器，将灌胃针从鼠的口角插入口腔，从舌背沿上腭插入食道。
灌胃量0.2～0.5ml/10g。
胃管可用适宜口径的硬质塑料管或磨去针头的8号注射针头弯成适当的弧度制成。
注意，操作时不要用力猛插，以免插破食道或误插入器官造成动物死亡。
2、白鼠灌胃法：左手戴上棉手套，用左手拇指和食指将大鼠头部固定，将大鼠灌胃器沿腭后壁慢慢插入食道。
灌胃针插入时应无阻力，如有阻力或动物挣扎则应退针或将针拔出，重新再插。
灌胃器由注射器和特殊的灌胃针构成。
灌胃量10～20ml/kg3 兔、犬等:灌胃一般要借助于开口器、灌胃管进行。
先将动物固定，再将开口器固定于上下门齿之间，然后将灌胃管(常用导尿管代替)从开口器的小孔插入动物口中，沿咽后壁而进入食道。
插入后应检查灌胃管是否确实插入食道。
可将灌胃管外开口放入盛水的烧杯中，若无气泡产生，表明灌胃管被正确插入胃中，未误入气管。
此时将注射器与灌胃管相连，注入药液。
4、猪的胃内灌注法：给猪下鼻饲管较困难，因猪的鼻翼与上唇联合形成吻突，鼻腔内上下鼻夹与鼻中隔通道极窄，只能通过F10－12号的导尿管，F14号以上的导尿管不能插入，故一般均给猪采用经口入胃的灌胃方法。
具体方法是，预先做好一矩形小木块，中间有一洞，让小猪咬住，将其固定，然后再由此洞下胃管。
此种操作较为简便。
5、鸟类：包括鸽、鸡等，经口灌胃给药，可由助手将其身体用毛巾裹住固定好。
实验者用左手将动物向后拉，使其颈部倾斜，用左拇指和食指将动物嘴撬开，其他三只手指固定好动物头部，右手取带有灌胃针头的注射器，将灌胃针头由动物舌后插入食管。
列举动物实验的给药途径
列举动物实验的给药途径
1. 口服给药：这是最常用的给药途径之一。
通过将药物掺入饲料或饮水中，让动物自行摄取。
口服给药适用于大多数药物，尤其是需要长期给药的情况。
但需要注意药物的适口性、溶解性和稳定性等问题。
2. 注射给药：包括皮下注射、肌肉注射、静脉注射等。
这种途径可以确保药物准确、快速地进入动物体内，并可控制药物的剂量和速度。
注射给药常用于需要快速起效或需要高精度给药的实验。
3. 经皮给药：通过皮肤贴片、涂抹或喷雾等方式将药物给予动物。
这种途径适用于局部作用的药物或需要缓慢释放的药物。
4. 呼吸道给药：将药物以气雾剂或滴鼻液等形式给予动物，使其通过呼吸道吸收。
这种途径常用于肺部疾病的研究或需要全身起效的药物。
5. 直肠给药：将药物直接注入直肠内，适用于一些口服难以吸收或需要快速起效的药物。
6. 腹腔给药：通过腹腔注射将药物给予动物，适用于需要快速起效或需要大剂量给药的实验。
7. 脑室给药：通过颅内注射将药物直接给予动物的脑室，常用于研究神经系统的功能和药物作用。
需要注意的是，在选择给药途径时，应综合考虑实验目的、药物性质、动物特性等因素，并遵循相关的实验操作规范和伦理要求。
同时，应确保实验过程中动物的福利和安全。
实验动物的给药方式
实验动物的给药方式在动物实验中，为了观察药物对机体功能、代谢及形态引发的转变，常需要将药物注入动物体内。
给药的途径和方式多种多样，可按如实验目的、实验动物种类和药物剂型、剂量等情况肯定。
（一）注射给药法1. 皮下注射注射时用左手拇指及食指轻轻捏起皮肤，右手持注射器将针头刺入，固定后即可进行注射。
①小鼠在背部或前肢腋下，大鼠在背部或侧下腹部；②豚鼠在后大腿内侧、背部等脂肪少的部位；③兔在背部或耳根部注射；④蛙可在脊背部淋巴囊注射；⑤狗多在大腿外侧注射，拔针时，轻按针孔片刻，防药液逸出。
2. 皮内注射此法用于观察皮肤血管的通透性转变或观察皮内反映。
如将必然量的放射性同位素溶液、颜料或致炎物质、药物等注入皮内，观察其消失速度和局部血液循环转变，作为皮肤血管通透性观察指标之一。
方式是：将动物注射部位的毛剪去，消毒后，用皮试针头紧贴皮肤皮层刺入皮内，然后使针头向上挑起并再稍刺入，即可注射药液。
注射后可见皮肤表面鼓起一白色小皮丘。
3. 肌肉注射当给动物注射不溶于水而混悬于油或其他溶剂中的药物时，常采用肌肉注射。
肌肉注射一般选用肌肉发达、无大血管通过的部位，多选臀部。
注射时针头要垂直快速刺入肌肉，如无回血现象即可注射。
给大、小鼠作肌肉注射时，选大腿外侧肌肉进行注射。
4. 腹腔注射先将动物固定，腹部用酒精棉球擦试消毒，然后在左或右边腹部将针头刺入皮下，沿皮下向前推动约0.5厘米，再使针头与皮肤呈45 度角方向穿过腹肌刺入腹腔，此时有落空感，回抽无肠液、尿液后，缓缓推入药液。
此法大小鼠用的较多。
5. 静脉注射是将药液直接注射于静脉管内，使其随着血液散布全身，迅速奏效。
但排泄较快，作历时间较短。
①小鼠、大鼠的静脉注射：常采用尾静脉注射。
鼠尾静脉共有3根，左右双侧和背侧各1根，双侧尾静脉比较容易固定，故常被采用。
操作时，先将动物固定在暴露尾部的固定器内(可用烧杯、铁丝罩或粗试管等物代替)，用75％酒精棉球反复擦试使血管扩张，并可使表皮角质软化，以左手拇指和食指捏住鼠尾双侧，使静脉充盈，注射时针头尽可能采取与尾部平行的角度进针。
动物实验的给药方法
动物实验的给药方法动物实验是科学研究中常用的手段之一，包括给药方法也是其中重要的一环。
给药方法的选择要根据实验目的、动物品种和实验药物的特性来确定。
常见的动物给药方法有口服给药、皮下注射、静脉注射、肌肉注射、鼻腔给药、直肠给药等。
口服给药是最常用的给药方法之一，主要是通过动物口腔将药物吞进胃部。
这种方法适用于实验药物有散发性毒性的情况下，可以模拟人类正常的给药途径。
在进行口服给药时，需要将药物溶解在适量的溶剂中，然后使用注射器或针管将药物滴入动物的口腔内。
有些研究需要进行长期给药或者多次给药，此时可以选择制作悬浮液或植入胃管来实现给药。
皮下注射是将药物注射到动物皮下组织的一种给药方法。
这种方法适用于需要快速吸收的药物，有效地避免了药物被胃酸分解或者肝脏代谢。
在进行皮下注射时，需要选择合适的注射点和注射器。
在注射前要对注射点进行消毒，然后用一只手托住动物的皮肤，将针头垂直插入皮下组织中，注射药物。
静脉注射是将药物注射到动物的血管内的一种给药方法。
这种方法适用于需要药物迅速达到高浓度的实验，可以直接作用于全身，实现快速给药和作用。
在进行静脉注射时，首先需要选取合适的静脉注射位置，通常选择动物的尾静脉或耳朵静脉。
然后将注射器垂直插入静脉，慢慢注射药物。
肌肉注射是将药物注射到动物肌肉组织中的一种给药方法。
这种方法适用于需要药物长时间缓慢释放的实验，因为肌肉注射后，药物会渐渐被吸收。
进行肌肉注射时，需要选择注射点和注射器，并对注射点进行消毒。
然后将针头刺入肌肉中，慢慢注射药物，并轻轻按压注射点，促进药物的分布。
鼻腔给药是将药物给药到动物的鼻腔中的一种方法。
这种给药方法适用于需要药物快速作用于脑部或鼻腔的实验。
在进行鼻腔给药时，需要选择合适的给药装置，如鼻腔滴剂、鼻腔喷雾器等。
然后将药物滴入动物的鼻孔中，或者使用鼻腔喷雾器向鼻腔喷洒药物。
直肠给药是将药物直接放入动物的直肠中的一种给药方法。
这种方法适用于需要药物长时间缓慢吸收的实验，因为直肠给药可以实现药物的渐进吸收。
常用动物注射操作方法有
常用动物注射操作方法有
常见的动物注射操作方法有以下几种：
1. 皮下注射：将注射器插入动物的皮下组织层，并注射药物。
这种方法通常用于给动物注射小剂量的药物。
2. 肌肉注射：将注射器插入动物的肌肉组织中，并注射药物。
这种方法适用于注射中等剂量的药物。
3. 静脉注射：将注射器插入动物的静脉血管中，并注射药物。
这种方法通常要求操作者具备一定的专业技能，适用于注射大剂量的药物。
4. 输液注射：通过输液器将药物连续地注入动物的静脉血管中。
这种方法常用于给动物输液治疗或长时间给药。
需要注意的是，动物注射操作需要专业的技能和经验，以确保注射的安全和有效。
在进行任何注射操作之前，操作者应先洗手，准备好所需的注射器、药物和其他必要的器械或物品，并对动物进行适当的固定或束缚，以确保操作过程中的安全和稳定。
另外，注射操作后应对注射部位进行观察，注意药物是否被充分吸收以及是否出现异常反应。
如果有任何不适或疑问，应及时寻求兽医的帮助。
实验动物的给药途径和方法及药量计算方法
实验动物的给药途径和方法及药量计算方法实验动物给药途径和方法的选择是影响实验结果的重要因素之一、根据药物的性质和实验的目的，常用的给药途径包括经口给药、皮下注射、静脉注射、肌肉注射等。
下面将介绍各种给药途径和方法的原理、特点和适用范围，并简述药物给量的计算方法。
1.经口给药(口服给药)经口给药是实验中最常用的给药途径之一、药物通过口腔、食道、胃和肠道进入血液循环，对实验动物产生作用。
优点是简单易行，不需要特殊技术。
但经过胃肠道吸收的药物受到肠道酶和肝脏的一次进过效应。
2.皮下注射皮下注射是在动物的皮下组织中注射药物。
特点是便捷简单，对实验动物能够均匀吸收。
注射部位一般选择在背部的腰椎处。
3.静脉注射静脉注射是将药物直接注射到动脉或静脉血管中，使药物迅速进入循环系统。
该方法能够实现药物的快速作用，但需要特殊的技术和专业的操作，同时需要根据实验动物的体重和药物的性质掌握合适的给药速度。
4.肌肉注射肌肉注射是将药物注射到动物的肌肉组织中。
与皮下注射相比，肌肉注射的吸收更快且更完全，对实验动物的作用更持久。
通常将注射部位选择在大肌肉组织上，例如大腿肌肉。
药物给量的计算方法：药物给量的计算需要根据实验动物的体重、药物的浓度和给药途径进行合理估算。
给药量=目标血药浓度×剂量体积/药物浓度×动物体重其中，目标血药浓度是研究中设定的药物效果所需要达到的血药浓度；剂量体积是每次给药所需用到的药物体积；药物浓度是给药液体中药物的浓度；动物体重是实验动物的体重。
在实验中，根据药物的生物利用度和实际需要，还需要将计算得到的给药量按照一定比例进行折算。
此外，在药物给量计算中还需考虑到给药途径的生物利用度、药物代谢和排泄速度、给药次数等因素。
需要注意的是，给药量的计算只是一个初步估算值，实验中仍需根据动物对药物的反应及目标血药浓度进行进一步调整。
综上所述，实验动物的给药途径和方法、药物给量的计算方法是实验设计中重要的考虑因素。
动物给药方法及注意事项
动物给药方法及注意事项动物给药方法及注意事项动物给药方法是指在兽医临床工作中，为动物确诊和治疗疾病而采取的给药途径和方法。
正确的给药方法可以确保药物的有效吸收和作用，同时还可以减少给药过程中对动物的刺激和损伤。
以下是常见的动物给药方法及注意事项。
1. 口服给药：将药物放在动物的口中，并让其咽下。
这是最常见的给药方法之一，适用于小型动物和需要长期服药的情况。
注意事项包括：- 确保药物的剂量准确，避免药物过量或不足。
- 确保动物将药物全部吞咽，避免卡在食管或气管中。
- 有些药物可能需要在饭前或饭后给予，遵循兽医医嘱。
2. 注射给药：将药物注射到动物的肌肉、皮下组织或静脉中。
这是快速有效的给药方法，常用于急诊治疗和需要药物直接作用于循环系统的情况。
注意事项包括：- 必须严格遵守给药剂量和时间间隔，避免过量使用。
- 若是多种药物同时给药，要确保注射的部位、针头和注射器都是干净的，避免交叉感染。
- 对于动物来说，注射给药是一种刺激和疼痛的过程，需要专业的技术和细心的护理。
3. 浸泡给药：将动物浸入含有药物的溶液中，让药物通过皮肤吸收。
这种给药方法常用于对皮肤病或外寄生虫感染的治疗。
注意事项包括：- 确保溶液中的药物浓度合适，避免过度浓缩或稀释。
- 注意动物的皮肤完整性，避免在开放性伤口或糜烂区进行浸泡治疗。
- 浸泡时间和频率应遵循兽医医嘱，避免过度刺激和损伤皮肤。
4. 吸入给药：将药物以气溶胶或雾化的形式通过动物的呼吸道给予。
这种给药方法适用于呼吸系统疾病的治疗，可以直接作用于病灶。
注意事项包括：- 必须使用专业的吸入设备和药物溶液，确保药物的粒径和浓度符合治疗要求。
- 给药时要使动物保持平静和舒适，避免过度恐惧和焦虑。
- 给药时间和频率应遵循兽医医嘱，避免过度刺激呼吸道。
5. 外用给药：将药物涂抹在动物的皮肤表面或者患处。
这种给药方法适用于皮肤病、表浅创伤、外寄生虫感染等情况。
注意事项包括：- 确保药物的涂抹范围准确，避免涂抹到无关部位和眼睛等敏感区域。
动物各种投药法的介绍
液。经鼻插入 胃导管 ， 插入动作要轻 ， 严防损伤鼻道
黏 膜 。若 黏膜 损 伤 出血 时 ， 应拔 出 胃导 管 ， 将 动 物头 部 抬高 ， 并用 冷水 浇头 ， 可 自然止 血 。
２ 灌药瓶投药法
此种投药法是用灌药瓶将碾压粉碎 的调成糊剂 的药经 口投入。将动物保定在单桩或六柱栏 内， 抬高 动物 的 头部 ，用 灌 药瓶 或 灌 角装 上 需投 入 的糊 剂 药 物， 自口角齿间隙处向 口腔内插入灌药瓶嘴， 并 向舌 背面舌根部灌人 。灌药时严禁牵拉动物舌头， 以防影 响吞 咽 而造成误 咽。每 次灌 人 口腔 的药量 不可过 大 ， 灌 药过 灌入 量 过大 ， 容 易从 口腔
时可 观 察 到左 侧 颈静 脉 沟处 出现波 动 ，将 球 压 扁后
不再 鼓起 来 ， 证 明 胃导 管 已正确地 插入食 管 内。胃导 管端 连 接 漏 斗把 药 液倒 人漏 斗 内 ，举 高漏 斗 超 过动
物头部将药液灌人胃内。药液灌完后去掉漏斗 ， 用橡
皮球 再 向 胃导管 内打气 ，以排 净残 留在 胃管 内的药 液 。然 后将 胃导 管端折 叠 ， 缓缓抽 出 胃导 管 。 牛 的 胃管 投药 与马 属 动物 胃管投 药 相 似 ，但 牛 的鼻镜 十分 敏感 ， 可 让 助手 抓 住鼻 钳 ， 胃导 管经 鼻 道 插 入食 管 内。判 断方法 同马属 动物 。 犬 的 胃管 投 药 。进 行 安全 保定 后 ， 装 上 开 口器 ， 用 较 细 的投 药 管经 舌 背面 向咽腔 插入 。然后 继 续 向 深部 插入 即可顺 利 进入 食 管 内 ，用 连接 胃导管 的气
去。 一般将药物混合在饲料 中搅拌均匀即可。 拌料时 定要做到均匀 ， 如果搅拌不匀 ， 会造成有的没有吃
实验动物的给药途径和方法及药量计算方法
一．经口给药法(一)灌胃法此法给药剂量准确，就是借灌胃器将药物直接灌到动物胃内得·种常用给药法。
1．鼠类：鼠类得灌胃器由特殊得灌胃针构成.左手固定鼠,右手持灌胃器，将灌胃针从鼠得右U角中,插入口中,沿咽后壁慢慢插入食道，使其前端到达膈肌位置,灌胃針插入时应无阻力，如有阻力或动物挣扎则应退针或将针拔出，以免损伤、穿破食道或误入气管。
2.兔、犬等:灌胃一般要借助于开口器、灌胃管进行.先将动物固定，再将开口器固定于上下门齿之间。
然后将灌胃管（常用导尿管代替）从开口器得小孔插入动物口中，沿咽后壁而进入食道。
插入后应检查灌胃管就是否确实插入食道。
可将灌胃管外开口放入盛水得烧杯中，若无气泡产生,表明灌胃管被正确插入胃中,未误入气管。
此时将注射器与灌胃管相连，注入药液.(二）口服法口服给药就是把药物混入饲料或溶干饮水中让动物自由摄取.此法优点就是简单方便,缺点就是剂量不能保证准确,且动物个体间服药量差异较大。
大动物在给予片剂、丸剂、胶囊剂时，可将药物用镊子或手指送到舌根部，迅速关闭口腔，将头部稍稍抬高,使其自然吞咽.二、注射给药法（一）皮下注射皮卜注射一般选取皮下组织疏松得部位,大鼠、小鼠与豚鼠可在颈后肩胛问、腹部两侧作皮下注射;家兔可在背部或耳根部作皮卜注射;猫、犬则在大腿外侧作皮下注射。
皮下注射用左手拇指与食指轻轻提起动物皮肤，右手持注射器,使针头水平刺入皮下。
推送药液时注射部位隆起。
拨针时,以手指捏住针刺部位,可防止药液外漏。
（二）肌肉注射肌肉注射一般选肌肉发达，无大血管通过得部位。
大鼠、小鼠、豚鼠可注射大腿外侧肌肉；家兔可在腰椎旁得肌肉、臀部或股部肌肉注射；犬等大型动物选臀部注射.注射时针头宜斜刺迅速人肌肉,回抽针栓如无回血，即可注射。
（三)腹腔注射给大鼠、小鼠进行腹腔注射时,以左手固定动物，使腹部向上，为避免伤及内脏，应尽量使动物头处于低位,使内脏移向上腹,右手持注射器从下腹两侧向头方刺入皮下,针头稍向前,再将注射器沿4５角斜向穿过腹肌进入腹腔，此时有落空感，回抽无回血或尿液,即可注入药液。
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(1)混于饲料
即将药物均匀地拌人饲料中，让动物采食时， 同时吃进药物。 这种方法方便、简单，应激小，不浪费药物。 它适于长期用药、不溶于水的药物及加入饮水内适 口性差的药物。 对于病重动物或采食量过少时，不宜应用；颗粒料 因不宜将药物混匀，也不主张经料给药；链条式送 料时．因颗粒易被动物啄食而造成先后采食的动物 摄入的药量不同，也应注意。
(8)环境用药
在饲养环境中季节性定期喷洒杀虫剂， 以控制外寄生虫及蚊蝇等。为防止传染病， 必要时喷洒消毒剂，以杀灭环境中存在的病 原微生物。
(9)不同注射法
常用注射法分皮下注射和肌肉注射、静 脉注射等。
1、皮下注射
（1）注射部位 马、牛在颈侧中部；猪、羊可 在耳根外、股内侧、肘后；兔在耳后；犬在 肩胛部和臀部。 （2）剪毛消毒 剪毛后用5%碘酊消毒后，用 75%酒精棉球脱碘。 （3）注射方法 左手捏起注射部位皮肤使成皱 褶，右手持注射器由皱褶基部刺入2－3cm， 注入药液，拔出针头，用碘酊棉球消毒。
注意事项： ①准确掌握拌料浓度 混料给药时应按照混料给药剂量，准确、 认真计算出所用药物的量混入饲料内；若按 体重给药时，应严格按照动物群动物总体重， 计算出药物用量拌入全天饲料内。
②药物混合均匀 拌料时为了使动物能吃到大致相 等的药物数量．药物和饲料要混合均匀，尤其是一 些安全范围较小和用量较少的药物。 混合时切忌把全部药量一次投入所需饲料中进行搅 拌，这样不宜搅拌均匀，造成部分动物药物中毒而 大部分动物吃不到药物，达不到防治疾病的目的或 贻误病情。 可采用逐级稀释法，既把全部用量的药物加到少量 饲料中，充分混合后，再加型一定量饲料中，再充 分混匀，经过多次逐级稀释扩充，可以保证充分混 均。
(3)经口投服
适合于个别病动物治疗，如驱虫药需个 别投药预防或治疗。群体较小时，也通常采 用此法。这种方法虽费时费力，但剂量准确， 疗效较好。
（4)气雾给药
气雾给药是指使用能使药物气雾化的器械，将药 物分散成一定直径的微粒，弥散到空间中，让动物 通过呼吸道吸入体内或作用于动物羽毛及皮肤黏膜 的一种给药方法。也可用于动物舍、孵化器以及种 蛋等的消毒。使用这种方法时，药物吸收快，出现 作用迅速，节省人力，尤其适用于大型现代化养动 物场。但需要一定的气雾设备，且动物舍门窗应能 密闭，同时，当用于动物时，不应使用有刺激性药 物，以免引起动物呼吸道发炎。
3．猪的静脉内注射 耳静脉注射法：将猪站立或侧卧保定，耳静脉局部 剪毛、消毒。具体操作如下：一人用手压住猪耳背 面耳根部静脉管处，使静脉怒张，或用酒精棉反复 涂擦，并用手指头弹叩，以引起血管充盈。术者用 左手把持耳尖，并将其托平；右手持连接注射器的 针头或头皮针，沿静脉管的径路刺入血管内，轻轻 抽动针筒活塞，见有回血后，再沿血管向前进针。 松开压迫静脉的手指，术者用左手拇指压住注射针 头，连同注射器固定在猪耳上，右手徐徐推进针筒 活塞或高举输液瓶即可注入药液。注射完毕，左手 拿灭菌棉球紧压针孔处，右手迅速拔针。为了防止 血肿或针孔出血，应压迫片刻，最后涂擦碘酊。
②据动物可能的饮水量认真计算药液量 为保证全内绝大部分动物在一定时间内都饮到一 定量的药物水，不致于由于剩水过多造成摄入动物 体内的药物剂量不够，或加水不足造成饮水不匀， 某些动物饮入的药液量少而影响药物效果，应该掌 握动物群的饮水量，根据动物群的饮水量，然后按 照药物浓度，准确计算药物用量。先用少量水溶解 计算好后药物，待药物完全溶解后才能混入计算好 的水的容器中。
2、肌肉注射
（1）注射部位 马、牛多在颈侧中部和臀部； 猪常在耳根后、股内侧或臀部；羊在臀部和 股内侧；犬在臀部。 （2）剪毛消毒 剪毛后用5%碘酊消毒后，用 75%酒精棉球脱碘。 （3）注射方法 右手持针头垂直刺入后，接上 注射器注入药物，拔出针头，用碘酊棉球消 毒。针头刺入的深度应按家畜的大小和肥胖 程度而定。
③注意饮水时间和配伍禁忌 药物在水中时间与药效关系极大。有些药物放在 水中不受时间限制，可以全天饮用。 有些药物放在水中必须在短时间内用完，一般需 要断水2－3小时后给药，让动物在一定时间内充 分饮到药水。 多种药物混合时，一定要注意药物之间的配伍。 有些药物有协同作用，可使药效增强； 有些药物混合使用会增强药的毒性，有些药物混 合后会发生中和、分解、沉淀，使药物失效。
(5)体内注射
对于难被肠道吸收的药物，为了获得最 佳的疗效。常选用注射法。注射法分皮下注 射和肌肉注射两种。这种方法的特点是药物 吸收快而完全，剂量准确，药物不经胃肠道 而进入血液中，可避免消化液的破坏。适用 于不宜口服的有虱、螨等体外寄生虫，啄肛和 脚垫肿等外伤，可在体表涂抹或喷洒药物。
3、静脉注射
1．牛的静脉内注射 颈静脉注射法 ①保定；②消毒；③注射者用左手压迫颈静脉的近心端 （靠近胸腔入口处），或者用绳索勒紧颈下部，使静脉 回流受阻而怒张。确定注射部位后（颈静脉的下1/3与 中1/3的交界处的颈静脉上），右手持针头用力迅速地 垂直刺入皮肤（因牛的皮肤很厚，不易穿透，最好借助 腕力奋力刺入）及血管，若见到有血液流出，表明已将 针头刺人颈静脉中，再沿颈静脉走向稍微向前送入，固 定好针头后，连接注射器或输液瓶的胶管，即可注入药 液。④注射完毕，一手拿灭菌棉球紧压针孔处，另一手 迅速拔针并按压片刻。
(7)药物浸泡
浸泡种蛋用于消除蛋壳表面的病原微生物， 药物可以渗透到蛋内，杀灭蛋内的病原微生 物，以控制和减少某些经蛋传递的疾病。常 用的方法是变温浸蛋法。把种蛋的温度在3— 6h内升至37～38度，然后趁热浸入4—15 度的抗生素药液中，保持15min，利用种蛋 与药液之间的温差造成的负压使药液被吸入 蛋内。这种种蛋的药物处理方法常用来控制 沙门氏菌、霉形体、大肠杆菌等病原。
2．犬的静脉内注射 前臂皮下静脉(也称头静脉)注射法：此静脉位 于前肢腕关节正前方稍偏内侧。犬可侧卧、伏卧或 站立保定，助手或犬主人从犬的后侧握住犬的肘部， 使皮肤向上牵拉和静脉怒张，也可用止血带或乳胶 管结扎，使静脉怒张。操作者位于犬的前面，注射 针由近腕关节1／3处刺入静脉，当确定针头在血管 内后，针头连接管处见到回血，再顺静脉管进针少 许，以防犬骚动时针头滑出血管；松开止血带或乳 胶管，即可注入药液，并调整输液速度。静脉输液 时，可用胶布缠绕固定针头。注射完毕，以干棉签 或棉球按压穿刺点，迅速拔出针头，局部按压或嘱 畜主按压片刻，防止针孔出血。
（2)混水给药
混水给药就是将药物溶解于水中让动物 自由饮用。 此法适合于短期用药、紧急治疗、动物 不能采食但尚能饮水时的投药。易溶于水的 药物混水给药的效果较好。饮水投药时，应 根据药物的用量，事先配成一定浓度的药液， 然后加入饮水器中，让动物自由饮用。
混水给药时注意如下事项： ①注意药物的溶解度和稳定性 对油剂及难溶于水的药物不能采用饮水给药。 对于一些微溶于水的药物和水溶液稳定性较差的药 物可以采用适当的加热、加促溶剂或现用现配、及 时搅拌等方法，促进药物溶解，以达到饮水给药的 目的。 饮水的酸碱度及硬度对药物有较大的影响，多数抗 菌素在偏酸或碱的水溶液中稳定性较差，金属离子 也可因络合而影响药物的疗效。