藻类生物学实验11海科
藻类试验总结报告范文(3篇)
第1篇一、试验背景随着全球气候变化和环境污染问题的日益严峻，生物能源的开发和利用成为了缓解能源危机和减少温室气体排放的重要途径。
藻类作为一种高效的光合生物，具有生长周期短、生物质产量高、CO2吸收能力强等特点，被广泛认为是一种极具潜力的生物能源。
为了探索和优化藻类生物能源的生产技术，我们开展了本次藻类试验。
二、试验目的1. 探究不同藻类品种的生长特性和生物量积累情况。
2. 评估不同光照强度、温度、营养盐浓度等环境因素对藻类生长的影响。
3. 优化藻类培养条件，提高生物量产量和油脂含量。
4. 研究藻类培养过程中的水质变化，为水质管理提供依据。
三、试验材料与方法1. 试验材料- 藻类品种：小球藻（Chlorella pyrenoidosa）、绿藻（Chlorophyta）、蓝藻（Cyanobacteria）等。
- 培养基：BG-11培养基。
- 光照设备：LED光源。
- 温度控制器：水浴恒温箱。
- 营养盐：硝酸钾、磷酸二氢铵等。
- 分析仪器：分光光度计、质谱仪、气相色谱-质谱联用仪等。
2. 试验方法（1）藻类培养将藻类种子接种到BG-11培养基中，置于光照强度为200-800 μmol·m²·s⁻¹、温度为25-30℃的条件下培养。
（2）环境因素试验分别设置不同光照强度、温度、营养盐浓度等环境因素，观察藻类生长情况。
（3）生物量测定通过称重法或体积法测定藻类生物量。
（4）油脂含量测定采用索氏抽提法提取藻类油脂，并通过气相色谱-质谱联用仪分析油脂成分。
（5）水质分析定期检测培养液中的pH值、溶解氧、营养盐含量等指标。
四、试验结果与分析1. 不同藻类品种的生长特性通过对比试验，我们发现小球藻在生长速度和生物量积累方面表现最佳，其次是绿藻和蓝藻。
2. 环境因素对藻类生长的影响（1）光照强度：在一定范围内，光照强度越高，藻类生长速度越快。
但当光照强度超过一定阈值后，藻类生长速度反而下降。
绿藻观察实验报告
一、实验目的1. 通过观察绿藻的结构和功能，了解其作为光合作用重要参与者的生物学特性。
2. 掌握显微镜的使用方法，提高观察和实验技能。
3. 深入理解绿藻在生态系统中的地位和作用。
二、实验原理绿藻是一类广泛分布于水生和陆生环境中的单细胞或多细胞藻类植物。
它们通过光合作用将太阳能转化为化学能，为自身和生态系统提供能量来源。
绿藻细胞具有叶绿体，叶绿体中的叶绿素能吸收光能，进行光合作用。
本实验旨在观察绿藻的细胞结构、叶绿体形态和分布，以及光合作用的相关现象。
三、实验材料与用具1. 实验材料：新鲜绿藻、载玻片、盖玻片、滴管、镊子、刀片、培养皿、铅笔。
2. 实验用具：显微镜、显微镜载物台、显微镜光源、显微镜目镜、显微镜物镜。
四、实验步骤1. 制作绿藻临时装片（1）取少量新鲜绿藻，用镊子轻轻夹取，放入载玻片中。
（2）用滴管向载玻片上的绿藻滴加适量的蒸馏水，使绿藻细胞充分展开。
（3）用盖玻片轻轻盖在载玻片上，确保盖玻片与载玻片之间无气泡。
2. 观察绿藻细胞结构（1）将载玻片置于显微镜载物台上，调整光源，使视野明亮。
（2）使用低倍物镜，观察绿藻细胞的整体结构，如细胞壁、细胞质、细胞核等。
（3）使用高倍物镜，进一步观察细胞壁、细胞质、细胞核等结构的细节。
3. 观察叶绿体形态和分布（1）调整显微镜，使叶绿体位于视野中央。
（2）观察叶绿体的形状、大小、分布情况，以及叶绿体内叶绿素的分布。
（3）比较不同绿藻的叶绿体形态和分布差异。
4. 观察光合作用现象（1）将载玻片置于光照条件下，观察绿藻细胞质中气泡的产生情况。
（2）调整显微镜，观察气泡的形状、大小、产生速度等特征。
（3）比较不同绿藻光合作用现象的差异。
五、实验结果与分析1. 绿藻细胞结构实验观察到绿藻细胞具有细胞壁、细胞质、细胞核等基本结构。
细胞壁为绿色，具有保护细胞和维持细胞形态的作用；细胞质内含有叶绿体，是进行光合作用的主要场所；细胞核位于细胞中央，负责细胞的遗传信息传递。
生物藻类实验报告单(3篇)
第1篇实验名称：藻类的分离和培养实验日期：____年__月__日实验地点：____实验室实验者姓名：______合作者姓名：______一、实验目的1. 学习藻类的分离和培养方法。
2. 了解藻类的生长条件和繁殖方式。
3. 掌握显微镜观察藻类细胞的基本技能。
二、实验原理藻类是一类生活在水中的光合作用生物，它们通过光合作用将无机物转化为有机物，是生态系统中的重要组成部分。
藻类的分离和培养是研究藻类生物学的重要手段，通过培养藻类，可以观察其生长过程、繁殖方式以及环境因素的影响。
三、实验材料与用具1. 材料：- 水生生物培养槽- 玻璃片（面积稍大于培养槽）- 橡皮管- 显微镜- 三角烧瓶- 试管- 筛绢- 棉塞- 微吸管- 凹玻片- 灭菌锅- 载玻片- 吸管- 培养皿- 人工光源- 木盆（或小型实验池） - 充二氧化碳气钢瓶- 抽气泵- 离心机2. 药品：- 土壤抽出液- 青霉素- 链霉素- 琼脂- 硝酸钙- 磷酸二氢钾- 磷酸氢二钾- 过磷酸钙- 硫酸镁- 氯化钾- 碳酸钠- 三氯化铁- 硅酸钠- 葡萄糖- 蛋白月东- 硫酸鞍- 硝酸鞍- 氯化鈣- 碳酸氢钠- 钳酸- 氯化钠- 柠檬酸铁- 硫酸镒- 人尿- 海泥抽出液- 食盐四、实验步骤1. 藻类的采集：从静水或水流缓慢的河流中采集藻类样品。
2. 藻类的初步处理：将采集到的藻类样品用筛绢过滤，去除杂质。
3. 藻类的分离：将过滤后的藻类样品用微吸管吸取少量，滴在载玻片上，盖上盖玻片，用显微镜观察，根据藻类的形态和大小进行分离。
4. 藻类的培养：- 将分离好的藻类放入三角烧瓶中，加入适量的培养液。
- 将三角烧瓶放入培养槽中，用人工光源照射。
- 定期观察藻类的生长情况，并记录数据。
5. 藻类的繁殖：当藻类生长到一定数量时，可以进行繁殖，将藻类样品稀释后重新培养。
五、实验结果与分析1. 藻类的分离：通过显微镜观察，成功分离出不同形态和大小的藻类。
2. 藻类的培养：在适宜的培养条件下，藻类生长良好，数量不断增加。
实验十绿藻门、轮藻门
实验十 绿藻门、轮藻门
3．丝藻属Ulothrix 属丝藻目，丝藻科。多固着生长在清洁流水的石头 或水中其它物体上，丛生呈深绿色绒毡状。采集时 需用小刀固着物上刮下，以保持固着器的完整。用 镊子取少量藻制成水装片，在显微镜下观察以下各 项特征： (1) 藻体形态和细胞结构：丝藻为单列细胞组成的不 分枝的丝状体，基部分化为固着器，比较营养细胞 与固着器的区别。营养细胞长圆柱形，有一个大型 环带状的载色体，加一滴I—KI溶液，可看出载色体 上的蛋白核和位于细胞中央的细胞核。 (2) 生殖方式：有时将所采材料放入蒸馏水中，数小 时后可观察到具2—4条鞭毛游动的孢子和4条鞭毛的 游动配子。
以上均可结合永久装片观察。
实验十 绿藻门、轮藻门
四、作业 1．绘出衣藻的细胞结构，示细胞壁、细胞质、细胞核、载色体、蛋白核、 伸缩泡、眼点和鞭毛。 2．绘出水绵的一个细胞结构，示细胞壁、细胞质、细胞核、载色体、蛋白 核、原生质和中央大液泡。 3．绘出水绵梯形接合生殖各个时期，示产生突起、形成接合管和配子、配 子接合和合子形成过程。 4．绘出轮藻一段短枝，示短枝上的刺状突起、精子囊及卵囊。 五、思考题 1、试述绿藻门的主要特征，说明绿藻在形态、结构、生殖方式和生活史等 方面的演化趋势。 2．比较绿藻门和轮藻门的异同，解释把轮藻从绿藻门中独立为门的原因。 3．解释下列名词：
(2) 取一段有轮生短枝的茎制成装片，在低倍显微镜下观察节和节间细胞的形 状，比较节和节间细胞在长度和形状上的不同。观察节间细胞时，要仔细辨 认节间中央的大细胞，即中央细胞，中央细胞周围是一层细长的皮层细胞。 为了更清楚地观察，可制作透明标本。方法是把要观察的材料放入2—3％盐 酸或醋酸溶液中，浸泡数分钟后取出，用清水洗涤后装片观察。还可做横切 片观察中央细胞与皮层细胞的关系。
海洋生物学实验_海藻实验报告3
实验科目：海洋生物学实验实验题目：微藻形态结构观察与玻片制作实验时间：周日3-4节上课时间：周日3-4节一、实验目的1.通过对硅藻、甲藻、裸藻等微藻代表种的实验观察，掌握各门的主要特征。
2.学习硅藻玻片制作技术。
3.了解微藻的分离纯化技术。
二、实验原理各种微藻不同的形态，结构特征。
三、实验材料，用品，方法（一）、硅藻，甲藻及甲藻代表种的观察1. 实验材料：裸藻、硅藻的小环藻、舟形藻、扁形藻、羽纹藻及直链藻装片；活体或鲁格试剂固定样品。
2. 实验内容：高倍显微镜下观察并照相。
（二）、硅藻玻片的制作1. 实验材料：采集的新鲜海水及表层底质样品，福尔马林溶液，碘-碘化钾2. 实验内容：(1).用吸管吸取少量样品置于载玻片中央，盖上盖玻片，在显微镜下观察。
(2).硅藻永久片的制作学习：冲洗、离心，去除上层液，收集藻类与管底，加H2SO4或洗涤剂处理以去除细胞内有机物，清洗使成为白色硅藻粉末。
取含白色硅藻粉末的液体一滴滴在盖玻片上，烘干后，有藻的一面向下覆盖在载玻片上，制成玻片，以pleurax封片，或用硅藻胶处理制成硅藻永久装片。
(3).光学显微镜下观察拍照。
（三）、微藻的分离纯化1. 实验材料：采集的新鲜海水及表层底质样品：F/2海水培养液及培养基2. 实验内容：(1).稀释分离法：应用24孔板/离心管，倍数法稀释样品液3-5次，取最后3-5次稀释液滴入溶解的琼脂培养基中，充分混匀，一起凝固，待单藻落出现，直到得到单一种；或镜检最后稀释液吸取单胞藻至液体培养基中培养。
(2).平板分离法：取样品液，均匀涂布在平板培养基表面，封口培养，单藻落出现时分离，得均匀种。
(3).毛细管吸取分离法(4).密度梯度离心分离法(5).抗生素或其他生物抑制剂分离法五、实验结果1. 螺旋藻属Spirulina主要特征：藻体为单细胞或多细胞组成的圆柱形螺旋状的丝状体，单生或集群聚生，螺旋数2-7个。
藻体可以颤动和旋转运动，常像围绕着一个纵轴似地很快旋转，向前爬行。
天津科技大学海洋生物综合实验讲义
2012级海洋生物综合实验实验指导书隋丽英袁春营邓元告刘洪艳张波编写海洋科学与工程学院海洋科学系2013年10月第一部分浮游动植物培养实验一单细胞藻类的培养一、实验目的1、了解单细胞藻类培养基的主要成分及培养基的制备2、掌握单细胞藻摇瓶培养技术二、实验内容单细胞藻类培养基的配制；单细胞藻类的摇瓶培养技术。
三、实验原理和方法藻类是无胚的放氧光合生物，本实验介绍的细胞培养方法，主要基于藻类细胞进行放氧光合作用这种主要功能。
藻类与微生物培养有相似之处，在固相平板上分离、纯化和保种，在液相中采用通气和振荡方法促进繁殖。
四、实验条件1、实验仪器：分光光度仪、灭菌锅、光照培养箱或光照摇床、电子天平、显微镜等。
2、实验材料：杜氏盐藻（Dunaliella salina）3、药品和试剂：Walne培养基：以0.1%比例加入海水培养基中，配方如下。
每组学生：250ml锥形瓶2个，皮筋，100ml量筒，1ml 移液器或刻度吸管，200ul移液器。
五、实验步骤1、将已培养好的对数生长期的盐藻藻种接入装有100mL Walne培养基的250ml锥形瓶中，接种量约为5%。
2、将已接种的锥形瓶置于光照培养箱中静置培养（每隔一段时间摇晃一次），光照强度为60 μmol photons/m2.s，温度23-25℃。
3、藻细胞生长的测定：每隔一天测一次吸光值OD674或进行细胞计数，测一周左右（约2-4天进入对数期）。
4、绘制生长曲线。
实验二轮虫的孵化、培养及生长繁殖测定一、实验目的了解浮游动物轮虫的孵化、培养和生长繁殖的测定方法。
二、实验内容1、轮虫休眠卵的孵化和孵化率测定2、用单胞藻培养轮虫3、轮虫生长和挂卵量的测定三、实验原理和方法四、实验条件1、实验仪器：250mL锥形孵化管、恒温水浴槽、电加热棒、充氧泵和气管、解剖镜2、实验材料：轮虫休眠卵、小球藻培养液、天然海水、卢戈氏固定液等五、实验步骤张波老师上课用第二部分藻类DNA的提取和PCR扩增实验三单细胞藻总DNA的提取一、实验目的学习提取藻类总DNA提取的方法。
海洋科学实验报告(3篇)
第1篇一、实验目的本次实验旨在通过实际操作，让学生了解海洋科学的基本原理，掌握海洋生物学和物理学的基本实验方法，提高学生的动手能力和科学探究能力。
同时，通过实验活动，激发学生对海洋科学的兴趣，加深对海洋生态环境的认识。
二、实验内容本次实验共分为四个部分：海洋生物观察、海洋化学分析、海洋地质探测和海洋物理学实验。
1. 海洋生物观察实验材料：采集的海洋生物样本、显微镜、培养皿、解剖刀等。
实验步骤：（1）采集海洋生物样本，包括浮游生物、底栖生物等。
（2）将样本放置在培养皿中，用解剖刀进行解剖，观察内部结构。
（3）利用显微镜观察样本的细胞结构、形态等特征。
实验结果：通过观察，我们了解了海洋生物的多样性，掌握了海洋生物的基本结构。
2. 海洋化学分析实验材料：海水样本、滴定管、pH试纸、氯离子检测试剂等。
实验步骤：（1）采集海水样本。
（2）使用滴定管滴定海水样本中的氯离子含量。
（3）利用pH试纸检测海水样本的酸碱度。
实验结果：通过实验，我们掌握了海水化学成分的基本知识，了解了海洋环境的酸碱度和氯离子含量。
3. 海洋地质探测实验材料：沉积物样本、地质锤、筛网、显微镜等。
实验步骤：（1）采集沉积物样本。
（2）将样本用筛网进行筛选，分离出不同粒径的颗粒。
（3）利用地质锤对样本进行破碎，观察颗粒的形态、结构等特征。
（4）利用显微镜观察颗粒的内部结构。
实验结果：通过实验，我们了解了海洋沉积物的特征，掌握了海洋地质学的基本知识。
4. 海洋物理学实验实验材料：波浪模拟装置、海水样本、温度计、盐度计等。
实验步骤：（1）利用波浪模拟装置模拟海洋波浪。
（2）采集海水样本，测量其温度和盐度。
（3）观察波浪对海水温度和盐度的影响。
实验结果：通过实验，我们了解了海洋波浪的特性，掌握了海洋物理学的基本知识。
三、实验总结本次海洋科学实验使我们受益匪浅。
通过实际操作，我们掌握了海洋生物学、化学、地质学和物理学的基本实验方法，提高了我们的动手能力和科学探究能力。
实验一、海洋微藻的培养、观察与计数
实验一、海洋微藻的培养、观察与计数第一部分环境生物学实验黄健实验一、海洋微藻的培养、观察与计数一、实验目的:1、通过实验了解藻类生长的基本条件和方法，掌握海洋微藻的基本培养方法;2、显微镜下观察并识别几种常见海洋微藻;3、了解血球计数板的计数原理，掌握血球计数板的计数方法。
二、实验材料:亚心形扁藻、小球藻、叉鞭金藻;三、主要实验仪器和器皿,(显微镜，血球计数板，计数器,(培养瓶(三角瓶)，量筒;四、试剂,(培养液: f/2培养液,(碘固定液五、培养条件:光照强度:1200Lux、温度:20-23?、盐度:3%、光照时间:黑暗/光照=12/12六、方法和步骤1、前期准备:各种器皿的消毒、培养液的配制、准备并培养3种不同的海洋微藻:亚心形扁藻、小球藻、叉鞭金藻;2、接种:将不同的实验藻种分别接种到盛有培养液的不同三角瓶(100ml)中,接种的藻容量和新培养液之间的比例为1:2,1:3。
培养量与总容量的比小于2/3;3、培养 :按上述培养条件进行培养，在培养的过程中，每天摇瓶3次，使藻类充分见接触氧气和光照;4、换代:5-7天换代1次，换代浓度同上;5、固定:将藻液摇匀，用小三角瓶分别倒取一定量(20-30ml)的上述3种藻液加入几滴碘液，摇匀杀死细胞;6、取样:摇匀后，用吸管吸取上述不同的藻液分别滴到盖有盖玻片的学球计数板的边缘，使藻液慢慢进入盖有盖玻片的区域，避免盖玻片浮起，用吸水纸轻轻吸走多余的藻液，每种藻液取样2次; 7、观察计数:显微镜下观察不同的藻种并分别计数。
1)血球计数板计数原理血球计数板是一块特制的载玻片，板的中部一“H” 型的凹槽，横槽两边的平台上各有一个有九个大方格的方格网。
每个大格:边长-4为,,,，深为0.1mm，容积为0.1mm3(10ml)。
中间大方格为计数室以计数室为中心，对角线两端各有一个有16个中格组成的大格。
2)计算藻细胞密度数出对角线上的4个大方格中的总藻数A，若藻液的稀释倍数为B，则计算公式如下:A4细胞密度,????×B×10(个,ml)4单位:个,ml七、实验结果按下表记录实验数据。
海洋生物技术试验
细胞一次（ 1000×g,5min ）。在相同的 MBM 液中 加入1% 纤维素酶和 0.5% 的离析酶。将洗好沉淀 的细胞在 10ml上述加酶的培养液中悬浮。 （3）在振荡器上缓慢振荡（ 20-30次/min ）细胞悬 浮液，30℃保温，1000-2000lx 光照。
海洋微藻因其细胞壁组成的明显差异，原生 质体的分离方法很多，例如蓝绿藻的细胞壁含有 粘肽，因而可以用溶菌酶处理获得蓝绿藻细胞的 原生质体。绿藻的细胞壁主要成分是纤维素，所 以可以用纤维素酶处理而获得原生质体或原生质 球。硅藻和甲藻因其特殊的细胞壁组成和结构， 可用去污剂或富含有机物但缺乏二价阳离子的溶 液处理而达到分离原生质体的目的。红藻和褐藻 则可用多糖酶消化细胞壁成分来制备原生质体。 尽管有这样多的方法，但目前普遍采用的方法是 酶解的方法。
实验步骤
1、分离制备的C.ellipsoidea C-87原生质体（Ficoll中），用两 倍体积的液体再生培养基稀释；
2、离心沉淀原生质体（1000×g,5min ），弃去上清液，用液 体再生培养基再洗涤一次；
3、用相同的培养基将原生质体重新悬浮。用血球计数板计数， 使细胞密度达到5×107个/ml ；
仪器与试剂
1、仪器
采用的仪器与原生质体培养相同。
2、藻株
C.ellipsoidea C-87 细胞（5×107个/ml细胞）经 紫外线或 X射线处理（ 99% 死亡）后，接种于含 葡萄糖的 MBM 平板培养基上，置暗处培养 4-7d 后， 分离色素变异株（黄色 Yel和白色Whi ）。检测稳 定性以及培养条件对色素变化的影响，分为不同 的类型。
海洋生物学实验_海藻实验报告2
实验科目：海洋生物学实验实验题目：青岛沿海主要大型海藻分类鉴定实验时间：周日3-4节上课组号：周日3-4节第4组一、实验目的通过对青岛潮间带海藻的采集与分类鉴定，使学生熟悉主要海藻，掌握形态分类的基本方法。
了解常见海藻的生态分布及基本形态特征。
二、实验原理各种海藻不同的形态，结构特征。
三、实验材料及用品1.实验材料：采集新鲜海藻；2.实验器具：镊子,刀片,载玻片,盖玻片,滴管3.实验仪器：实体显微镜、光学显微镜4.鉴定参考资料：青岛沿岸主要大型海藻(PPT)；《中国黄渤海海藻》等四、实验方法1.观察新鲜海藻的大小、叶状体、分枝、固着器等外部形态，叶状体上生殖器官(果孢子囊等)的有无等；2.切片观察海藻叶状体的横切面或纵切面细切片观察海藻叶状体的横切面或纵切面细胞结构，了解其内部结构；有繁殖孢子的观察孢子形态。
五、实验结果1. 蜈蚣藻Grateloupia filicina分类地位：红藻门真红藻纲隐丝藻目海膜科蜈蚣藻属蜈蚣藻主要特征：藻体直立，单尘或丛生，基部具小盘状固者器，紫红色，黏滑，主枝亚圆杆形或扁平，直径2-5mm，2-3次羽状分枝，下部分枝较长，上部的较短，小枝对生、互生或偏生，基部不溢缩，有的分枝在藻体表面生出，主枝不中空。
生态分布特性：生于外海及浪较大的中潮带岩石上或石沼中或大干潮线附近的岩礁上或低潮带石上和石沼中。
我国沿海均有分布。
2. 鼠尾藻Sargassum thunbergii分类地位：褐藻门圆子纲墨角藻目马尾藻科马尾藻属鼠尾藻主要特征：藻体黑褐色，形似鼠尾。
主干短粗，上长数条主枝。
主枝圆柱形，数条纵走浅沟。
轮生短小分枝，叶丝状，短小，全缘或有粗锯齿。
气囊小，纺锤形，顶尖，有细柄。
鼠尾藻的生活史类型属于二倍体单相世代，没有一般藻类植物的世代交替，缺少配子体阶段。
雌雄异株，自然繁殖方式有有性繁殖和营养繁殖两种。
生态分布特性：生长在中潮带岩石上或石沼中。
全年可见，生长盛期3—7月。
藻类生物学实验海科
实验一大型海藻种类形态观察<4学时第八周）一、实验目的了解海洋藻类----大型海藻与微藻的形态与分类。
二、实验材料及用具1、实验材料：1）大型海藻标本<学院标本室）；2）海带孢子体<可用干海带泡发），江篱<海洋学院附近打捞）；<取一部分冻存于-20冰箱，作为叶绿素提取实验的材料）b5E2RGbCAP2、实验器材：显微镜、胶头滴管<每瓶藻一支）、盖玻片、载玻片、刀片<做海藻切片）。
4、试剂：70%乙醇<每组一瓶）三、实验步骤1、大型海藻标本观察；将标本馆的拉丁文名抄录下来，网上检索图片和分类。
2、海带的外部形态观察：藻体明显分为固着器、柄部和叶片，在叶片中央有两条平行纵走的浅沟，孢子体幼龄期叶面平滑，小海带期叶片出现凹凸现象，大海带期叶面则平直宽厚。
p1EanqFDPw3、海带的内部构造：①用徒手切片的方法，取一小块孢子体进行横切片，在显微镜下观察：孢子体的柄和叶均分为表层、皮层和髓部。
②同样取一小块孢子体进行纵切片，在显微镜下观察：表皮层由1-2层排列紧密的小细胞组成，外皮层细胞间分布1-2层粘液腔，其腔内有分泌细胞，髓丝细胞一端膨大为喇叭花，分生细胞位于叶片与柄之间。
DXDiTa9E3d4、江蓠的内部构造观察：①江蓠的纵切面。
②江蓠的横切面。
③江蓠囊果横切面。
5、紫菜的形态与构造：干紫菜先用水浸泡散开，再进行观察。
固着器：由根丝集合而成。
叶状体：由一层或两层细胞构成。
柄：叶状体基部与固着器之间的部分。
四、作业：1、绘制大型海藻图：选5个标本，注明拉丁文名，简要说明其生物学特性<利用拉丁文名进行网上检索）。
2、绘出海带和江篱的内部构造，紫菜的外形。
附1：江篱与海带的内部构造图1. 江篱藻体的内部构造A.藻体横切面观；B.藻体纵切面观；1表皮；2髓部细胞 3表皮细胞图2. 海带构造A.海带孢子体横切面；B.髓部，C.示喇叭丝；皮层部分横切面，示粘液腔道形成的时期；D.成体横切面，示粘液腔道；co皮层；e分泌细胞；hg藻丝；me髓部；m表面分生细胞；s分泌腔；v.b.f结合的喇叭丝RTCrpUDGiT实验二微型海藻形态观察和培养<4学时，第九周）一、实验目的观察几种重要经济微藻的形态特征，几种掌握单细胞微藻的实验室培养方法，细胞生长曲线观察。
实验十二藻类植物的观察
实验十二藻类植物的观察藻类是植物界中最低等、最简单的类群。
藻类植物的最主要的特征是形态多样，结构简单，无根茎叶的分化，生殖方式各式各样主要生活在水中，均为光合自养生物。
一、实验目的1．通过对藻类代表属的观察，掌握藻类的特征2．识别藻类的常见种类，学会观察和鉴定藻类植物的基本方法。
二、器材和试剂1，植物材料蓝藻门、绿藻门、硅藻门、褐藻门、红藻门的常见种类等。
2，实验器材显微镜、解剖针、镊子、载玻片、盖玻片、烧杯和培养皿等。
3．实验试剂I2—KI溶液、0.1%亚甲基蓝水溶液。
三、重点与难点重点：藻类的特征难点：观察和鉴定藻类植物四、操作步骤（一）蓝藻门中最常见的颤藻属和念珠藻属为代表观察。
1．颤藻属（Oscillctorio）此属分布最为广泛。
污水沟和湿地上最多，温暖季节生长最旺盛，常在浅水底形成一层蓝绿色膜状物，或成团飘浮在水面上。
一年四季都可采到。
为了得到干净的实验材料，可在实验的前一、两天将采来的材料放在小烧杯的水中，它们可借滑行、摆动而移到杯壁上。
用小镊子或解剖针挑取杯壁上的蓝绿色丝状物，置于载玻片的一滴水中，盖上盖玻片，制成临时装片，在显微镜下进行观察。
（1）藻体的形态和运动颤藻是由一列细胞组成的不分枝的丝状体。
注意观察颤藻是如何运动的？理解颤藻名字的由来。
（2）细胞结构在低倍镜下选择丝状体较宽、细胞界限较清楚的种类，然后换高倍镜仔细观察。
其藻丝是由单列细胞所组成，无异形胞。
注意两端的细胞有何特点？注意区分藻丝中的死细胞和隔离盘。
死细胞和隔离盘均为双凹形，但死细胞是空的，在镜下看起来发亮；而隔离盘内含胶质，色深绿。
死细胞和隔离盘所间隔的一段藻丝是一个藻殖段。
想想藻殖段有何作用？随后，从盖玻片一侧加一滴0.1％亚甲基蓝水溶液，染色后在高倍镜下观察。
中央质被亚甲基蓝染成深蓝色，可与色素质区分开。
另挑取少量颤藻新鲜材料于载玻片上做成临时装片，并从侧面加一滴I2—KI溶液，可观察到蓝藻淀粉粒变为红褐色。
藻类实习报告实习报告
藻类实习报告实习报告篇一：水生生物学实习报告云南农业大学实习报告学院：动物科学技术学院专业：水产养殖年级：学生学号：2011310305 学生姓名：胡仁云指导教师：王晓雯实习地点：滇池、盘龙江、松花坝、田溪公园日期：2013年7月1日至10日目录前言......... ...... ...... ...... .... ...... ... ...... ... ...... ...... ...... ...... ...... ... .. (3)一、分组情况................................................................................................. .. (4)二、实验目的................................................................................................. .. (4)三、实验准备................................................................................................. .. (4)1.了解实验................................................................................................. .. (4)2.简易采水器制作................................................................................................. .. (4)四、实验流程................................................................................................. .. (4)1.浮游植物实验流程................................................................................................. . (4)2.浮游动物实验流程................................................................................................. . (5)五、实验器材及药品................................................................................................. .. (5)六、采样方法及步骤................................................................................................. (5)七、标本制作................................................................................................. .. (6)1.动物标本制作................................................................................................. (6)2.植物标本制作................................................................................................. (6)八、鉴定方法................................................................................................. .. (6)九、实验成果................................................................................................. .. (7)1.水生动物................................................................................................. .. (7)1）.大型水生动物................................................................................................. . (7)2）.浮游动物................................................................................................. . (10)2.水生植物................................................................................................. (12)1). 挺水植物................................................................................................. . (12)2).浮叶植物..................................................(转载于: 在点网).. (15)3).沉水植物................................................................................................. (16)4).漂浮植物................................................................................................. (16)十、心得体会................................................................................................. (17)十一、参考文献................................................................................................. .. (18)十二、附录................................................................................................. . (19)前言实习，一个让人充满激情的词！理论和实践相结合来学习才是真正的大学！对于任何一位大学生来说，实习是一个很关键的学习内容，也是一个很好的锻炼机会。
藻类
实验项目十一藻类植物的观察
【实验目的】
1. 通过对代表植物的观察，掌握蓝藻门、绿藻门、红藻门、褐藻门的主要特征，了解它们在植物界的演化地位。
2.学会识别一些常见的藻类，并学习鉴定藻类的基本方法。
【实验用具】
显微镜、载玻片、盖玻片、吸管、放大镜。
【实验材料】
新鲜材料：池塘水、水沟水、海水等。
永久制片：颤藻属、鱼腥藻属、衣藻属、团藻属、水绵属及紫菜、海带植物标本。
【实验内容】
1.取各种水体材料做临时制片→低倍镜观察→高倍镜观察。
2.观察颤藻属、鱼腥藻属、衣藻属、团藻属、水绵属的永久制片及紫菜、海带植物标本。
【结果与分析】
1.绘颤藻丝状体的一段，示营养细胞和藻殖段等结构。
2.绘鱼腥藻的丝状体，示营养细胞、异细胞、厚壁孢子、藻殖段等结构。
3.绘水绵梯形结合生殖主要过程图。
4.绘衣藻的细胞结构，注明各部分名称。
【讨论与思考】
蓝藻对人类生活有何意义?
【作业】完成实验报告
注意要点：取材尽量广泛些。
水生生物学实验-PowerPointPresentat
央有一圆孔，伪足由此伸出。 3．砂壳虫(Difflugia)：具有椭圆形的壳，壳面附有许多细
沙，常可看到伪足自壳口伸出。 4．有孔虫(Foraminifera) (各种壳的装片)：虫体具多室的 石
回答就会多种多样。
2021/3/10
四、方法步骤
1．观察三种动物的外形，再观察它们的内部结构， 看看它们各自有什么特点，它们有没有相同的
地 方。
2．引导学生讨论观察结果，首先应让学生对所观察 的动物进行描述，从形态到结构，三种动物都要 描述，目的是锻炼学生的表达能力，只有认真观 察才能够准确地描述，通过描述强化学生对所观 察动物的印象，为下一步的讨论做好准备。
2021/3/10
2．草履虫的外形与运动
草履虫形似倒置草鞋底，前端钝圆，后端稍尖，体 表密布纤毛，体末端纤毛较长。
从虫体前端开始，体表有一斜向后行直达体中部的 凹沟称口沟，口沟处有较长而强的纤毛。
游泳时，草履虫全身纤毛有节奏地呈波状依次快速 摆动，由于口沟的存在和该处纤毛摆动有力，而使 虫体绕其中轴向左旋转，沿螺旋状路径前进。
2021/3/10
（六）草履虫的生殖
取草履虫分裂生殖和接合生殖装片，于低倍 显微镜下观察。
1．草履虫分裂生殖装片
观察草履虫的无性生殖是横裂还是纵裂。
2．草履虫接合生殖装片
观察2虫体在何处接合。 接合生殖有何生物学意义？
2021/3/10
2021/3/10
（七）示范
1．锥虫(Trypanosoma)：锥虫在血液内寄生，体呈纺锤形 ，
2021/3/10
四、思考题与作业
金球藻培养实验报告
金球藻培养实验报告金球藻是一种常见的淡水微型藻类，具有很高的生物学研究价值。
为了更好地了解金球藻的生长特性和培养条件，我们进行了金球藻的培养实验。
我们准备了培养金球藻所需的培养基。
金球藻是一种光合作用藻类，所以培养基中需要添加光合作用所需的营养物质，如碳源、氮源和矿物元素等。
我们选择了含有碳酸氢钠、硝酸铵和磷酸二氢钾等营养物质的培养基来培养金球藻。
在制备培养基的过程中，我们严格控制了各种营养物质的浓度，以保证金球藻的正常生长。
接下来，我们将金球藻分装到装有培养基的培养皿中，并将培养皿放置在恒温恒湿的培养箱中。
为了保证充足的光照，我们将培养箱放置在有良好自然光照的地方，同时也可以使用专业的植物生长灯提供光源。
在培养过程中，我们对培养箱的温度和湿度进行了严格控制，以提供最适宜的生长环境。
在培养的过程中，我们定期观察金球藻的生长情况。
金球藻一般呈现绿色，形状呈现球状或椭圆状。
我们观察到，在适宜的培养条件下，金球藻的生长速度较快，藻体数量逐渐增多。
同时，我们还注意到金球藻的生长与光照强度、温度和营养物质浓度等因素密切相关。
过高或过低的光照强度、温度或营养物浓度都会对金球藻的生长产生负面影响。
在实验过程中，我们还进行了金球藻的采样和观察。
我们用显微镜观察了金球藻的细胞结构和细胞分裂现象。
金球藻的细胞呈现圆形或椭圆形，细胞质中含有叶绿体和细胞核等细胞器。
在适宜的培养条件下，金球藻的细胞分裂速度较快，每个细胞可以分裂成两个新的细胞。
通过本次实验，我们对金球藻的生长特性和培养条件有了更深入的了解。
金球藻是一种适应能力强、生长速度快的藻类，可以广泛应用于生物学研究和环境保护等领域。
同时，我们也发现金球藻的生长与光照强度、温度和营养物浓度等因素密切相关，为进一步优化金球藻的培养条件提供了参考。
金球藻的培养实验为我们提供了了解金球藻生长特性和培养条件的重要信息。
通过进一步的研究和实验，我们可以更好地利用金球藻的优势，并在生物学和环境保护等领域发挥更大的作用。
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实验一大型海藻种类形态观察（4学时第八周）一、实验目的了解海洋藻类----大型海藻与微藻的形态与分类。
二、实验材料及用具1、实验材料：1）大型海藻标本（学院标本室）；2）海带孢子体（可用干海带泡发），江篱（海洋学院附近打捞）；（取一部分冻存于-20冰箱，作为叶绿素提取实验的材料）2、实验器材：显微镜、胶头滴管（每瓶藻一支）、盖玻片、载玻片、刀片（做海藻切片）。
4、试剂：70%乙醇（每组一瓶）三、实验步骤1、大型海藻标本观察；将标本馆的拉丁文名抄录下来，网上检索图片和分类。
2、海带的外部形态观察：藻体明显分为固着器、柄部和叶片，在叶片中央有两条平行纵走的浅沟，孢子体幼龄期叶面平滑，小海带期叶片出现凹凸现象，大海带期叶面则平直宽厚。
3、海带的内部构造：①用徒手切片的方法，取一小块孢子体进行横切片，在显微镜下观察：孢子体的柄和叶均分为表层、皮层和髓部。
②同样取一小块孢子体进行纵切片，在显微镜下观察：表皮层由1-2层排列紧密的小细胞组成，外皮层细胞间分布1-2层粘液腔，其腔内有分泌细胞，髓丝细胞一端膨大为喇叭花，分生细胞位于叶片与柄之间。
4、江蓠的内部构造观察：①江蓠的纵切面。
②江蓠的横切面。
③江蓠囊果横切面。
5、紫菜的形态与构造：干紫菜先用水浸泡散开，再进行观察。
固着器：由根丝集合而成。
叶状体：由一层或两层细胞构成。
柄：叶状体基部与固着器之间的部分。
四、作业：1、绘制大型海藻图：选5个标本，注明拉丁文名，简要说明其生物学特性（利用拉丁文名进行网上检索）。
2、绘出海带和江篱的内部构造，紫菜的外形。
附1：江篱与海带的内部构造A.藻体横切面观；B.藻体纵切面观；1表皮；2髓部细胞3表皮细胞图2. 海带构造A.海带孢子体横切面；B.髓部，C.示喇叭丝；皮层部分横切面，示粘液腔道形成的时期；D.成体横切面，示粘液腔道；co皮层；e分泌细胞；hg藻丝；me髓部；m表面分生细胞；s分泌腔；v.b.f结合的喇叭丝实验二微型海藻形态观察和培养（4学时，第九周）一、实验目的观察几种重要经济微藻的形态特征，几种掌握单细胞微藻的实验室培养方法，细胞生长曲线观察。
二、实验材料及用具1、实验材料：小球藻、扁藻、等鞭金藻、角毛藻、骨条藻、茧形藻、池塘水样等微藻。
2、实验仪器：电炉、恒温干燥箱、灭菌锅、pH计、可见分光光度计、血球计数板3、实验器材：500ml 试剂瓶（每组5个）；0.45 m的滤膜（一个）；抽滤装置(或针管)；玻棒、500ml烧杯、50ml容量瓶（每组一个）；250ml锥形瓶（每组2个）、牛皮纸、细绵绳4、试剂：蒸馏水、消毒海水、各种试剂（见培养基配方），微藻培养母液三、实验步骤1、微藻形态观察：分别取各种微藻水样置于载玻片上，盖上盖玻片，于显微镜下观察。
先用10倍镜观察，然后转换物镜转换器用40倍观察。
2、培养基母液配制（配方见附2）：（提前配好，有兴趣的同学可与实验老师王老师联系好时间，学习配制）1000倍培养基母液（强调维生素母液的配制方法）。
配方见附1。
3、培养微藻的容器、工具及用水的消毒（提前准备）：（1）培养微藻所用的容器、工具应用洗刷干净后晾干，放置恒温干燥箱中加热，120℃恒温1小时以上，自然冷却备用。
（2）加热煮沸消毒海水冷却至室温后备用。
4、配制微藻培养液。
按照母液配制比例把母液加入消毒海水，配制培养液（例如，1000倍母液，则每升消毒海水中加入1毫升母液，摇晃均匀，就成了培养液）。
5、接种：取两种微藻，各按1/3～1/5接种（即把1份藻种加入3～5份培养液中）。
6、培养、管理。
将接种好的微藻置于适宜的条件下培养，每天摇晃1-2次，。
7、藻细胞密度计数（方法见附3）。
分光光度计测定吸光值或血球计数板计数藻细胞密度。
不同种类的微藻所选用的波长不一样，一般绿藻门波长为720-750，金藻门、硅藻门波长为420。
8、本实验采用分光光度计每2天测定一次，培养时间为横坐标，藻细胞的OD值为纵坐标，绘制生长曲线。
培养两周。
四、作业：1、绘制观察到的微藻的形态图。
2、通过哪些具体措施使培养基无菌？3、为何配制母液？配制培养基时，为何要等消毒海水冷却后再加母液？4、EDTA的作用？5.以培养时间为横坐标，相对应藻液的OD值为纵坐标，作图。
6、计算每瓶藻的培养6天的生长速率，公式如下：K =（lnN2 – lnN1）/（t2 - t1）（1）T = 0.6931/K （2）其中：K为相对生长速率；t1、t2为对应的培养时间；N1和N2分别为t1、t2时的细胞密度(微藻用OD值，江篱用重量)；T为细胞的平均倍增时间。
t1就是刚放入培养箱的那天，计算培养6天后（即t2-t1=6,lnN1、lnN2分别为培养第一天和第六天的OD值的自然对数）的K值，再计算一个从培养第1天到最后1天的K值，分别以表格的形式表示。
附1：单细胞微藻的培养基配方（一）宁波3号培养基配方试剂名称重量试剂名称重量（mg）NaNO3 100 mg KH2PO410 mgFeSO42.5 mg MnSO40.25 mgNa2-EDTA 10 mg 维生素B16μg维生素B120.05μg自然海水1000ml（二）F/2 (+ Si)培养基母液的配制1.A液 500 ml 1000倍NaNO3 37.5 g; NaH2PO42.5 g2.B液 500 ml 1000倍Fe-EDTA 2.5 g (FeCl31.6 g + EDTA 0.9 g) 3.C液 500 ml 1000倍Na2SiO3.9H2O 10 g4.D液 500 ml 1000倍盐酸硫铵素(VB1) 5 mg (试剂 50 mg/ml取100 μl)Biotin VH 0.025 mg (试剂 0.1 mg/ml取250 μl)VB12 0.025 mg (试剂 0.25 mg/ml取100 μl)先用维生素分别用纯水溶解混合，稀HCl将pH调到4.5~5.0，最后用纯水稀释至1升。
膜过滤后冰冻保存。
5.E液 500 ml 1000倍CuSO4.5H2O 0.0098 mgZnSO4.7H2O 0.022 mgCaCl2.6H2O 0.01 mgMgCl2.4H2O 0.180 mgNa2MoO4.2H2O 0.0063 mg1000 ml (1升) F/2 (+ Si)培养基 = 1000 ml (1升)过滤灭菌海水 + 1ml A 液 + 1ml B液+ 1ml D液+ 1ml E液 (+ 1ml C液)附3：单细胞藻类的定量方法（一）重量测定法：湿重法；干重法（二）个体计数法：水滴计数法；血球计数板计数法；血球计数板计数方法：放大图3. 血球计数板1 搅拌：由于藻类细胞在培养液中分布不均匀，所以在取产前必须进行搅拌，搅拌后立即取样。
2固定、稀释：运动细胞需加碘液杀死才能计数。
如细胞浓度过大，计数困难，需把水样稀释到适宜的程度。
3 计数板与盖玻片洗净擦干――盖好盖玻片――摇荡藻液――吸取藻液（干的平口微吸管）――迅速把吸管放在计数板上的盖玻片边缘处，轻压橡皮头，使藻液流入计数板内――1分钟后低倍镜下计数－计数任何对角两大格（加盖玻片后每一大格即形成一个体积为0.1立方毫米的空间），然后取其平均值。
每个样品须重复计数两次。
1毫升水体藻细胞＝计算平均值×10,000×藻稀释倍数鲁哥氏液（Lugol's Solution）又称碘液，常用的配方是：将6克的碘化钾溶于20毫升水中，待完全溶解后加入4克碘，摇荡，待碘完全溶解后，加入80毫升蒸馏水，贮存在棕色试剂瓶内。
（三）分光光度计定量法微藻的细胞密度在某一范围内与分光光度计在特定波长下的OD值的大小成正比关系，因此，可用分光光度计直接定量。
测定步骤：1. 预热分光光度计约20min，选择波长（绿藻门720-750，硅藻门、金藻门420），用培养液作为參比，调零。
2．分别测定待测藻液的OD值。
3.以培养时间为横坐标，相对应藻液的OD值为纵坐标，作图。
实验三藻类细胞叶绿素的提取和细胞色素的观察（4学时，第十一周）注：第十周继续培养微藻一、实验目的掌握大型和微型海藻叶绿素测定方法。
观察比较不同门藻类的叶绿素的吸收光谱。
叶绿素含量是衡量大型海藻生长状态的指标之一。
浮游植物叶绿素含量，可用来初步估量浮游植物的光合作用能力，并进行估量水域初级生产力。
同样也适用于实验室单种培养试验的定量方面。
二、实验材料及用具1、实验材料：海带、江篱2、实验器材：研钵（每组一套）、15ml刻度试管（每组2支，尽量使用玻璃试管）、剪刀、分光光度计、天平、叶绿素荧光观察箱（一端带光源的纸箱）、台式离心机（不用控温）、胶头滴管（每组2支）、10ml左右玻璃试管（每组2支）4、试剂：90%丙酮（分析纯）、MgCO3三、实验步骤1、取样：清洗海带和江篱，剪取藻体0.05g左右(记录准确的重量)。
2、研磨和提取：加入2－3ml的90％丙酮和1小匙MgCO3，研磨，在弱光下研磨1到2min，再用5ml的90％丙酮把杵上和研磨管内的东西洗入15ml的有螺旋盖的离心管内，静置于暗处10min，使色素充分被提取。
3、离心（2000g，5min）或静置，使固液分离。
4、测定：小心移取将上清液放入玻璃试管内，在分光光度计上，用1cm的比色皿分别读取750nm、663nm、645nm、630nm波长的吸光度，并以90％的丙酮作校正吸光度测定。
6、计算：分别从663、645、630nm时的光密度值，减去750nm时的光密度值，再除以液槽光程（厘米），即为D663、D645、D630的值。
下式计算叶绿素在90％丙酮中的含量。
Chla（μg/ml）=11.64*D663-2.16*D645+0.1D630Chlb（μg/ml）=3.94*D663+20.97*D645-3.66D630Chlc（μg/ml）=5.53*D663-14.81*D645+54.22D6307、叶绿素吸收光谱的测定：将提取的叶绿素放于(石英)比色皿中，用紫外分光光度计测定400nm-750nm波段的吸收光谱。
三、作业：1、计算几种藻类的叶绿素含量2、思考：叶绿素提取过程中为何要避光？为何加MgCO3？11。