实验一 神经干动作电位的引导,兴奋传导速度及不应期的测定
神经干动作电位、兴奋传导速度和不应期测定实验报告
神经干动作电位、兴奋传导速度和不应期测定实验报告神经干动作电位、兴奋传导速度和不应期测定实验报告课程:机能实验基础医学院系临床班姓名学号组员：【实验目的】1.了解电生理仪器的使用。
2.观察蟾蜍坐骨神经动作电位的基本波形；学习神经干动作电位的记录方法以及潜伏期、幅值、时程的测量；3.学习神经干动作电位传导速度的测定方法。
加深理解神经兴奋传导的概念及意义。
4.了解神经干兴奋后兴奋性的改变。
学习测定不应期的方法。
【实验动物】牛蛙【实验结果】图一神经干动作电位观察到一个先升后降的双相动作电位波形（有刺激伪迹）。
时程为4ms，潜伏期为，最大幅度为，（当刺激强度为时）。
图二神经干兴奋传导速度测定每个电极间距25mm，时间约为，速度测定为s图三神经的不应期测定（按时间顺序，从上到下、从左到右排列）【实验讨论】神经动作电位的观察神经细胞产生兴奋的客观标志是神经细胞的动作电位。
当神经纤维未受刺激时，膜外与电极所接触的两点之间没有电位差，所以两电极之间也无电位差存在，扫描线为一水平基线。
处于兴奋部位的膜外电位低于静息部位，当动作电位通过后，兴奋部位的膜外电位又恢复到静息水平，用电生理学方法可以引导并记录到此电位变化过程。
将一对引导电极置于神经干表面，当神经冲动通过时，两电极之间将产生一短暂的电位变化过程，即为神经干动作电位。
神经干动作电位是复合动作电位，可沿细胞膜做不衰减的传导，它的幅度在一定范围内与刺激强度成正比。
由于引导方式不同，记录到的神经干动作电位有双相和单相之分，假如在引导的两个电极之间将神经干麻醉或损坏，阻断其兴奋传导能力，此时可以记录到单相动作电位。
在神经干左端给与电刺激后，则产生一个向右传导的冲动（负电位），当冲动传导1电极（负电极）下方时，此处电位较2处低，产生了电位差，扫描线向上偏转，记录出一个向上的波形（在电生理实验中，规定负波向上）。
随后，冲动继续向右侧传导，离开1电极传向2电极处。
随后，冲动继续向右侧传导，离开1电极传向2电极处。
神经干动作电位、传导速度以及不应期的测定
不应期
S1
S2
t t1
t2
方法和步骤
➢ 急性动物实验制备蟾蜍 坐骨神经干标本 ▪ 分离坐骨神经干标本， 任氏液保持标本湿润
观察项目
• 记录随刺激强度增强而改变的双向复合动作电位。 • 测量动作电位的传导速度。 • 交换神经干两端的方向，观察复合动作电位变化，原理？ • 夹伤神经干观察复合动作电位变化。 • 不应期观测。
区域测量 刺激伪迹
观察项目：动作电位传导的双向性
• 将神经干标本放置方向倒换 • 记录数据 ：双相动作电位波形有无变化
双相动作电位幅度有无变化
观察项目：动作电位传导的速度
最大刺 激强度
观察项目：不应期
• 刺激器参数设置 • 细电压 • 双刺激 • 间隔减小 • 程控
实验目的
❖分离蟾蜍的坐骨神经，细胞外记录坐骨神 经干的单相和双相复合动作电位；
❖测定动作电位在神经干上的传导速度 ❖不应期的观察
实验原理－1
❖ 神经细胞（纤维）受到有效刺激（阈刺激，阈上刺激） 后，产生了动作电位，即兴奋，它是“全或无”的；
❖ 神经干由许多不同的神经细胞组成，众多神经细胞动作 电位的组合即形成复合动作电位；
• 动作电位传导速度=（ r1-r2 ）/ （t2 - t1）
0
实验原理－3
• 在两记录电极间夹伤神经干，双相动作电位变单相动作电 位；在两记录电极前夹伤神经干，动作电位消失；
0
实验原理——4
• 神经干动作电位不应期的观察 • 条件刺激（S1）：引起神经兴奋。 • 测试刺激（S2）：在前一兴奋过程的不同时相
❖ 复合动作电位能在神经干表面传导，顺序通过两根引导 电极，被记录到双向复合动作电位。
实验一 神经干动作电位的引导及其传导速度和不应期的测定
•动作电位在神经干上传导有一定的速度。不 同类型的神经纤维传导速度不同，神经纤维 越粗则传导速度越快。
•蛙类坐骨神经干以Aa类纤维为主，传导速度 大约30～40m/s。
• 测定神经冲动在神经干上传导的距离（s） 与通过这段距离所需时间（t），可根据n＝ s/t求出神经冲动的传导速度。
• 可兴奋组织在接受一次刺激而兴奋后，其兴 奋性会发生规律性的时相变化，依次经过绝 对不应期、相对不应期、超常期和低常期， 然后再恢复到正常的兴奋性水平。
生理学实验目的
• 验证已知理论，探索未知规律 • 掌握基本知识、基本方法、基本技能 • 培养基本科研素质：严肃的科学态度；
严谨的科学作风；严密的科学思维；分 析、解决问题的能力
实验室规则
• 实验前：预习（心中有数） 抬动物、领器械
• 实验中：认真观察，详细记录，轮流操作， 相互配合，报告老师
• 实验后：清点、清洗器械，值日
实验器材
1.仪器与材料：BL-410生物机能实验系统， 神经屏蔽盒，蛙类手术器械。
2.药品：任氏液 3.动物：蟾蜍
方法步骤
1.坐骨神经干标本的制备 • 破坏脑脊髓 • 剪去躯干上部和内脏 • 剥皮和分离两腿 • 游离坐骨神经
2.实验装置连接 3.神经标本的放置：
粗端放在刺激电极，细端放在记录电极侧 4.观察项目
• 单根神经纤维的动作电位：全或无 • 神经干动作电位：电位幅度在一定范围内可
随刺激强度的增加而加大。
• 神经干在受到有效刺激后，可以产生动作电 位，标志着神经发生兴奋。
• 如果在神经干另一端引导传来的兴奋冲动， 可以引导出双相的动作电位，如在两个引导 电极之间将神经麻醉或损坏，则引导出的动 作电位即为单相动作电位。
神经干动作电位的引导实验报告
3、观察到了普鲁卡因对神经干动作电位的抑制作用，进一步理解了神经兴奋传导的机制。
八、注意事项
1、制备神经干标本时，要小心操作，避免损伤神经纤维。
2、实验过程中要保持神经干的湿润，以维持其正常的生理功能。
3、刺激强度和刺激频率要适中，避免过度刺激导致神经损伤。
4、滴加药物时要注意量的控制，避免药物扩散影响实验结果。
通过本次实验，我们对神经干动作电位的产生、传导和特点有了更深入的理解，为进一步研究神经生理功能奠定了基础。同时，也让我们认识到在实验操作中要认真细致，严格控制实验条件，以获得准确可靠的实验结果。
4、药物对神经干动作电位的影响
滴加普鲁卡因溶液后，动作电位的幅度逐渐减小，传导速度逐渐减慢，最终动作电位消失。
六、实验讨论
1、神经干动作电位的特征
神经干动作电位为双相动作电位，这是由于神经干中的神经纤维在兴奋传导过程中，兴奋部位与未兴奋部位之间存在电位差，从而形成了双向传导的动作电位。
动作电位的幅度与刺激强度有关，当刺激强度达到阈值时，动作电位的幅度达到最大值，这是因为所有的神经纤维都被兴奋。
动作电位的产生是由于细胞膜对离子通透性的改变，导致膜电位的快速变化。在静息状态下，细胞膜对钾离子的通透性较高，对钠离子的通透性较低，因此膜内电位较膜外低，表现为静息电位。当受到刺激时，细胞膜对钠离子的通透性迅速增加，钠离子大量内流，导致膜电位迅速去极化，形成动作电位的上升支。随后，细胞膜对钠离子的通透性迅速降低，对钾离子的通透性增加，钾离子大量外流，导致膜电位迅速复极化，形成动作电位的下降支。
动作电位具有“全或无”的特性，即刺激强度未达到阈值时，不产生动作电位；刺激强度达到阈值后，动作电位的幅度不再随刺激强度的增加而增大。
神经干动作电位、传导速度和不应期的测定
4.单相电位
细胞外引导电极
检流计
兴奋区
损伤区
如将两个引导电极之间的神经麻醉或损伤，动作电位只能通过第一 个电极引导出来，它只有一个方向的电位偏转，称为单相动作电位。
5.刺激伪迹
刺激伪迹是刺激电流通过导电介质扩散至两引导电极而 形成的电位差信号。
由于膜上离子通道的开放需要时间，因此刺激伪迹的起 点到动作电位起点有一段距离。
去极化 超射
低射
3.几个时相
局部电位：点火 峰电位：升支、降支 后电位：负后电位
正后电位
（二）动作电位 AP
4.产生机制
AP上升支
AP下降支
（二）动作电位 AP
4.产生机制
（二）动作电位 AP
5.三大特点
（1）“全或无” ：幅度不随刺激强度
增加而增大
二.阈值
（2）可传播性:不减衰传导(幅度波形
六、制作坐骨神经-腓肠神经标本
标本腹面向上，用玻璃分针分离脊柱两侧神经丛， 用线在近脊柱处结扎，剪断神经；
六、制作坐骨神经-腓肠神经标本
将神经干从腹面移向背面。标本背面向上固定， 从大腿至跟腱分离坐骨神经。
六、制作坐骨神经-腓肠神经标本
将神经干从腹面移向背面。标本背面向上固定， 从大腿至跟腱分离坐骨神经。
六、制作坐骨神经-腓肠神经标本
(1)分离神经时，一定要用玻璃分针，不能随便用刀、 剪进行操作。 (2)不能过分牵拉神经，以免造成损伤。 (3) 标本制备过程中应适当地用任氏液湿润标本。
(4)在制备坐骨神经-腓/胫神经标本时，尽可能使其长 些，最好达10厘米以上； (5)神经干应平直地置于电极之上，两端不可与屏蔽 盒接触，也不可把神经干两端缠绕于电极之上，两 端任其自然悬空
生理实验报告!
生理实验报告!蟾蜍坐骨神经干动作电位的引导、传导速度和兴奋不应期的测定【实验目的】1. 观察蟾蜍坐骨神经动作电位的基本波形，加深理解兴奋传导的概念，理解可兴奋性在兴奋过程中的变化过程;2. 进一步掌握坐骨神经—腓神经标本的制备方法与引导动作电位的方法;3. 进一步熟悉实验室里仪器设备的操作。
【实验原理】1. 神经干动作电位是神经兴奋的客观标志。
当神经受到有效刺激时，处于兴奋部位的膜外电位负于静息部位，当动作电位通过后，兴奋处的膜外电位又恢复到静息时的水平。
神经干兴奋过程所发生的这种膜电位变化称神经复合动作单位。
如果将两个引导电极置于神经干表面时(双极引导)，动作电位将先后通过两个引导电极，可记录到两个相反的电位偏转波形，称为双向动作电位;2. 神经纤维兴奋的标志是产生一个可传播的动作电位。
测定神经干上的神经冲动的传导速度，可以了解神经的兴奋状态。
在示波器上测量动作电位传导一定距离所耗费的时间，便可计算出兴奋的传导速度;3. 神经与肌肉等可兴奋组织的兴奋性在一次兴奋过程中可发生一系列变化，及绝对不应期、相对不应期、超常期和低常期，组织的兴奋性才可恢复。
为了测定神经干在兴奋过程中的兴奋性变化，可用双刺激法检查刺激引起的兴奋阙值和电位变化，即可观察到神经组织兴奋性的变化过程。
【实验对象】蟾蜍【实验器材】蛙类手术器械，BL-410生物信号记录分析系统，神经屏蔽盒，任氏液(林格液)等。
【实验步骤】制备蟾蜍坐骨神经-腓神经标本，并放入神经屏蔽盒内;(一)双相动作电位1.打开BL-410?实验项目?神经肌肉实验?神经干动作电位引导?记录出双相动作电位;2.由小到大改变刺激强度，记录阈强度和最大刺激强度;3.观察双相动作电位波形，测量最适刺激强度时的潜伏期、时程和波幅; (二)引导出最大刺激强度时的动作电位波形1.BL-410仪器操作:实验项目?神经肌肉实验?神经干动作电位传导速度测定?输入两电极之间的距离分别用潜伏期法和潜峰法测量其传导速度;2.潜伏期法:测量第一个通道动作电位潜伏期的时间(t)，输入刺激电极到第一个引导电极间的距离(S)，屏幕右上角显示传导速度和根据速度的公式计算传导速度:v=S/t;3.潜峰法:测量两个通道电位的动作电位的波峰间的时间差，为(t2-t1),测量并输入两对引导电极间的距离为(S2-S1),屏幕右上角显示传导速度和用公式计算传导速度:v=(S2-S1)/(t2-t1)。
实验一 神经干动作电位
4.将神经干放入屏蔽盒之前，用刀片轻刮引 导电极，以保证电极和神经干密切接触。 5．制作标本过程中，切勿伤及神经干及其分 支，避免牵拉和其它不良刺激， 6．实验过程中，应经常在标本上滴加任氏液 以保持湿润，使其保持良好的兴奋性。 7．每次刺激标本以后，必须让肌肉休息1-2 分钟，以防标本疲劳。
处于兴奋部位的膜外电位负于静息部位，
当神经冲动通过后，该处的电位又恢复
到静息水平，这一可扩布的、一过性的
电位变化，即动作电位。如果将两个引 导电极分别置于神经干表面，当神经干 一端兴奋时，兴奋波先后通过两个引导 电极处，记录到两个方向相反的电位偏 转波形，称为双向动作电位。
【实验对象】 蟾蜍或蛙
实验报告要求
神经干动作电位引导及其传导速度和不应期测定
一、实验目的 二、实验器材 三、实验步骤 四、实验结果 1.动作电位的时程 2. 写出阈刺激 3.相对不应期 4.传导速度： 五、思考题 及幅度 、最大刺激强度 、绝对不应期 ；
1.双相动作电位产生机制。
2.动作电位随刺激增大机制，与全或无是否矛盾？
【结果分析】 1.解释双相动作电位产生的机制，记录动作 电位的时程、幅值。(3) 2.测定神经干动作电位传导速度:V=ΔS/ΔT (m/s) 。（4） 3.动作电位不应期的测量（5） 4.刺激强度与复合动作电位幅值的关系（6）
【注意事项】
1.破坏蟾蜍的脑和脊髓时，应防止其耳后腺及 皮肤分泌的蟾酥毒液射入操作者的眼内或污染 实验标本。 2.制备神经标本过程中，应避免用手捏神经或 镊子夹伤神经。 3.为了防止神经标本干燥，制备过程中需不断 滴加任氏液，使其保持良好的兴奋性。
双向动作电位
神经干动作电位的观察、传导速度与不应期测定
实验二、神经干动作电位的观察、传导速度与不应期测定一、实验目的应用微机生物信号采集处理系统和电生理实验方法，观察牛蛙坐骨神经动作电位的基本波形（包括双相和单相动作电位），了解并熟悉神经干兴奋不应期的记录方法和测定神经干兴奋不应期的基本原理和方法二、实验原理1.神经干动作电位的测定双相动作电位：两个引导电极分别置于正常完整的神经干表面，神经干一端兴奋时，兴奋向另一端传播并依次通过两个引导电极，可记录到两个方向相反的电位偏转波形。
单相动作电位：两个引导电极之间的神经组织有损伤，兴奋波只到达第1个引导电极，不能传导至第2个引导电极，则只能记录到一个方向的电位偏转波形。
2.神经干兴奋传导速度的测定神经纤维兴奋时产生一个可以传播的动作电位，动作电位依局部电流或跳跃传导的方式沿神经纤维传导，其速度取决于神经纤维直径、内阻、有无髓鞘等。
坐骨神经的动作电位是由一群不同兴奋阈值、传导速度和幅值的峰形电位所总和而成，为复合动作电位。
测定该复合动作电位传导的距离和经过这些距离所需的时间，即可根据V=S/t计算出神经干兴奋的传导速度3.神经干兴奋不应期的测定可兴奋组织在接受一次刺激而兴奋后，其兴奋性会发生规律性的时相变化，依次经过绝对不应期、相对不应期、超常期和低常期，然后再刺激到正常的兴奋性水平。
利用双刺激可检测神经对第2个刺激的反应，了解其兴奋阈值以及所引起的动作电位的幅度的变化，从而判定神经组织的兴奋性的变化三、实验结果1.神经干动作电位的测定1.1从0.8v逐步调节刺激器强度测试神经干的阈强度，当产生很小的动作电位时，此强度即为神经干的阈强度，为0.1v，截图如下1.2继续加大刺激强度，测试最适刺激强度，继续加大刺激强度直至动作电位不再增大，此数值是最适刺激强度，为0.3V1.3测试潜伏期，分别在在刺激伪迹前和动作电位的起始转折处建立光标，记录潜伏期实验结果，为0.7ms1.4测试电位时程，分别在动作电位的起始位置和结束位置建立光标，记录动作电位时程实验结果，为3.9ms1.5测试上相波的幅值，分别在动作电位的基线，上相波顶点处建立光标，记录上相波的幅值实验结果，为1.723mv1.6测试下相波的幅值，分别在动作电位的基线，下相波最低点处建立光标，记录下相波的幅值实验结果，为1.063mv1.7夹伤神经干，保存动作电位图1.8测试潜伏期，分别在刺激伪迹前，动作电位的起始转折处建立光标，记录潜伏期实验结果，为0.45ms1.9测试电位时程，分别在动作电位的起始位置，动作电位的结束位置建立光标，记录动作电位时程实验结果，为1.8ms1.10测量上相波的幅值，分别在动作电位的基线和上相波顶点处建立光标，记录上相波的幅值实验结果，为1.3mv1.11总实验记录表格如下2.神经干兴奋传导速度的测定2.1调节刺激器强度以产生最大动作电位，调整后，再分别点击通道1刺激伪迹开始位置和上相波开始位置，此距离用时为T1=0.71ms2.2分别点击通道2刺激伪迹开始位置和上相波开始位置，此距离用时为T2=1.20ms2.3电极距离d=0.01m，传导时间t=T2-T1=0.49ms2.4总实验结果记录如下：测得传导速度为20.41m/s3.神经干兴奋不应期的测定3.1调节刺激器强度以产生最大动作电位，调整后开始试验，刺激间隔设置为6ms，缩短刺激间隔时间，观察第二个动作电位，逐渐缩短两刺激间隔时间至第二个动作电位刚好变小，此时的刺激间隔时间即为动作电位的恢复周期，时间为4ms3.2逐渐缩短刺激间隔时间，第二个动作电位刚好消失，则该不应期为绝对不应期，时间为1ms四、结果分析1.神经干的阈强度为0.1v，最适刺激强度为0.3v，说明当神经干受到适宜的刺激的时候可以产生神经冲动，且神经干动作电位幅度在一定的范围内随着刺激的强度增强而增强，当神经干被夹伤后，双相动作电位变为单相动作电位，说明神经冲动无法经过损伤部位进行传导2.测得神经干兴奋传导速度为20.41m/s，在图像中除了动作电位的图像还有刺激伪迹的图像。
实验一神经干动作电位的引导,兴奋传导速度及不应期的测定
神经干动作电位、传导速度及不应期的测定【目的和原理】神经纤维的兴奋表现为动作电位的产生和传导，神经纤维上传导的动作电位通常称为神经冲动。
在神经细胞外表面，已兴奋部位带“负电”，未兴奋部位带“正电”，用引导电极引导出此电位差，输入到示波器，则可记录到动作电位的波形。
本实验用细胞外记录法，可引导出坐骨神经的复合动作电位。
神经纤维兴奋的标志是产生一个可以传导的动作电位，它依局部电流或跳跃传导的方式沿神经纤维传导。
其传导速度取决于神经纤维的直径、内阻、有无髓鞘等因素，可用电生理学方法来记录和测量。
神经纤维在一次兴奋过程中，其兴奋性可发生周期性变化，包括绝对不应期、相对不应期、超常期和低常期。
本实验主要目的是学习电生理仪器的使用方法，掌握离体神经干动作电位的细胞外记录法及其基本波形的判断和测量。
掌握神经干动作电位传导速度及其不应期的测定方法，通过调整条件刺激和测试刺激之间的时间间隔，来测定坐骨神经干的绝对不应期。
【实验对象】蟾蜍或蛙。
【实验器材和药品】蛙类手术器械一套、电子刺激器、示波器（或计算机实时分析系统）、神经屏蔽盒、任氏液。
【实验步骤】1．制备坐骨神经——胫、腓神经标本操作方法详见3．8。
2．连接装置（见图8-1-1）。
3．准备仪器：（1）刺激器：调节刺激器各项参数：刺激方式连续刺激，频率16Hz，刺激强度0.5v，波宽0.1ms。
调节延迟使动作电位的图像位于示波器荧光屏的中央。
（2）示波器：灵敏度：1～2mv/cm，扫描速度：1～2ms/cm，引导电极输入到示波器的“AC”端，双边输入，刺激器的“同步输出”接示波器“外触发输入”，触发选择设置为“同步触发”。
4．观察项目：图8-1-1 神经干动作电位引导装置图（1）测量单、双相动作电位的潜伏期、时程和振幅，填入下表：（2）测算动作电位的传导速度：V=S/△t （米/秒）式中：S为R1到R3的神经干长度，以米为单位。
t为上、下线动作电位起点的时间差，以秒为单位。
实验一_神经干动作电位的引导及其传导速度和不应期的测定
一目的要求：1．学习蛙类动物单毁髓与双毁髓的方法。
2．学习并掌握蛙类坐骨神经干标本的制备方法。
3．学习电生理学实验方法。
4．观察蟾蜍坐骨神经干复合动作电位的波形，了解其产生的基本原理。
二基本原理：神经干在受到有效刺激后，可以产生动作电位，标志着神经发生兴奋。
如果在神经干另一端引导传来的兴奋冲动，可以引导出双相的动作电位，如在两个引导电极之间将神经麻醉或损坏，则引导出的动作电位即为单相向动作电位。
神经细胞的动作位是以”全或无”方式发生的。
坐骨神经干是由很多不同类型的神经纤维组成的，所以，神经干的动作电位是复合动作电位。
复合动作电位的幅值在一定刺激强度下是随刺激强度的变化而变化的。
三动物与器材：蟾蜍、常用手术器械（手术剪、手术镊、金冠剪、眼科剪、毁髓针和玻璃分针）、蛙板、固定针、不锈钢盘、污物缸、粗棉线、任氏液、计算机生理信号处理系统、神经屏蔽盒。
四方法步骤：1．蟾蜍的单毁髓与双毁髓一手握住蛙或蟾蜍(可用纱布包裹蟾蜍躯干部)，背部向上。
用拇指压住蛙或蟾蜍的背部，食指按压其头部前端，使头端向下低垂; 另一手持毁髄针，由两眼之间沿中线向后触划，当触及到两耳中间的凹陷处(此处与两眼的联机成等边三角形)时，持针手即感觉针尖下陷，此处即是枕骨大孔的位置。
将毁髄针由凹陷处垂直刺入，即可进入枕骨大孔（图t-1）。
然后将针尖向前刺入颅腔，在颅腔内搅动，以捣毁脑组织。
如毁髄针确在颅腔内，实验者可感到针尖触及颅骨。
此时的动物为单毁髓动物。
再将毁髓针退至枕骨大孔，针尖转冋后方，与脊柱平行刺入椎管，以捣毁脊髓。
彻底捣毁脊髓时，可看到动物的后肢突然蹬直，而后瘫痪如棉（图t-2），此时的动物为双毁髓动物。
如动物仍表现肢肌肉紧张或活动自如，必须重新毁髓。
操作过程中应注意使蟾蜍头部向外侧(不要挤压耳后腺)，防止耳后腺分泌物射入实验者眼内(如被射入，则需立即手生理盐水冲洗眼睛)。
2．坐骨神经干标本制备(1) 剥制后肢标本（图t-3）(2) 分离两后肢（图t-4）(3) 分离坐骨神经（图t-5）3．测定：阈刺激、最大刺激，打印不同刺激引起的动作电位重叠显示波形。
神经干动作电位传导速度与不应期的测定
实 验 原 理(二)
实验原理(二)
可兴奋组织在接受一次刺激而被兴奋后，其兴奋性会发 生规律性的时相变化，依次经过绝对不应期、相对不应期、 超常期和低常期，然后再恢复到正常的兴奋性水平。为了测 定神经一次兴奋之后兴奋性的变化，可先给神经施加一个条 件性刺激，引起神经兴奋，然后再用一个检验性刺激在前一 兴奋过程的不同时相给予刺激，检查神经对检验性刺激的反 应以及所引起的动作电位的幅度，来判定神经组织的兴奋性 的变化。
防止神经过度牵拉和压迫,以免影响实验效果。 3.屏蔽盒内不要放过多的任氏液，以免电解质在刺激电极与
记录电极之间形成“短路”，使刺激伪迹过大。 4.要经常用任氏液浸润及清洗标本，防止干燥，勿用清水冲洗。 5.测量传导速度时，两对引导电极间距离越远越好。
思考题
思考题
1. 通常所记录的双向动作电位为何第一相幅 度大于第二相？在什么情况下可记录到一 个对称的双向动作电位？
神经屏蔽盒
坐骨神经标本S1S2 Nhomakorabear2
r3
r1 r4
进入BL-420生物信号显示与处理软件主界面，在菜单栏选择“实验项目→ 神经肌肉→神经干动作电位或电位传导速度、不应期测定”实验模块。
5.实验观察与测定
⑴双相动作电位； ⑵单相动作电位； ⑶测定传导速度； ⑷不应期。
注意事项
注意事项
1.神经干要分离得尽量长。神经主干上的小分支要剪去。 2.神经干分离过程中，尽量减少神经与金属器械及污物接触。
实验十八
神经干动作电位传导速度与不应期 的测定
神经干动作电位传导速度
与不应期的测定
实验目的
实验目的
1.学习坐骨神经干标本制备的基本操作技术。 2.掌握神经干动作电位的引导方法，观察动作电
神经干复合动作电位的胞外记录及兴奋不应期和传导速度的测定
6. 并放入神经标本屏蔽盒中，然后连接数据采 集线，上机。 7.打开实验软件，选择进入实验项目，设计好各 种刺激参数，开始示波、记录。 8.实验需要记录出：阈刺激、阈上刺激、最适刺 激时的动作电位。
9. 测定动作电位的潜伏期、幅值及时程。
10．不应期测定
选择双刺激，并逐步调节双刺激的间隔，记录 神经干的不应期。
实验九
神经干复合动作电位的胞外记录 及兴奋不应期和传导速度的测定
【实验内容及目的】
1.学习并掌握神经干复合动作电位的胞外记录
2.观察蛙坐骨神经干双相动作电位的基本波形，
并了解其产生的基本原理。
3的不应期
【实验原理】
蛙坐骨神经干属于多纤维复合神经干，其内
11. 测定兴奋传导速度 用两个通道同时记录时，可较准确的测定动作电 位传导的速度。研究不同温度对神经传导速度的影 响：室温；15℃；30 ℃ 。
【注意事项】 1．剥制标本时，切忌用手强拉、金属器械触碰神经 干。 2．制备标本的过程中，应随时用滴管滴些任氏液以 湿润标本，防止干燥。 3.防止手术器械对人的伤害。
【思考】 1.什么在某一个刺激强度范围内，引导出的神经 信号大小不等而不呈“全”或“无”的现象？ 2.所引导出的信号是否出现刺激伪迹？刺激伪迹 是否是生物电？ 3.不同组织的不应期是否相同，有何意义？ 4.为什么远离刺激端的第二对引导电极所引导出 的信号常常比第一对引导出的信号弱？ 5.温度对神经传导速度有何影响？本实验动物是 蛙，如果换为小鼠，预期会有类似结果吗？
关于神经冲动传导速度： 神经兴奋的标志是产 生动作电位，其传播速度与神经纤维的粗细、有 无髓鞘及环境温度等因素有关，通过测量神经冲 动经过的路程和所需要的时间，可知兴奋传导速 度的快慢。
神经干动作电位的引导和观察／动作电位传导速度的测定
姓名：学号：实验报告说明：1、实验报告务必独完成，对抄袭者将按不及格处理；2、实验报告的格式请按下面的各项要求来填写，不要改动；3、正文字体统一用“仿宋-GB2312”、，小四号，单倍行距，小标题加黑；4、下面的“替换这里”字体底纹在完成后去除；5、实验报告按时上传，上传时文件名统一按照网上说明来命名；实验名称：神经干动作电位的引导和观察／动作电位传导速度的测定同组姓名：实验日期：室温：气压：成绩：教师：一、实验结果（一）神经干动作电位的引导和观察（二）动作电位传导速度的测定二、分析与讨论分析：（一）神经干动作电位的引导和观察神经元以动作电位的形式传送神经冲动，给具有兴奋性的神经干以一定强度的刺激，会产生动作电位并传导。
细胞膜外兴奋部位的膜外电位负于静息部位，冲动通过后，膜外电位又恢复到静息水平。
因此兴奋部位与邻近部位之间会出现电位差，用引导电极引导出此电位差，则可记录到动作电位的波形。
本实验采用细胞外记录法引导出坐骨神经的复合动作电位。
1. 单相动作电位：两个引导电极之间的神经组织有损伤，兴奋波只通过第一个引导电极，不能传导至第二个引导电极，则只能记录到一个方向的电位偏转波形。
2. 双相动作电位：如果将两引导电极置于正常完整的神经干表面，当神经干一端兴奋之后，兴奋波先后通过两个引导电极，可记录到两个方向相反的电位偏转波形。
在实验中，两记录电极放置在神经干表面，记录已兴奋区域与未兴奋区域间的电位差。
由于动作电位传导到神经干两记录电极放置点的时间先后差异，将在两记录电极间引导出电位波动，出现类似于正弦波的电位变化，这就是神经干复合动作电位。
双相动作电位特点：①第一相峰值总高于第二相；②第二相持续时间总大于第一相；③每相的上升支与下降支都不对称。
神经干动作电位与单根神经纤维中的动作电位不同：对单一的神经纤维而言，其动作电位呈“全或无”现象；在神经干中，它是由许多传导速度、幅度不同的神经纤维组成，在一定的范围内，随着刺激强度的增大，兴奋的纤维数目逐渐增多，神经干动作电位幅度也逐渐增强。
神经干动作电位的引导、
神经干动作电位的引导、传导速度和兴奋不应期的测定一、实验结果：动作电位的引导：动作电位的传导速度：兴奋不应期的测定：二、数据处理：1.电位的引导：潜伏期：0.6ms时程：1.9ms幅值：9.30mv2.传导速度（潜峰法）：两个动作电位波峰间的时间差(t2-t1）:12.24ms两对引导电极间的距离（s2-s1）:2.5cmV=(s2-s1)/(v2-v1)=2.5/12.24(cm/ms)≈2.04m/s3.兴奋不应期时间：由图可知:绝对不应期：1.25ms有效不应期：3.80ms相对不应期=有效不应期-绝对不应期=（3.80-1.25）ms=2.55ms三、实验结论：1.引导的动作电位的潜伏期为0.6ms，时程为1.9ms幅值为9.30mv。
2.神经干动作电位的传导速度为2.04m/s。
3.神经干动作电位的有效不应期时间为3.80ms，其中绝对不应期时间为1.25ms,相对不应期时间为2.55ms。
四、实验讨论：1.为什么这次实验动作电位的引导的动作电位是双相的？答：当膜在外正内负的极化状态下爆发动作电位时，兴奋膜上的动作电位呈现外负内正的去极化状态，这样兴奋部位和邻近静息电位产生了电位差。
当兴奋传到第一根引导电极的时候膜外为负电位，相应第二根引导电极处膜电位为正，此时两根引导电极之间产生了一个正电位差，经过放大器放大，出现一个正的动作电位；当兴奋传到第二根引导电极时，膜外电位为负，第一根电极膜处电位恢复到0，此时产生了一个负的电位差，同理产生了一个负的动作电位，故为双相动作电位。
2.动作电位在传导过程中无衰减现象的意义？答：为了保证信息的完整性。
3.通常所记录的双相动作电位的第一相和第二相何以在波形、幅值上不对称？在什么情况下可以记录到对称的双相动作电位？答：（1）由于神经干由各种神经纤维混合而成，在一对引导电极下的神经纤维的数量和种类均不同，当产生动作电位时每一引导电极下参与动作电位的形成的数量及总类也均不同，故第一相和第二相在波形、幅值上不对称。
人体解剖生理学实验教程
人体解剖生理学实验教程实验一神经干动作电位测定及兴奋传导速度和不应期测定一、实验目的：1、掌握坐骨神经标本的制备方法并按要求制备出完整的蟾蜍坐骨神经标本2、掌握神经干动作电位的引导、不应期及动作电位传导速度的测定方法二、实验内容：1、坐骨神经标本制备2、坐骨神经干动作电位测定3、坐骨神经干兴奋传导速度和不应期测定三、实验仪器设备和材料清单1、实验材料：蟾蜍或蛙、蛙类手术器械一套（包括探针、粗剪、手术剪、眼科剪、镊子、玻璃分针）、蛙板、滴管、培养皿、烧杯、棉线、棉球、滤纸片。
2、实验试剂：任氏液3、实验仪器：生物信号采集处理系统、打印机、、神经标本屏蔽盒四、实验要求1、学会用细胞外电刺激诱发神经干动作电位的方法；掌握生物电记录的一般原则和方法；熟悉生物信号采集处理系统的操作；2、要求学生了解科研过程，培养学生发现问题、分析问题、解决问题的能力；3、要求学生能独立操作每一个实验步骤，了解和掌握相关的原理，培养学生熟练操作。
五、实验原理：可兴奋组织如神经纤维在受刺激而兴奋时，细胞膜电位将发生一系列短暂的变化。
由安静状态下的膜外正膜内负的静息电位变为兴奋状态下的膜外负膜内正的去极化状态。
因此，在膜外兴奋区相对于未兴奋区来说电位为负。
这种电位差所产生的局部电流又引起邻近未兴奋区的去极化，使兴奋沿细胞膜传向整个细胞，而原来的兴奋区的膜电位又恢复到膜外正膜内负的静息水平。
这种可传播的、短暂的膜电位变化称之为动作电位。
可兴奋组织在一次兴奋之后，其兴奋性要经历一个规律的时相变化，依次是绝对不应期、相对不应期、超常期和低常期，然后才恢复到正常的兴奋性水平。
六、实验方法：一）、实验步骤和观察指标1、仪器装置准备好生物信号采集处理系统及相关电极。
2、制备蟾蜍坐骨神经标本(3)剪除躯干上部及内脏用左手在背部捏住脊柱尾端，让头与内脏自然下垂，右手持粗剪刀在骶髂关节水平以上1cm处剪断脊柱，剪除全部下垂的头及内脏，保留后肢，腰背部脊柱。
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神经干动作电位、传导速度及不应期的测定
【目的和原理】
神经纤维的兴奋表现为动作电位的产生和传导，神经纤维上传导的动作电位通常称为神经冲动。
在神经细胞外表面，已兴奋部位带“负电”，未兴奋部位带“正电”，用引导电极引导出此电位差，输入到示波器，则可记录到动作电位的波形。
本实验用细胞外记录法，可引导出坐骨神经的复合动作电位。
神经纤维兴奋的标志是产生一个可以传导的动作电位，它依局部电流或跳跃传导的方式沿神经纤维传导。
其传导速度取决于神经纤维的直径、内阻、有无髓鞘等因素，可用电生理学方法来记录和测量。
神经纤维在一次兴奋过程中，其兴奋性可发生周期性变化，包括绝对不应期、相对不应期、超常期和低常期。
本实验主要目的是学习电生理仪器的使用方法，掌握离体神经干动作电位的细胞外记录法及其基本波形的判断和测量。
掌握神经干动作电位传导速度及其不应期的测定方法，通过调整条件刺激和测试刺激之间的时间间隔，来测定坐骨神经干的绝对不应期。
【实验对象】
蟾蜍或蛙。
【实验器材和药品】
蛙类手术器械一套、电子刺激器、示波器（或计算机实时分析系统）、神经屏蔽盒、任氏液。
【实验步骤】
1．制备坐骨神经——胫、腓神经标本操作方法详见3．8。
2．连接装置（见图8-1-1）。
3．准备仪器：
（1）刺激器：调节刺激器各项参数：刺激方式连续刺激，频率16Hz，刺激强度0.5v，波宽0.1ms。
调节延迟使动作电位的图像位于示波器荧光屏的中央。
（2）示波器：灵敏度：1～2mv/cm，扫描速度：1～2ms/cm，引导电极输入到示波器的“AC”端，双边输入，刺激器的“同步输出”接示波器“外触发输入”，触发选择设置为“同步触发”。
4．观察项目：
图8-1-1 神经干动作电位引导装置图
（1）测量单、双相动作电位的潜伏期、时程和振幅，填入下表：
（2）测算动作电位的传导速度：
V=S/△t （米/秒）
式中：S为R1到R3的神经干长度，以米为单位。
t为上、下线动作电位起点的时间差，以秒为单位。
（3）测定神经干的绝对不应期：
在示波器上线保留动作电位，下线输入刺激器的刺激波。
调节两个刺激波的时间间隔，使其从5ms开始逐渐缩小，直到第二个刺激引起的动作电位消失为止，此时刺激间隔即为绝对不应期。
【注意事项】
1．分离和使用蟾蜍坐骨神经干标本时，注意保持标本湿润。
2．分离神经干时手法要轻柔，金属器械不要触及神经，以免损伤神经的兴奋性。
【思考题】
1．用细胞外记录法记录神经干动作电位的原理是什么？
2．简述神经兴奋性周期变化的规律。