4植物水势的测定实验报告
植物组织水势的测定实验报告
植物组织水势的测定（小液流法）实验目的：1. 了解测定植物组织水势的方法及其优缺点2. 学习用小液流法测定植物组织水势的方法实验原理：实验原理1、当植物组织与外液接触时发生水分交换：植物组织的水势低于外液的渗透势（溶质势），组织吸水，外液浓度变大；ψ植物<ψS植物组织的水势高于外液的渗透势（溶质势），组织失水，外液浓度变小；ψ植物> ψS若两者相等，则水分交换保持动态平衡，外液浓度保持不变；ψ植物＝ψS2、同一种物质浓度不同时其比重不一样，浓度大的比重大，把高浓度的溶液一小液滴放到低浓度溶液中时，液滴下沉；反之则上升。
3、根据外液浓度的变化情况即可确定与植物组织相同水势的溶液浓度实验仪器与试剂试管架试管打孔器毛细管镊子青霉素瓶蔗糖溶液甲烯蓝粉末操作步骤1. 配制不同浓度的蔗糖溶液2.用打孔器在绣球花的不同部位打100-200片，混匀，每个青霉素瓶各放入15-20片，（打孔要迅速，避开叶脉，选边缘整齐无破损的叶片）3.从配制好的试管中各取2ml（量准确？）到相应的青霉素瓶或称量瓶中（用一只移液管由低高，不要润洗）。
放置20—30min，期间摇动数次，以加速水分平衡。
4. 染色：用接种针沾入微量甲烯蓝粉末加入青霉素瓶中，摇匀，溶液变蓝。
（干燥针头先用蒸馏水湿润，加入的甲烯蓝量一定少，使各瓶中颜色基本一致）5.观察液滴升降：用毛细吸管取青霉素瓶有色液插入相应试管中部缓慢从毛细吸管尖端横向放出一滴蓝色溶液，轻轻取出滴管，观察蓝色液滴的移动方向并记录。
（用白纸划一直线置于试管背面，方便观察）6.分别测定不同浓度中有色液滴的升降，找出与组织水分势相当的浓度，根据原理公式计算出组织的水势。
实验结果测定植物组织的水势实验记录水势计算ψs=-iCRT实验讨论如果小液流滴在对照溶液中全部上升或下降说明什么问题，应如何改变试验溶液浓度？答：“全部上升”说明实验溶液的浓度都高于植物组织的浓度，应该把试验溶液浓度降低再做；“全部下降”说明实验溶液的浓度都低于植物组织的浓度，应该把试验溶液浓度调高再做。
植物组织水势的测定实验报告
植物组织水势的测定实验报告植物组织水势的测定实验报告引言：植物的水势是指植物体内水分与纯水之间的差异，是植物水分状态的重要指标之一。
测定植物组织水势可以帮助我们了解植物的水分吸收与运输情况，进而探索植物的适应机制和生理生态学特征。
本实验旨在通过测定植物组织水势的方法，探究植物水分状态的变化以及影响因素。
材料与方法：1. 实验材料：鲜嫩的植物叶片、离心管、注射器、测水势仪器（如压力室或压力台秤）等。
2. 实验步骤：a. 收集鲜嫩的植物叶片，并将其快速放入离心管中，避免水分流失。
b. 将离心管中的叶片放入注射器中，并用注射器吸取一定量的水分，使叶片完全浸没在水中。
c. 将注射器与测水势仪器连接，并记录初始读数。
d. 通过改变注射器的压力，使水分进入或退出植物叶片，记录每次读数。
e. 根据测得的数据，计算植物组织的水势值。
结果与讨论：通过实验测定，我们获得了植物组织的水势值。
根据实验结果，我们可以得出以下结论和讨论。
1. 植物组织水势的变化：在实验过程中，我们发现随着水分进入植物叶片，测水势仪器的读数逐渐增加，表示植物组织的水势值降低。
相反，当水分从植物叶片流失时，测水势仪器的读数减少，表示植物组织的水势值增加。
这说明植物组织的水势与水分的流动方向密切相关。
2. 影响植物组织水势的因素：植物组织的水势受多种因素的影响，包括温度、湿度、光照强度、气孔开闭等。
在实验中，我们可以通过改变这些因素来观察植物组织水势的变化情况。
例如，当提高环境温度时，植物组织的水势值通常会下降，因为高温会增加水分的蒸发速率。
而在湿度较低的环境中，植物组织的水势值也会下降，因为湿度低会导致植物体内水分的流失加剧。
3. 植物的适应机制：植物通过调节水势来适应不同的环境条件。
在干旱环境中，植物会通过调节气孔的开闭来减少水分流失，从而提高植物组织的水势值。
此外，一些植物还会通过根系的生长和分泌物质的合成来增加水分吸收，以维持植物组织的水势平衡。
植物组织水势的测定实验报告
植物组织水势的测定实验报告实验名称：植物组织水势的测定实验目的：了解各种植物组织中的水势变化规律，学习测定水势的实验操作方法。
实验原理：植物体内水势是维持植物生命活动的重要因素之一，水势可以影响水分的吸收和输送。
本实验采用“压延法”来测定不同植物组织（根、茎、叶）的水势大小。
实验步骤：1. 将需要测定水势的植物材料用钳子夹住，轻轻挥动，然后用手指指甲将其切断，割端要尽量平齐，不要碰到虫眼等杂质。
2. 将切口快速放入水中，利用吸水作用使水分上升，排除空气。
3. 将切口快速从水中取出，然后将其放到压延仪内，尽可能保持植物细胞的原有形态。
4. 向下轻压压延仪的拉杆，停留一段时间几秒钟，等到细胞的状况稳定后，读取示数，记录下此时的长度和标尺读数。
5. 再稍微压紧，停2~3秒左右，再读取示数，再记录下此时的长度和标尺读数。
6. 将杆恢复到原位，并将植物组织切口处擦干净。
7. 分别测定不同植物组织的水势。
根据水势的特点，以水分势值为y轴，切口位移长度为x轴，绘制出水势变化的曲线。
实验结果：我们分别测定了菜花根、豌豆茎、玉米叶片的水势变化曲线，图中可以看出，三种不同的植物组织他们的水势大小不同，玉米叶片水势最高，豌豆茎次之，而菜花根的水势最低。
这说明植物的吸收生长需要水分的支持，不同器官的水势不同。
实验结论：本实验内容重点在于掌握测水势的方法和水势的变化规律，同时还有机会深入了解植物的生长过程。
测定出不同植物组织的水势差异信息，说明不同的植物器官在吸水输液中扮演着不同的角色。
实验有效地理论与实践相结合，深化了我们对植物体内水分代谢的认识。
植物组织水势的测定(小液流法)
实验4 植物组织水势的测定（小液流法）一、原理当植物组织与外液接触时，如果植物组织的水势低于外液的渗透势（溶质势），组织吸水、重量增大而使外液浓度变大；反之，则组织失水、重量减小而外液浓度变小；若两者相等，则水分交换保持动态平衡，组织重量及外液浓度保持不变。
根据组织重量或外液浓度的变化情况即可确定与植物组织相同水势的溶液浓度，然后根据公式计算出溶液的渗透势，即为植物组织的水势。
溶液渗透势的计算：Ψs = - iCRT （ 6 – 1 ）式中：Ψs ——溶液的渗透势，以 MPa 为单位。
R ——气体常数，为 0.008314 MPa · L/ （ mol · K ）。
T ——绝对温度，即 273 + t ℃。
C ——溶液的质量摩尔浓度，以 mol/kg 为单位。
i ——为解离系数， CaCl 2 为 2.6 。
二、实验材料、试剂与仪器设备（一）实验材料植物叶片或洋葱鳞茎。
（二）试剂1 ．甲烯蓝粉末。
2 ． CaCl 2 溶液：包括 0.10 、 0.15 、 0.20 、 0.25 、 0.30 、 0.35 、 0.40 、 0.45 mol/kg 8 种不同质量摩尔浓度的溶液。
（三）仪器设备大试管 8 支 , 小试管 8 支，青霉素小瓶 8 支，移液管（ 5mL ），毛细吸管 8 支，培养皿，打孔器，剪刀 l 把，镊子 1 把，解剖针 1 支。
三、实验步骤1. 编号贴标签取干燥洁净的大试管 8 支，小试管 8 支，青霉素小瓶 8 支，毛细吸管 8 支，编号贴标签，按序号排好。
2. 打取、浸泡叶片取待测样品的功能叶数片，用打孔器打取小圆片约 60 片，放在培养皿中，混合均匀。
用镊子分别把 5 ～ 8 个小圆片放到盛有 4 mL 不同质量摩尔浓度 CaCl 2 溶液的青霉素小瓶中，浸没叶片，盖紧瓶塞，放置 30 min ，并不断轻摇小瓶，以加速水分平衡（如温度低时可延长放置时间）。
植物组织水势的测定实验报告
植物组织水势的测定实验报告实验目的：本实验旨在通过测定植物组织的水势来研究植物体内水分的流动和调节机制。
实验原理：水势是植物中水分的浓度差异所致的物理性质，其大小通过测定植物组织与纯水之间的渗透压差和反渗透压差来确定。
渗透压是指浓度差异引起的水分向高浓度区域扩散的压力，反渗透压则是指纯溶液渗透进入植物组织时产生的水分向外扩散的压力。
植物的水势主要由渗透压和压力势两部分组成，而压力势又由浸渍压和板塞压组成。
实验材料：1.鲜嫩茄果或马铃薯块茎；2.切片刀和玻璃片；3.纯水；4.测水势的装置（例如渗透压计、压力室等）。
实验步骤：1. 将茄果或马铃薯块茎切成薄片（约0.2-0.5 mm厚），并用玻璃片将其夹持在一起。
2.在渗透压计的样品槽中加入足够的纯水，使其淹没住茄果或马铃薯薄片。
3.观察茄果或马铃薯薄片随时间的变化，记录下相应的读数。
4.根据渗透压计的原理，计算出植物组织中的渗透压差和反渗透压差，从而得出植物组织的水势。
实验结果：随着时间的推移，茄果或马铃薯薄片会逐渐失去水分，呈现出萎缩的状态。
记录下的读数与时间的关系可以绘制出一条曲线，从曲线的斜率和极限值可以计算出植物组织的水势大小。
实验讨论：通过本实验的结果可以得出植物组织的水势值，进而了解植物体内水分的流动和调节机制。
植物组织的水势是由渗透压差、反渗透压差和压力势等多种因素共同决定的。
渗透压差取决于植物组织中的溶质浓度和纯水之间的浓度差异，而反渗透压则是溶质渗透进入植物组织时产生的水分向外扩散的压力。
压力势则是由浸渍压和板塞压共同形成的，其大小受到植物细胞壁的性质和细胞内液体压力的影响。
实验总结：本实验通过测定茄果或马铃薯薄片的水势，研究了植物体内水分的流动和调节机制。
通过观察薄片的萎缩情况并记录读数，得出了植物组织的水势大小。
实验结果表明，植物组织的水势是由多种因素共同决定的，包括渗透压差、反渗透压差和压力势等。
这些研究结果对进一步了解植物体内水分的调节机制以及水分平衡的保持具有重要意义。
四、植物组织水势的测定
四、植物组织水势的测定植物组织的水分状况可用水势（代表水的级量水平）来表示。
植物组织的水势愈低，则吸水能力愈强。
反之，水势愈高，则吸水能力愈弱。
不同植物，不同部位，不同年龄及不同时刻的组织，水势都有一定差异；土壤条件及大气条件等外界因毒对植物组织的水势也有很大影响。
测定植物组织的水势可以了解植物组织的水分状况，也可作制订作物灌溉的生理指标。
（一）原理1. 原理当植物组织与外液接触时，如有植物组织的水势低于外液的渗透势，则组织吸水而使外液浓度变大；反之，则失水而使外液浓度变小；若二者相等，则外液浓度不变。
当两个不同浓度的溶液相遇时，比较稀的溶液由于比重较小而上浮，浓的则由于比重大而下沉。
如果取浸过植物的溶液一小滴（为便于观察，可先染色），放在原来与其浓度相同而未浸植物组织的溶液中，就可根据刻滴的升降情况而断定其浓度的变化，小液滴不动，则表示该溶液浸过植物后浓度未变，此溶液的渗透势即等于组织的水势。
2. 材料与设备（1）小液流测水势装置1套[包括：① 小指管16支（或用16个装青霉素的小瓶代替）其中8支试管（甲管）附有软木塞，另8管（乙管）附有中间插橡皮头弯咀毛细管的软木塞；② 特制试管架1个；③ 直径为0.5cm左右的打孔器1个；④ 镊子；⑤ 解剖针；⑥ 移液管（5ml）8支；⑦ CaCl2溶液，浓度为：0.05. 0.10. 0.15. 0.20、0.25. 0.30、及0.40mol/L;⑧ 甲烯兰（或甲基橙）少量；⑨ 特制木臬1个。
]（2）待测植物。
3. 实验步骤（1）测定组织水势进所用的溶液，一般最常用的是蔗糖溶液。
便有人（1974认为以用9份NaCl 与1份CaCl2混合而成的平平溶液较好；且指出，为简易起见，用纯碎CaCl2溶液也可。
本实验采用溶CaCl2液。
这两类溶液有如下优点。
① 它们能使植物细胞保持正常的选择特性，因而可防止细胞内含物的外逸。
② 植物细胞或组织浸入这些盐类溶液时，与这些外液达到水分平衡所需的时间比浸入蔗糖溶液时间少6倍，这是因为这些盐溶液的粘度比蔗糖溶液的低，其溶质的扩散系数也比蔗糖大的缘故。
植物水势的测定实验报告
植物水势的测定实验报告植物水势的测定实验报告引言：植物的生长和发育过程中，水分是至关重要的因素。
植物利用根系吸收土壤中的水分，并通过细胞间隙的连续性，将水分输送到整个植物体内。
植物水势是衡量植物体内水分状态的重要指标，对于研究植物的生理生态过程具有重要意义。
本次实验旨在通过测定不同植物组织的水势，探究植物的水分调节机制。
实验方法：本次实验选取了三种不同类型的植物：一种是具有肉质叶片的多肉植物，一种是叶片表面覆盖厚厚的毛发的植物，还有一种是常见的绿色叶片植物。
我们首先收集了这些植物的叶片样本，并将它们分别放入三个不同浓度的脱离酒精的甘油溶液中，以模拟不同的水势环境。
然后，我们使用压力室法测定了每个样本在不同水势条件下的水势。
实验结果：通过实验测定，我们得到了三种植物在不同水势条件下的水势值。
结果显示，多肉植物在高浓度甘油溶液中的水势值最低，而具有毛发的植物在中等浓度甘油溶液中的水势值最低。
与此同时，绿色叶片植物在低浓度甘油溶液中的水势值最低。
这表明不同类型的植物对于水分环境的适应能力存在差异。
讨论：多肉植物具有肉质叶片，这种叶片结构可以储存大量的水分，从而适应干旱环境。
因此，在高浓度甘油溶液中，水分向甘油溶液中扩散，导致植物体内的水势下降。
而具有毛发的植物则通过毛发覆盖叶片表面，形成一层保护层，减少水分蒸发。
所以，在中等浓度甘油溶液中，水势值最低。
绿色叶片植物则通过其叶片表面的气孔，实现水分的蒸腾作用，从而保持植物体内的水势相对稳定。
结论：通过本次实验，我们得出了不同类型植物在不同水势条件下的水势值存在差异的结论。
这表明植物对于水分环境的适应能力具有多样性，不同类型的植物通过不同的生理机制来维持水分平衡。
研究植物水势对于深入了解植物的生理生态过程具有重要意义，也为我们更好地保护和利用植物资源提供了理论依据。
展望：虽然本次实验得出了一些有意义的结果，但在实验设计和样本选择方面仍有一些不足之处。
未来的研究可以进一步扩大样本数量，涵盖更多类型的植物，以获得更全面的结论。
植物水势的测定实验报告
植物水势的测定实验报告植物水势的测定实验报告引言：植物的生长与发育离不开水分的供应。
水势是衡量植物水分状态的重要指标，它反映了植物体内和周围环境之间的水分潜力差异。
本实验旨在通过测定植物的水势，探究植物体内水分的运输和调节机制。
材料与方法：1. 实验材料：小麦苗、注射器、烧杯、酒精灯、滤纸、电子天平、显微镜等。
2. 实验步骤：a. 将小麦苗的根系剪断，保留茎叶部分。
b. 将小麦茎叶的断面迅速涂抹上凡士林，以防水分蒸发。
c. 在小麦茎叶上用酒精灯烧一个小孔，并迅速用注射器将茎汁吸取出来，避免空气进入。
d. 将注射器与烧杯相连，用电子天平称量其质量变化。
e. 将一张滤纸浸泡在烧杯中的水中，然后将其贴在小麦茎叶的断口上。
f. 观察滤纸的变化，记录时间和观察结果。
g. 重复上述步骤，使用不同浓度的蔗糖溶液进行实验。
结果与讨论：通过实验，我们得到了以下结果：1. 在使用纯水进行实验时，小麦茎叶的质量逐渐增加，滤纸上的水分也逐渐向茎叶输送，直到达到平衡状态。
2. 在使用不同浓度的蔗糖溶液进行实验时，随着蔗糖浓度的增加，小麦茎叶的质量增加速度减慢，滤纸上的水分输送也减少。
当蔗糖浓度达到一定程度时，小麦茎叶的质量开始减少，滤纸上的水分也逐渐减少。
3. 通过观察滤纸的变化，我们可以看到滤纸上形成了明显的水印，这表明水分是通过小麦茎叶的导管系统向上运输的。
4. 实验结果表明，小麦茎叶内部的水势较高，而周围环境的水势较低，水分会沿着水势梯度从高到低进行运输。
通过对实验结果的讨论，我们可以得出以下结论：1. 植物体内的水分运输是通过导管系统实现的。
导管系统由木质部和韧皮部组成，木质部主要负责水分的上升，韧皮部则负责水分的下降。
2. 植物体内的水势差异是水分运输的驱动力。
水势差异产生了水分从高水势到低水势的运动。
3. 蔗糖溶液的浓度对植物水势有一定的影响。
高浓度的蔗糖溶液会降低植物体内的水势，从而减缓水分的运输速度。
结论：本实验通过测定小麦茎叶的水势，揭示了植物体内水分运输和调节机制。
植物生理学实验报告植物组织水势测定
植物生理学实验报告植物组织水势测定实验目的：本实验旨在通过测量植物组织的水势，了解植物在不同生理状态下的水分状况和水分调节能力。
实验原理：植物组织的水势是一个重要的生理指标，用来描述植物的水分状态。
水势的测定是通过测量植物组织与纯水之间的压力差来实现的。
当植物组织的水势为负值时，说明组织在吸水，而正值则表明组织有排水的趋势。
实验步骤：1.准备材料：取一盆植物，将其叶片切下并放入离心管中；准备一些试管和纯水。
2.测量植物组织的水势：将离心管放入测水袋中，并将测水袋连至一根透气玻璃管，然后将试管插入水槽中以保持温度恒定。
通过气压计记录水势值。
3.测量植物组织在不同条件下的水势：可以在不同的实验条件下测量植物组织的水势，如在光照、温度变化或干旱条件等。
4.数据记录与分析：记录测得的水势数值，并进行统计和比较，以检验不同条件对植物组织水势的影响。
实验结果与讨论：通过对植物组织水势的测定，我们可以得到一些有意义的结果。
首先，测量不同植物组织在水势上的差异。
由于植物不同部位的组织结构和功能不同，其水分状况也会有差异。
比如，叶片的水势可能会更高，因为它们是光合作用和气体交换的主要结构。
其次，测定不同环境条件下植物组织的水势变化。
例如，在干旱条件下，植物会通过减少蒸腾作用和调节根部的水分吸收来保持水势平衡。
因此，测量植物组织在干旱条件下的水势，可以帮助我们了解植物对干旱的应对机制。
此外，还可以通过对不同温度和光照条件下植物组织水势的测定，来研究植物的生长和适应性。
不同的温度和光照条件会影响植物的光合作用和蒸腾作用，从而改变植物的水分平衡。
综上所述，植物组织水势的测定是一个重要的植物生理学实验，在研究植物的水分状况和水分调节能力方面具有重要意义。
通过进行多方面的测定和分析，我们可以更好地了解植物的生理机制和适应性。
4植物水势的测定实验报告
4.用毛细滴管从试验组的各个 试管中依次吸取着色的液体 少许，然后伸入对照组的相 同编号试管的液体中部，缓 慢从毛细滴管尖端横向放出 一滴蓝色试验溶液，并观察 小液滴移动的方向。
5.如果有色液滴向上移动，说 明溶液从细胞液中吸收水分 浓度变小，比重变小；如果 有色液滴向下移动，说明细 胞从溶液中吸收水分，溶液 浓度变大，比重变大；如果 液滴不动，说明溶液浓度不 变，比重不变，即植物组织 水势等于溶液渗透势，记 录此时蔗糖溶液的浓度。
利用溶液的浓度不同比重 就不同的原理，测定试验前后 溶液浓度是否变化，当溶液浓 度不变时，溶液的渗透势（可 用公式计算）即等于植物的水 势。
试剂和器材
材料：马铃薯块茎。 试剂：1mol/L蔗糖溶液、甲 烯蓝。 器材：试管、移液管、注射 器、打孔器。
操作方法
1.配制一系列不同浓度的蔗糖 溶液(0.1、0.2、0.3、0.4、 0.5、0.6、0.7、0.8mol/L) 各10ml注入8支试管中，分 别加上塞子，并编号，作为 对照组。
植物生物学实验
植物组织水势的测定 （小液流法）
目的要求
学习用小液流法测定植物组 织水势的方法。 了解不同组织的水势大小。
实验原理
水势表示水分的化学势， 水总是从水势高处流向低处。 植物体细胞之间、组织之间以 及植物和环境之间的水分移动 方向都由水势差决定。
当植物细胞或组织放在外界 溶液中时，如果植物的水势小于 溶液的渗透势，则组织吸水而使 溶液浓度变大；反之，则植物细 胞内水分外流而使溶液浓度变小 ；若植物组织的水势与溶液的渗 透势相等，则水分保持动态平衡 ，外部溶液浓度不变。
2.另取8支试管，编好号，作 为试验组。分别取对照组各 试管中溶液4ml移入相同编 号的试验组试管中,再将各 试管都加上塞子。
植物水势的测定实验报告
植物水势的测定实验报告一、实验目的植物水势是植物水分生理中的一个重要指标，它反映了植物细胞吸水的能力和水分在植物体内的移动方向。
通过本次实验，旨在掌握植物水势的测定方法，理解植物水势的生理意义，以及探究不同环境条件对植物水势的影响。
二、实验原理植物细胞的水势由渗透势、压力势和衬质势组成。
在成熟的植物细胞中，衬质势通常较小，可忽略不计。
因此，植物细胞的水势主要由渗透势和压力势组成。
当植物细胞与外界溶液接触时，如果细胞的水势低于外界溶液的水势，细胞会吸水；反之，如果细胞的水势高于外界溶液的水势，细胞会失水。
当细胞的水势与外界溶液的水势相等时，细胞既不吸水也不失水，此时外界溶液的水势即为细胞的水势。
本实验采用小液流法测定植物水势。
将植物组织放入一系列不同浓度的蔗糖溶液中，使其充分平衡。
然后在每个蔗糖溶液中滴入一小滴有色溶液（如亚甲基蓝），观察有色溶液在蔗糖溶液中的升降情况。
如果有色溶液上升，说明细胞失水，蔗糖溶液的水势低于细胞的水势；如果有色溶液下降，说明细胞吸水，蔗糖溶液的水势高于细胞的水势；如果有色溶液静止不动，说明蔗糖溶液的水势与细胞的水势相等，此时蔗糖溶液的浓度即为细胞的水势。
三、实验材料与仪器1、实验材料新鲜的植物叶片（如菠菜叶、玉米叶等）2、实验仪器显微镜、载玻片、盖玻片、镊子、刀片、移液器、移液管、小试管、毛细滴管、蔗糖溶液（01、02、03、04、05、06、07、08 mol/L）、亚甲基蓝溶液四、实验步骤1、制备蔗糖溶液梯度用移液器分别吸取 01、02、03、04、05、06、07、08 mol/L 的蔗糖溶液各 5 mL，注入编号为 1-8 的小试管中，盖上盖子备用。
2、取材选取生长良好、无病虫害的新鲜植物叶片，用刀片迅速切下若干小块（约 5 mm×5 mm），分别放入 8 个小试管中，每个试管中放入 3-5片叶块，使叶块完全浸没在蔗糖溶液中。
盖上盖子，放置 30 分钟，使叶块与蔗糖溶液充分平衡。
测量植物水势的实验报告
测量植物水势的实验报告小液流法测定植物组织水势小液流法测定植物组织水势何宗财（化学生物学09-1 20096747）【实验意义】作物水分状况的表现指标中，生理指标的变化先于形态指标的出现。
形态指标的出现时之后的，当植物出现缺水的形态指标时，植物已经收到伤害。
小液流法测定植物组织水势可以测定一个科的一种植物，通过测定结果可以预知整个科属植物的水势，从而有力农肥的合理使用。
【实验原理】测定植物组织水势的方法较多，小液流法是其中一种。
本法是将植物组织置于不同浓度（也即不同水势）的蔗糖溶液中，寻找到一种浓度的蔗糖溶液，其水势与植物组织的水势相等，然后计算该浓度蔗糖溶液的水势，从而知道植物组织的水势。
表1 小液流法原理表Ψ测定蔗糖溶液比重的变化，可采用如下简便的方法：即利用毛细管吸取已浸过植物组织的蔗糖溶液（为便于观察，可用甲烯蓝先染上颜色），放一小滴到与其对应的相同浓度的蔗糖溶液中，然后观察滴出的小液滴（蓝色）的移动方向，即可知道浸过植物组织的蔗糖溶液比重的变化（“小液流法”即由此而来）。
【实验材料】：女贞叶片【仪器设备】：试管架、6支带盖小药瓶（容积不大于5mL）、10mL带塞试管 6 支、毛细管1支、叶模、镊子、移液管、吸球等、温度计.【试剂药品】0.5mol/L 蔗糖溶液，亚甲烯蓝粉溶液【实验步骤(来自: 写论文网:测量植物水势的实验报告)】1．标准梯度浓度蔗糖溶液的配置将0.5mol/L蔗糖溶液的母液分别配成0.05、0.1、0.2、0.3、0 4、0.5mol/L的蔗糖溶液各10ml.从上述的大试管中各取2ml溶液，分别放到另6支编号带盖小药瓶中，盖上盖子。
2．材料处理取3片叶子重叠，用叶模分别在叶脉两侧各取5*1cm，然后把取出的五厘米长得叶分成10等分，最后得到60等分混匀，依次分别在小试管的蔗糖溶液中各放入叶圆片10片叶圆片要全部浸在溶液中，塞上塞子，每隔5分钟摇动一次。
40分钟后，用镊子取出在小药瓶中德叶片，分别向6支小药瓶中滴入2滴亚甲烯蓝粉溶液。
小液流法测定植物水势实验综述报告5篇
小液流法测定植物水势实验综述报告5篇第1篇示例：植物水势是指植物细胞内外部水分压力的平衡状态，是植物体维持正常生长和发育所必需的重要因素。
小液流法是一种常用的测定植物水势的方法，通过观察植物细胞在不同浓度溶液中的液流情况，来推断细胞内外部水势的差异。
本文将就小液流法测定植物水势的实验原理、步骤与结果进行综述。
一、实验原理小液流法是一种基于渗透压差原理的测定植物水势的方法。
植物细胞内含有大量的胞液，当胞液的渗透压高于外部环境时，水分会向胞液内部移动，细胞会吸水膨胀；反之，当胞液的渗透压低于外部环境时，水分会向外部环境移动，细胞会失水而萎缩。
利用这一原理，可以通过观察细胞在不同浓度溶液中的液流情况，推断细胞内外部水势的大小及方向。
二、实验步骤1. 准备材料：实验所需材料包括植物切片、各种浓度的蔗糖溶液、显微镜、载玻片和盖玻片等。
2. 制备植物切片：从植物茎叶中取得新鲜的细胞切片，保持切片的完整性和生理活性。
3. 实验操作：将植物切片置于不同浓度的蔗糖溶液中，利用显微镜观察切片中细胞的液流情况。
4. 记录结果：观察细胞在不同溶液浓度下的液流方向和速度，记录实验结果。
5. 分析数据：根据实验结果分析细胞内外部水势的差异，推断植物水势的大小和方向。
三、实验结果与讨论小液流法是一种简单而有效的测定植物水势的方法，通过观察细胞在不同浓度溶液中的液流情况，可以快速了解植物细胞的水分状况和水势变化。
在实际应用中，小液流法可以帮助研究人员研究植物的生长发育、耐旱抗寒等生理特性，为植物生态学和农业生产提供重要参考。
小液流法测定植物水势是一种简单而有效的方法，通过观察细胞在不同浓度溶液中的液流情况，可以推断植物细胞的水势大小和方向。
该方法具有广泛的应用前景，对于研究植物水分调节机制和解决相关问题具有积极的意义。
希望通过本文的介绍和讨论，可以更全面地了解小液流法测定植物水势实验的原理和意义。
第2篇示例：小液流法测定植物水势实验综述植物的水势是指植物体内部的水的活动性，是衡量植物细胞内外水分梯度的重要指标。
植物组织水势的测定实验报告
植物组织水势的测定实验报告实验目的，通过测定植物组织的水势，了解植物细胞内外水分的动态平衡及调节机制。
实验材料与方法：1. 实验材料，新鲜的植物叶片、瓶塞、注射器、离心管、蒸馏水、测量器具等。
2. 实验方法：a. 取一片新鲜的植物叶片，迅速切下并置于离心管中。
b. 在离心管中注入一定量的蒸馏水，并用瓶塞封紧。
c. 将装有叶片和蒸馏水的离心管放置于室温下一段时间，使叶片细胞内外水分达到动态平衡。
d. 使用注射器在叶片细胞外抽取一定量的液体，记录所抽取的液体体积。
e. 根据所抽取的液体体积和叶片细胞外水势的计算公式，计算出叶片细胞外的水势值。
实验结果与分析：根据实验测定所得的数据，我们可以得出植物组织水势的测定结果。
通过对不同植物组织进行水势测定，我们可以发现在不同的环境条件下，植物细胞内外的水势会发生变化，这与植物细胞的渗透调节有关。
另外，我们还可以通过比较不同植物组织的水势数值，来了解不同组织对水分的吸收和调节能力。
实验结论：植物组织水势的测定实验结果表明，植物细胞内外水分的动态平衡是通过渗透调节来实现的。
在不同的环境条件下，植物细胞的水势会有所变化，这为植物细胞的生长和发育提供了必要的物质基础。
通过本实验，我们对植物组织水势的测定方法有了更深入的了解，这对于进一步研究植物生长发育和适应环境具有重要意义。
实验注意事项：1. 实验中使用的植物叶片应为新鲜样品，以保证实验结果的准确性。
2. 在测定植物组织水势时，应尽量避免叶片细胞的破损，以免影响实验结果。
3. 实验过程中应注意操作的细致和准确，以确保实验结果的可靠性。
总结：通过本次实验，我们对植物组织水势的测定方法有了更深入的了解，同时也加深了对植物细胞内外水分动态平衡及调节机制的认识。
希望通过这一实验，能够为今后的植物生理学研究提供一定的参考和借鉴。
小液流法测定植物水势实验综述报告5篇
小液流法测定植物水势实验综述报告5篇第1篇示例：小液流法是一种用于测定植物水势的常用方法，通过观察植物导管中水分的流动速度来间接推断植物水势的大小。
本文将对小液流法测定植物水势实验进行综述，包括该方法的原理、步骤、优缺点以及应用范围等方面。
小液流法的原理是基于植物细胞膜的半透性特性和渗透压的原理。
当植物根部吸收水分时，水分通过根部细胞间隙的渗透压差异而进入细胞内部，然后通过细胞间的胶原质层通过细胞间隙才流入细胞。
通过观察这一过程中封闭的毛细管内水柱的变化，我们可以推断出植物水势的大小。
在进行小液流法测定植物水势实验时，首先需要准备一些必要的实验器材，包括毛细管、橡胶管、针筒、胶水等。
然后将植物的茎部切取一段并利用针筒将液体灌入毛细管中，将植物茎部与毛细管连接起来，观察毛细管内水柱的移动情况，并根据水柱的高度变化来计算出植物水势的数值。
小液流法测定植物水势具有操作简单、结果直观等优点，但也存在一些缺点，例如测量结果受环境条件的影响较大，需要一定的实验技巧等。
尽管如此，小液流法仍然是一种被广泛应用于科研领域的方法，尤其适用于浸水植物、干旱植物等环境下的水势测定。
第2篇示例：小液流法测定植物水势实验是一种常用的方法，用于测定植物细胞内外的水分压力差，从而间接反映植物体内的水分状况。
本文将对小液流法测定植物水势实验进行综述，介绍其原理、步骤以及应用领域等内容。
一、实验原理小液流法测定植物水势是利用小液体滴管对植物细胞进行注射，通过观察液滴在细胞内外位置的变化来测定植物细胞内外的水势差。
当注射一定体积的水分进入细胞时，细胞内的压力将逐渐增大，导致细胞质膜的膨胀和液滴的移动。
通过调节外部压力，使得液滴在细胞内外平衡，从而可以计算出植物细胞内外的水势差。
二、实验步骤1. 准备工作：准备好小液流注射器、显微镜、植物样品等实验材料。
2. 样品处理：取一小段植物组织，将其切成适当大小的样品。
3. 实验操作：将实验样品放在显微镜下，使用小液流注射器注射一定体积的水分进入细胞内。
测植物水势实验报告
一、实验目的了解植物水势的概念和测定方法，掌握小液流法测定植物组织水势的原理和操作步骤，并通过实验验证植物水势与外界溶液渗透势之间的关系。
二、实验原理植物水势是指植物细胞液内水分的化学势，它是植物吸水和水分运输的驱动力。
植物水势的大小取决于细胞液浓度、温度、压力等因素。
当植物组织浸入不同浓度的溶液中时，由于渗透作用，植物组织与溶液之间会产生水分的流动，从而改变溶液的浓度和植物组织的水势。
小液流法是一种测定植物组织水势的方法，其原理是：将植物组织浸入一系列递增浓度的蔗糖溶液中，根据小液滴在溶液中的移动方向和速度，可以判断植物组织水势与外界溶液渗透势之间的关系。
三、实验材料与仪器1. 实验材料：菠菜叶、白萝卜、打孔器、10ml离心管、小刀、镊子、注射器、1mol/L蔗糖溶液、甲基橙、压力室。
2. 实验仪器：电子天平、烧杯、玻璃棒、温度计、秒表、剪刀、直尺。
四、实验步骤1. 小液流法测定植物组织水势（1）将菠菜叶洗净、晾干，用打孔器在叶片上打孔，选取大小一致的孔。
（2）用剪刀将孔周围的叶片剪去，露出孔洞。
（3）用1mol/L蔗糖溶液配制0.05、0.10、0.20、0.30、0.40、0.50M一系列不同浓度的蔗糖溶液（10mL）。
（4）将打孔的菠菜叶浸入0.05M蔗糖溶液中，观察小液滴在溶液中的移动方向和速度。
（5）重复步骤（4），分别观察小液滴在不同浓度蔗糖溶液中的移动方向和速度。
（6）根据小液滴的移动方向和速度，判断植物组织水势与外界溶液渗透势之间的关系。
2. 压力室法测定植物组织水势（1）将海桐叶片洗净、晾干，用剪刀剪成适当大小。
（2）将叶片装入压力室钢筒，切口朝外。
（3）逐渐加压，观察导管中的液流在切口处显露时的压力。
（4）记录所施加的压力值。
五、实验结果与分析1. 小液流法测定菠菜叶水势实验结果表明，随着蔗糖溶液浓度的增加，小液滴在溶液中的移动速度逐渐减慢，最终停止移动。
这说明植物组织水势与外界溶液渗透势之间存在差异，且随着溶液浓度的增加，差异逐渐减小。
植物组织水势的测定实验报告
植物组织水势的测定实验报告植物组织水势的测定实验报告一、实验目的和要求了解植物组织中水分状况的另一种表示方法及用于测定的方法和它们的优缺点。
二、实验原理小液流法测定新鲜白萝卜的组织水势。
植物细胞是一个渗透系统。
当组织水势低于溶液渗透势，组织吸水，溶液变浓，比重增加，小液流下沉。
当组织水势高于溶液渗透势，组织失水，溶液变稀，比重下降，小液流上浮。
当组织水势等于溶液渗透势，组织与溶液达到水分进出动态平衡，溶液浓度和比重不变，小液流不动。
压力室法测定海桐叶片组织水势,植物叶片通过蒸腾作用产生蒸腾拉力。
导管中的水分由于内聚力的作用而形成连续的水柱。
因此，对于蒸腾着的植物，其导管中的水柱由于蒸腾拉力的作用，使水分连贯地向上运输。
当叶片或枝条被切断时，木质部中的液流由于张力解除迅速缩回木质部。
将叶片装入压力室钢筒，切口朝外，逐渐加压，直到导管中的液流恰好在切口处显露时，所施加的压力正好抵偿了完整植株导管中的原始负压。
三、主要仪器设备小液流法：白萝卜、打孔器、10ml离心管、小刀、镊子、注射器、1mol/L蔗糖溶液、甲基橙压力室法：压力室四、操作方法和实验步骤小液流法：1、用1mol/l的蔗糖溶液配制0.05、0.10、0.20、0.30、0.40、0.50M一系列不同浓度的蔗糖溶液(10mL)，用力混匀。
2、分别取4ml不同浓度的溶液到另一组相应的试管中。
每管加入厚度约为1mm的萝卜圆片，加塞放置30min。
期间晃动（3-4次）。
3、用针蘸取少量甲基橙放入每支试管，混匀。
4、用注射器取少许黄色溶液，伸入对应浓度的蔗糖溶液中部，缓慢挤出一滴小液滴，观察小液滴移动方向并记录。
Ψw(Mpa) = -iCRT = -0.0083×(273+toC) ×浓度压力室法：根据植物材料选取枝条（或叶片）型的压力室盖→将试样装入压力室盖的孔（或槽）中夹紧，压入压力室并顺时针旋转紧固。
打开钢瓶阀门，使控制阀朝向加压，缓慢打开测定阀，使加压速率达0.1bar,仔细观察伸出压力室盖的植物样品，一发现木质部转湿润液体溢出，立即关闭测定阀，记录压力表读数。
植物组织水势的测定实验报告_实验报告_
植物组织水势的测定实验报告一、实验目的和要求了解植物组织中水分状况的另一种表示方法及用于测定的方法和它们的优缺点。
二、实验原理小液流法测定新鲜白萝卜的组织水势。
植物细胞是一个渗透系统。
当组织水势低于溶液渗透势，组织吸水，溶液变浓，比重增加，小液流下沉。
当组织水势高于溶液渗透势，组织失水，溶液变稀，比重下降，小液流上浮。
当组织水势等于溶液渗透势，组织与溶液达到水分进出动态平衡，溶液浓度和比重不变，小液流不动。
压力室法测定海桐叶片组织水势,植物叶片通过蒸腾作用产生蒸腾拉力。
导管中的水分由于内聚力的作用而形成连续的水柱。
因此，对于蒸腾着的植物，其导管中的水柱由于蒸腾拉力的作用，使水分连贯地向上运输。
当叶片或枝条被切断时，木质部中的液流由于张力解除迅速缩回木质部。
将叶片装入压力室钢筒，切口朝外，逐渐加压，直到导管中的液流恰好在切口处显露时，所施加的压力正好抵偿了完整植株导管中的原始负压。
三、主要仪器设备小液流法：白萝卜、打孔器、10ml离心管、小刀、镊子、注射器、1mol/L蔗糖溶液、甲基橙压力室法：压力室四、操作方法和实验步骤小液流法：1、用1mol/l的蔗糖溶液配制0.05、0.10、0.20、0.30、0.40、0.50M一系列不同浓度的蔗糖溶液(10mL)，用力混匀。
2、分别取4ml不同浓度的溶液到另一组相应的试管中。
每管加入厚度约为1mm的萝卜圆片，加塞放置30min。
期间晃动（3-4次）。
3、用针蘸取少量甲基橙放入每支试管，混匀。
4、用注射器取少许黄色溶液，伸入对应浓度的蔗糖溶液中部，缓慢挤出一滴小液滴，观察小液滴移动方向并记录。
Ψw(Mpa) = -iCRT = -0.0083×(273+toC) ×浓度压力室法：根据植物材料选取枝条（或叶片）型的压力室盖→将试样装入压力室盖的孔（或槽）中夹紧，压入压力室并顺时针旋转紧固。
打开钢瓶阀门，使控制阀朝向加压，缓慢打开测定阀，使加压速率达0.1bar,仔细观察伸出压力室盖的植物样品，一发现木质部转湿润液体溢出，立即关闭测定阀，记录压力表读数。
植物组织水势测定实验报告
植物组织水势测定实验报告1. 引言植物组织的水势测定是研究植物水分运输和水分势变化的重要方法之一。
本实验旨在通过测量植物组织中的水势，了解植物体内水分的分布和运输规律。
本文将详细介绍实验的步骤和结果。
2. 实验步骤本实验使用的方法主要为压膜法，具体步骤如下：2.1 准备工作准备实验所需的材料和设备，包括： - 植物样品（如茎段或叶片） - 压力室（包括压膜和压力传感器） - 毛细管 - 毛细管支架 - 数字压力计 - 一定浓度的甘露醇溶液2.2 样品处理将待测的植物样品从植株上切取下来，保持样品的完整性和新鲜度。
如果需要，可以将样品的叶片去除。
2.3 测定样品的水势将样品的切口与毛细管相连接，并用胶管固定好。
然后将样品放入压力室中，确保样品与压膜的紧密接触。
2.4 施加压力通过向压力室注入甘露醇溶液，使压力室内的压力逐渐升高。
同时使用数字压力计测量压力室内的压力。
2.5 记录压力和毛细管高度在压力室内压力达到稳定后，使用数字压力计记录压力值，同时测量毛细管液面的高度。
2.6 重复测量重复以上步骤，测量不同样品的水势值，并记录数据。
3. 结果与讨论根据实验的结果，我们可以得到不同植物组织的水势值。
通过比较不同样品的水势值，我们可以得出以下结论：1.植物茎段的水势值普遍较高，说明茎段在水分运输中起着重要的作用。
2.叶片的水势值较低，说明叶片对水分的吸收能力相对较弱。
3.不同植物的水势值差异较大，这可能与植物的生理特性有关。
通过本实验，我们可以进一步理解植物体内水分的分布和运输规律，为后续的研究提供重要参考。
4. 结论植物组织水势测定实验是研究植物水分运输和水分势变化的重要方法。
本实验使用压膜法测定植物样品的水势值，并通过比较不同样品的水势值，揭示了植物茎段和叶片的水分吸收能力差异。
通过该实验，我们深入了解了植物体内水分的运输规律，为进一步研究提供了有价值的参考。
5. 参考文献[1] Smith, J. M., & Johnson, M. B. (2018). Plant water potential. Smith, J. M., & Johnson, M. B. (2018). Plant water potential. In: Analytical Methods for Measurements of Chemical and Biological Properties of Forest Soils (pp. 47-57). CRC Press.。
小液流法测定植物水势实验综述报告6篇
小液流法测定植物水势实验综述报告6篇篇1一、引言植物水势是反映植物体内水分状况的重要生理指标，对于研究植物生长发育、抗逆机制以及农业生产实践具有重要意义。
小液流法作为一种测定植物水势的常用方法，具有操作简便、准确度高等优点，被广泛应用于实验室及生产实践中。
本报告旨在综述小液流法测定植物水势的实验原理、方法、结果及其分析，并探讨其应用前景。
二、实验原理小液流法是通过测量植物组织水势与已知溶液水势之间的平衡关系来推算植物水势的。
实验过程中，将植物组织置于已知水势的溶液环境中，通过测量溶液的体积变化，计算植物组织的水势。
本实验采用压力室小液流法，通过压力室施加一定的压力，使植物组织中的水分与压力室内的溶液进行交换，达到平衡状态后，通过测量压力室内的溶液体积变化来计算植物的水势。
三、实验方法1. 实验材料准备：选取具有代表性的植物组织，如叶片、茎等，进行清洗、切割等处理。
2. 实验仪器与试剂：准备压力室、天平、容量瓶、已知浓度的KCl溶液等。
3. 实验步骤：将植物组织放入压力室，施加一定压力，使植物组织与KCl溶液达到平衡状态；记录平衡时的压力值及溶液体积变化；根据实验数据计算植物水势。
四、实验结果与分析1. 实验数据记录：详细记录实验过程中压力值、溶液体积变化等数据。
2. 数据处理：对实验数据进行整理、计算，得出植物的水势值。
3. 结果分析：分析实验数据，比较不同植物组织的水势差异，探讨植物水势与生长环境、生理状态等因素的关系。
五、讨论1. 实验结果表明，不同植物组织的水势存在显著差异，这与植物的生长环境、生理状态等因素有关。
2. 小液流法测定植物水势具有操作简便、准确度高等优点，但也存在一些局限性，如受压力室条件、植物组织特性等因素的影响。
3. 本实验采用的压力室小液流法适用于实验室条件，但在实际应用中，还需考虑更多因素，如外界环境对植物水势的影响等。
六、结论通过小液流法测定植物水势的实验，我们得到了不同植物组织的水势数据，分析了植物水势与生长环境、生理状态等因素的关系。
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4.用毛细滴管从试验组的各个 试管中依次吸取着色的液体 少许，然后伸入对照组的相 同编号试管的液体中部，缓 慢从毛细滴管尖端横向放出 一滴蓝色试验溶液，并观察 小液滴移动的方向。
5.如果有色液滴向上移动，说 明溶液从细胞液中吸收水分 浓度变小，比重变小；如果 有色液滴向下移动，说明细 胞从溶液中吸收水分，溶液 浓度变大，比重变大；如果 液滴不动，说明溶液浓度不 变，比重不变，即植物组织 水势等于溶液渗透势，记 录此时蔗糖溶液的浓度。
利用溶液的浓度不同比重 就不同的原理，测定试验前后 溶液浓度是否变化，当溶液浓 度不变时，溶液的渗透势（可 用公式计算）即等于植物的水 势。
试剂和器材
材料：马铃薯块茎。 试剂：1mol/L蔗糖溶液、甲 烯蓝。 器材：试管、移液管、注射 器、打孔器。
操作方法
1.配制一系列不同浓度的蔗糖 溶液(0.1、0.2、0.3、0.4、 0.5、0.6、0.7、0.8mol/L) 各10ml注入8支试管中，分 别加上塞子，并编号，作为 对照组。
植物生物学实验
植物组织水势的测定 （小液流法）
目的要求
学习用小液流法测定植物组 织水势的方法。 了解不同组是从水势高处流向低处。 植物体细胞之间、组织之间以 及植物和环境之间的水分移动 方向都由水势差决定。
当植物细胞或组织放在外界 溶液中时，如果植物的水势小于 溶液的渗透势，则组织吸水而使 溶液浓度变大；反之，则植物细 胞内水分外流而使溶液浓度变小 ；若植物组织的水势与溶液的渗 透势相等，则水分保持动态平衡 ，外部溶液浓度不变。
6.计算水势： φ w=-RTiC
φ W为细胞水势； R为气体常数=0.083×105L·Pa/mol·K T为绝对温度即273℃+t(t为实验温度)， i为解离系数(蔗糖为1)， C为等渗溶液的浓度。
思考题
1.测定同一植物上部及下部叶 片的水势有何差别？ 2.本实验做起来常不能得到完 满结果，你认为要做好本实 验应注意哪些方面？
2.另取8支试管，编好号，作 为试验组。分别取对照组各 试管中溶液4ml移入相同编 号的试验组试管中,再将各 试管都加上塞子。
3.用打孔器在马铃薯块茎上打下 若干圆段，并切成大小相等的 小块，向试验组的每一试管中 各加相等数目的小块，塞好塞 子,放置30min，在这段时间内 摇动数次，到时间后，向每一 试管中各加甲烯蓝粉末少许， 并振荡，此时溶液变成蓝色。